Summary
ここでは、光シート顕微鏡を用いた三次元 (3 D) コラーゲン マトリックスに埋め込まれた免疫細胞を可視化するためのプロトコルを提案する.このプロトコルはまた、3 D の細胞の移動を追跡する方法を詳しく説明します。3 D マトリックスの懸濁細胞の他のタイプのこのプロトコルを用いることができます。
Abstract
生体内で、活性化、増殖、およびすべての免疫細胞の機能は、例えばリンパ節の組織の三次元 (3 D) 環境で発生します。最新では、ほとんどの生体外でシステムは細胞培養プレートか coverslips などの 2 次元 (2 D) 表面に依存します。生理学的な条件を最適な模倣の in vitro、単純な 3 D コラーゲン マトリックスを駆使します。コラーゲンは細胞外マトリックス (ECM) の主要なコンポーネントの 1 つと広く 3 D マトリックスを構成するために使用されています。3 D イメージングの (単一の平面照明顕微鏡とも呼ばれる) 最近開発された光シート顕微鏡技術は高い集録速度、大きな浸透深さ、低漂白、photocytotoxicity と紹介されています。さらに、光シート顕微鏡は長期計測のため特に有利です。ここで最適化されたプロトコルは、セットアップ、人間の免疫細胞、例えば主なひと細胞傷害性 T リンパ球 (CTL) を処理する方法を記述してナチュラル キラー (NK) 細胞の生細胞イメージングのための光シート顕微鏡用 3 D コラーゲン マトリックス ・固定サンプル。細胞遊走の画像取得と解析の手順が掲載されています。特定焦点は、重要なステップと試料調製及びデータ解析のための要因を強調表示に与えられます。このプロトコルは、3 D コラーゲン マトリックスの懸濁細胞の他のタイプのために用いることができるし、免疫細胞に制限されていません。
Introduction
移行についてほとんど知識細胞に由来する 2 D 実験1,2,3、通常ガラスまたは文化/イメージングのプラスチック表面で実施された料理。しかし、生理学的なシナリオを必要とするほとんどのケースで 3 D 微小環境、細胞外マトリックス (ECM) が決定的な役割を果たしています。ECM は、適切な細胞の形態を維持するために 3 D 構造エッセンシャルを提供するだけでなく、生存信号または多く細胞4、5の最適な機能の方向性の手がかりを提供しています。したがって、3 D 環境が良い細胞機能および生理学的なコンテキストを反映してより良い環境での動作を識別するために必要です。
人間の体内では、ほとんど細胞免疫細胞特には 3 D シナリオの下でその機能を発揮します。たとえば、活性化 T 細胞は標的細胞を探して組織をパトロール、ナイーブ T 細胞はリンパ節の検索中に移行モードと機械に対応する細胞外適応している同種の抗原提示の細胞に移行環境3,6,7。3次元コラーゲンゲルは、よく確立され、よ特徴付けられた 3 D の細胞培養システム8,9,10として広く使用されています。我々 の以前の仕事は、一次ヒトリンパ高度なモバイルが 0.25% コラーゲン ベースの行列11約 4.8 μ m/分の平均速度で移行を示しています。細胞骨格の再編は、細胞移行12のキーの役割を果たしています。細胞外シグナルが曲とリンパ球のみのシングル モードの移行は適用されませんまだ場所、微小環境、サイトカイン、走化性の勾配に応じて特定の移行動作を切り替えることができますを示しています証拠を蓄積、別の方法3の回遊行動。
免疫細胞機能や動作、たとえば、移行、突出部形成または小胞輸送を確実に分析するには、高速かつ信頼性の高い方法で比較的大きな 3 D ボリューム内の画像を取得することができるため大きな利点です。3 D イメージングのため (1 つの平面照明顕微鏡とも呼ばれる) 最近開発された光シート顕微鏡技術は、満足のいく解決13,14を提供しています。買収、イメージング、中にサンプルを照らす照明板が薄く静的が生成されます。これで、焦点面大面積は、平面を細胞に影響を与えずに同時に照らされることができます。この機能により、大幅に削減漂白と photocytotoxicity 高速です。本稿では、光シート顕微鏡を用いたプライマリひと免疫細胞を可視化する方法と 3 D のシナリオで移行を分析する方法について説明します。
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Protocol
ひと由来の材料 (ヒトの血液ドナーからの白血球減少システム室) と本研究の遂行の研究が倫理委員会 (16.4.2015 (84/15; から宣言によって承認されて教授博士レッティグ Stürmer))、対応するガイドラインに従います。
1. 中和コラーゲン溶液の調製 (500 μ L)
