Summary

Ostéosarcome utilisant le Syndrome de Li-Fraumeni cellules souches de pluripotentes induites Patient dérivé de modélisation

Published: June 13, 2018
doi:

Summary

Ici, nous présentons un protocole pour la génération de pluripotentes induites des cellules souches (CISP) de Syndrome de Li-Fraumeni (LFS) patient dérivée fibroblastes, différenciation de CISP par l’intermédiaire de cellules souches mésenchymateuses (CSM) d’ostéoblastes et modélisation in vivo tumorigenèse utilisant des ostéoblastes patient dérivé de LFS.

Abstract

Syndrome de Li-Fraumeni (EPA) est une affection autosomique dominante cancer héréditaire. Les patients avec l’EFT sont prédisposés à un divers types de tumeurs, notamment ostéosarcome–un des plus souvent malignes non hématologique primaires dans l’enfance et l’adolescence. LFS offre donc un modèle idéal pour étudier cette malignité. Profitant des méthodologies de l’iPSC, ostéosarcome LFS-associés peut être modélisé avec succès en différenciant EFT patient CISP de cellules souches mésenchymateuses (CSM), puis aux ostéoblastes–les cellules d’origine des ostéosarcomes. Ces ostéoblastes LFS récapitulent des propriétés oncogènes de l’ostéosarcome, fourniture d’un système de modèle attrayant pour délimiter la pathogenèse de l’ostéosarcome. Ce manuscrit montre un protocole pour la génération de CISP de fibroblastes de patients LFS, différenciation du CISP de MSCs, différenciation des MSCs aux ostéoblastes et in vivo tumorigenèse utilisant des ostéoblastes LFS. Ce modèle de maladie iPSC peut être étendu pour identifier des biomarqueurs potentiels ou cibles thérapeutiques pour l’ostéosarcome associés à LFS.

Introduction

Entre 2006 et 2007, plusieurs conclusions de la percée des laboratoires des Drs Shinya Yamanaka et James A. Thomson conduit à l’élaboration de pluripotentes induites des cellules souches (CISP)1,2,3. En reprogrammant des cellules somatiques avec des facteurs transcriptionnels définis à forme CISP, les chercheurs ont pu générer des cellules ayant des caractéristiques clés à savoir, pluripotence et auto-renouvellement, que l’on croyait seulement existent dans les cellules souches embryonnaires humaines (CSEh). CISP pourrait provenir de n’importe quel individu ou patient et ne devait pas être provenant d’embryons, élargissant considérablement le répertoire des maladies disponibles et des horizons pour l’étude. Depuis lors, CISP patient dérivés ont été utilisés pour récapituler le phénotype de diverses maladies humaines, de la maladie d’Alzheimer4 et sclérose latérale amyotrophique5 QT long syndrome6,7, 8.

Ces avancées dans la recherche de l’iPSC ont également ouvert de nouvelles avenues pour la recherche sur le cancer. Plusieurs groupes ont récemment utilisé CISP patient au développement du cancer de modèle sous un fond génétique sensibles9,10,11, avec une application réussie démontrée à ce jour l’ostéosarcome9, la leucémie10,11,12et du cancer colorectal13. Bien que les modèles de cancer iPSC dérivés sont encore à leurs débuts, ils ont démontré grand potentiel en cancers associés à la maladie phenocopying, élucider les mécanismes pathologiques et d’identifier des composés thérapeutiques14.

Syndrome de Li-Fraumeni (EPA) est une maladie de cancer héréditaire dominante autosomale causée par de mutation germinale TP53 15. Les patients avec l’EFT sont prédisposés à un divers types de tumeurs malignes dont l’ostéosarcome, faire EFT CISP et leurs dérivées de cellules particulièrement bien adaptée à l’étude de cette tumeur maligne16. Un modèle basé sur iPSC ostéosarcome fut institué en 2015 à l’aide de LFS CISP patient dérivé9 par la suite se différenciée en cellules souches mésenchymateuses (CSM) et puis d’ostéoblastes, la provenance des cellules de l’ostéosarcome. Ces ostéoblastes LFS récapitulent les défauts associés à ostéosarcome ostéogénique différenciation et des propriétés oncogènes, démontrant le potentiel comme une plate-forme de « tumeur osseuse dans un plat » du modèle. Fait intéressant, génome transcriptome analyses révèlent des aspects d’une signature de gène d’ostéosarcome en ostéoblastes LFS et caractéristiques de ce profil d’expression génique LFS corrélées avec un pronostic sombre dans l’ostéosarcome9, indiquant la potentiel des modèles de maladies CISP LFS pour révéler les caractéristiques de pertinence clinique.

