Summary
Fareler için mayi LPS maruz miRNAs ile paketlenmiş exosomes solunum-alveoler lavaj (BAL) sıvı salgılar. Ortak kültür sistemiyle, biz BAL sıvısı serbest exosomes ifade bronş epitel hücrelerdeki sıkı kavşak proteinlerin bozabilir ve akciğer hasarı vurgulamak pro-inflamatuar sitokinlerin ifade artış gösteriyor.
Abstract
Akut akciğer hasarı (ALI) ve Akut Respiratuar distress Sendromu (ARDS) yüksek morbidite ve mortalite bulunmaya devam ediyor akciğer hastalıkları heterojen bir grup temsil eder. ALI moleküler patogenezi daha iyi tanımlanmış; Ancak, hastalık karmaşık yapısı nedeniyle moleküler terapiler geliştirilecek için henüz. Burada bir lipopolysaccharide (LPS) indüklenen fare modeli Akut Septik akciğer yaralanma exosomes inflamatuar yanıt rolü betimlemek için kullanın. Bu modeli kullanarak, biz mayi LPS maruz fareler exosomes içinde miRNA ve inflamatuar yanıt düzenleyen sitokinler ile paketlenmiş akciğerler solunum-alveoler lavaj (BAL) sıvı salgılar göstermek başardık. Daha fazla ortak kültür model sistem kullanarak, gösterdiğimiz makrofajlar yayımlanan exosomes ifade bronş epitel hücrelerdeki sıkı kavşak proteinlerin bozabilir. Bu sonuçlar 1) exosomal mekik ile doğuştan gelen bağışıklık ve yapısal hücreler arasında çapraz konuşma katkıda bulunmak için inflamatuar yanıt ve yapısal bariyer ve 2) hedefleme bu miRNAs bozulma tedavisi için yeni bir platform sağlamak öneririz ALI ve ARDS.
Introduction
ALI ve ARDS yaklaşık 1 milyon kişi dünya çapında etkiler sigara kardiyojenik pulmoner ödem tarafından neden olduğu ciddi hipoksemi ile solunum yetmezliği hayati formları vardır her yıl1. ARDS etyolojisinde doğrudan yaralanma için akciğer enfeksiyonları veya aspirasyon ve dolaylı hakaret çeşitli içerir. Son on yılda ARDS moleküler patogenezi artan bir anlayış,2,3için geliştirilen henüz ancak, ARDS için hedeflenen spesifik tedaviler vardır.
Akut akciğer yaralanma birkaç hayvan modeli sağlayan bir köprü deneysel terapiler insan çalışmaları4,5' e çevirmek için geliştirilmiştir. Yaygın olarak kullanılan modelleri yerel yükleme oleik asit, bakteri, LPS ve bleomycin içerir. Diğer bir yaklaşım iskemi-reperfüzyon, cecal tüp ligasyonu ponksiyon, mekanik havalandırma kaynaklı streç yaralanma, hyperoxia veya bakteri ve LPS5sistemik yönetimini içerir. Bu modeller klinik hipotezler test etmek için yararlı bir biyolojik sistem sağlamak ve olası terapiler gelişimi için. İnsan ARDS benzetimini yapmak için hayvan modelleri inflamasyon ve akciğerlerde bariyer işlevindeki kusur ile epitel ve endotel hücrelere akut yaralanma çoğaltmak.
Exosomes arası hücresel doku microenvironment moleküler kompozisyonu havalesi yoluyla iletişimde kolaylaştırmak ve membran veziküller ile 20-200 nm çapında, moleküler içeriği protein, DNA, RNA ve lipidler içerir, vardır. Exosomes hücrelerin endotel hücreleri, epitel hücreleri, düz kas hücreleri ve tümör hücreleri, gibi birden çok türü tarafından salgılanan ve insan vücut sıvısı içinde adlı biri yok. Exosomes çapraz-hadis bağışıklık hücreleri ve stromal hücreler arasında bulaşıcı ve steril inflamatuar hastalıklar sırasında düzenleyen ve çeşitli doğal ve deneysel uyaranlara tarafından fizyolojik sırasında düzenlenmiş olması anormal salınımlarını görünür çalışmalar göstermektedir ve patolojik süreçler6. Böyle iletişim ağı akciğer hastalıkları patogenezinde önemli bir rol oynayabilir ve patofizyolojik ilerleme7,8etkileyebilir. Kodlamayan RNA'ların, miRNAs ve doku ve vücut sıvıları, plazma, sera var mRNA ifade translasyon düzeyinde9,10modüle olarak 18-22 nükleotit.
