Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Environment
Click here for the English version

Environment

Воспитания и долгосрочного поддержания мух Ильница tenax для научных исследований

Published: May 19, 2018 doi: 10.3791/57711
Automatic Translation
1, 2, 1, 1,2
1Centre for Neuroscience, Flinders University, 2Department of Neuroscience, Uppsala University

Summary

Общая цель этих процедур является для установления, поддержания и обновления плен населения Ильница tenax в условиях исследования.

Abstract

Во всем мире примерно 6000 видов мух экологически важны как альтернативных опылителей для домоседкадомосед пчел. Однако они также являются полезной научной модели для изучения динамики движения зрение и полет в контролируемых лабораторных условиях. Личинки развиваются в органически загрязненных вод, они являются полезными моделями для расследования инвестиций в микробной иммунитета. В то время как коммерческое разведение крупных масштабах для сельского хозяйства уже происходит, есть не стандартные протоколы для поддержания плен населения для научных исследований. Это имеет важное значение как коммерческое разведение в неволе программы упором на массового выхода во время пика опыление периоды не могут обеспечить население, которое является последовательной, стабильной и надежной на протяжении всего года, как это часто необходимо для других научно-исследовательских целей. Таким образом метод для установления, поддержания и обновления неволе исследований населения не требуется. Здесь мы описываем использования искусственной спячки цикла, помимо требований, питания и жилья, для поддержания долгосрочной перспективе Ильница tenax. С помощью этих методов, мы значительно увеличили здоровья и долголетия неволе популяций E. tenax , по сравнению с предыдущими докладами. Кроме того обсуждаем небольших масштабах выращивания методы и параметры для оптимизации урожайности и манипулирования демография населения.

Introduction

Животные по алфавиту появляются как полезными моделями для расследования ряда научных вопросов, включая полет поведение1, нейронные механизмы лежащие в основе движения видение2, опыление эффективности3,4, 5 , 6 и7микробной иммунитет. Однако в отличие от некоторых других dipteran модели, например дрозофилы8, есть нет стандартизированных протоколов для выращивания Лаборатории мух для использования в научных исследованиях. Действительно даже если текущий литературе описываются методы для разведения журчалка Ильница tenax, многие из них разработаны для массового разведения мух для опыления сельскохозяйственных культур, био деградация органических отходов, или анатомические исследования 9 , 10 , 11. Таким образом, они не признается необходимость простой протокол, который обеспечивает бесперебойные поставки здорового надежные мух, при сохранении генетических фитнес населения.

После пчел и шмелей мух являются одним из наиболее важных дикий, универсалом опылителей группы12,13. Есть около 6000 журчалка видов во всем мире14,15, с более чем 300 видов 75 родов в Швеции16 и более чем 300 видов 69 родов в Индии17,18,19. К примеру аграрно важных мармелад журчалка Мармеладная муха и гул летать, Ильница tenax, который мы сосредоточиться на здесь, находятся по всей Европе, Америке и Азии6,-16, 17,18,19,20,21,,2223,24,25. Животные по алфавиту активны не одинаково на протяжении года, ни в течение дня. Действительно не только сезона и время дня, но и колебания интенсивности света, температуры, влажности и скорости ветра, влияют на активность модели мух26,27. В поле Ильница можно найти в любое время года в средиземноморском климате11, но количество активных мух намного ниже в зимний период. И наоборот в холодных условиях умеренного климата, Ильница спящий зимой и не найдены активно ведет себя в поле от вокруг октября по28марта.

Свободно летающих мух могут быть собраны путем взаимозачета в поле. Действительно, в умеренном климате они находятся в наиболее изобилии в середине в поздним утром, на спокойной солнечные дни, в конце лета и осенью26,27. В качестве альтернативы, Зрелые личинки E. tenax , второго или третьего возраста, могут быть определены и заготавливаемым из разлагающихся органических веществ, таких как навоз кучи или органически загрязненных потоков10,11. Действительно опубликованные методы для лаборатории выращивания E. tenax все основаны на повышении личинок в органически загрязненных вод, либо через некоторые формы, растительных или фекальный вопрос9,10,29 30 , 31 , 32 , 33. Однако, личинки коллекции ограничивается сезона и это лишь инструмент жизнеспособной коллекции с поздней весны до начала осени11. Кроме того обилие личинок зависит от местных погодных условий, как изменения в температуре может повлиять на возникновение откладки яиц и личинок развития ставки9,28.

