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Biochemistry

用氢-氘交换质谱法定义 Hsp33's 氧化还原调节陪护活动和 Hsp33 映射构象变化

doi: 10.3791/57806 Published: June 7, 2018
* These authors contributed equally

Summary

生物体在其一生中遇到的最具挑战性的压力条件之一是氧化剂的积累。在氧化应激过程中, 细胞大量依赖分子伴侣。在这里, 我们介绍了用于研究氧化还原调节的抗聚集活性的方法, 以及通过海达兴-MS 来监测调节陪护功能的结构变化。

Abstract

生物体经常需要在其生命周期中应对波动的环境, 包括温度、pH 值的变化、活性氧的积累等等。这些波动可能导致广泛的蛋白质展开, 聚集和细胞死亡。因此, 细胞已经进化出一个动态和应力特异的分子伴侣网络, 在压力条件下维持一个 "健康的" 蛋白质组。ATP 独立伴侣构成了一个主要的类分子伴侣, 作为一线防御分子, 防止蛋白质聚集的压力依赖性的方式。这些伴侣共有的一个特点是, 他们有能力利用结构可塑性来错误折叠客户的压力特定的激活、识别和释放。

本文重点讨论了一种这种内在紊乱的伴侣的功能和结构分析, 即细菌氧化还原调节 Hsp33, 它在氧化应激过程中保护蛋白质不聚集。在这里, 我们提出了一个不同的技术工具箱, 研究氧化还原调节的陪护活动, 以及映射的构象变化的监护人, 其活动的基础。具体来说, 我们描述了一个工作流, 包括制备完全还原和完全氧化的蛋白质, 然后分析的伴侣抗聚集活动的体外利用光散射, 集中在程度抗聚集活性及其动力学。为了克服聚集分析过程中累积的异常现象, 我们描述了Kfits的用法, 这是一种新的图形化工具, 可以方便地处理动态测量。该工具可以很容易地应用于其他类型的动力学测量, 以消除异常和拟合动力学参数。为了使功能与蛋白质结构相关联, 我们描述了一种结构质谱技术、氢-氘交换质谱法的建立和工作流程, 该方法允许对监护人的构象变化进行映射, 并基质在 Hsp33 活动的不同阶段。同样的方法也适用于其他蛋白质和蛋白质配体的相互作用。

Introduction

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细胞经常遇到活性氧的积累 (ROS) 产生作为呼吸的副产品1,2, 蛋白质和脂质氧化3,4和其他过程5, 6,7。尽管 ros 在多种生物过程中起着有益的作用, 如细胞信号89和免疫应答10, ros 生产与解毒之间的不平衡可能会发生, 导致氧化压力7。活性氧的生物学指标是蛋白质、脂质和核酸, 其氧化作用影响其结构和功能。因此, 细胞氧化剂的积累与多种病症有密切的联系, 包括癌症9,11, 炎症12,13, 衰老14,15, 并已发现参与神经退行性疾病的发病和进展, 如阿尔茨海默氏症, 帕金森氏症, ALS 疾病16,17,18

新合成的和成熟的蛋白质对氧化反应高度敏感, 因为它们的侧链有可能有害的修饰, 它的形状蛋白质结构和功能19,20。因此, 氧化应激通常导致广泛的蛋白质失活, 错误折叠和聚集, 最终导致细胞死亡。一个优雅的细胞策略, 以应付潜在的损害蛋白质氧化是利用氧化还原依赖的伴侣, 这抑制了广泛的蛋白质聚集, 而不是形成稳定的配合与错误折叠客户端蛋白21 ,22,23。这些一线防御伴侣是迅速激活的现场特定氧化 (通常是半胱氨酸残留), 转化成有效的抗聚集分子24。由于氧化应激导致呼吸抑制和细胞 atp 水平下降25, 典型的 atp 依赖伴侣在氧化应激条件下的有效性较差25,26 ,27。因此, 氧化还原活化的 ATP 独立伴侣在维持蛋白质稳态的同时, 在细菌和真核生物中的氧化剂积累 (例如, 细菌中的 Hsp3328和佛罗里达29 , Get3 30) 中起着至关重要的作用.在酵母, peroxiredoxins31在真核生物)。这些伴侣的活动很大程度上取决于由特定地点的氧化引起的可逆结构构象变化, 它揭示了涉及识别错误折叠客户蛋白的疏水性区域。

基于伴侣-基质相互作用3233的动态和异性质, 研究抗聚集机制和控制伴侣对客户蛋白质识别的原则并不容易, 34,35,36,37。然而, 受压力调节的伴侣有机会提高我们对抗聚集功能的理解, 因为他们的能力: 1) 获得两种不同形式的伴侣, 活跃 (, 氧化) 和非活动 (例如,减少), 与引入或消除的压力条件容易切换 (例如, 氧化剂和还原剂), 2) 有广泛的基质, 3) 形成高度稳定的复合体与客户的蛋白质, 可以评估不同的结构方法, 和 4) 只专注于基板的识别和释放, 介导的氧化还原依赖性构象变化, 因为大多数这些伴侣缺乏折叠能力。

在这里, 我们分析的细菌氧化还原调节陪护 Hsp33's 抗聚集活性, 一个重要组成部分的细菌防御系统抗氧化诱导蛋白聚集28。减少时, Hsp33 是一种紧密折叠的锌结合蛋白, 无陪护活动;然而, 当暴露在氧化应激, Hsp33 经历了广泛的构象变化, 暴露其基质结合区38,39。氧化后, 与 C 末端域四高度保守的半胱氨酸残留物密切相关的锌离子被释放40。这就导致了两个二硫化物键的形成, C 端域的展开, 以及相邻链接器区域41的不稳定。C 终端和链接器区域高度灵活, 被定义为内在的或部分无序的。当返回到非压力条件, 半胱氨酸减少, 陪护返回其本机折叠状态, 没有反聚集活动。伴侣的复性导致了束缚的顾客蛋白质的进一步展开和不稳定, 触发它的转移到规范化的伴侣系统, DnaK/J, 为复性38。对 Hsp33's 相互作用站点的分析表明, Hsp33 使用其带电的无序区域以及链接器和 N 终端域上的疏水区域来捕获错误折叠的客户端蛋白质并防止其聚合38,42. 在折叠状态下, 这些区域由折叠链接器和 C 终端域隐藏。有趣的是, 链接器区域充当 Hsp33's 折叠和非活动状态的看门人, "感知" 其相邻的 C 终端域34的折叠状态。一旦突变 (无论是点突变或全序列摄动), Hsp33 被转化为组成性主动陪护者, 无论其氧化还原敏感性半胱氨酸43的氧化还原状态。