Farklılaşma ve işlevi hücre birden çok türünün paketlenmiş miRNAs exosomes etkisi ve aşırı düzeyleri hastalıkları, kanser, akciğer hastalıkları, obezite, diyabet ve kardiyovasküler hastalık11de dahil olmak üzere çeşitli ile ilişkilidir, 12,13,14,15,16. Alıcı hücreler ve exosomal miRNAs mekik içine girişini kolaylaştıran hücreler arası iletişim microenvironment17,18hemostaz değiştirme. Akut akciğer-yaralanma bir karmaşık süreçler, birden çok hücre tipleri ile exosomes8geniş hücreler arası iletişim ile ilgili olduğunu. miR-155 ve miR-146a ortak transkripsiyon düzenleyici mekanizma paylaşmak ve inflamatuar yanıt ve immün tolerans19,20katkıda bulunur. Son yıllarda yapılan çalışmalarda her ikisi de exosomal miRNAs bağışıklık hücreleri21arasında mekik ile inflamatuar yanıt modüle gösterir. Ancak, düzenleyici etkileri exosomal miRNAs endotoksin alveoler yanıt temel moleküler mekanizmaları belirsiz kalır, hiç şüphesiz soruşturma potansiyel klinik önemi ve çevirim dolaylı hak daha fazla.
Ortak kültür modelleri inflamasyon ve kanser22,23gibi karmaşık ortamında belirli hücre tipleri arasındaki etkileşimin tanımlamak için istihdam edilmektedir. Bu platformlar özellikle bağışıklık ve yapısal hücreler için hücre tipleri arasında çapraz konuşma sorguya çekmek için alternatif bir stratejisi sağlayabilir.
Intra-trakeal, solumuş, mayi veya sistemik LPS deneysel akciğer hasarı24,25,26ikna etmek için yaygın olarak kullanılan ve yönetim epitel ve endotel geçirgenliği ikna etmek için göstermiştir kusur. Burada mayi LPS septik manken akut akciğer yaralanma farelerde ikna etmek için kullanın. LPS mayi yönetim 24 h içinde geçirgenliği kusurları ile inflamatuar hücre alımı akciğerlerde indüklenen vardır. Ayrıca, exosomes BAL üzerinden miRNA-155 ve miR-146a içerir ve exosomes BAL sıvısı üzerinden alıcı epitel hücreleri, IL-6 ve TNF-α gibi ifadede pro-inflamatuar sitokinlerin neden göster. O exosomal miRNAs ilk Akut Septik akciğer hasarı bu modelde BAL içinde salgılanan verilerdir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Genel protokol sepsis indüksiyon ilk gününde ve yalıtım BAL sıvı hayvan ve fare BALF exosomes izolasyonu için ikinci gün de dahil olmak üzere 2 gün gerektirir. Tüm yordamları gözden geçirilmiş ve kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi Atlanta VA Tıp Merkezi tarafından onaylanmış.
1. fare Akut Septik akciğer yaralanma modeli
- Kullanın 6-8 hafta - yaşlı erkek yaban-C57BL/6J farelerde tip (ağırlığı 20-22 g) hayvan için model ve aseptik teknik ve araçları kullanarak tüm yordamlarını gerçekleştirin. Otoklav forseps ve makas için 121 ° C'de 20 dk da dahil olmak üzere tüm cerrahi aletler
- Rastgele fare içine deney ve kontrol grubu dağıtın. Fareler cerrahi bir tahta üzerinde tut. Escherichia coli lipopolysaccharide (LPS, 15 mg/kg) ile fareler mayi yoldan tedavi. Bireysel vücut ağırlığına göre uygun LPS dozlarda fare, başına 0.1 ml PBS sulandırmak LPS çözüm 27 G iğne ile 1 mL şırınga kullanarak enjekte ve PBS bir eşdeğer birim denetim hayvanlara enjekte.
- Fareler uygun oda sıcaklığında temiz kafes oluşur hayvan BSL2 tesis unutmayın.
- 24 s sonra CO2 inhalasyon ile fareler ötenazi.