Таким образом чтобы обеспечить, что эксперименты могут проводиться круглый год, независимо от сезона или местных погодных явлений необходимы стратегии для поддержания здорового запасы мух, разведение личинок и яиц в лаборатории. Важно отметить, что метод, описанный здесь породы мух от только повязана дикие самки. Это имеет важное значение как исследование Francuski, и др. 10 найдено генетического разнообразия лаборатории разводят населения мух, изначально создан из 120 Зрелые личинки, было быстро потеряно. Поэтому они предложили, чтобы сохранить генетическое разнообразие в колониях, которые будут использоваться для целей опыления коммерческих культур, эти должны быть пополнен, или даже полностью восстановлено, с поля собраны лица каждой весной10.

При работе на зрение, или другие чувства, используемые в ухаживания и спаривания, поэтому рекомендуется поддержание генетического разнообразия, либо путем повторного создания колонии пополнения колонии с поля собраны лица, регулярно. Это важно, как выбор сексуальных влияет генетического дрейфа населения. Действительно в диких, мужской мух необходимо определить и перехватывать подходящих товарищей, а также конкурировать с другими самцами для спаривания права, защищая их территории34. Этот процесс гарантирует, что мужчины с наилучшего видения и пространственной внимание, вероятно, будут наиболее успешными в спаривания, и следовательно эти черты передаются следующему поколению. Результирующий эффект этих продолжающихся процессов частично, подтверждается наличие сексуального dimorphisms в визуальный пути мух35,36. В плену мужчины не имеют те же препятствия для успешного спаривания в области: во-первых, женщины легко доступны, и во-вторых корпусе малого, замкнутых отменяет эффект территориального поведения, которые действуют для сдерживания спаривания доступ других конкурентоспособных мужчины. Экспериментальный удаление полового отбора в Drosophila melanogaster, было показано, оказывают значительное влияние на плен населения с уменьшением общего размера тела, размера яичек и спермы производства37и пониженные ставки мужчин поведение ухаживания38. Таким образом плен селекции программу, без учета полового отбора, может иметь глубокое воздействие на оба визуального и поведенческих исследований впоследствии.

Здесь мы описываем простое и экономичное решение, которое обеспечивает бесперебойные поставки здорового мух. Протокол является гибким и легко заново начать и/или высококлассные, в зависимости от потребностей научных исследований.

Protocol

1. установить плен E. tenax колонии

  1. Основать колонию через коллекцию Зрелые личинки (шаг 1.2) или же через коллекцию свободно летающих мух (шаг 1.3).
  2. Сбор зрелых личинок
    1. Собирать второй и третий Инстар личинок из навоза ямы на фермах крупного рогатого скота.
      Примечание: Зрелые личинки легче всего найти в начале фазы их миграционных, поскольку они активно ищут темно сухой среде для окукливания. Это, как правило, вблизи границ навоза ямы, где сырой навоз это закрыть в засушливых областях, содержащих большое количество соломы. Мы собрали под разрешение от фермы крупного рогатого скота вблизи Уппсала, Швеция.
    2. Задние Зрелые личинки в коровьего навоза, как указано в шаге 3.2.
  3. Коллекция дикие животные по алфавиту
    1. Собрать диких мух сеткой на местах, обычно от ботанических садов и парков где есть обилие цветения растений.
      Примечание: Мы собрали под разрешение от нескольких местах, включая любой из трех Аделаида ботанические сады, молочная ферма в Myponga, Южная Австралия и в различных ботанических садов и парков в Упсале, Швеция.
    2. Дом поле собрал мух, как описано в шаге 2.