这里提出的协议允许监测 Hsp33's 氧化还原依赖的陪护活动, 以及映射构象变化的激活和结合的客户端蛋白。这种方法可以适应研究其他伴侣-客户识别模型以及非伴侣蛋白-蛋白质相互作用。此外, 我们提出了制备完全还原和氧化的伴侣的协议, 可用于其他氧化还原开关蛋白的研究, 以揭示蛋白质氧化对蛋白质活性的潜在作用。

具体来说, 我们描述了一个程序, 以监测伴侣活动的体外, 并确定其基底特异性在不同类型的蛋白质聚集 (化学或热诱导) 使用光散射 (LS) 测量的fluorospectrometer44。在聚合过程中, 由于浊度的增加, 360 nm 的光散射迅速增加。因此, 可以在这种波长上以时间依赖性的方式监视聚合。LS 是一种快速、灵敏的检测蛋白质聚集的方法, 因而利用 nanomolar 浓度对感兴趣的蛋白质进行抗聚集活性, 使蛋白质聚集相关的动力学参数在不同的条件。此外, 此处描述的 LS 协议不需要昂贵的仪器, 并且可以很容易地在任何实验室中建立。

然而, 获得 "清洁" 的动力学曲线, 并从这样的光散射实验中提取蛋白质的动力学参数是相当有挑战性的, 因为噪声和气泡和大骨料产生的大量异常点。为了克服这一障碍, 我们提出了一种新的图形工具, Kfits45, 用于降低不同的动力学测量的噪音水平, 特别适合蛋白质聚集动力学数据。该软件为早期评估结果提供了初步的动力学参数, 允许用户在不影响其动力学特性的情况下快速 "清除" 大量数据。Kfits是在 Python 中实现的, 在45的开源中可用。

这一领域的一个具有挑战性的问题是, 在伴侣和他们的客户蛋白质之间绘制相互作用的站点, 了解伴侣如何识别广泛的错误折叠基质。当研究高度动态的蛋白质复合物时, 这个问题会更加复杂, 这涉及到内在紊乱的伴侣和容易聚集的基质。幸运的是, 结构质谱在过去十年中已有了显著的进步, 并成功地提供了有用的方法和工具来分析蛋白质识别46中所涉及的结构可塑性和地图残留,47,48,49. 在这里, 我们提出一个这样的技术-氢-氘交换质谱 (海达兴)-这使得在结构构象上的残留水平的变化映射到蛋白质修饰或蛋白质/配体结合35, 50,51,52,53,54,55。海达兴-MS 使用氘的连续交换骨干氢, 其速率受化学环境、可达性和共价键和非共价键56的影响。海达兴-MS 跟踪这些交换过程使用的氘溶剂, 通常是重水 (D2O), 并允许测量的基础上分子量的变化后, 氢的氘交换。氢氘交换速率的减慢可能是氢参与氢键或简单地从空间障碍中产生的, 这表明结构57的局部变化。在配体结合或平移后修改后的变化也可能导致氢环境的差异, 具有约束力, 导致氢氘交换 (海达兴) 率的差异46,53

我们将这项技术应用到 1) 地图 Hsp33 地区迅速展开后, 氧化, 导致活化 Hsp33, 和 2) 定义的潜在结合界面 Hsp33 与其全长错误折叠基质, 柠檬酸合酶 (CS)38

本手稿所描述的方法可用于研究蛋白质在体外的氧化还原依赖性功能, 定义抗聚集活性和结构变化 (如有) 在蛋白质功能中的作用。这些方法可以很容易地适应不同的生物系统, 并应用于实验室。

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Protocol

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1. 充分还原和全氧化蛋白的制备

  1. 完全还原蛋白的制备
    注: 在这里, 我们描述了一个含锌蛋白的减少, 并使用 ZnCl2溶液, 以恢复锌纳入, 降低蛋白状态。可以更换或丢弃 ZnCl2解决方案。请注意, 还原过程的时间和温度取决于蛋白质的稳定性和功能, 因此每种蛋白质都是特定的。
    1. 在冰上解冻蛋白质样品, 并将其向下旋转以除去骨料。孵育样品至少1.5 小时在37°c 与5毫米和20µM ZnCl2 (多达70% 的蛋白质浓度)。
      注意: 这个步骤的温度是蛋白质依赖性的, 应该调整到蛋白质的稳定性。
    2. 使用除盐柱删除德勤。
      注: 有不同的脱盐栏可用。下面的协议描述了使用特定脱盐柱的过程 (见材料表)。在使用其他脱盐柱之前, 我们建议检查其清除和蛋白质回收的效率, 因为一些脱盐柱可能部分吸收的蛋白质的兴趣。
      1. 用磷酸钾 (KPi) 缓冲器 (40 毫米, pH 值 7.5) 平衡柱, 完全用缓冲器填满柱状物, 让缓冲液滴出。重复此过程2x。
      2. 通过用镊子轻轻地将白磁盘过滤器卸下, 然后将其卸下;在用 KPi 缓冲区填充列时, 最容易删除它。用 KPi 缓冲区重新填充该列, 并将其离心 1000 x g, 3 分钟。
      3. 将该列转移到一个干净的管子中, 将蛋白质样品慢慢地添加到柱中间, 并将其离心在 1000 x g 处, 2 分钟。目前, 无上无的蛋白质正在流动。
    3. 检查其浓度 (例如, 使用紫外/可见光光谱仪), 并测量其吸光度在 280 nm。用啤酒定律计算蛋白质浓度。
    4. 将一半的蛋白质样品分发到整除数中。在厌氧条件下孵化整除数 (例如, 使用厌氧室) 20 分钟, 完全清除氧气。用塑料薄膜封住管子, 将样品贮存在-20 摄氏度或-80 摄氏度, 这取决于蛋白质。
      注意: 不要使用厌氧室, 管也可以用氩气闪出, 以消除氧气。
  2. 全氧化蛋白的制备
    注: 建议从完全还原蛋白中制备氧化蛋白样品 (前面描述)。这将减少半胱氨酸氧化态的异质性。可以使用不同的氧化试剂;在这里, 我们专注于过氧化氢 (H2O2)。
    注意: 避免过度氧化, 因为它可能导致不良的内二硫化物键和不可逆氧化的不同氨基酸, 包括半胱氨酸, 蛋氨酸, 酪氨酸, 和其他。
    1. 到剩余的蛋白质样品, 增加5毫米 H2O2 (新鲜地稀释) 和孵化它为 3 H 在40°c, 当震动时。
      注意: 这个步骤的温度是蛋白质依赖性的, 应该调整到蛋白质的稳定性。
    2. 用 KPi 缓冲区 (40 mM, pH 值 7.5) 平衡列, 完全用缓冲区填充该列, 并让缓冲区滴出。重复此过程2x。
    3. 通过用镊子轻轻地将白磁盘过滤器卸下, 然后将其卸下;在用 KPi 缓冲区填充列时, 最容易删除它。
    4. 用 KPi 缓冲区重新填充该列, 并将其离心 1000 x g, 3 分钟。
    5. 将该柱转移到一个干净的管子中, 将氧化蛋白样品慢慢地添加到柱中间, 并将其离心在 1000 x g 处2分钟;氧化蛋白现在在流动中。
    6. 检查蛋白质浓度的步骤 1.2.5, 将氧化蛋白分为整除数, 并储存在-20 °c 或-80 °c, 蛋白质依赖性。