- Cerrahi alan fare boyun ortasına seçin. Küçük bir insizyon attım (yaklaşık 5 mm) yapmak ve yavaşça kasları erişim trakea maruz kadar künt forseps kullanarak nefes borusu için ayırın.
- Fare BAL sıvısı 10 mL steril şırınga ile 27 G iğne ile geri alıyorum. İlk olarak, yavaşça, iğne nefes borusu takın ve 1 mL steril PBS yavaş yavaş nefes borusu enjekte, daha sonra BALF 3 mL tek kullanımlık şırınga 27 G iğne ile çizmek. Yordamı tamamlandığında, şırınga ve iğne biohazard "Sharps" kap içinde atın.
- Chauret ve ark. tarafından daha önce açıklandığı gibi cerrahi aletler ile klor dioksit, tedavi 27ve o zaman ısıyla 121 ° C'de 20 dk için tarafından tüm cerrahi aletler sterilize
2. Exosomes yalıtım-seri Ultra-Santrifüjü ve karakterizasyonu
- Fare BAL sıvısı 15 mL konik tüpler toplamak. Alveolar hücre hasat için örnekleri, 1000 g, 4 ° C'de 10 dakika santrifüj kapasitesi
- Süpernatant yeni 15 mL konik tüpler, daha sonra örnekleri için 4.000 x g 4 ° C'de hücre artıkları kaldırmak için de 30 dk santrifüj kapasitesi.
- Süpernatant ultracentrifuge tüpler ve 10.000 x g 4 ° C'de daha büyük hücresel parçacıkları kaldırmak için de 60 dk santrifüj örnekleri toplamak.
- Süpernatant yeni konik tüpler, daha sonra örnekleri 0.2 µm şırınga filtre daha büyük partiküller kalan kaldırmak için aracılığıyla filtre.
- Ultracentrifuge tüpler örnekleri toplamak ve tüpler denge. 140.000 x g 4 ° C'de exosomes cips için de 2 h için örnekler santrifüj kapasitesi.
Not: 20-200 nm exosomes boyutu değişir. 0.2 µm filtre 200'den fazla olan büyük parçacıklar kaldırmak için kullanılır nm boyutunda. - Supernatants yavaşça atmak. Pelet 100 µL PBS veya lizis çözüm ve transfer exosomes örnekleri için 1,5 mL tüpler ile dağıtılması ve-80 ° C'de kullanmak kadar saklamak.
Not: Transmisyon Elektron mikroskobu izole exosomes doğrulamak için önerilir. - İletişim kuralı28işleme standart TEM örnek izleyin. 200 bar transmisyon elektron mikroskobu ve almak görüntüleri, ölçek kullanarak exosomes örnekleri analiz nm.
3. miRNA ve sahne miRNA-q-RT-PCR hazırlanması
Not: miRNA-q-RT-PCR miRNAs ifade düzeyini analiz etmek için önerilir.
- Standart miRNAs yalıtım Protokolü izleyin ve tek iplikçikli Ters transkripsiyon24saat içinde arıtılmış RNA'ların eşit miktarda kullanmaya dikkat edin.
- Exosomal mikroRNA düzeyi BAL sıvısı içinde algılamak için standart gerçek zamanlı PCR Protokolü izleyin. Belirli gerçek zamanlı PCR astar miR-155, miR-146a ve U6 SnRNA karşı kullanın. PCR reaksiyon kantitatif PCR aparatı ile çalıştırın ve iç kontrol U6 snRNA için ifade değerleri normalize.
Not: Her grup onaylatılacak örnekleri24toplam oluşur.
4. Exosomes etiketleme ve arıtma
- Exosomes Pelet 100 µL süspansiyon çözüm ile 1,5 mL polipropilen boru içinde askıya sonra exosomes boya diğer tüp içine 0.4 µL süspansiyon çözeltinin 100 µL ile ekleyin.
- Hızlı bir şekilde exosomes boya çözümde ekleyin ve karıştırarak iyice pipetting tarafından. Örnekleri 5 min için oda sıcaklığında tutmak, ışıktan korumak.
- Bir eksozom spin sütuna bir 1,5 mL elüsyon tüpü yerleştirin. Çözüm karışımı eksozom spin sütun Center'a aktarın.
- Sütun vasıl 800 x g oda sıcaklığında 2 min için spin.
- Sütun atın ve -20 ° C'de eluted örnek kullanmak kadar saklamak.
5. doğrulama Exosomes alıcı hücreleri tarafından alınan up
- 1 x 104 MLE 12 /cell bir 8-şey odası slayt ve kültür hücreleri 37 ° c, % 5 CO2tohum.
- 10 µL floresan etiketli exosomes hücrelere ekleme. 37 ° C'de 1 h için kuluçkaya
- Kültür ortamını çıkarın ve hücreleri PBS ile yıkayın, sonra oda sıcaklığında 10 dakika için %1 paraformaldehyde ile hücreleri tamir.
- Slayt Dağı orta DAPI ile bağlayın.
- Floresan mikroskop örnekleri analiz ve fotoğraf, 40 X büyütme çekmek.
6. Exosomes ve alıcı hücreler arasındaki etkileşim doğrulanması
- Tohum 2 x 105 MLE12/iyi uygun kültür orta ve 37 ° c, % 5 CO2kültür hücreleri içeren bir 12-şey kültür plaka.
- 20 µg exosomes fare BAL sıvısı MLE12 hücrelere ekleme ve deney grubu başına çoğaltır ayarlayın.
- 24 s sonra PBS hücrelerle yıkama ve 600 µL lizis arabellek kuyunun içine ekleyin. Yavaşça plaka sallamak ve pipet ile 1,5 mL tüp lizis örnekleri toplamak.
- Standart toplam RNA izolasyon iletişim kuralı ve cDNA Ters transkripsiyon protokolü takip et, tek iplikçikli cDNA Ters transkripsiyon29tamamlamak.
- MRNA ifade düzey alıcı hücreler29algılamak için standart gerçek zamanlı PCR Protokolü izleyin. TNF-α, Il karşı belirli gerçek zamanlı PCR astar kullanın-6 ve ZO-1. PCR reaksiyonları kantitatif PCR aparatı ile çalıştırın ve iç kontrol GAPDH için ifade değerleri normalize.
Not: Her grup onaylatılacak örnekleri oluşur.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Septik akciğer yaralanmalara neden fareler mayi LPS (15 mg/kg) ile tedavi edildi. LPS yönetim 24 h içinde nötrofilik akını akciğerlerde, Şekil 1A' gösterildiği gibi görüldü. Yalıtım ve arıtma exosomes ardından fare BAL sıvısı çizilmiştir. BALF exosomes morfoloji elektron transmisyon mikroskopisi (Şekil 1B) tarafından doğrulandı.
Seçici pro-inflamatuar miRNAs miRNA-155 ve miR-146a ifade q-RT-PCR arıtılmış exosomes dan tarafından algılandı. İfade düzey miR-155 ve miR-146a anlamlı bir artış içinde BAL sıvı exosomes LPS, tedavi kontrol fareler için PBS (miR-155, 1 ± 0,16 vs 11,6 ± 0,6; miR-146a, 1 ± 0,12 vs 13,5 ± 1.186) ile karşılaştırıldığında ile tedavi edildi fareler üzerinden (Şekil 2).
Exosomes fonksiyonel etkileri tanımlamak için fare bronş epitel hücreleri (MLE12) saf exosomes LPS veya PBS, sırasıyla tedavi farelerin BAL sıvı çıkarılan ile tedavi edildi. İlk olarak, alıcı epitel hücre içine girişini BALF exosomes kanıtladık. BALF exosomes PKH-67 ile etiketli ve MLE12 hücreleri ile birlikte kültürlü ve exosomes epitel hücreleri (Şekil 3A) tarafından alımını floresan mikroskop resimleri göster. Pro-inflamatuar arabulucu, IL-6 ve TNF-α ifade anlamlı bir artış tedavi LPS fareler, kontrol grubu (TNF-α, 1 ± 0,13 vs 5.01 ± 0,22; karşılaştırıldığında üzerinden exosomes ile birlikte kültürlü epitel hücrelerinde Il-6, 1 ± 0,02 vs 1.72 ± 0.17) (Şekil 3B). Biz de sıkı kavşak protein ZO-1 ifadesi epitel bütünlüğü için bir vekil olarak belirledi. LPS exosomes ile tedavi edilen hücreleri tedavi ZO-1, LPS tedavi kontrol fareler (ZO-1, 1 ± 0,12 vs 0.66 ± 0,13) karşılaştırıldığında önemli ölçüde zayıflatılmış bir ifadesi gösterdi fareler (Şekil 3 c).
Resim 1: exosomes BAL sıvı LPS tedavi farelerin izole karakterizasyonu. C57BL/6J fareler mayi LPS (15 mg/kg) enjeksiyonu ile tedavi (N = 5), PBS denetimi olarak kullanıldı (N = 5). 24 s sonra fareler euthanized ve BAL sıvısı gerçekleştirildi. Fare akciğer dokusunun temsilcisi görüntüleri LPS ve gösterilen akut akciğer hasarı, ölçek çubuğu, 50 µm, A PBS ile tedavi). Exosomes BAL sıvısı elde. Transmisyon Elektron mikroskobu (TEM) analiz gösteren exosomes, ölçeği 200 bar, nm, B). Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Resim 2: Exosomal miRNAs ifade LPS tedavi fareler izole BAL sıvısı içinde. C57BL/6J fareler ile mayi LPS meydan. Seçici mikroRNA'lar ifade q-RT-PCR ve U6 ifade. için normalleştirilmiş analiz A) miR-155; B) miR-146a. n grubu başına 5 fare =. Öğrenci testi, * P < 0,05. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 3: inflamatuar sitokinlerin ve sıkı kavşak protein fare epitelyal hücrelerdeki ifadesi tedavi ile exosomes. BAL sıvısı kaynaklı exosomes PKH-67 ile etiketli, ve floresan mikroskop PKH67 gösterilen exosomes (yeşil), DAPI(Blue) ve exosomes MLE12 hücreleri, ölçek çubuğu, 50 µm, gösteri alımını birleştirilmiş görüntülerini A gösterildiği gibi etiketli). Fare epitelyal hücreler MLE12 Co kültürlü BAL sıvısı LPS veya PBS ile tedavi fareler üzerinden gelen izole exosomes ile. daha sonra hücre hasat edildi ve toplam RNA izole s 24. Il-6 ve TNF-α ifade q-RT-PCR ile ölçülen GAPDH iç kontrol için normalleştirilmiş. (B) TNF-α ve (C) IL6; (D) ZO-1 mRNA ifade q-RT-PCR ile ölçüldü. * P < 0,05, öğrenci testi. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Fare modelleri hastalıkların belirli genler fizyolojik fonksiyonun değerlendirildiği ve deneme2maliyetini azaltmak için yaygın olarak kullanılır. Açıklanan Akut Septik akciğer hasarı burada inflamatuar yanıt ARDS ile insanlarda görülen taklit eder. Bu model moleküler patogenezi, biyolojik gelişimi araştırmak için ve potansiyel yeni tedaviler5test etmek için geçerlidir.
Ortak kültür sistemleri in vivo çalışmalar transfer RNA, DNA, lipidler ve bir tüp bebek sistem23,30protein gibi biyolojik moleküllerin potansiyel mekanizmaları araştıran bağlamında ilgilidir. Bu platformlar bazılarının mekanik anlayış değerlendirme ve geliştirme terapileri karmaşık hastalıklar22,23büyük yarar vardır. Burada gösterildiği gibi exosomes lavaj hücrelerden (makrofajlar, nötrofiller) exosomes transferi ile yapısal epitel hücreleri bütünlüğünü etkileyebilir.
Exosomes pathobiological etkileri insan hastalıkları tanı ve tedavi açısından, hem de önemli bir özelliği olarak ortaya çıkan ve hastalık patogenezinde31,32anlama. Exosomes biyolojik sıvı dan izole etmek için en sık kullanılan teknik fark Santrifüjü burada33,34açıklandığı ultrasantrifüj ile birleştiğinde içerir. Bu teknik birkaç güçlü, zaman alıcı olabilir aslında ve sigara exosomal proteinler ile bulaşma riskinin sınırlı olmasına rağmen vardır. Yeni yaklaşımlar eksozom yalıtım yoğunluğu degrade veya bağışıklık benzeşme veya boyut bağımlı Yöntem35tarafından gibi bu sınırlamaları aşmak için önerilmiştir. Exosomes klinik çalışmalarda tanı ve prognoz ve hedefli tedaviler gelişimi biyolojik olarak soruşturuluyor.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Bu eser VA Merit İnceleme 2I01BX001786-06A1 RS için fon tarafından desteklenmiştir.
Acknowledgments
Yazarlar hiçbir çıkar çatışması olarak atadım.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| lipopolysaccharide | Sigma-Aldrich | Escherichia coli 055:B5 | |
| PBS pH7.2(1X) | Life technologies | 20012-027 | |
| mirVana miRNA isolation kit | Thermo Fisher | 449774 | |
| TaqMan Gene Expression Master Mix | Thermo Fisher | 4369016 | |
| mmu-miR-155 (002571) primer | Thermo Fisher | 4427975 | |
| has-miR-146a (000468) primer | Thermo Fisher | 4427975 | |
| U6snRNA primer | Thermo Fisher | 4427975 | |
| TNF-α(Mm00443258_m1 ) primer | Thermo Fisher | 4331182 | |
| IL-6 (Mm00446190_m1 )primer | Thermo Fisher | 4331182 | |
| ZO-1 (Mm00493699_m1 )primer | Thermo Fisher | 4331182 | |
| minimal essential medium (MEM) | Thermo Fisher | 11095-072 | |
| Trysin-EDTA solution(0.05%) | Thermo Fisher | 25300054 | |
| Exosomes were labeled with PKH67 through PKH67 Green Fluorescent Cell linker Mini Kit | Sigma-Aldrich | MINI67-1KT | |
| Exosome Spin Columns (MW3000) | Thermo Fisher | 4484449 | |
| Beckman Coulter Optima L-100XP ultracentrifuge | Beckman Coulter | L-100XP | |
| Ultra-clear centrifuge tubes | Beckman Coulter | 344058 | |
| Applied Biosystems 7500 Fast Real-Time PCR System | Thermo Fisher | ||
| transmission electron microscopes (TEM) | JEOL Ltd | 120 kV TEM | |
| Olympus BX41 microscope | Olympus | BX41 |
References
- Rubenfeld, G. D., Herridge, M. S. Epidemiology and outcomes of acute lung injury. Chest. 131, 554-562 (2007).
- Baron, R. M., Choi, A. J., Owen, C. A., Choi, A. M. Genetically manipulated mouse models of lung disease: potential and pitfalls. American journal of physiology. Lung cellular and molecular physiology. , L485-L497 (2012).
- Han, S., Mallampalli, R. K. The acute respiratory distress syndrome: from mechanism to translation. Journal of immunology. , Baltimore, Md. 855-860 (1950).
- Aeffner, F., Bolon, B., Davis, I. C. Mouse Models of Acute Respiratory Distress Syndrome: A Review of Analytical Approaches, Pathologic Features, and Common Measurements. Toxicologic pathology. 43, 1074-1092 (2015).
- Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. American journal of physiology. Lung cellular and molecular physiology. , L379-L399 (2008).
- Terrasini, N., Lionetti, V. Exosomes in Critical Illness. Critical care medicine. , (2017).
- Fujita, Y., Kadota, T., Araya, J., Ochiya, T., Kuwano, K. Extracellular Vesicles: New Players in Lung Immunity. American journal of respiratory cell and molecular biology. , (2017).
- Kubo, H. Extracellular Vesicles in Lung Disease. Chest. 153, 210-216 (2018).
- Krol, J., Loedige, I., Filipowicz, W. The widespread regulation of microRNA biogenesis, function and decay. Nature reviews. Genetics. 11, 597-610 (2010).
- Bartel, D. P. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions. Cell. 136, 215-233 (2009).
- Fanini, F., Fabbri, M. CANCER-DERIVED EXOSOMIC microRNAs SHAPE THE IMMUNE SYSTEM WITHIN THE TUMOR MICROENVIRONMENT: STATE OF THE ART. Seminars in cell & developmental biology. , (2016).
- Agarwal, U., et al. Experimental, Systems, and Computational Approaches to Understanding the MicroRNA-Mediated Reparative Potential of Cardiac Progenitor Cell-Derived Exosomes From Pediatric Patients. Circulation research. 120, 701-712 (2017).
- Prattichizzo, F., et al. Extracellular microRNAs and endothelial hyperglycaemic memory: a therapeutic opportunity? Diabetes, obesity & metabolism. 18, 855-867 (2016).
- Huang-Doran, I., Zhang, C. Y., Vidal-Puig, A. Extracellular Vesicles: Novel Mediators of Cell Communication In Metabolic Disease. Trends in endocrinology and metabolism: TEM. 28, 3-18 (2017).
- Khalyfa, A., et al. Circulating Plasma Extracellular Microvesicle MicroRNA Cargo and Endothelial Dysfunction in Children with Obstructive Sleep Apnea. American journal of respiratory and critical care medicine. 194, 1116-1126 (2016).
- Thomou, T., et al. Adipose-derived circulating miRNAs regulate gene expression in other tissues. Nature. 542, 450-455 (2017).
- Gregson, A. L., et al. Altered Exosomal RNA Profiles in Bronchoalveolar Lavage from Lung Transplants with Acute Rejection. American journal of respiratory and critical care medicine. 192, 1490-1503 (2015).
- Valadi, H., et al. Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells. Nature cell biology. 9, 654-659 (2007).
- Doxaki, C., Kampranis, S. C., Eliopoulos, A. G., Spilianakis, C., Tsatsanis, C. Coordinated Regulation of miR-155 and miR-146a Genes during Induction of Endotoxin Tolerance in Macrophages. Journal of immunology. , Baltimore, Md. 5750-5761 (2015).
- Schulte, L. N., Westermann, A. J., Vogel, J. Differential activation and functional specialization of miR-146 and miR-155 in innate immune sensing. Nucleic acids research. 41, 542-553 (2013).
- Alexander, M., et al. Exosome-delivered microRNAs modulate the inflammatory response to endotoxin. Nature communications. 6, 7321 (2015).
- Yuan, Z., et al. TREM-1 is induced in tumor associated macrophages by cyclo-oxygenase pathway in human non-small cell lung cancer. PloS one. 9, e94241 (2014).
- Xu, R., Richards, F. M. Development of In Vitro Co-Culture Model in Anti-Cancer Drug Development Cascade. Combinatorial chemistry & high throughput screening. 20, 451-457 (2017).
- Yuan, Z., et al. TREM-1-accentuated lung injury via miR-155 is inhibited by LP17 nanomedicine. American journal of physiology. Lung cellular and molecular physiology. , L426-L438 (2016).
- Sadikot, R. T., et al. High-dose dexamethasone accentuates nuclear factor-kappa b activation in endotoxin-treated mice. American journal of respiratory and critical care medicine. 164, 873-878 (2001).
- Yuan, Z., et al. Curcumin mediated epigenetic modulation inhibits TREM-1 expression in response to lipopolysaccharide. The international journal of biochemistry & cell biology. 44, 2032-2043 (2012).
- Chauret, C. P., et al. Chlorine dioxide inactivation of Cryptosporidium parvum oocysts and bacterial spore indicators. Applied and environmental microbiology. 67, 2993-3001 (2001).
- Cizmar, P., Yuana, Y. Detection and Characterization of Extracellular Vesicles by Transmission and Cryo-Transmission Electron Microscopy. Methods in molecular biology. , Clifton, N.J. 221-232 (2017).
- Yuan, Z., et al. HIV-related proteins prolong macrophage survival through induction of Triggering receptor expressed on myeloid cells-1. Scientific reports. 7, 42028 (2017).
- Jackson, M. V., et al. Analysis of Mitochondrial Transfer in Direct Co-cultures of Human Monocyte-derived Macrophages (MDM) and Mesenchymal Stem Cells (MSC). Bio-protocol. 7, (2017).
- Fujita, Y., et al. Extracellular Vesicles: New Players in Lung Immunity. American journal of respiratory cell and molecular biology. 17, 474-484 (2017).
- Gunasekaran, M., et al. Donor-Derived Exosomes With Lung Self-Antigens in Human Lung Allograft Rejection. American journal of transplantation : official journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons. 17, 474-484 (2017).
- Kalra, H., et al. Comparative proteomics evaluation of plasma exosome isolation techniques and assessment of the stability of exosomes in normal human blood plasma. Proteomics. 13, 3354-3364 (2013).
- Baranyai, T., et al. Isolation of Exosomes from Blood Plasma: Qualitative and Quantitative Comparison of Ultracentrifugation and Size Exclusion Chromatography Methods. PloS one. 10, e0145686 (2015).
- Nordin, J. Z., et al. Ultrafiltration with size-exclusion liquid chromatography for high yield isolation of extracellular vesicles preserving intact biophysical and functional properties. Nanomedicine : nanotechnology, biology, and medicine. 11, 879-883 (2015).