- 細胞文化のフードの下で滅菌 1.5 mL チューブに冷やしたコラーゲン原液 (10.4 mg/mL) の 400 μ L を転送します。徐々 に 50 μ L の冷蔵チルド コラーゲン原液の 400 μ L に 10 x PBS (pH 7.0 7.3) を追加します。チューブにそっと並べてソリューションをミックスします。
注: セル文化フードの下でパート 1 のすべてのステップを行ってください。 - 1.1 から 500 μ L のコラーゲン溶液に 0.1 M NaOH の 8 μ L を追加します。7.2 7.6 に pH を調整します。PH テスト ストリップを使用 (pH 範囲: 6-10) 混合物の pH 値を確認します。
注: ボリュームは、コラーゲンの異なるバッチの異なる場合があります。NaOH 溶液が空気の泡を避けるためにゆっくりと混合します。混合物は、コラーゲンのゲル化を避けるために氷の上に保管すべき。 - 追加 2 μ L 滅菌 ddH2O 500 μ L に最終巻をするはよく混合し、さらに使用するまで氷の上または 4 ° C でこのコラーゲン溶液 (8.32 mg/mL) を格納します。
注: この条件の下で中和されたコラーゲン使用できます 24 時間因数は空気の泡を避けるために推奨されません。
2. 毛細血管を使用して光シート蛍光顕微鏡用試料
- 蛍光前述目的主な蛍光染料15または蛍光タンパク質11で関心の生きているセルにラベルを付けます。
- 細胞文化のフードの下で滅菌 1.5 mL チューブに 1 × 106セルを転送します。200 x g で 8 分間破棄でチューブに上清を遠心し、培養液 200 μ L でペレットを再懸濁します。
注: 特に細胞傷害性 T リンパ球 (CTL) とナチュラル キラー (NK) 細胞のための人間の免疫細胞の移動の可視化のためには、5 × 106セル/mL の細胞密度の使用をお勧めします。 - 1.3 から中和されたコラーゲン溶液の 85.9 μ L を追加します。2.2 からセル中断。2.5 mg/mL のコラーゲン濃度に到達する適切にミックスします。ボンネットの氷にセル/コラーゲン ミックスを残します。
注: N mg/mL、コラーゲンの必要な濃度と、仮定のボリューム中和 (200 μ L 細胞懸濁液) のコラーゲン溶液 200 × N =/(8.32-N) - 次に、一致するプランジャーを毛細血管に入れ (内径 〜 1 mm) ピストンが毛細血管から 1 mm になるまで。培地 (図 1 a) に浸漬によってプランジャーを濡れています。
注: この手順は、セル/コラーゲン ミックスにキャピラリーを浸したときに空気の泡を防ぐために助けることができます。キャピラリーとピストンが無菌であることはありません。 - 2.3 からセル/コラーゲン ミックスにキャピラリーを浸し。10 〜 20 ミリメートル (図 1 b) にプランジャーをゆっくり引き出します。残りのコラーゲン溶液を削除する 70% エタノール スプレーで湿らせたペーパー タオルで毛細血管の外側の壁を拭いてください。
- マウント 5 mL チューブの内壁に粘土のモデリング、毛管、キャピラリー (図 1) の端にセル/コラーゲン ミックスを押してください。
- 5% CO2コラーゲン重合の 1 h の 37 ° C で毛細血管を保ちます。
- 5 mL チューブに培 (約 1-2 mL) を追加します。(図 1) の中にぶら下がっているコラーゲンの約 3/4 媒体に、重合コラーゲン棒を慎重に押して。
- 5% CO2培地でコラーゲン ロッドを平衡に別の 30 分の 37 ° C で、このような毛細血管を保ちます。
注: その後、コラーゲン棒引っ張ることができる毛管と培養にさらに使用する前にさらに。
3. 画像集録光シート顕微鏡を用いた
- アセンブリの製造元の指示に従って試料室。
- 孵化とサンプル室 (ライブセル イメージングのみ) の 37 ° C に加熱する顕微鏡を入れます。
- 試料室にキャピラリーを置きイメージ獲得のため関心のある分野を検索するサンプルを探します。
- 対応する laser(s) をアクティブにします。次の設定: レーザー パワー、露光時間、z スタック、および生きているセルイメージ投射の時間間隔の z スタック ・開始・終了位置のステップ サイズ。
メモ: たとえば、図 2の例をイメージしましたすべての 40 s 1 μ m のステップ サイズの 37 ° C で 6 時間 (総厚: 538 μ m)。レーザー出力が 30 さん x、y 方向のピクセル サイズの露光時間で 1 %0.23 μ m。 - 画像の取り込みを開始します。
4. 自動追跡の分析
- ファイル コンバーターを開き、ソフトウェアのファイル形式 (*.ims) に変換する画像ファイルを選択して[ファイルの追加] をクリックします。参照をクリックし、変換後のファイルを保存するフォルダーを選択します。すべてを開始をクリックします。