2. жилье и долгосрочное поддержание Животные по алфавиту

  1. Дом мух в пластиковые пакеты 30 x 45 см для групп из 20 или меньше, или насекомое, воспитание Кейдж (25 x 25 см х 25 см) для больших групп.
  2. Обеспечения продовольствием и водой ad libitum, в виде 10-20 зерен пыльцы и 2-3 мл меда пчелы укладывают поверх несколько влажные ватные шарики.
    Примечание: Для жилищного строительства в пластиковых мешках, важно что ватные шарики влажной, но не чрезмерно насыщенный, как накопление воды внутри мешка может быть пагубным для выживаемости. И наоборот для жилищного строительства в насекомых выращивания клеток, сетчатых боковинах позволяют значительное испарение происходит. Ватные шарики поэтому должны быть помещены в контейнере мелкой и полностью насыщенным.
    1. Оставьте мух, чтобы прокормить в течение 6 часов при комнатной температуре.
    2. Животные по алфавиту с пищей и водой в их жилья, в холодильник на 8-10 ° C и держать в полной темноте.
      Примечание: Хранение мух на 8-10 ° C в темноте вызывает мух в состояние спячки, со снижением активности и метаболизма.
  3. Каждые 3-4 дней удалить мух из холодильника, таким образом нарушая искусственной спячки и позволяя кормления и ухода происходят.
    1. Животные по алфавиту передать новый полиэтиленовый пакет или чистой насекомых клетка с свежих продуктов питания и воды. Эта передача может быть сделано вручную, для небольшого числа мух, или используя Фототаксис, для более больших чисел.
    2. Использовать Фототаксис, присоединиться к клетке чистой насекомых к старому, убедитесь, что свободно перемещаться между ними без побега есть отверстие для мух. Обложка старый клетке насекомых с непрозрачной ткани. Животные по алфавиту будет двигаться к свету и в клетку чистой насекомых.
  4. Разрешить мух кормить и жениха при комнатной температуре в течение 6 ч.
  5. Возвращение мух, с пищей и водой в их жилище, в холодильник на 8-10 ° C в полной темноте. Это возобновляет искусственной спячки мух.
  6. Продолжить, циклические нарушения спячки, каждые 3-4 дня, для обеспечения здоровья и долголетия мух на время их пребывания в плену.

3. Лаборатория воспитания E. tenax

  1. Задние Зрелые личинки собранные от ферм крупного рогатого скота (шаг 3.2) или альтернативно задний яиц беременных самок диких поймал (шаг 3.3).
  2. Лаборатория разведение личинок пожилые от ферм крупного рогатого скота
    1. Место личинки, собранные в коровьего навоза от ферм крупного рогатого скота в 30 Л ведра.
    2. Поместите ведро, содержащий Зрелые личинки, внутри большой ящик или мешок (минимальный объем 50-60 Л) и место 20-30 Л стружки до высоты край ведра.
      Примечание: Это позволяет 3rd Инстар личинок для обхода в древесной стружки и окукливаются.
    3. Повесьте двойной слоистых москитная сетка от потолка, позволяя ему драпировка над ящики или мешки, обеспечивая тем самым, что личинки ни каких-либо возникающих мух можно избежать.
      Примечание: В качестве меры предосторожности, двухсторонняя клейкая лента может использоваться для окружают установки, как любой побега личинки будут застревать и окукливаются на этой ленте. Если это так, удалите куколки до eclosion.
    4. Дом личинок и куколок при комнатной температуре (21,5 ± 2,5 ° C) и предоставить либо косвенного солнечного света, а также номер фары в рабочее время или держать на свет: темные цикл 12 h свет: 12 h темно.
      Примечание: Воздействие света 24 h может быть пагубным для выживаемости. Для личинок, собранных от скота хозяйств Окукливание время будет варьироваться от 1 - 20 дней после сбора в зависимости от их зрелости во время сбора.
    5. Пищи и воды в пределах висит комаров чистый корпус (как подготовленные в шаге 2.2) до даты ожидаемого eclosion и заменять каждые 2-3 дня. Eclosion будет происходить через 7-10 дней после окукливание.
    6. Разрешить возникающие мух, чтобы прокормить в течение 6 часов при комнатной температуре перед помещением их в жилищной сфере, как описано в шаге 2.
  3. Лаборатория воспитания из яиц беременных самок диких поймали
    1. Проверьте журчалка жилье для яиц, как перед изменением жилья (шаг 2), так и до возвращения их в холодильник. Откладка поймали дикого беременных женщин происходит в обоих 8-10 ° C и при комнатной температуре.
      1. Поместите яйца в 100 мм x 20 мм Петри, содержащие 70 мл водопроводной воды и держать при комнатной температуре, пока происходит отрождение, обычно 2-3 дня после откладки яиц.
    2. Место вылупившихся личинок в ведро 2,3 Л, содержащие 1 свежий кролик Кала и 1 Л воды.
      1. Проверьте суспензии каждые 2-3 дня и добавить дополнительные водопроводную воду при необходимости, обеспечить что пульпа не высыхает до 3rd instar личинки появляются.
    3. Поместите ведро, содержащие личинки в кролика фекалии пульпы, в пределах большой ящик (минимальный объем 30 Л) содержащий 20 Л стружки. Убедитесь, что до высоты край ведра древесных стружек.
      Примечание: Это позволяет 3rd Инстар личинок для обхода в древесной стружки и окукливаются.
      1. Поместите двойной слоистых противомоскитная поле, чтобы обеспечить, что личинки ни каких-либо возникающих мух можно избежать.
    4. Дом личинок и куколок при комнатной температуре (21,5 ± 2,5 ° C) и предоставить либо косвенного солнечного света, а также номер фары в рабочее время или держать на свет: темные цикл 12 h свет: 12 h темно.
      Примечание: Воздействие света 24 h может быть пагубным для выживаемости.
    5. Ожидаете Окукливание происходит после 15-20 дней. Собирать куколок и место в клетке насекомых, позволяя мух для Эклоз там.
    6. Предоставления продовольствия и воды (как подготовленные в шаге 2.2) до даты ожидаемого eclosion - eclosion будет происходить 6-10 дней после Окукливание - и заменять каждые 2-3 дня.
    7. Разрешить возникающие мух, чтобы прокормить в течение 6 часов при комнатной температуре до помещения их в корпус, как описано в шаге 2.
      Примечание: Как Окукливание личинок и eclosion куколок может быть отложено, хранения в темноте на 8-10 ° C. Для этой цели Храните личинок в кролика фекалии навозной жижи и куколки в древесной стружки.