2. 光散射聚集法

注: 本试验中的所有浓度均为陪护和基底特异, 应进行校准。所有的缓冲器应该是0.22 µm 过滤, 因为它是非常重要的, 缓冲区是没有任何粒子或气泡, 小试管是干净和无尘。使用在石英试管中放置的搅拌器是非常重要的。检查不同的搅拌器大小和形状, 以确保有效地混合整个解决方案, 而不产生不良的气泡。此外, 在实验室和设施中也有不同的 flouorospectrometers。在这里, 使用了一个特定的 fluorospectrometer (见材料表)。不同的仪器具有不同的灵敏度, 测量速度和取样参数。因此, 应该使用已知的聚集性蛋白质及其相应条件来优化精确的测量参数 (例如, 发射和激发带宽、灵敏度等)。推荐用柠檬酸合酶 (CS) 和/或荧光素素作为 nanomolar 浓度的初始基质。

  1. 化学聚合试验
    1. 在40毫米 HEPES (pH 7.5) 和4.5 米 GdnCl 中, 通过孵化12µM CS 来制备变性基质。为了保持 ph, 溶解 GdnCl 在40毫米 HEPES (pH 7.5)。
    2. 打开 fluorospectrometer 软件并转到时间课程测量。将参数设置为: 温度:25 °c;λem: 360;Em 带宽: 5 毫微米;λ: 360;前带宽: 2.5 毫微米;和数据间隔: 0.5 秒。
    3. 在石英试管中加入1600µL 40 毫米 HEPES 来制备样品。将试管插入样品夹中, 并让样品达到所需的温度。
    4. 设置搅拌到 600 rpm, 并开始测量, 直到建立基线。为整个测量保持搅拌。
    5. 要测量 cs 聚合在没有伴侣的情况下, 在120s 进入测量, 添加 (轻轻, 但迅速) 10 µL 变性 CS (最终浓度为 75 nM)。继续测量1200秒。
    6. 要测量 CS 聚合在存在 Hsp33, 在六十年代入测量, 增加 Hsp33 (最后的集中300毫微米)。在另外的六十年代以后, 增加10µL 变性 CS (最后的集中75毫微米)。继续测量1200秒。
      注: 添加衬底或陪护时, 为了避免气泡的插入, 请使用10µL 吸管。
  2. 热聚合试验
    注: 热聚集试验的温度取决于蛋白质的稳定性, 并应独立调整到每种蛋白质。
    1. 打开 fluorospectrometer 软件并转到时间课程测量。按如下方式设置参数: 温度:43 °c;λem: 360;发射带宽: 5 nm;λ: 360;励磁带宽: 2.5 毫微米;和数据间隔: 0.5 秒。
    2. 在石英试管中加入1600µL 预热40毫米 HEPES, 制备样品。将试管插入样品夹中, 并让样品达到43摄氏度。
    3. 设置搅拌到 600 rpm, 并开始测量, 直到建立基线。为整个测量保持搅拌。
    4. 要测量 cs 聚集在没有陪护, 在120s 入测量, 轻轻地增加 cs (最后集中125毫微米) 和继续测量 1200 s。
    5. 要测量 CS 聚合在存在 Hsp33, 在六十年代入测量, 增加 Hsp33 (最后的集中600毫微米)。在另外的六十年代以后, 增加 CS (最后集中125毫微米)。继续测量1200秒。
      注: 添加衬底或陪护时, 避免气泡的插入。
  3. Kfits 的数据分析与噪声去除
    注: Kfits 在使用Kfits之前已被描述在 Rimon45
    1. 上载数据文件。
      注: 输入是以文本逗号分隔或制表符分隔格式的光散射测量产生的原始结果。
    2. 要删除任何噪音, 请选择 "分析参数"。使用自动最佳模型(推荐), 标记噪音始终高于信号标志。
    3. 使用绿色和红色可调整线手动删除明显的异常点;这一步将过滤在绿线和红线下面的噪音。
    4. 设置基线和拟合曲线。应用噪声阈值后, 下载已处理的数据。