Ce manuscrit fournit une description détaillée de comment utiliser EFT dérivé de patient CISP d’ostéosarcome de modèle. Il détaille la génération de LFS CISP, différenciation du CISP pour MSCs et puis aux ostéoblastes et utilisation d’un modèle xénogreffe in vivo à l’aide des ostéoblastes LFS. Le modèle de maladie EFT comporte plusieurs avantages, notamment la capacité de générer des cellules illimités à tous les stades du développement de l’ostéosarcome pour études mécanistes, l’identification de biomarqueurs et drogues dépistage9,14, 16.

En résumé, le modèle de base iPSC ostéosarcome LFS offre un système complémentaire attrayant pour faire avancer la recherche de l’ostéosarcome. Cette plate-forme offre également une preuve de concept pour la modélisation du cancer à l’aide de CISP dérivé de patient. Cette stratégie décrite ci-dessous peut être facilement étendue à malignités modèle associées aux autres maladies génétiques avec les prédispositions du cancer.

Protocol

Ce travail a été approuvé par l’Université du Texas Health Science Center à Houston (UTHealth) Comité sur le bien-être Animal. Les expériences réalisées en stricte conformité avec les normes établies par le centre UTHealth pour la médecine des animaux de laboratoire & soins (CLAMC) qui est accrédité par l’American Association for Laboratory Animal Care (AAALAC International). Les sujets humains dans cette étude relèvent de scénario A (No sujets la recherche humaine ») tel que défini par la docume…

Representative Results

Ce protocole présente les procédures dont EFT iPSC génération MSC différenciation, la différenciation ostéoblastique et essai in vivo tumorigenèse avec utilisant des dérivés de LFS MSC ostéoblastes. Régime pour la génération de LFS CISP de fibroblastes en utilisant un virus Sendai commercialement disponible kit de reprogrammation est montré dans la Figure 1 a. Base de virus S…

Discussion

Pour parvenir à une plus grande efficacité de différenciation de MSC, plusieurs aspects sont essentiels. L’un est la condition de culture de CISP avant d’initier la différenciation MSC. Le protocole présenté dans le manuscrit est issu des précédentes études 9,17. CISP doivent être cultivés sur MEFs pendant au moins 2 semaines. Maintenir le CISP en bonne conditions sur MEFs sont critiques pour les cellules à fixer sur la plaque de gélatine-enduit …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R. Z. est soutenue par l’Innovation UTHealth Cancer Prevention Training programme Pre-Doctoral bourse de recherche (prévention du Cancer et Research Institute of Texas accorder RP160015). J.T. est pris en charge par le programme de Lin Ke de l’Université de premier affilié hôpital de Sun Yat-sen. D.-F.L. est le savant CPRIT en cancérologie et soutenu par les NIH voie vers l’indépendance prix R00 CA181496 et CPRIT prix RR160019.

Materials

Plastic ware
100 mm Dish Corning 430107
60 mm Dish Corning 430166
6-well Plate Falcon 353046
12-well Plate Falcon 353043
48-well Plate Falcon 353078
1 mL Pipet Tip USA Scientific 1111-2721
200 µL Pipet Tip USA Scientific 1111-0706
10 µL Pipet Tip USA Scientific 1111-3700
5 mL Serological Pipette SARSTEDT 86.1253.001
10 mL Serological Pipette SARSTEDT 86.1254.001
25 mL Serological Pipette SARSTEDT 86.1685.001
50 mL Tube, PP SARSTEDT 62.547.100
15 mL Tube, PP SARSTEDT 62.554.100
Culture materials and Reagents
CytoTune- iPS 2.0 Sendai Reprogramming Kit Invitrogen A16517 Commercial Sendai virus reprogramming kit
Corning hESC-Qualified Matrix Corning 354277 Basement membrane matrix
CF1 MEFs, irradiated ThermoFisher A34180
DMEM Sigma-Aldrich D5671
DMEM/F12 Corning 10-090-CV
αMEM Corning 10-022-CV
StemMACS iPS-Brew XF Miltenyi Biotec 130-104-368 Commercial iPSC medium
KnockOut DMEM/F-12 ThermoFisher 12660012
FBS Opti-Gold GenDEPOT F0900-050
KnockOut Serum Replacement ThermoFisher A3181502
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333
MEM Nonessential Amino Acids Corning 25-025-CI
L-Glutamine Solution Sigma-Aldrich G7513
2-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Human FGF-basic (bFGF) PEPROTECH 100-18B
Recombinant Human PDGF-AB PEPROTECH 100-00AB
β-Glycerophosphate Sigma-Aldrich G9422
Dexamethasone Sigma-Aldrich A4902
Ascorbic Acid Sigma-Aldrich A5960
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline, 1x (DPBS) Corning 21-031-CV
StemMACS Passaging Solution XF Miltenyi Biotec 130-104-688 Commercial passaging solution
Accutatse Cell Detachment Solution Corning 25-058-CI Cell detachment solution
Thiazovivin (ROCK Inhibitor) Calbiochem 420220
0.25% Trypsin-EDTA Solution Sigma-Aldrich T4049
Collagenase, Type II   ThermoFisher 17101015
Human NANOG Antibody R&D System AF1997
OCT4 Antibody (H-134) Santa Cruz sc-9081
Human/Mouse SSEA-4 PE-conjugated Antibody R&D System FAB1435P
Alexa Fluor 555 Mouse Anti-Human TRA-1-81 Antigen DB Biosciences 560123
Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Goat IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 705-545-003
Alexa Fluor 488 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 111-545-144
PE Mouse Anti-Human CD105 eBioscience 12-1057-42
FITC Mouse Anti-Human CD44 DB Biosciences 555478
PE Mouse Anti-Human CD73 DB Biosciences 550257
PE Mouse Anti-Human CD166 DB Biosciences 560903
FITC Mouse Anti-Human CD24 DB Biosciences 555427
Donkey Serum Jackson ImmunoResearch 017-000-121
Goat Serum Jackson ImmunoResearch 005-000-121
Alkaline Phosphatase Staining Kit II Stemgent 00-0055
Alizarin Red S Sigma-Aldrich A5533
TRIzol Reagent ThermoFisher 15596018
Chloroform ThermoFisher C298-500
2-Propanol ThermoFisher A416-4
Ethanol, Absolute, Molecular Biology Grade ThermoFisher BP28184
DNase I, RNase-free (1 U/µL) ThermoFisher EN0521
iScript cDNA Synthesis Kit BioRad 1708891BUN
iQ SYBR Green Supermix BioRad 1708884
Matrigel Matrix High Concentration (HC), Phenol-Red Free Corning 354262
1 mL Slip Tip Syringe, 26 Gauge x 5/8 Inch DB Biosciences 309597

References

  1. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  3. Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318 (5858), 1917-1920 (2007).
  4. Yagi, T., et al. Modeling familial Alzheimer’s disease with induced pluripotent stem cells. Hum Mol Genet. 20 (23), 4530-4539 (2011).
  5. Dimos, J. T., et al. Induced pluripotent stem cells generated from patients with ALS can be differentiated into motor neurons. Science. 321 (5893), 1218-1221 (2008).
  6. Moretti, A., et al. Patient-specific induced pluripotent stem-cell models for long-QT syndrome. N Engl J Med. 363 (15), 1397-1409 (2010).
  7. Itzhaki, I., et al. Modelling the long QT syndrome with induced pluripotent stem cells. Nature. 471 (7337), 225-229 (2011).
  8. Carvajal-Vergara, X., et al. Patient-specific induced pluripotent stem-cell-derived models of LEOPARD syndrome. Nature. 465 (7299), 808-812 (2010).
  9. Lee, D. F., et al. Modeling familial cancer with induced pluripotent stem cells. Cell. 161 (2), 240-254 (2015).
  10. Mulero-Navarro, S., et al. Myeloid Dysregulation in a Human Induced Pluripotent Stem Cell Model of PTPN11-Associated Juvenile Myelomonocytic Leukemia. Cell Rep. 13 (3), 504-515 (2015).
  11. Kotini, A. G., et al. Functional analysis of a chromosomal deletion associated with myelodysplastic syndromes using isogenic human induced pluripotent stem cells. Nat Biotechnol. 33 (6), 646-655 (2015).
  12. Kotini, A. G., et al. Stage-Specific Human Induced Pluripotent Stem Cells Map the Progression of Myeloid Transformation to Transplantable Leukemia. Cell Stem Cell. 20 (3), 315-328 (2017).
  13. Crespo, M., et al. Colonic organoids derived from human induced pluripotent stem cells for modeling colorectal cancer and drug testing. Nat Med. 23 (7), 878-884 (2017).
  14. Gingold, J., Zhou, R., Lemischka, I. R., Lee, D. F. Modeling Cancer with Pluripotent Stem Cells. Trends Cancer. 2 (9), 485-494 (2016).
  15. Lin, Y. H., et al. Osteosarcoma: Molecular Pathogenesis and iPSC Modeling. Trends Mol Med. 23 (8), 737-755 (2017).
  16. Zhou, R., et al. Li-Fraumeni Syndrome Disease Model: A Platform to Develop Precision Cancer Therapy Targeting Oncogenic p53. Trends Pharmacol Sci. 38 (10), 908-927 (2017).
  17. Lian, Q., et al. Derivation of clinically compliant MSCs from CD105+, CD24- differentiated human ESCs. Stem Cells. 25 (2), 425-436 (2007).
  18. Zhou, R., et al. A homozygous p53 R282W mutant human embryonic stem cell line generated using TALEN-mediated precise gene editing. Stem Cell Res. 27, 131-135 (2018).

Play Video

Cite This Article
Zhou, R., Xu, A., Tu, J., Liu, M., Gingold, J. A., Zhao, R., Lee, D. Modeling Osteosarcoma Using Li-Fraumeni Syndrome Patient-derived Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (136), e57664, doi:10.3791/57664 (2018).

View Video