Representative Results

Мы разработали стратегию 3 путь, который ведет здорового населения как визуальные, так и поведенческих исследований (кратко на рис . 1). Наш метод начинается с коллекцией мух от диких (шаг 1, рис . 1). В нашей лаборатории мух размещаются в клетках насекомых или пластиковые мешки, под искусственной спячки цикла (шаг 2, рис . 1), значительно продлевая их жизни. Для увеличения числа может воспитываться потомство от самок диких вязка (шаг 3, рис . 1).

Мы нашли, что огромное количество диких мух ловить время интенсивных усилий, даже когда экологические условия являются благоприятными. В отличие от успешного воспитания Зрелые личинки заготавливаемым из ямы навоза крупного рогатого скота хозяйств является гораздо более эффективным способом источник большого количества диких мух (шаг 1, рис . 1), с нами сбора до 700 личинок в 0,03 м3 навоз. Кроме того наши методы для задних яиц захваченных беременных женщин оказались успешными (шаг 3, рис . 1). Самки захвачен средиземноморский климат (Аделаида) осенью и зимой заложил несколько партий яиц, с 24 кластеров, наблюдаемого из 19 женщин в течение 20 недель. Из этих яиц пакетов 10 были помещены в воду, все из которых были плодородные и привели к вылупления личинок. 3 группы личинок затем были приняты за пределами этой точки и помещены в навозной жижи фекалии кролика, обусловило 163 ± 34 (средний ± SD, N = 3) появились мух, с не наблюдается предвзятое отношение (Рисунок 2).

Здоровье этих мух лаборатории выращены определяется сравнение веса и двигательной активности женщин мух, по сравнению с поля захваченных лиц. Общей двигательной активности была оценена с помощью системы, опорно-двигательной активности мониторинга (Лам), как описано ранее39. Никаких существенных различий в вес (рис . 3А) или деятельности (рис . 3B) наблюдались между лаборатории выращены и дикими поймал мух после 4 месяцев в плену под нашей искусственной спячки цикла. Когда E. tenax поддерживались в лабораторных условиях без использования искусственной спячки цикла мы увидели значительное снижение продолжительности жизни, с продолжительностью 2,5-3 месяца (73 ± 7 дней на 5 женщин) и 79 ± 4 дня 11 мужчин. Когда мух хранились в искусственной спячки они могли жить более 12 месяцев.

Кроме того эффект долго срок обслуживания, используя наши описанных методов, далее оценивалась сравнением веса со временем для обоих полов лаборатории выращены мух. Мы наблюдали значительное увеличение веса в течение 4 месяцев для обоих полов, с самки последовательно весят больше, чем их коллеги-мужчины (p < 0,0001, двусторонний ANOVA, N = 12, рис . 4).