- 解析ソフトウェアを開きます。凌駕をクリックします。ファイルに移動し、クリックしてオープン、分析対象とする画像ファイルを選択します。
注: ファイルのサイズが大きい場合この手順は時間をかかることがあります。1 テラバイト (TB) を超えるファイルには推奨されません単一の実験プロセスとしてこのような大きなファイルは高い計算能力を要求します。 - 新しいスポットを追加クリックします。チェック ボックスを最終的に全体の画像を処理します。[次へ] をクリックします。
- X の座標を入力し、y (ピクセル) に関心の領域を定義します。(時間および z 位置) を分析するフレーム数を入力します。[次へ] をクリックします。
- ソース チャンネルのドロップ ダウン リストで追跡するオブジェクトが含まれるターゲット チャネルを選択します。(Μ m) で推定される xy の直径を入力します。[次へ] をクリックします。
注: xy の推定直径は追跡するオブジェクトの x と y 次元の平均粒径です。 - [品質] をクリックします。細胞 (オブジェクト) が含まれているでする必要があります、しきい値を設定します。[次へ] をクリックします。
- 必要なアルゴリズム (自己回帰運動をお勧めします) を選択します。最大距離を入力 (20 μ mをお勧めします) と最大ギャップ サイズ (3 または 2 を推奨)。プロセス全体の最後に画像をクリックします。
注:最大距離と最大ギャップ サイズは、トラックを分割する 2 つのしきい値です。具体的には、2 つの連続的なフレームで同じオブジェクト間の距離が最大距離を超えたらそれ以降のフレームでこのオブジェクトとみなされます新しいオブジェクト。買収の実行中に同じオブジェクト可能性がありますいくつかのフレームの消え、再び現れます。この場合、最大ギャップ サイズ内でこのオブジェクトが表示されるときにだけは、同じオブジェクトとしては考えられます。 - フィルターの種類をクリックし、不要なトラックを除外するオプションを選択します。
注: この手順は省略できます。 - 次をクリックし、[完了] をクリックします。
注: このステップ性能に応じて日まで時間がかかります。 - トラックの編集をクリックし、正しいドリフトを選択します。(並進ドリフトをお勧めします) 適切なアルゴリズムを選択します。結果のデータセットのサイズを選択 (現在のサイズに等しい新しいサイズが推奨)。[Ok]をクリックします。
注: この手順はのみ画像集録中にコラーゲンが漂流したときに必要な。 - [統計情報] をクリックし、リスト表示されている統計値の構成を選択します。関心のオプション エクスポート (例えば座標、速度など) を確認します。[Ok]をクリックします。
- [すべての統計をファイルにエクスポート] をクリックし、ファイル名を入力します。
5. 固定と蛍光抗体法コラーゲンの細胞の染色
- 化学のフードの下で 5 mL チューブに 4% パラホルムアルデヒド (PFA、PBS で) の 1,000 μ L を転送します。
注: PFA は、部屋の温度にバランスする必要があります。 - 2.9 から重合コラーゲンと毛細血管を浸しなさい。PFA のソリューションに (の ~ 5 mm) と (図 1で示すように)、粘土のモデリングと 5 mL チューブの内壁に毛細血管をマウントします。
- PFA ソリューション (図 1) にぶら下がっているコラーゲン ロッドの半分までプランジャーを軽く押します。20 分間室温でチューブを維持します。
- キャピラリー内コラーゲン ロッドを得るにプランジャーを引き戻します。毛細血管を取り出して、PFA を破棄します。
- 新鮮なチューブにキャピラリーをマウントし、1 mL の PBS を追加します。毛細血管が PBS に没頭していることを確認します。
- ソリューションにぶら下がっているコラーゲン ロッドの半分までプランジャーを軽く押します。粘土のモデリングと内壁に毛細血管をマウントします。
- 5 分間室温でチューブを維持します。
- 5.4 を繰り返します。-別の 2 回の 5.7。
- キャピラリー内コラーゲン ロッドを得るにプランジャーを引き戻します。PBS を破棄します。チューブに 1-2 mL のブロック/透過バッファー (PBS + 1 %bsa + 0.1% 非イオン性界面活性剤) を転送し、5.6 を繰り返します。
注: セカンダリ Ab で育てられた動物の 5% 血清による BSA (1%) を置き換えることができます。 - 30-60 分間室温でチューブを維持します。
- キャピラリー内コラーゲン ロッドを得るにプランジャーを引き戻します。透過バッファーを破棄します。ブロック/透過バッファーの一次抗体の 200-500 μ L を転送し、ソリューションにロッドを追放。
- 1 時間室温でチューブを維持します。
- 5.4 で説明したように PBST (PBS + 0.1-% 非イオン性界面活性剤) で 3 回コラーゲン棒を洗ってください。-5.8。
- 室温で 1 時間ブロッキング/透過バッファーで二次抗体のロッドを孵化させなさい。光からそれを維持します。
- 5.4 で説明したように PBS で 3 回コラーゲン棒を洗ってください。-5.8。
- キャピラリー内コラーゲン ロッドを得るにプランジャーを引き戻します。イメージングまで PBS のサンプルを保ちます。
- 3 で説明したように、サンプルをスキャンします。
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Representative Results
T 細胞の移行中に突出部形成は、アクチン依存である非常にダイナミックなプロセスです。主なヒト CTL の突起形成を視覚化するには、一過性11の前に、の前述の CTL におけるアクチン細胞骨格のラベルに mEGFP 融合タンパク質を transfected しました。トランスフェクション後、1 日、細胞は、コラーゲン マトリックスに埋め込まれていた。画像のスタックを取得したすべての 40 光シート顕微鏡を用いた 37 ° C で 1 μ m のステップ サイズの s です。レモンの形をした主要な突起、CTL の人間の形に、移行中に図 2 aおよび附則ムービー 1に示すようは、紡錘状の微細構造による縁。ここに示すだけでなく、1 つの単一のセルをイメージしました実験が大量 (538 μ m3x 450 x 450) (図 2 b)。したがって、光学的品質とここに示されている解像度の低倍率の目的で得られた (20 X 1.0/DIC VI IR)。したがって、解像度は高い NA 目標でさらに改善されるでしょう。
ムービー 1と図 2に示すように実験、Ctl は、プロトコル パート 4 で説明するよう自動的に追跡されました。図 2 bには、CTL の軌跡が描かれています。移行の 2 つのパラメーターを分析した: 速度と永続性。永続化は、変位のトラックの合計の長さで割った値として定義されます。分析の結果、CTL の移動は非常に多様な 3 D: 速度範囲 0.01 0.19 μ m/秒、ほぼ 20 の違いと永続化範囲は 0 - 0.7 (図 2)。それは T 細胞の生体内で間質性移動平均速度が 4 μ m/分16マウスで報告されました。最近では、4-5 μ m/分11本稿で説明する方法を使用して CTL の平均速度を定めています。これらの結果は、その光シート顕微鏡、細胞行動、たとえば、細胞遊走、細胞間相互作用を可視化する強力なツールを示しています。生体内で、多くの要因と移行に影響を与えることができる溶ける要因を含む複雑な組成の非均質な ECM は T 細胞の挙動を変更します。
コラーゲン マトリックスのアプリケーションは細胞のライブに限定ではありません。行列では固定や染色が行えます。図 3は、内因性の perforin1 で、3 D のコラーゲン ・ ゲル内固定サンプルの例を示します (PFN1) アクチン染色と。サンプルが照らされた片面のいずれかから (単一の側面のイルミネーション) または両側 (デュアル サイド照明) から。我々 のプロトコルで説明されている手順がコラーゲン ・ ゲルに抗体の十分な浸透を達成することを示す、異なる z 位置のセルが均等にステンド グラスを遵守します。もっと重大に、CTL 固定展示でとして同じ形態後ライブ細胞イメージング (図 3および図 2 b)、比較も形態はよく維持されることによってこのプロトコルを示します。さらに、照明、片面または両面からは焦点面に画像の品質に大きな違いを行いません。少ない区域がデュアル サイド照明と比較して単一側面のイルミネーションのモードでレーザーにさらされていることを考えると、1 つの側面のイルミネーションをより推奨します。
図 1: サンプル準備の間に毛細血管を処理の図。(A)は、キャピラリーと培養液中のプランジャーを濡らす方法にプランジャーを置きます。(B)は、毛細血管にセル/コラーゲン ミックスを引き出します。(C)は、毛細血管のモデリング粘土を使用してマウントします。プランジャーとコラーゲンの棒は、それぞれグレーと赤のボックスで描かれています。(D)は、コラーゲン ロッド培養液で平衡化、免疫染色を処理します。プランジャーとコラーゲンの棒は、それぞれグレーと赤のボックスで描かれています。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 2: 追跡 3 D コラーゲンの主なヒト CTL とアクチン ・ ダイナミクスを可視化します。(A)ヒト CTL が主にアクチンの最大強度投影。アクチンは、上記11と CTL に分類されました。1 日目は、トランスフェクション細胞が 0.5% コラーゲン マトリックスに埋め込まれていたポストします。代表的な 1 つのセルが表示されます。スケール バーは、5 μ m 微細アクチン突起端構造が矢印で強調表示されます。(B) 6 h の CTL の軌跡。軌道がソフトウェアによって追跡される automatedly (カラーコード: 青 = 開始、赤 = 450 × 450 × 538 μ m3ボリュームのトラックの最後)。スケール バーは、50 μ m。 (C)速度と永続性の定量化。1 つの点は、1 つのセルを表します。4 ドナーから ± SEM を意味する結果が表示されます。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
内因性の profilin1 の図 3: 免疫染色 (PFN1) と CD8 のアクチン+ T 細胞 3 D コラーゲン マトリックスに埋め込まれている。プライマリ人間 CD8+ T 細胞は 0.25% コラーゲンに埋め込まれていた。PFA 固定後、サンプルは、アンチ PFN1 (オレンジ) と電子 (紫) を使用して、1,000 μ m3x 440 x 440 の合計ボリュームの 1 μ m のステップ サイズで光シート顕微鏡による可視化に染まっていた。サンプルが照らされた片面のいずれかから (単一の側面のイルミネーション) または両側 (デュアル サイド照明) から。三次元から最大強度の投射 (MIP) が表示されます。スケール バーは、50 μ mこの図の拡大版を表示するにはここをクリックしてください。 。
映画 1: T 細胞移行中に突起の生成します。映画に示すようにセルは、図 2 aに示すボリュームから取られました。細胞は、コラーゲン マトリックス (0.5%) に埋め込まれていた。画像を取得したすべての 40 のライト シート顕微鏡を用いた 37 ° C で 6 時間。してくださいここをクリックしてこのビデオを表示します。(右クリックしてダウンロード)
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Discussion
ほとんどの in vitroアッセイは 2 D 画面で、たとえば細胞培養プレート、シャーレや coverslips、生体内で細胞、免疫細胞特に経験ほとんど 3次元微小環境に対し行われます。出現の証拠は、2 D と 3 D のシナリオ17で免疫細胞の移行パターンが異なることを示しています。さらに、腫瘍細胞の発現も 2 D と 3 D 培養組織18,19,20で異なっています。したがって、最高の in vitro生理的条件をシミュレートする 3 D コラーゲン マトリックス中のインスタンスの 3D コンテキストで実験を実行する大きな利点です。新開発のアプローチ、特に、光シート蛍光顕微鏡 3 D マトリックス システムで管理された環境条件の下で信頼性が高く、再現性のある実験ができます。
従来レーザー走査型共焦点顕微鏡光シート顕微鏡による全体のプローブを照らすと対照をなしてサンプルを照らすレーザー光の薄いシートのみが生成されます。検出カメラは照明平面に垂直です。この手法により焦点面でセクションのみがレーザーに公開されます。したがって、光退色、光毒性を最小限にできます。また、ポイントのスキャンと比較顕微鏡、集録レートが大幅に拡張され、光シート顕微鏡 (100 - 1,000 倍高速) と信号対雑音比が改善されるも。本稿では、この顕微鏡は最小化された漂白と 3 D 大量画像の獲得のための強力なオプションと上写真損傷を長時間にわたって (数日間) の下で使用される光シート顕微鏡のセットアップのインキュベーション室併用インキュベーターの条件。
3 D コラーゲン マトリックス試料の調製、最も重要な点は、空気の泡を避けるためです。コラーゲン溶液に気泡が導入されるとき、粘度の高い、与えられた、ソリューションから削除する非常に困難です。空気泡の存在はコラーゲン行列の重合の不均一性を引き起こすことができます。さらに、画像の品質の低下を招くだろう光のパスをブロックできます。したがって、転送するときまたは必要があります非常に穏やかのピペット、ピペット チップで最後の一滴を排出できないコラーゲン溶液を混合します。また、コラーゲンはゆっくりと常温重合を開始します。したがって、ソリューションをよく混合する前に重合を防ぐためには、コラーゲンを含むチューブ保管すべき常に氷の上。
光シート顕微鏡を用いたで遭遇する 1 つの大きな課題は、データの処理です。光シート顕微鏡によって生成されたデータは、長期的な実験のために特に 500 ギガバイトまたは数テラバイトものサイズを簡単にアクセスできます。これらのデータを分析するには、時に高い計算能力を持つ作業ステーションによって週の数日をかかります。分析イメージのサイズが元のデータより小さくないのでストレージの容量は光シート顕微鏡のアプリケーションの制限要因になります。したがって、追跡実験や複雑な画像解析が必要なかどうかには強くお勧め 1 つの合理的な時間枠で使用可能な処理単位で処理できる値にテスト ファイルのサイズを制限します。
ここで導入された光シート蛍光顕微鏡は慎重に処理されない場合に結果に影響を与える可能性がありますいくつかの機能です。毛細血管の使用率は、サンプルのバリアフリー照明で特に有利です。コラーゲン ロッドが中でハングしているので特に長期的な測定のためのイメージ取得中のドリフトをコラーゲン ロッドそれ起こることがあります。このドリフトは、結果の誤解を避けるために修正があります。もちろん、あります他の光シート顕微鏡のセットアップ市販市場にサンプルをマウントする毛細血管を必要としません。さらに、光シート顕微鏡、走査型共焦点顕微鏡の光毒性が大幅に減り、在来線に比べてという事実に加えて光毒性により、長期的な画像21への関心がまだ残っています。
光シート顕微鏡から離れてその中でほとんど応用がの多光子顕微鏡、広視野蛍光顕微鏡、共焦点顕微鏡、三次元蛍光イメージングのための確立の他のアプローチがあります。浸透深さの面でと広視野コンフォーカル蛍光顕微鏡は 100 nm22に通常限られた類似の範囲にあります。多光子顕微鏡の活用より長い波長の光によりその浸透深さは 0.5 - 1 mm23の範囲を拡張できます。比較では、光シート顕微鏡の光学切片で生成された多次元画像のサイズは、いくつかのミリ24最大です。横方向の解像度の面でエレガントな行われた実験はその光シート顕微鏡を提供より良い 3次元空間分解能大共焦点蛍光顕微鏡と比較して試料25を示しています。最近、光シート顕微鏡はさらに通常の 1 光子光シート顕微鏡と比較して溶込み深さが向上しポイント走査型 2 光子顕微鏡より 10 倍高速です, 二光子励起法と結合されています26。
本稿でために使用牛コラーゲン以外にも、細胞のマイクロ アーキテクチャを提供 3 D マトリックスを考慮したマウス肉腫細胞、アガロース、合成ハイドロゲルから派生または他の細胞外マトリックス (ECM) など、他の多くのオプションがあります。生体適合性高分子材料。マウス肉腫 ECM は、IV 型コラーゲン、ラミニン、多数の成長因子を含む蛋白質の混合物です。一方、生物学的 Ecm (コラーゲンとマウス肉腫 ECM)、合成材料に比較提示もっと生理学的文脈一方で品質と組成生物 Ecm がバッチと企業と異なる場合があります。対照的に、合成素材の再現性がより保証されます。驚くことに、生化学的および機械的特性の微調整、必要な変更だけでなく、許可されて合成材料ではなく、生物学的,10,27。
要約すると、本稿で我々 は光シート蛍光顕微鏡と視覚化し、CTL の移行を分析する 3 D コラーゲン マトリックスにプライマリ ヒト CTL を埋め込む方法を用いた細胞生物学実験のための 3 D コラーゲン マトリックスを構築するプロトコルを記述しました。サンプル準備、画像集録、および分析の要点を強調表示します。非常にダイナミックな突起と細かいアクチン構造の形成良い時空間分解能光シート顕微鏡で目視できることが分かった。さらに、ここで説明された分析プロトコルにより客観的かつ自動化された方法で細胞を確実に追跡できます。このメソッドはマウスとして人間の免疫学的研究特に有利になり、人間は多くの免疫機能と治療28に反応性で大幅に異なります。
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Disclosures
著者は金融または商業上の利害を宣言しません。
Acknowledgments
研究所臨床 Hemostaseology と輸血ドナー血液を提供するために感謝します。カルメン Hässig と優秀な技術的なヘルプのコーラ Hoxha。LifeAct mEGFP 構造を生成するありがとう修正 pMAX ベクトルのイェンス レッティグ (ザールラント州大学)、ローランド Wedlich-日ソールドナー (ミュンスター大学) 元 LifeAct ルビー構築のため、キリスト教のユンカー (ザールラント州大学)。このプロジェクトは、Sonderforschungsbereich 1027 (プロジェクト A2 ベクレル) と 894 (プロジェクト A1 か) によって賄われていた。DFG によって資金が供給された光シート顕微鏡 (GZ: INST 256/4 19 1 FUGG)。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Fibricol, bovine collagen solution | Advanced Biomatrix | #5133-20ML | Collagen matrix |
| 0.5 M NaOH Solution | Merck | 1091381000 | for neutralizing Fibricol solution |
| Ultra-Low melting agarose | Affymetrix | 32821-10GM | Sample preparation in low c[Col] |
| Dynabeads Untouched Human CD8 T Cells Kit | Thermo Fisher | 11348D | Isolation of primary human CD8+ T cells from PBMC |
| Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation | Thermo Fisher | 11132D | Activation of CTL populations |
| Human recombinant interleukin-2 | Thermo Fisher | PHC0023 | Stimulation of cultured CTL |
| P3 Primary solution kit | Lonza | V4XP-30XX | Transfection |
| α-PFN1 antibody, rabbit, IgG | Abcam | ab124904 | IF |
| Alexa Fluor 633 Phalloidin | Thermo Fisher | A22284 | IF |
| CellMask Orange Plasma membrane Stain | Thermo Fisher | C10045 | Fluorescent cell label |
| Tween 20 | Sigma | P1379-250mL | IF |
| Triton X-100 | Eurobio | 018774 | IF |
| DPBS Dulbecco's phopsphate buffered saline | Thermo Fisher | 14190250 | IF |
| Bovine serum albumin | Sigma | A9418-100G | IF |
| Goat α Rabbit 568, IgG, rabbit | Thermo Fisher | A-11011 | IF |
| Lightsheet Z.1 (Light-sheet microscopy) | Zeiss | N.A. | |
| Cell culture hood | Thermo Fisher | HeraSafe KS | |
| Cell culture incubator HERACell 150i | Thermo Fisher | N.A. | |
| Centrifuge 5418 and 5452 | Eppendorf | N.A. | |
| Pippettes | Eppendorf | 3123000039, 3123000020, 3123000063 | |
| Pippette tips | VWR | 89079-444, 89079-436, 89079-452 | |
| 15 mL tubes | Sarstedt | 62.554.002 | |
| Capillaries 50 µL | VWR (Brand) | 613-3373 | Zeiss LSFM sample preparation |
| Plunger for capillaries | VWR (Brand) | BRND701934 | "Stamps with Teflon tip" LSFM sample preparation |
| MColorPhast pH stips | Merck | 1095430001 | to test pH of neutralized Fibricol |
| BD Plastipak 1mL syringes | BD | Z230723 ALDRICH | Alternative sample preparation |
| Modeling clay (Hasbro Play-Doh A5417EU7) | Play-Doh | N.A. | |
| Imaris file converter | Bitplane | available at http://www.bitplane.com | Convert imaging files to Imaris file format |
| Imaris 8.1.2 (MeasurementPro, Track, Vantage) | Bitplane | available at http://www.bitplane.com | Analysis of 3D and 4D imaging data |
References
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