3. 氢-氘交换质谱法

  1. 缓冲液和蛋白质样品的制备 (Hsp33 和 Hsp33-CS 络合物)
    1. 将蛋白质样品稀释到1毫克/毫升的最终浓度, 在25毫米的三盐酸缓冲液中 pH 7.5, 并将其转移到1.5 毫升的瓶子。
    2. 以 1:1. 5 为43摄氏度, 用 CS 孵化 Hsp33 制备蛋白质基质复合样品。
      1. 以步骤明智的方式添加 CS, 以避免任何快速聚合, 并确保 Hsp33 和热展开 CS 之间有一个卓有成效的绑定。
      2. 使用至少四个步骤 (每次添加一个季度的最终卷), 并孵化的样本, 每增加15分钟后, 允许 CS 保护由 Hsp33。
    3. 用30分钟离心法去除任何骨料, 在 1.6万 x g 处4摄氏度。
      注: 新的蛋白-基质配合物必须准备新鲜。衬底应逐渐增加;否则, 将发生聚合。温度、基底和基质浓度是特定于蛋白质的。
    4. 准备一个缓冲 H (25 毫米三 HCl, pH 值 7.5), 作为氘化控制, 和缓冲 D (25 毫米三 DCl, pH 7.09), 这是氘化缓冲区。还准备一个新的淬火缓冲器 (150 毫米 TCEP, 3 米 GdnCl, 0.1% 甲酸)。
      注: 在胃蛋白酶消化后, 为了获得其最大的序列覆盖率, 应对感兴趣的蛋白质进行最佳的淬火缓冲。
    5. 把所有的缓冲器和样品转移到瓶子里, 放在适当的盘子里。保持缓冲器 H 和 D 在25°c (托盘25°c);另一方面, 保持样品和淬火缓冲器在 0-2 °c (托盘0°c)。将样品放在150µL 玻璃插入物中 (见材料表), 然后将其转移到小瓶中。
  2. 仪器的准备
    注: 质谱仪附带两个附带的软件程序: 一个控制水泵, 另一个控制质谱仪 (参考材料表)。接下来的步骤将使用这两个软件程序来描述。
    1. 手动打开所有冷却设备。一旦所有冷却系统达到其目标温度, 手动切换的高性能液相色谱 (HPLC) 和加载泵。
      注: 在我们的例子中, 这些包括两个冷却浴缸和一个冷却箱 (其中包含陷阱和分析列)。一个冷却装置冷却托盘在0°c, 而另一个保持托盘在25°c;冷却箱的温度为 1-2 摄氏度。
    2. 打开控制水泵的软件, 以及控制质谱仪的软件;请确保 MS 处于待机状态
    3. 从 MS 源断开 HPLC 出口阀, 首先用 "三清洁剂" 溶液 (1% 甲酸, 33% 乙腈, 33% 异丙醇, 33% 甲醇) 清洗系统, 然后用缓冲 B (80% 乙腈, 0.1% 甲酸), 最后用缓冲器 a (0.1%甲酸, pH 值 2.25), 然后将胃蛋白酶柱插入系统中。如果更改缓冲区, 请确保在继续之前清除两个泵。
    4. 确保两种泵的流速为0.1 毫升/分, 压力稳定。
    5. 用稳定的流量和稳定的压力清洗系统后, 将高效液相色谱插座插入 ms 源并打开 ms。
  3. 质谱仪参数
    1. 将肽电离设置为电喷雾电离 (ESI) 在175°c, 鞘气体流动在 17, 辅助气体发光在 2, 并且喷雾电压在4.5 伏 (补充图 1)。
    2. 为非氘示例设置参数, 如下所示。
      1. 设置参数: 扫描范围 m/z 到 300-1500;决议到 7万;自动增益控制目标 (AGC) 到 106;和最大注射时间 (它) 在100毫秒。
        注: 5 最强的离子与充电状态在 +2 和 +6 之间 (他们的强度高于 1.3 x 104) 和一个动态窗口30在将被隔绝。
      2. 在具有归一化碰撞能量 (HCD) 的多碰撞细胞中, 用高能碰撞离解 () 进行离子碎片化, 等于28。通过串联 MS 检测片段离子的分辨率为 3.5万, AGC 目标为 105, 最大值为60毫秒, 隔离窗口为2.0 米/z。
    3. 对于氘样本, 仅使用 MS1的分辨率较高的14万和其他类似的参数。
  4. 运行实验
    1. 以下列方式设置托盘。
      1. 将缓冲 H 和 D 放入托盘25°c, 然后将样品和淬火缓冲器放在0°c 托盘中。
      2. 放置 x 空瓶, 对齐在两个托盘, 其中 x = 样本数 x 的时间点数。
        注: 在25°c 托盘, 空瓶作为反应瓶, 并在托盘0°c, 他们作为淬火瓶。
      3. 每个空瓶子都包含一个空的玻璃插入物;在实验之间丢弃和替换所说的插入。
        注意: 为了以最有效和最耗时的方式运行海达兴实验, 使用了一个允许同时运行示例的软件 (辅助图 2)。接下来的步骤将使用此软件进行描述。
    2. 打开软件。设置程序参数以执行以下操作。
      1. 根据所选的时间点 (1、3、18、40和100分钟) 在25摄氏度上孵化每个样品 (5 µL) 和45µL 的缓冲 D。用45µL 的缓冲 H 来孵化非氘样品。
      2. 孵化后立即将50µL 的氘蛋白混合成50µL 的冰冷淬火缓冲器, 并将其注入固定的胃蛋白酶柱 (长度为20毫米, 直径2.0 毫米)。
      3. 洗脱从胃蛋白酶柱到前柱的任何肽, 洗涤它与缓冲 a 为6分钟以50µL/分钟的速度. 在冷却箱中保持缓冲 a 0 摄氏度。
      4. 洗脱的肽从前柱到 C18 分析柱 (C18 柱, 130 Å, 1.7 µm, 2.1 毫米 x 50 毫米, 保持在0°c) 和分开他们通过应用一个线性梯度乙腈在100µL/分钟. 用乙腈100% 作为缓冲 B 运行乙腈梯度: 7 分钟在 2%, 7 分钟在 10-30%, 2.5 分钟在 30-90%, 1.5 分钟在 90%, 快速梯度为1分钟在 90-8%, 并且最后平衡列为4分钟在2%。
    3. 生成一个运行序列 (请参见辅助图 2): 在托盘中输入所有的时间点、示例名称和位置, 以及缓冲区名称和位置。
      注意: 软件允许将所有不同的运行时间对齐到一个程序中, 一次运行多个示例, 从而有效地减少运行时间。
  5. 数据分析
    注意: 在数据分析过程中, 我们使用了几个软件程序, 包括蛋白质组发现者和MaxQuant (自由软件), 用于对序列覆盖进行多肽识别和分析, 以及海达兴工作台,自由软件, 允许分析的氘纳入蛋白质, 并比较海达兴率之间的不同组的实验。接下来的步骤将使用这些软件程序进行描述。
    1. 通过软件运行非氘控制样本来分析样品的肽覆盖率 (补充图 3)。使用以下参数设置软件。
      1. 使用 Sequest HT 法与无酶 (不特异) 劈裂。寻找 4-144 氨基酸的肽, 其质量耐受性为前体的离子和片段的 7 ppm 和 0.5 Da。允许动态的蛋氨酸氧化。
      2. 创建一个蛋白质的数据库, 通过该软件可以确定肽覆盖率。以文本格式导出已识别的多肽。
    2. 使用海达兴工作台免费软件58分析氘结果。
      1. 通过插入蛋白质序列和肽覆盖率文件, 打开蛋白质编辑器并定义蛋白质。
      2. 接下来, 打开安装实验向导编辑器并输入所请求的所有输入。
        注意: 该程序需要样本数、时间点数、复制次数、缓冲区的 pH 值和温度。
      3. 最后, 输入有关质谱仪使用的参数, 然后程序生成检测到的多肽的列表。
        注意: 该软件检测到 "海达兴" 肽, 检查同位素簇, 并证明了氘化在样品中的清晰可视化。
  6. 数据演示
    1. 使用PyMol软件或任何其他可视化软件, 对结构进行恭敬氘化吸收的区域进行标记。
    2. 介绍氘吸收水平, 而不是 B 因子值。
      注: 基本教程可以在 https://pymolwiki.org/index.php/Practical_Pymol_for_Beginners 中找到。

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Representative Results

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所提出的两种方法使人们有可能遵循伴侣与其基质之间蛋白质相互作用的动力学活动和动力学。此外, 还原氧化协议允许准备一个完全还原和完全氧化的伴侣, 使更深入地了解氧化还原依赖紊乱的伴侣的活化机制。

首先, 我们使用光散射, 以检查与氧化还原相关的活动的陪护。光散射是在化学和热变性 CS 蛋白存在氧化 (活跃) 或减少 (非活动) 伴侣 (图 1)。化学变性导致在不利的缓冲条件下, 完全 denaturized 蛋白的复性引起的快速 CS 聚集。另一方面, 热诱导聚集的结果是相对缓慢展开的本机折叠基板。因此, 这些不同类型的聚合过程的动力学参数变化。此外, 不同的伴侣可以在不同的聚合模式下防止同一基底的聚集。

在两种形式的变性, 在摩尔比 1:4 (CS: Hsp33) 中添加氧化 Hsp33 完全废除了聚合, 降低 360 nm 读数为微不足道的价值。另一方面, 减少的 Hsp33 的存在对 CS 的稳定性没有影响, 并且给出了类似于缺少陪护的情况下检测到的聚合曲线 (图 1)。使用Kfits分析和清除背景噪声的结果, 如图 2所示。

海达兴-ms 技术的概述开始于与氘氧化物的陪护者的孵化, 其次是淬火和消化, 最后是 MS 分析和氢氘交换分析 (图 3)。在海达兴期间, 陪护人在托盘上孵化25摄氏度的 D2O 型缓冲。经过采样处理机器人系统控制的特定孵化时间后, 蛋白质溶液被转移到淬火溶液中, 酸性和变性, 在托盘上0°c。低 pH 值和低温减缓了氢交换, 保持了所有酰胺氢的氘化水平, 而变性化学则展现了蛋白质, 使其能够得到适当的消化。机器人系统将样品从托盘的0°c 转移到冷却箱, 在那里它流入在线胃蛋白酶消化塔。蛋白质消化后立即, 多肽进入 C18-trap 柱进行脱盐和去除快速交换 D2O (主要位于侧链原子), 然后用 C18 柱分离, 并用质量分析谱。样品流由两个阀系统控制, 其中 1) 确保胃蛋白酶和 C18 柱缓冲器的分离, 以防止有机溶剂对胃蛋白酶的钝化, 而 2) 使肽的短脱盐能够快速去除可交换的 D2O 分子和盐 (图 4)。

在计算分析后, 我们收到了每一个肽的氘化剖面, 显示了质量的变化作为孵化时间在 D2O 的功能。海达兴工作台软件允许对实验性复制进行比较, 以便对每个条件进行统计分析 (例如, 一个未绑定形式的主动陪护)。下一步是对不同样品之间的氘化曲线进行比较;例如, 一个绑定的陪护和未绑定的陪护。这些不同的陪护状态的比较可以揭示伴随基板结合的结构扰动。在绑定状态中显示较慢的交换的残留物可能与绑定伙伴进行交互。重要的是要注意到, 氢氘的降低汇率也可以表明一个特定区域在绑定时的复用性, 而没有与基体的实际直接交互 (图 5a)。海达兴工作台软件允许在 "摄动" 视图中检测结果, 氘化在整个蛋白质覆盖范围内显示标准误差。

在这种情况下, 海达兴-MS 被用来比较氘化模式之间的绑定和未绑定的陪护 Hsp33 到其基底 CS。结果揭示了一个客户端交互站点在 C 末端氧化还原开关领域的陪护 (图 5B)。虽然减少, Hsp33 有一个完全有序的结构, 其中的互动网站被埋葬。Hsp33 失去其结构, 当它感觉到氧化应激时就会起作用;因此, 我们比较了在绑定和未绑定条件下的还原和氧化 Hsp33 (图 5C)。结果表明, Hsp33 的减少, 无论是束缚还是未约束, 产生相似的肽曲线, 氧化 Hsp33 显示出显著的差异。氧化 Hsp33 样品显示有30% 氘化差异的绑定和未绑定的伴侣, 与特定区域的绑定蛋白表明构障碍。补充图 3显示了 N 端和 thermobile 链接器区域中附加肽的分析。

Figure 1
图 1.通过光散射进行聚合分析。在氧化 Hsp33 (红色)、减少 Hsp33 (蓝色) 或缺少陪护 (黑色) 的情况下, 对化学和热变性 CS 的聚合进行监测。360毫微米的光散射被监视了 1200 s. (A) 在化学聚合过程中, 如果没有陪护人员或在减少的 Hsp33 的存在下, CS 迅速聚集, 达到大约300s 到测量的高原。(B) 在热聚集期间, CS 逐渐聚集在没有陪护或减少 Hsp33 的情况下。在这两种化验中, 氧化 Hsp33 的存在完全废除了聚合, 这是由可忽略的 360 nm 读数所证明的。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2.使用 Kfits 去除噪声和数据分析.此面板显示了一个架构, 它概括了Kfits工具的数据分析和噪声消除, 如文本和 Rimon 等所述。45.请点击这里查看这个数字的更大版本.

Figure 3
图 3.海达兴-MS 方法论的工作流程.海达兴采用氘溶剂测定酰胺氢的化学环境, 沿蛋白质的主干均匀分布。在特定的时间段内, 以其原生形式在 deuterating 缓冲中孵化出感兴趣的蛋白质, 然后在低温下用酸性条件淬火氢氘交换。在酸性条件下, 如胃蛋白酶, 该蛋白由稳定的酶消化。之后, 肽在短时间内淡化分离, 以避免背部交换。最后, 用质谱仪对多肽进行分析, 通过分析软件对氘吸收进行评估, 例如由海达兴工作台自由软件58请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 4
图 4全自动海达兴系统的组件。(A) 海达兴的示意图代表了系统的所有部分: 加载泵和高效液相色谱泵控制缓冲流和系统内的采样转移。该机器人系统包含两个注射器和托盘, 用于准备氘样品, 并通过冷却箱 (LC 隔间) 的输入阀将蛋白质转移到在线消化柱上。然后, 将被消化的多肽定向到 C18 陷阱和分离柱上, 随后分离, 定向到质谱仪。(B) 此面板显示了在实验室中创建的实际海达兴系统设置。(C) 本小组展示了在线消化和多肽分离射流结构的示意图。消化分离系统有一个阀门, 每个阀可以在负载注入模式之间切换。第一阀 (左侧) 连接到注射口, 由加载泵控制, 使用酸性缓冲器将样品定向到胃蛋白酶柱中, 而不含任何能损害胃蛋白酶树脂的有机溶剂。样品被转移到正确的阀门入陷井专栏去除氘的残余和快速地交换的氘原子 (主要侧链)。在 1-2 分钟的简单洗涤后, 在陷阱柱, 阀门改变其模式加载和样品被冲入 C18 分离柱使用高效液相色谱泵, 增加浓度的乙腈。样品被转移到质谱仪进行质量分析。管子的长度被标记。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 5
图 5.海达兴-MS 结果.(A) 根据海达兴工作台软件产生的每个蛋白质片段, 结果显示为氘化百分比。每个图形显示一个蛋白质样品, 无论是氧化或减少, 并比较绑定和未绑定样品。这里显示的肽片段是在链接器区域发现的肽 YVVITITPSEG 和在 C 终点发现的肽 LQVMPAQNAQQDDFD。(B) 最后结果, 作为绑定和未绑定复合体之间的氘化差异, 显示了每种氨基酸的扰动。(C) Hsp33 伴侣的结构模型显示了整个连接器和 C 终端不稳定区域的氘化吸收差异。此面板是使用PyMol软件创建的。请单击此处查看此图的较大版本.

Supplementary Figure 1
补充图1。程序的接口操作质谱仪.该程序用于优化和定义用于海达兴实验的质谱仪方法参数。方法参数 (在左面板中) 可以保存在方法中, 如其他程序所识别。请单击此处查看此图的较大版本.

Supplementary Figure 2
补充图 2。该图显示了该软件的截图, 作为机器人采样处理系统和 MS LC 系统的集成平台。该软件通过海达兴实验的调度, 在氘缓冲区 (蓝色箭头) 中确定的孵化时间后, 优化运行时间。例如, 上面是对 Hsp33 变体的两个复制分析的17运行图, 在一个氘缓冲区中孵化了不同的时间, 范围从 0-100 分钟不等.请单击此处查看此图的较大版本.

Supplementary Figure 3
补充图 3。这个数字显示了从不同的 Hsp33 变种, 命名为 PGBD 和34的 Hsp33 多肽的氘吸收的分析。这些地块显示了在未绑定 (红色) 和绑定 (蓝色) 状态 Hsp33 中同一区域的氘吸收变化。从 N 端区域的肽显示海达兴率没有显著的差异, 而从链接器区域的片段显示, 海达兴率显著下降后, 与展开基底, 柠檬酸合酶的相互作用。请单击此处查看此图的较大版本.

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Discussion

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在本文中, 我们提供了分析氧化还原依赖性伴侣活动的方法, 以及对蛋白质结合后结构变化的描述。这些是补充的方法, 以确定潜在的伴侣-基质化合物和分析潜在的互动网站。

在这里, 我们应用这些协议来描述一个复杂的氧化还原调节伴侣 Hsp33 与一个良好研究的陪护基质 CS。我们提出了两种不同的蛋白质聚集分析, 它们的动力学和初始状态不同: 在化学变性过程中, 基体从变性形态开始其展开过程, 而在热聚合过程中,展开是从基板的原生形式开始的。

光散射测量是监测蛋白质聚集量相对数量的有用工具。当我们使用这种方法来确定陪护的活动状态, 它可以进一步用于研究一般的聚集条件, 比较不同蛋白质的稳定性, 或研究不稳定的突变, 在基质和陪护。

尽管它简单, 光散射方法可能产生嘈杂的数据, 有几个异常点。为了克服这个问题, 我们开发了上面描述的Kfits软件。Kfits软件使其能够简单快速地去除大量的噪声数据, 并计算出光散射曲线的动力学参数。Kfits不限于蛋白质聚集, 可应用于任何类型的动力学测量。

因此, 此处描述的方法简单、易于执行, 而且不费时。它们可以应用于不同的分子伴侣, 使他们的氧化还原依赖性在几天内被检查。此外, 还可以利用所描述的光散射和Kfits的协议来评估其他非氧化还原依赖性伴侣的抗聚集活性。重要的是要注意的是, 不同的参数, 如温度, 蛋白质浓度, 和测量时间必须调整到每个蛋白质系统独立。

为了获得有关陪护工作周期的结构信息, 我们提出了海达兴方法。与光散射过程相比, 它是一种更为复杂的技术, 需要特定的仪器, 包括质谱仪, 最好是用于样品制备的机器人系统。但是, 即使没有机器人系统, 也可以在现有设施中建立这种设置。一旦建立, 该程序是相对简单的, 并允许分析具有挑战性的蛋白质复合物, 可能是无法得到的高分辨率方法 (例如, X 射线和核磁共振)。

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

作者感谢 Meytal Radzinski 为她提供了有益的讨论和对文章的批判性阅读, 以及帕特里克格里芬及其实验室成员在建立海达兴分析平台时的无限帮助。作者感谢德国-以色列基金会 (2332-1149.9/2012)、两国科学基金会 (2015056)、玛丽-居里综合赠款 (618806)、以色列科学基金会 (1765/13 和 2629/16) 和人类前沿科学计划 (CDA00064/2014) 为他们的财政支持。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Chemicals, Reagents
Acetonitrile HPLC plus Sigma Aldrich 34998-2.5L solvent
Formic acid Optima LC/MS Fisher Chemicals A117-50 solvent supplement
Isopropyl alcohol, HPLC grade Fisher Chemicals P750717 solvent
Methanol Fisher Chemicals A456-212 solvent
Tris(hydroxymethyl)aminomethane Sigma Aldrich 252859 buffer
Trifluoroacetic acid Sigma Aldrich 76-05-1 solvent
Water for HPLC Sigma Aldrich 270733-2.5L-M solvent
ZnCl2, Zinc Chloride Merck B0755416 308 reagent
DTT goldbio 27565-41-9 reducing agent
PD mini trap G-25 columns GE healthcare GE healthcare 29-9180-07 desalting column
Potassium Phosphate United states Biochemical Corporation 20274 buffer
Hydrogen peroxide 30% Merck K46809910526 oxidizing agent
citrate synthase sigma aldrich C3260 substrate
HEPES acid free sigma aldrich 7365-45-9 buffer
Gndcl sigma aldrich G3272-500G denaturant
Deuterium Chloride Solution sigma aldrich 543047-10G buffer
Deuterium Oxide 99% sigma aldrich 151882-100G solvent
TCEP bioworld 42000058-2 reducing agent
150uL Micro-Insert with Mandrel Interior & Polymer Feet, 29*5mm La-Pha-Pack -Thermo Fischer Scientific
1.5mL Clear Short Thread Vial 9mm Thread, 11.6*32mm La-Pha-Pack -Thermo Fischer Scientific
quartz cuvette Hellma 101-QS
Instruments
Jasco FP-8500 Fluorospectrometer Jasco
Thermomixer Comfort Eppendorf 13058/0
Heraeus Megafuge 16R, bench topCentrifuge Thermo Scientific
pH meter , PB-11 sartorius Sartorius 13119/0
AffiPro Immobilized Pepsin column (20mm length, 2.0mm diameter). AffiPro
Waters Pre-column (ACQUITY UPLC BEH C18 VanGuard 130 Å, 1.7um, 2.1mmx5mm) Waters
C18 analytical column (ACQUITY UPLC Peptide BEH c18 Column, 130 Å, 1.7um, 2.1mmx50mm)
Vinyl Anaerobic chamber with Airlock door COY
Q-exactive-orbitrap mass spectrometer Thermo-Fischer Scientific
PAL system LHX - robotic system for handling HDX samples PAL system https://www.palsystem.com/index.php?id=840
Dionex Ultimate 3000, XRS pump Thermo Scientific
Dionex AXP-MS auxiliary pump Thermo Scientific
Software, Software Tools, Database search
Kfits: Fit aggregation Data http://kfits.reichmannlab.com/fitter/
Thermo Scientific Xcalibur software https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/OPTON-30487
Q Exactive MS Series Tune Interface (Tune) https://tools.thermofisher.com/content/sfs/brochures/WS-MS-Q-Exactive-Calibration-Maintenance-iQuan2016-EN.pdf
Chronos software (Axel Semrau) http://www.axel-semrau.de/en/Software/Software+Solutions/Chronos-p-966.html
Proteome Discoverer V1.4 software https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/OPTON-30795
HDX workbench software http://hdx.florida.scripps.edu/hdx_workbench/Home.html

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References

  1. Wong, H. S., Dighe, P. A., Mezera, V., Monternier, P. A., Brand, M. D. Production of superoxide and hydrogen peroxide from specific mitochondrial sites under different bioenergetic conditions. Journal of Biological Chemistry. 292, (41), 16804-16809 (2017).
  2. Murphy, M. P. How mitochondria produce reactive oxygen species. Biochemical Journal. 417, (1), 1-13 (2009).
  3. Walker, C. L., Pomatto, L. C. D., Tripathi, D. N., Davies, K. J. A. Redox regulation of homeostasis and proteostasis in peroxisomes. Physiological Reviews. 98, (1), 89-115 (2018).
  4. Hohn, A., Konig, J., Jung, T. Metabolic syndrome, redox state, and the proteasomal system. Antioxidants & Redox Signaling. 25, (16), 902-917 (2016).
  5. Holmstrom, K. M., Finkel, T. Cellular mechanisms and physiological consequences of redox-dependent signalling. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15, (6), 411-421 (2014).
  6. Halliwell, B., Gutteridge, J. M. C. Free radicals in biology and medicine. Oxford University Press. Oxford, UK. (2007).
  7. He, L., et al. Antioxidants maintain cellular redox homeostasis by elimination of reactive oxygen species. Cellular Physiology and Biochemistry: International Journal of Experimental Cellular Physiology, Biochemistry, and Pharmacology. 44, (2), 532-553 (2017).
  8. Bae, Y. S., Oh, H., Rhee, S. G., Yoo, Y. D. Regulation of reactive oxygen species generation in cell signaling. Molecules and Cells. 32, (6), 491-509 (2011).
  9. Giles, G. I. The redox regulation of thiol dependent signaling pathways in cancer. Current Pharmaceutical Design. 12, (34), 4427-4443 (2006).
  10. Qiao, J., et al. Regulation of platelet activation and thrombus formation by reactive oxygen species. Redox Biology. 14, 126-130 (2018).
  11. Milkovic, L., Siems, W., Siems, R., Zarkovic, N. Oxidative stress and antioxidants in carcinogenesis and integrative therapy of cancer. Current Pharmaceutical Design. 20, (42), 6529-6542 (2014).
  12. Duecker, R., et al. Oxidative stress-driven pulmonary inflammation and fibrosis in a mouse model of human ataxia-telangiectasia. Redox Biology. 14, 645-655 (2018).
  13. Winterbourn, C. C., Kettle, A. J. Redox reactions and microbial killing in the neutrophil phagosome. Antioxidants & Redox Signaling. 18, (6), 642-660 (2013).
  14. Jones, D. P. Redox theory of aging. Redox Biology. 5, 71-79 (2015).
  15. Labunskyy, V. M., Gladyshev, V. N. Role of reactive oxygen species-mediated signaling in aging. Antioxidants & Redox Signaling. 19, (12), 1362-1372 (2013).
  16. Kurian, P., Obisesan, T. O., Craddock, T. J. A. Oxidative species-induced excitonic transport in tubulin aromatic networks: potential implications for neurodegenerative disease. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 175, 109-124 (2017).
  17. Marinelli, P., et al. A single cysteine post-translational oxidation suffices to compromise globular proteins kinetic stability and promote amyloid formation. Redox Biology. 14, 566-575 (2018).
  18. Bozzo, F., Mirra, A., Carrì, M. T. Oxidative stress and mitochondrial damage in the pathogenesis of ALS: new perspectives. Neuroscience Letters. 636, 3-8 (2017).
  19. Lo Conte, M., Carroll, K. S. The redox biochemistry of protein sulfenylation and sulfinylation. Journal of Biological Chemistry. 288, (37), 26480-26488 (2013).
  20. Reichmann, D., Jakob, U. The roles of conditional disorder in redox proteins. Current Opinion in Structural Biology. 23, (3), 436-442 (2013).
  21. Suss, O., Reichmann, D. Protein plasticity underlines activation and function of ATP-independent chaperones. Frontiers in Molecular Biosciences. 2, 43 (2015).
  22. Voth, W., Jakob, U. Stress-activated chaperones: a first line of defense. Trends in Biochemical Sciences. 42, (11), 899-913 (2017).
  23. Segal, N., Shapira, M. HSP33 in eukaryotes - an evolutionary tale of a chaperone adapted to photosynthetic organisms. The Plant Journal. 82, (5), 850-860 (2015).
  24. Dahl, J. U., Gray, M. J., Jakob, U. Protein quality control under oxidative stress conditions. Journal of Molecular Biology. 427, (7), 1549-1563 (2015).
  25. Winter, J., Linke, K., Jatzek, A., Jakob, U. Severe oxidative stress causes inactivation of DnaK and activation of the redox-regulated chaperone Hsp33. Molecular Cell. 17, (3), 381-392 (2005).
  26. Wang, J., Sevier, C. S. Formation and reversibility of BiP protein cysteine oxidation facilitate cell survival during and post oxidative stress. Journal of Biological Chemistry. 291, (14), 7541-7557 (2016).
  27. Zhang, H., et al. Glutathionylation of the bacterial Hsp70 chaperone DnaK provides a link between oxidative stress and the heat shock response. Journal of Biological Chemistry. 291, (13), 6967-6981 (2016).
  28. Jakob, U., Muse, W., Eser, M., Bardwell, J. C. Chaperone activity with a redox switch. Cell. 96, (3), 341-352 (1999).
  29. Muller, A., et al. Activation of RidA chaperone function by N-chlorination. Nature Communications. 5, 5804 (2014).
  30. Voth, W., et al. The protein targeting factor Get3 functions as ATP-independent chaperone under oxidative stress conditions. Molecular Cell. 56, (1), 116-127 (2014).
  31. Moon, J. C., et al. Oxidative stress-dependent structural and functional switching of a human 2-Cys peroxiredoxin isotype II that enhances HeLa cell resistance to H2O2-induced cell death. Journal of Biological Chemistry. 280, (31), 28775-28784 (2005).
  32. Wright, M. A., et al. Biophysical approaches for the study of interactions between molecular chaperones and protein aggregates. Chemical Communications. 51, (51), 14425-14434 (2015).
  33. Haslbeck, M., Vierling, E. A first line of stress defense: small heat shock proteins and their function in protein homeostasis. Journal of Molecular BIology. 427, (7), 1537-1548 (2015).
  34. Rimon, O., et al. A role of metastable regions and their connectivity in the inactivation of a redox-regulated chaperone and its inter-chaperone crosstalk. Antioxidants & Redox Signaling. 27, (15), 1252-1267 (2017).
  35. Daturpalli, S., Kniess, R. A., Lee, C. T., Mayer, M. P. Large rotation of the N-terminal domain of Hsp90 is important for interaction with some but not all client proteins. Journal of Molecular Biology. 429, (9), 1406-1423 (2017).
  36. Rist, W., Graf, C., Bukau, B., Mayer, M. P. Amide hydrogen exchange reveals conformational changes in hsp70 chaperones important for allosteric regulation. Journal of Biological Chemistry. 281, (24), 16493-16501 (2006).
  37. Koldewey, P., Horowitz, S., Bardwell, J. C. A. Chaperone-client interactions: non-specificity engenders multifunctionality. Journal of Biological Chemistry. 292, (29), 12010-12017 (2017).
  38. Reichmann, D., et al. Order out of disorder: working cycle of an intrinsically unfolded chaperone. Cell. 148, (5), 947-957 (2012).
  39. Winter, J., Ilbert, M., Graf, P. C., Ozcelik, D., Jakob, U. Bleach activates a redox-regulated chaperone by oxidative protein unfolding. Cell. 135, (4), 691-701 (2008).
  40. Jakob, U., Eser, M., Bardwell, J. C. Redox switch of Hsp33 has a novel zinc-binding motif. Journal of Biological Chemistry. 275, (49), 38302-38310 (2000).
  41. Ilbert, M., et al. The redox-switch domain of Hsp33 functions as dual stress sensor. Nature Structural & Molecular Biology. 14, (6), 556-563 (2007).
  42. Groitl, B., et al. Protein unfolding as a switch from self-recognition to high-affinity client binding. Nature Communications. 7, 10357 (2016).
  43. Cremers, C. M., Reichmann, D., Hausmann, J., Ilbert, M., Jakob, U. Unfolding of metastable linker region is at the core of Hsp33 activation as a redox-regulated chaperone. Journal of Biological Chemistry. 285, (15), 11243-11251 (2010).
  44. Kumar, A., Mishra, S., Khan, E. Emerging methods for structural analysis of protein aggregation. Protein & Peptide Letters. 24, (4), 331-339 (2017).
  45. Rimon, O., Reichmann, D. Kfits: a software framework for fitting and cleaning outliers in kinetic measurements. Bioinformatics. 34, (1), 129-130 (2018).
  46. Percy, A. J., Rey, M., Burns, K. M., Schriemer, D. C. Probing protein interactions with hydrogen/deuterium exchange and mass spectrometry - a review. Analytica Chimica Acta. 721, 7-21 (2012).
  47. Sinz, A. Divide and conquer: cleavable cross-linkers to study protein conformation and protein-protein interactions. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 409, (1), 33-44 (2017).
  48. Sinz, A., Arlt, C., Chorev, D., Sharon, M. Chemical cross-linking and native mass spectrometry: a fruitful combination for structural biology. Protein Science. 24, (8), 1193-1209 (2015).
  49. Schmidt, C., Beilsten-Edmands, V., Robinson, C. V. Insights into eukaryotic translation initiation from mass spectrometry of macromolecular protein assemblies. Journal of Molecular Biology. 428, 2 Pt A 344-356 (2016).
  50. Marciano, D. P., Dharmarajan, V., Griffin, P. R. HDX-MS guided drug discovery: small molecules and biopharmaceuticals. Current Opinion in Structural Biology. 28, 105-111 (2014).
  51. Mistarz, U. H., Brown, J. M., Haselmann, K. F., Rand, K. D. Probing the binding interfaces of protein complexes using gas-phase H/D exchange mass spectrometry. Structure. 24, (2), 310-318 (2016).
  52. Harrison, R. A., Engen, J. R. Conformational insight into multi-protein signaling assemblies by hydrogen-deuterium exchange mass spectrometry. Current Opinion in Structural Biology. 41, 187-193 (2016).
  53. Brown, K. A., Wilson, D. J. Bottom-up hydrogen deuterium exchange mass spectrometry: data analysis and interpretation. Analyst. 142, (16), 2874-2886 (2017).
  54. Vadas, O., Jenkins, M. L., Dornan, G. L., Burke, J. E. Using hydrogen-deuterium exchange mass spectrometry to examine protein-membrane interactions. Methods in Enzymology. 583, 143-172 (2017).
  55. Zanphorlin, L. M., et al. Heat shock protein 90 kDa (Hsp90) has a second functional interaction site with the mitochondrial import receptor Tom70. Journal of Biological Chemistry. 291, (36), 18620-18631 (2016).
  56. Hvidt, A., Nielsen, S. O. Hydrogen exchange in proteins. Advances in Protein Chemistry. 21, 287-386 (1966).
  57. Roberts, V. A., Pique, M. E., Hsu, S., Li, S. Combining H/D exchange mass spectrometry and computational docking to derive the structure of protein-protein complexes. Biochemistry. 56, (48), 6329-6342 (2017).
  58. Pascal, B. D., et al. HDX Workbench: software for the analysis of H/D exchange MS data. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 23, (9), 1512-1521 (2012).
用氢-氘交换质谱法定义 Hsp33's 氧化还原调节陪护活动和 Hsp33 映射构象变化
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Fassler, R., Edinger, N., Rimon, O., Reichmann, D. Defining Hsp33's Redox-regulated Chaperone Activity and Mapping Conformational Changes on Hsp33 Using Hydrogen-deuterium Exchange Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (136), e57806, doi:10.3791/57806 (2018).More

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