Figure 1
Рисунок 1: Схема изложением методов для поддержания здорового плен населения E. tenax. (1) процедура, описанная здесь начинается со сбора либо Зрелые личинки из коровьего навоза (шаг 1.2) или свободно летающих мух (шаг 1.3). (2) мух размещены в клетках насекомых или пластиковые мешки, зависит от числа. Они хранятся в искусственной спячки цикла на 8-10 ° C, которая нарушается каждые 3-4 дня. (3) собранные личинки находятся в их коровий навоз (шаг 3.2). Яиц в лаборатории, помещаются в кролика фекалии пульпы (шаг 3.3). При достижении зрелости, 3rd instar личинки лезть в окружающие опилки, где они окукливаются. Eclosion возникает после 6-10 дней, и мух eclosed размещаются в корпусе (шаг 2). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Figure 2
Рисунок 2:   Количество и соотношение полов E. tenax успешно воспитал из отдельных яйцо пакетов. В нашей лаборатории заложены данные показывают число E. tenax , eclosed от куколок разработан из 3 серий яиц. Яйца были заложены поймали дикого самок. Данные имеют цветовую маркировку для секса мух. Существует никакого существенного различия в соотношении.

Figure 3
Рисунок 3:   Оценки состояния здоровья населения в лаборатории выращены и поле собрал женщин мух после плена в долгосрочной перспективе. (A) вес сравнение между лаборатории выращены и поле захвачен женского мух после 4 месяцев в плену под Искусственный спячки (N = 12). (B) уровни деятельности лаборатории выращены и поле захватили женского мух после 4 месяцев в плену под искусственной спячки. В систему опорно-двигательной активности мух двигательной активности измеряется их разорвать инфракрасного луча во время движения. Как ранее мы среднем деятельность по 6,7 часов в середине дня, на второй полный день в опорно-двигательной активности монитора системы39 (Nполе поймали= 9, Nлаборатории выращены= 12). Центральный знак каждого boxplot показывает средний, края коробки 25го до 75-й процентили данных, и усы продлить от минимума до максимума данных.

Figure 4
Рисунок 4:   Сравнение эффект длительного обслуживания на вес лаборатории выращены мух обоего пола,. Данные показывают журчалка вес как функция времени в плену под искусственной спячки. Как все мух были выращены из яиц в нашей лаборатории (N = 12 в каждой точке данных) и t = 0 равен времени куколки штриховки, то время в плену совпадает с возрастом животных. Центральный знак каждого boxplot показывает средний, края коробки 25го до 75-йпроцентили данных, и усы продлить от минимума до максимума данных.

Discussion

С помощью нашей техники (рис . 1) мух были сохранены в лаборатории в течение более 1 года и успешно используется в поведенческих опытах после 7 месяцев в плену39. Действительно даже если это кажется нелогичным, сохраняя мух в более естественной среде, под 12 h свет: 12 h темных условиях, при комнатной температуре, существенно уменьшается продолжительность их жизни до 2-3 месяцев. Поддержание E. tenax в нашем цикле искусственной спячки для более года значительно дольше, чем предыдущие попытки, используя различные протоколы (77 дней33, 4 месяца9, 18 недель30). Основным фактором, влияющим на это увеличение продолжительности жизни является вероятно использование искусственной спячки в 8-10 ° C. Циклически нарушая hibernation, каждые 3-4 дня (шаг 2, рис . 1), мы позволяем мух как кормить и самостоятельно жених, таким образом, поддержание состояния питания и здоровья мух, как свидетельствует наблюдаемое увеличение веса ( Рисунок 4) и никаких изменений в двигательной активности, даже после длительных периодов в неволе (рис . 3и39см). Действительно в литературе о неудачных попытках искусственной спячки не нарушают спящего режима цикл, что приводит к увеличению смертности и присутствие плесени9.

Кроме того есть некоторые противоречия в литературе относительно предоставления пыльцы в качестве источника пищи. Несколько работ заявляют, что пыльца не является достаточным, специально для откладки яиц, и только сухой или действительно свежие пыльцы является подходящим9,29. Наши результаты показывают, что дополняя пчелиная пыльца с медом и воды, мы видим, долголетия и откладки яиц, даже после длительного пребывания в плену, с увеличением веса, видели в обоих полов (Рисунок 4) и откладки яиц, по-прежнему происходящих в самки после более чем 5 месяцев в плену39. Это увеличение продолжительности жизни позволяет нам изучать поведение мух на всех этапах жизни.

В поле женский мух оплодотворяются до сезонной спячки и остаются в репродуктивных диапауза, где хранится спермы и яйцеклеток остаются недоразвитыми, до весны28. Учитывая, что типичная женщина способна заложить 3000 яиц в 60 дней29, воспитание этих яиц является поэтому быстрый и эффективный способ увеличить наши плен населения. Однако ограничены нашего нынешнего понимания факторов, которые приводят к развитию яйцеклеток после периода спячки. Температуры, влажности, света и состояния питания предлагались играет определенную роль в деле контроля за репродуктивным диапауза28,40. Экспериментальных манипуляций таких факторов может привести к большей управления откладки яиц сроки и цены.

Аналогично мы успешно сдерживают развитие личинок, а также eclosion куколок, путем хранения в темноте на 8-10 ° C на 2 недели, хотя жизнеспособность может быть гораздо больше. Действительно исцелить30 сообщила об увеличении на куколки длительности до 37 дней, когда температура куколки был исключен из 25 ° C до 10 ° C. Используя эти стратегии и задержки производства яиц и/или развития куколки позволит более манипулирования демография плен населения.

Хотя временной последовательности подаваемого имеет гораздо большее значение для наших потребностей, чем большой урожай, это может быть более важным для других целей, например для опыления в теплицах. Мы обнаружили, что при использовании нашей методики с калом кролика, мы получили 163 ± 34 eclosed мух от каждого кладка яиц (N = 3). Учитывая, что типичный самка откладывает до 200 яиц40, мы могли бы быть в состоянии увеличить этот выход, либо снижения переполненности и продовольствия конкуренции, или регулируя температуру, как они были вовлечены в качестве значительного влияния роста9 ,,3140,41. Однако нет никаких признаков того, что основой СМИ сильно влияет на урожайность32. Кроме того в отличие от фекалии из других позвоночных29,,3031,42, кролик Кала является относительно запаха, позволяя колонии, чтобы храниться в нормальных лабораторных условиях без необходимости в дополнительной вентиляции. Уменьшается плотность личинок в средствах массовой информации, или добавление пищевые добавки, такие как дрожжи, а так же поддержания постоянной температуры между 20-25 ° C, вероятно, достаточно, чтобы полностью оптимизировать доходность31,32, 40.

Практические аспекты сбора достаточного количества свободно летающих мух, или поддержания генетически разнообразны плен населения, оба непрактичным и времени ограничительной для небольших исследовательских проектов. Таким образом воспитания потомства самок диких растяжением, дополняющего поставок при уборке Зрелые личинки7, позволяют наиболее практические варианты для круглогодичного E. tenax , в условиях исследования. Поскольку эти методы ограничены сезонов, в которых может произойти коллекции, существует необходимость для обоих обеспечение долговечности взрослых мух и поднимать любые яйца установленных захватили беременных самок.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgments

Исследования в нашей лаборатории в настоящее время финансируется Австралийским советом исследований (дуги, DP170100008 и DP180100144), нас ВВС управлением научных исследований (AFOSR, FA9550-15-1-0188) и Стифтельсен Олле Engkvist Byggmästare (2016/348). Мы благодарим прошлое членов лаборатории, которые способствовали разработке журчалка запасов, Cederholms Lantbruk и C M & T L Грин сын для доступа к коровий навоз и мух на их фермах, и Аделаиде и Уппсала ботанического сада для коллекции разрешений и постоянную поддержку.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Bee Pollen Forest Super Foods any brand of bee pollen is suitable
Honey Bramwells any brand of liquid honey is suitable
Rabbit Faeces can be substituted with cow or pig manure made into a slurry
BugDome Australia Entomological Supplies EM42222
Plastic Bags Woolworths Homebrand
Mosquito netting Clas Ohlson 34-1113
Cotton Balls Woolworths Select
Fridge Hisense fridge needs to maintain a stable 8-10°C 
Buckets (2-3L)
Large plastic tubs (30L)
Wood shavings Pollards Sawdust Supplies MaxiFlake (75) 
Bag clips IKEA Bevara 303.391.70
Petri Dish (100mm x 20mm) Corning 430167

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Goulard, R., Julien-Laferriere, A., Fleuriet, J., Vercher, J. L., Viollet, S. Behavioural evidence for a visual and proprioceptive control of head roll in hoverflies (Episyrphus balteatus). Journal of Experimental Biology. 218 (Pt 23), 3777-3787 (2015).
  2. Dyakova, O., Lee, Y. J., Longden, K. D., Kiselev, V. G., Nordström, K. A higher order visual neuron tuned to the spatial amplitude spectra of natural scenes. Nature Communications. 6, 8522 (2015).
  3. Jauker, F., Bondarenko, B., Becker, H. C., Steffan-Dewenter, I. Pollination efficiency of wild bees and hoverflies provided to oilseed rape. Agricultural and Forest Entomology. 14 (1), 81-87 (2012).
  4. Gladis, T. Bees versus flies? Rearing methods and effectiveness of pollinators in crop germplasm regeneration. ActaHortic. , 235-238 (1997).
  5. Ssymank, A., Kearns, C. A., Pape, T., Thompson, F. C. Pollinating flies (Diptera): A major contribution to plant diversity and agricultural production. Biodiversity (Ottawa). 9 (1-2), 86-89 (2008).
  6. Nordström, K., et al. In situ modeling of multimodal floral cues attracting wild pollinators across environments. Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 114 (50), 13218-13223 (2017).
  7. Altincicek, B., Vilcinskas, A. Analysis of the immune-inducible transcriptome from microbial stress resistant, rat-tailed maggots of the drone fly Eristalis tenax. BMC Genomics. 8, 326 (2007).
  8. Stocker, H., Gallant, P. Getting started : an overview on raising and handling Drosophila. Methods in Molecular Biology. 420, 27-44 (2008).
  9. Gladis, T. Establishment and utilization of a mass rearing of Eristalis tenax (Diptera, Syrphidae) in the Gatersleben genebank. Insecta Berlin. 1, 287-294 (1994).
  10. Francuski, L., et al. Shift in phenotypic variation coupled with rapid loss of genetic diversity in captive populations of Eristalis tenax (Diptera: Syrphidae): consequences for rearing and potential commercial use. Journal of Economic Entomology. 107 (2), 821-832 (2014).
  11. Pérez-Bañón, C., Hurtado, P., García-Gras, E., Rojo, S. SEM studies on immature stages of the drone flies (diptera, syrphidae): Eristalis similis (Fallen 1817) and Eristalis tenax (Linnaeus, 1758). Microscopy Research and Technique. 76, 853-861 (2013).
  12. Fruend, J., Linsenmair, K. E., Bluethgen, N. Pollinator diversity and specialization in relation to flower diversity. Oikos. 119 (10), 1581-1590 (2010).
  13. Biesmeijer, J. C., et al. Parallel declines in pollinators and insect-pollinated plants in Britain and the Netherlands. Science. 313 (5785), 351-354 (2006).
  14. Pape, T., Evenhuis, N. L. Systema Dipterorum, Version 1.5. , (2013).
  15. Miranda, G. F. G., et al. Key to the genera of Nearctic Syrphidae. Canadian Journal of Arthropod Identification. 23, 1-351 (2013).
  16. Nationalnyckeln. Nationalnyckeln till Sveriges flora och fauna. Tvåvingar: Blomflugor: Syprhidae: Syrphinae. , SLU. Artdatabanken. (2009).
  17. Mitra, B., Roy, S., Imam, I., Ghosh, M. A review of the hover flies (Syrphidae: Diptera) from India. International Journal of Fauna and Biological Studies. 2 (3), 61-73 (2015).
  18. Sengupta, J., et al. An updated distributional account of indian hover flies (Insecta: Diptera: Syrphidae). Journal of Entomology and Zoology Studies. 4 (6), 381-396 (2016).
  19. Shah, G. M., Jan, U., Wachkoo, A. A. A checklist of hoverflies (Diptera: Syrphidae) in the western Himalaya, India . Acta Zool Acad Scient Hung. 60 (4), 283-305 (2014).
  20. Francuski, L., Djurakic, M., LUDOŠKI, J., MILANKOV, V. Landscape genetics and spatial pattern of phenotypic variation of Eristalis tenax across Europe. Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research. 51 (3), 227-238 (2013).
  21. Thomson, F. C. Revision of the Eristalis flower flies (Diptera: Syrphidae) of the Americas south of the United States. Proceedings of the Entomological Society of Washington. 99 (2), 209-237 (1997).
  22. Hull, F. M. A Review of the Genus Eristalis Latreille in North America. Part II. Ohio Journal of Science. 25 (6), 285-312 (1925).
  23. Osburn, R. C. Studies in Syrphidæ-IV. Species of Eristalis New to America, with Notes on Others. Journal of the New York Entomological Society. 23 (2), 139-145 (1915).
  24. Bankowska, R. Notes on syrphid flies (Diptera, Syrphidae) of Japan. Fragmenta Faunistica. 43 (16), 203-207 (2000).
  25. Brower, J., Brower, L. Experimental studies of mimicry. 8. Further investigations of honeybees (Apis mellifera) and their dronefly mimics (Eristalis spp). The American Naturalist. 99, 173-187 (1965).
  26. Gilbert, F. S. Diurnal activity patterns in hoverfies (Diptera, Syphidae). Ecological Entomology. 10, 385-392 (1985).
  27. Ottenheim, M. M. Annual and diurnal rhythms of Eristalis species (Diptera: Syrphidae). Proceedings of the Section Experimental and Applied Entomology of the Netherlands Entomological Society (N.E.V.). 11, 169-174 (2000).
  28. Kendall, D. A., Stradling, D. J. Some observations on over wintering of the drone fly Eristalis tenax Syrphidae. Entomologist. 105 (1311), 229-230 (1972).
  29. Dolley, J. W., Hassett, C., Bowen, W., Phillies, G. Culture methods for invertebrate animals. Needham, J. G. 550, (1937).
  30. Heal, J. R. Variation and seasonal changes in hoverfly species: interactions between temperature, age and genotype. Biological Journal of the Linnean Society. 36, 251-269 (1989).
  31. Ottenheim, M. M., Holloway, G. J. The effect of diet and light and larval and pupal development of laboratory-reared Eristalis arbustorum (Diptera: Syprhidae). Netherlands Journal of Zoolog. (3-4), 305-314 (1995).
  32. Hurtado, P. Estudio del ciclo de vida de sírfidos eristalinos (Diptera, Syrphidae) y bases para su cría artificial. , Universidad de Alicante. Spain. (2013).
  33. Dolley, W. L. Jr, White, J. D. The effect of illuminance on the reversal temperature in the drone fly, Eristalis tenax. Biological Bulletin. 100 (2), 84-89 (1951).
  34. Wellington, W., Fitzpatrick, S. Territoriality in the drone fly, Eristalis tenax (Diptera, Syrphidae). Canadian Entomologist. 113 (6), 695-704 (1981).
  35. Nordström, K., Barnett, P. D., Moyer de Miguel, I. M., Brinkworth, R. S. A., O'Carroll, D. C. Sexual dimorphism in the hoverfly motion vision pathway. Current Biology. 18 (9), 661-667 (2008).
  36. Collett, T. S., Land, M. F. Visual control of flight behaviour in the hoverfly, Syritta pipiens L. Journal of Comparative Physiology A. 99, 1-66 (1975).
  37. Pitnick, S., Miller, G., Reagan, J., Holland, B. Males' evolutionary responses to experimental removal of sexual selection. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 268, 1071-1080 (2001).
  38. Holland, B., Rice, W. Experimental removal of sexual selection reverses intersexual antagonists coevolution and removes a reproductive load. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 96, 5083-5088 (1999).
  39. Thyselius, M., Nordström, K. Hoverfly locomotor activity is resilient to external influence and intrinsic factors. Journal of Comparative Physiology A. 202 (1), 45-54 (2016).
  40. Heal, J. Colour patterns of Syrphidae: 1. Genetic Variation in the dronefly Eristalis tenax. Heredity. 42 (2), 223-236 (1979).
  41. Ireland, S., Turner, B. The effects of larval crowding and food type on the size and development of the blowfly, Calliphora vomitoria. Forensic Science International. 159, 175-181 (2006).
  42. Dolley, W. L., Golden, L. H. Jr The effect of sex and age on the temperature at which reversal in reaction to light in Eristalis tenax occurs. Biology Bulletin. 92 (3), 178-186 (1947).

Tags

Экологических наук выпуск 135 Ильница tenax насекомых воспитание физиологии насекомых обслуживания мух насекомых опылителей энтомология
Воспитания и долгосрочного поддержания мух <em>Ильница tenax</em> для научных исследований
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Nicholas, S., Thyselius, M., Holden, … More

Nicholas, S., Thyselius, M., Holden, M., Nordström, K. Rearing and Long-Term Maintenance of Eristalis tenax Hoverflies for Research Studies. J. Vis. Exp. (135), e57711, doi:10.3791/57711 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter