Summary
이 종이에 곤충 mouthparts의 palps sensilla basiconica에서 단일 sensillum 기록에 대 한 상세 하 고 매우 효과적인 프로토콜을 설명합니다.
Abstract
메뚜기 mouthparts의 palps 기존의 미각 기관 (이전 라는 터미널 sensilla sensilla chaetica 통해 비 휘발성 화학 신호의 탐지를 위해 특히 메뚜기의 식품 선택에 중요 한 역할을 재생 하는 것으로 간주 됩니다. 또는 볏된 sensilla)입니다. 이제 증거는 후 각 기능을가지고 하는 이러한 palps 증가입니다. Odorant 수용 체 (LmigOR2)와 odorant 의무적인 단백질 (LmigOBP1)는 되었습니다 지역화 신경 및 액세서리 셀에 각각,는 palps sensilla basiconica에서. 단일 sensillum (SSR) 녹음 사용 됩니다 odorant 수용 체 신경의 응답을 기록 심사 특정 odorant 수용 체에 활성 ligands를 위한 효과적인 방법입니다. SSR 벨 sensilla에 odorant 수용 체의 기능 연구에 사용 됩니다. palps의 돔에 있는 sensilla basiconica의 구조는 안테나에 그들의 구조에서 약간 다릅니다. 따라서, odorants에 의해 elicited는 SSR을 수행할 때 몇 가지 구체적인 조언을 최적의 결과 얻기 위해 유용할 수 있습니다. 이 문서에는 SSR 곤충 벨 sensilla basiconica에서에 대 한 상세 하 고 매우 효과적인 프로토콜 도입 되었습니다.
Introduction
동물 외 인 화학 신호를 감지 하는 chemosensory 기관의 범위를 진화 했다. 곤충, 가장 중요 한 chemosensory 기관에서는 안테나와는 palps 있습니다. 이러한 기관에 chemosensory sensilla 라는 chemosensory 머리카락의 여러 종류 머리카락 내 chemosensory 뉴런 (CSNs) 의해 innervated 있습니다. CSNs chemosensory sensilla에 특정 화학 신호는 중앙 신경 시스템1,2,3 이후에 전송 되는 전기 잠재력에 화학 자극에서 신호 변환 통해 인식 .
CSNs 익스프레스 다양 한 chemosensory 수용 체 [예를 들어, odorant 수용 체 (ORs)], ionotropic 수용 체 (국세청), 그리고 chemosensation 의 다른 종류와 관련 된 외 인 화학 신호를 인코딩하는 그들의 세포 막에 미각 수용 체 (GRs) 4,,56. CSNs의 특성 곤충 chemoreception의 세포 및 분자 메커니즘의 해명에 열쇠 이다. 이제 단일 sensillum 기록 (SSR)은 널리 사용 되는 기술 등 많은 곤충의 더듬이 sensilla에 곤충 CSNs 특성 파리7, 나 방8,9, aphids10, 메뚜기11, 딱정벌레 그리고 개미12. 그러나, 몇 가지 연구에 적용 된는 SSR 곤충 palps13,14,15,,1617, 때문에 그들의 sensilla의 특정 구조를 electrophysiological 녹음 어려운18.
메뚜기 메뚜기 (메뚜기목)의 심각한 작물 피해 및 경제적 손실19에 종종 발생할. palps 메뚜기20,,2122,,2324의 식품 선택에 중요 한 역할을 추정 된다. 두 가지 유형의 chemosensory sensilla 스캐닝 전자 현미경 (SEM)에 의해 조사 됩니다. 일반적으로, 350 sensilla chaetica와 7-8 sensilla basiconica 메뚜기 palps18의 각 돔에서 관찰 된다. Sensilla chaetica는 비 휘발성 화학 신호를 감지 하는 미각 sensilla sensilla basiconica 휘발성 화학 신호를 감지 하는 후 각 기능을가지고 반면.
메뚜기 palps sensilla basiconica (ca. 12 µ m)의 머리 소켓의 직경 sensilla chaetica의 그들 보다는 훨씬 더는 (ca. 8 µ m)18,25. 에 palps sensilla basiconica의 cuticular 벽은 더듬이 sensilla18의 그것 보다 훨씬 두꺼운. 또한,는 벨의 돔 매우 유연한 표 피 내에서 액체 내용이 있다. 이러한 특성 의미는 microelectrode와 좋은 electrophysiological 신호 취득 침투 더듬이 sensilla 보다 더 어려운. 이 논문에서는, 메뚜기 벨 sensilla basiconica에 대 한 상세 하 고 매우 효과적인 SSR 프로토콜 비디오와 함께 제공 됩니다.
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Protocol
1입니다. 악기와 곤충의 준비
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텅스텐 전극 및 자극 솔루션 준비
- 새로운 텅스텐 와이어 (0.125 m m의 직경, 길이 75 m m)는 micromanipulator로 해결 하 고 stereomicroscope (40 배 확대)에서 약 1 분 동안 전원 공급 장치에서 제공 하는 V 10에서 주사기에 10% (w/v) 나트륨 질산염 (나노2) 솔루션에 선명 하 게.
- 10% 나노2 솔루션, < 1 분 (그림 1A)에서 5 V에서 약 4 mm로 반복적으로 날카롭게 텅스텐 와이어를 찍어.
- 때까지 충분히 잘 메뚜기 벨 후 각 sensillum (그림 1B)의 표 피를 관통 하는 stereomicroscope에서 자주 날카롭게 텅스텐 팁의 직경을 검사 합니다.
- 자극 솔루션을 준비 합니다. 미네랄 오일의 화학 자극 물질의 각각 희석. 1-nonanol 및 nonanoic 산 10% 희석에 희석. E-2-hexenal, 10-2, 10-3, 10-4, 10-5에서 hexanal 희석.
- 파스퇴르는 자극을 운반 하는 튜브 준비: 파스퇴르 튜브 필터 종이 스트립 (2 cm의 길이, 0.5 c m의 폭)를 삽입, 필터 종이 스트립에 희석된 자극 솔루션 (각 10 µ l)를 추가 하 고 다음 파스퇴르 피 펫 팁 (1 ml) 튜브를 연결.
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곤충을 준비
- 60%의 상대 습도, 28-30 ° C의 온도 및 18:6 h (빛: 다크) photoperiod 붐비는 조건 하에서 신선한 밀 묘와 후면 메뚜기 (Locusta migratoria). 선택 1을 3-하루-오래 된 5번째 메뚜기 님프 탈피 하 고 기록할 때 어떤 방해를 피하기 위해 좋은 위 안테나를 제거.
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메뚜기 상 악 벨 홀더를 준비
- 유리 슬라이드 (25 x 75 mm)를 사용 하 여 상 악 벨 홀더 (MPH)의 기반으로. 양면 접착 테이프를 가진 유리 슬라이드의 모서리에 플라스틱 조각 (높이, 길이 35 m m, 폭에서 10 m m 1 m m)를 부착 하 고 마지막으로 양면 접착 테이프를 가진 플라스틱 조각 위에 커버 글라스 (18 x 18 mm)을 수정. 비-슬립 층으로 커버 유리에 빨간 고무 테이프의 작은 조각을 놓습니다. 커버 유리와 플라스틱 조각 메뚜기 벨에 대 한 플랫폼을 구성합니다. 플랫폼의 높이 약 1.5 m m 이다.
- 텅스텐 와이어 (0.125 m m의 직경, 36 m m의 길이) 안쪽에 평행 하 게 1.5 m m의 거리에 설치 플랫폼의 가장자리. 양면 접착 테이프를 가진 플랫폼에 철사의 2 개의 끝을 수정 합니다.
2입니다. 메뚜기 상 악 Palps의 준비
- 원심 분리기 튜브 (1.5 ml) 세로로 반으로 잘라내어 바닥을 잘라. 준비 된 관으로 메뚜기를 놓습니다. 복 부 지역 및 노출 메뚜기의 머리를 두고. 양면 접착 테이프 (그림 2A)와 유리 슬라이드에 어셈블리를 수정 합니다.
- 플랫폼에 오른쪽 상 악 벨을 당겨.
- 벨의 4 세그먼트에 텅스텐 와이어를 넣어. 텅스텐 와이어, 상 악 벨 (그림 2A 와 2B)에서 약 2 mm의 양쪽에 접착제 퍼 티를 배치 합니다.
3. 단일 Sensillum 녹음
- 저 배율 (100 배)에서 현미경으로 메뚜기 상 악 벨 준비를 놓습니다. 벨 기록 전극 (그림 3A)에 수직 될 때까지 준비의 위치를 조정 합니다.
- micromanipulator를 사용 하 여 메뚜기 눈에 참조 전극 (텅스텐 전극)를 삽입 합니다. (그림 3B 와 3c) micromanipulator와 상 악 벨 가까이 기록 전극 (텅스텐 전극)를 이동 합니다.
- 상 악 벨 (그림 3B)에서 약 1 cm 냄새 배달 장치를 조정 합니다.
- 레코딩 소프트웨어를 자동 스파이크 32를 엽니다. 녹음 매개 변수를 다음과 같이 설정: 녹음 규모 500 µ V; 300 Hz, 200 Hz;에 낮은 컷오프에 필터의 높은 컷오프 그리고 10에 pretrigger s.
- 보편적인 ac/DC 증폭기 x 10를 기록 전극을 연결 합니다.
- (500 X) 높은 확대에 현미경을 전환 합니다. 상 악 벨에 basiconic sensillum의 기록 전극 삽입 하 고 섬세 하 게 기록 전극 좋은 자연 스파이크 (그림 3D)를 조정 합니다.
- 20 ml에 지속적인 공기 흐름을 제공 하는 자극 컨트롤러/s. 10 1 미 기록 신호 자극 시간 설정 시작 10 s s 자극 펄스의 발병 하기 전에.
- 10 x 보편적인 ac/DC 증폭기를 사용 하 여 신호를 증폭 하는. IDAC 4에 신호를 피드. 자동 스파이크 32 소프트웨어와 신호를 분석 합니다. AC 신호는 대역 통과 필터링 200 ~ 300 Hz. 사이 사용 자동 스파이크 32 소음에서 피크--물마루 진폭을 구별할 수 있다. 자연 주파수에 활동 전위 주파수 (초당 스파이크)에 증가 하는 만큼 신경의 응답을 계산 합니다. GraphPad Prism 7를 사용 하 여 통계 분석을 수행 합니다.
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Representative Results
메뚜기 상 악 벨에 두 sensilla 하위 (pb1 및 pb2) 화학 odorants (10 %1 nonanol 및 10 %nonanoic 산)에 다른 응답 역학에 따라 식별 됩니다. Pb1에 있는 신경 세포 생산 1-nonanol 보다 pb2에 신경 동안 nonanoic 산에 상당히 적은 1-nonanol nonanoic 산 (그림 4)와 비교 하 여 활성화에 훨씬 더 많은 스파이크. Hexanal 및 E-2-Hexenal 응답 (POR)26여 메뚜기 벨을 보여주고 수 있습니다. Hexanal는 풍부한 호스트 녹색 식물 잎 휘발성 음식 소스26추가 확인에 기여할 수 있는 이다. Pb1 뉴런에 마지막 elicited 스파이크 pb2 그들은 E-2-hexenal (그림 4)에 의해 자극 하는 때의 그 이상. Pb1에 pb2 신경 마찬가지로 강력한 응답 hexanal (그림 4)을 전시 한다. 비교 하기 전에 기간 5 s와 5 사이 모든 스파이크의 의미 변화 s 후 자극 1 nonanol에 대 한 응답 nonanoic 산 pb1, 하지만 반대로 pb2 보다 상당히 높은 임을 나타냅니다 (그림 5). Sensilla의 이러한 두 개의 하위에서 뉴런 E-2-hexenal 고 hexanal, 복용량에 독립적으로 반응 하 고 이러한 두 알데하이드에 그들의 응답 패턴 (그림 6A , 6B) 다.
그림 1입니다. 전극 준비. (A)이이 패널의 전극이 기구는 일반 볼 보여 줍니다. 주사기 10% 나노2 (왼쪽)를 포함 하는 전극 (오른쪽)을 날카롭게 하는 데 사용 됩니다. (B)이이 패널 (적당 한 a:, b: 부적 한) 전극 팁의 가까운 보기를 보여줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2입니다. 메뚜기 상 악 벨 홀더 (MPH). (A)는 MPH와는 메뚜기 현미경 아래 위치 하기 전에 유리 슬라이드에 거치 된다. (B)이이 패널 플랫폼에 텅스텐 와이어로 고정 메뚜기 상 악 벨의 클로즈업을 보여줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3입니다. 단일 sensillum 녹음. (A)이이 패널 전기 생리학 설치의 보기를 표시 합니다. (B)이이 패널의 현미경에 장착 된 메뚜기 준비 가까운 보기를 보여줍니다. (C)이이 이미지는 100 배 확대에서 메뚜기 상 악 벨을 보여준다. (D)이이 이미지는 500 배 확대에는 벨을 보여 줍니다. 화살표는 basiconic sensillum를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 4입니다. 메뚜기 상 악 벨의 단일 sensillum 녹음의 응답 흔적. 이 패널에 pb1 의미 벨 sensilla basiconica;의 하위 1 pb2 벨 sensilla basiconica의 하위 2 의미합니다. 흔적 위에 막대 자극 기간을 나타냅니다 (1 s). 이 음반에 대 한 모든 냄새는 1%로 희석 하는 E-2-hexenal 및 hexanal, 제외한 10% 희석에서 사용 됩니다. 이 수치는 장 외 에서 수정 26. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 5입니다. Pb1 pb2 nonanoic 산 및 1 nonanol에 의해 자극된에 신경에 있는 스파이크의 평균 숫자 비교. 스파이크의 평균 숫자는 자극 전후 기간 5 s에 계산 됩니다. Pb1, 1 nonanol에 대응 하는 신경에 있는 스파이크의 평균 숫자는 nonanoic 산에 반응 하는 신경에 있는 스파이크의 그들 보다는 상당히 높은 증가 (n = 11 palps; ANOVA 테스트- 특별 게시물 t; p < 0.0001), pb2 달리 (n = 10 palps; ANOVA 테스트- 특별 게시물 t; p = 0.0110). 오차 막대를 나타내는 SEM. 이 수치는 장 외 에서 수정 26. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 6입니다. Pb1 pb2 응답 복용량 독립적으로 E-2-hexenal 고 hexanal에 뉴런의 패턴. (A)이이 패널에서는 pb1 뉴런의 패턴 (± SEM; n = 12 palps). (B)이이 패널에서는 pb2 뉴런의 패턴 (± SEM; n = 10 palps). 이 수치는 장 외 에서 수정 26. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
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Discussion
곤충 음식 냄새를 감지 하는 palps에 의존 하 고 그들의 palps speciation13,27에 중요 한 역할을 것으로 추정 된다. palps 간단한 후 각 장기 고는 neuromolecular의 탐험에 대 한 매력적인 모델 네트워크 기본 chemosensation28로 증가 관심을 받고 있다.
Labellar 곤충 및 벨 SSRs 성공적으로 수행 되었습니다 초파리 melanogaster, Anopheles gambiae, 및 Culex quinquefasciatus13,,1415,16 , 17 하지만 거의 비디오 프레 젠 테이 션16,29의 형태로 보고 되었습니다. 더듬이 SSRs에 비디오 데이터 침대 버그 (Cimex lectularius)16, , Schistocerca 아메리, 배꼽 orangeworm 나 방 (Amyeloistransitella), 초파리에 사용할 수 있는 반면, 30 , 31 , 32 , 33.
메뚜기 벨 sensilla basiconica 메뚜기 더듬이 sensilla와 다른 많은 곤충 sensilla 다른 특정 구조를가지고. 여기 설명 하는 방법을 사용 하 여, 활동 전위 생성 메뚜기 벨 sensilla basiconica 하위 pb1 고 pb2 기록 될 수 있습니다 (그림 4 및 그림 5) 차별.
중요 한 단계는 기록 전극의 침투 이다. 기록 전극은 sensillum의 베이스에 삽입 하 고 고급 좋은 신호 취득 될 때까지 한다. 또한,는 벨의 돔 기록 전극은 sensillum의 베이스에 삽입 될 때 붕괴에서 방지 하기 위해 중요 하다. 이를 위해, 우리는 특별 한 메뚜기 상 악 벨 홀더 (MPH)를 포함 하 여 플랫폼을 설정 하 고는 벨의 4 세그먼트 압축 텅스텐 와이어를 사용. 이 절차의 많은 반복이 효과적 임을 보여 줍니다. 여러 odorants sensilla에 신경의 응답 패턴을 바탕으로, 우리, 처음으로, 확인 즉 pb1 및 pb2 sensilla 메뚜기 상 악 벨에 basiconica의 두 하위.
이 게시에 설명 된 기술의 한계는 큰 곤충 (예, 그리고 나 방, 딱정벌레, 메뚜기)를 기록 하는 데 사용 될 수 하지 작은 곤충 (예:파리, 모기), 그들의 자신의 플랫폼을가지고 기록 하 고 기술13,14,15,,1617. 이 방법은 기존의 방법에 무료입니다.
결론적으로, 곤충 벨 sensilla basiconica에서 SSR의 매우 효과적인 프로토콜 자세히 설명 되어 있습니다. 이 프로토콜은 진드기에 곤충 후각이의 분자 및 세포 메커니즘의 연구에 유용한 기술 연구를 제공할 수 있습니다. 가스 착 색 인쇄기와 연결 하는이 방법은 유리한 식량 자원의 추출 물에 자연 electrophysiologically-액티브 ligands를 식별 하기 위해 사용 될 수 있습니다.
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Disclosures
저자는 공개 없다.
Acknowledgments
이 작품은 국립 자연 과학 재단의 중국 (No.31472037)에서 교부 금에 의해 지원 됩니다. 상호 또는이 문서에서 상용 제품의 언급만을 목적으로 특정 정보를 제공 하 고 추천을 의미 하지는 않습니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Tungsten wire | ADVENT | W559504 | Used for making the electrode and fixing the palp |
| NaNO2 | Sigma-aldrich | 563218-25G | Used for sharpening the tungsten wire |
| AC Power Supply | Syntech | A2-70 | Providing the voltage in sharpening the tungsten wire |
| Stereoscope | Motic | SMZ-163 | Used for observing the sharpening of tungsten wire |
| Microscope | Olympus | W-51 | Used for observing the sensilla on locust maxillary palp |
| Intelligent Data Acquisition Controller | Syntech | IDAC-4 | Real-time on screen display of all signals before and during recording |
| Stimulus controller | Syntech | CS-55 | Used for controlling the stimulus application |
| Electronic micromanipulator | C.M.D.T | CFT-8301D | Used for minor movement of the recording electrode |
| Micromanipulator | Narishige | MN-151 | Used for minor movement of the reference electrode |
| Speaker | EDIFIER | R101T06 | Connected with IDAC-4 and providing sound for the signal |
| Magnetic base | PDOK | PD-101 | Used to hold the electrode, and stimulus delivery tube |
| Vibration Isolation Table | TianHe | HAP-100-1208 | Used for isolating the vibration from the equipment |
| Glass slide | CITOGLAS | ZBP-407 | Used for making the base for the MPH |
| Blu-tack | Bostik | Blu-tack-45g | Fixing the tungsten wire |
| Pasteur tube | YARE | WITEG | Placing the filter paper containing stimuli stimulus solutions |
References
- Carey, A. F., Carlson, J. R. Insect olfaction from model systems to disease control. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (32), 12987-12995 (2011).
- Leal, W. S. Odorant reception in insects: roles of receptors, binding proteins, and degrading enzymes. Annual Review of Entomology. 58, 373-391 (2013).
- Zhang, J., Walker, W. B., Wang, G. Pheromone reception in moths: from molecules to behaviors. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 130, 109-128 (2015).
- Vosshall, L. B., Amrein, H., Morozov, P. S., Rzhetsky, A., Axel, R. A spatial map of olfactory receptor expression in the Drosophila antenna. Cell. 96 (5), 725-736 (1999).
- Benton, R., Vannice, K. S., Gomez-Diaz, C., Vosshall, L. B. Variant ionotropic glutamate receptors as chemosensory receptors in Drosophila. Cell. 136 (1), 149-162 (2009).
- Vosshall, L. B., Stocker, R. F. Molecular architecture of smell and taste in Drosophila. Annual Review of Neuroscience. 30, 505-533 (2007).
- de Bruyne, M., Foster, K., Carlson, J. R. Odor coding in the Drosophila antenna. Neuron. 30, 537-552 (2001).
- Roelofs, W., et al. Sex pheromone production and perception in European corn borer moths is determined by both autosomal and sex-linked genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 84 (21), 7585-7589 (1987).
- Larsson, M. C., Leal, W. S., Hansson, B. S. Olfactory receptor neurons detecting plant odours and male volatiles in Anomala cuprea beetles (Coleoptera: Scarabaeidae). Journal of Insect Physiology. 47 (9), 1065-1076 (2001).
- Zhang, R., et al. Molecular basis of alarm pheromone detection in aphids. Current Biology. 27 (1), 55-61 (2017).
- Cui, X., Wu, C., Zhang, L. Electrophysiological response patterns of 16 olfactory neurons from the trichoid sensilla to odorant from fecal volatiles in the locust, Locusta migratoria manilensis. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 77 (2), 45-57 (2011).
- Sharma, K. R., et al. Cuticular hydrocarbon pheromones for social behavior and their coding in the ant antenna. Cell Reports. 12 (8), 1261-1271 (2015).
- de Bruyne, M., Clyne, P. J., Carlson, J. R. Odor coding in a model olfactory organ: the Drosophila maxillary palp. Journal of Neuroscience. 19 (11), 4520-4532 (1999).
- Syed, Z., Leal, W. S. Maxillary palps are broad spectrum odorant detectors in Culex quinquefasciatus. Chemical Senses. 32 (8), 727-738 (2007).
- Lu, T., et al. Odor coding in the maxillary palp of the malaria vector mosquito Anopheles gambiae. Current Biology. 17 (18), 1533-1544 (2007).
- Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single sensillum recordings in the insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. Journal of Visualized Experiments. 36, e1725 (2010).
- Grant, A. J., Wigton, B. E., Aghajanian, J. G., O'Connell, R. J. Electrophysiological responses of receptor neurons in mosquito maxillary palp sensilla to carbon dioxide. Journal of Comparative Physiology A. 177 (4), 389-396 (1995).
- Blaney, W. The ultrastructure of an olfactory sensillum on the maxillary palps of Locusta migratoria (L.). Cell and Tissue Research. 184 (3), 397-409 (1977).
- Hassanali, A., Njagi, P. G. N., Bashir, M. O. Chemical ecology of locusts and related acridids. Annual Review of Entomology. 50, 223-245 (2005).
- Chapman, R. F. Contact chemoreception in feeding by phytophagous insects. Annual Review of Entomology. 48, 455-484 (2003).
- Chapman, R. F., Sword, G. The importance of palpation in food selection by a polyphagous grasshopper (Orthoptera: Acrididae). Journal of Insect Behavior. 6, 79-91 (1993).
- Winstanley, C., Blaney, W. Chemosensory mechanisms of locusts in relation to feeding. Entomologia Experimentalis et Applicata. 24, 750-758 (1978).
- Blaney, W., Duckett, A. The significance of palpation by the maxillary palps of Locusta migratoria (L.): an electrophysiological and behavioural study. Journal of Experimental Biology. 63, 701-712 (1975).
- Blaney, W. Electrophysiological responses of the terminal sensilla on the maxillary palps of Locusta migratoria (L.) to some electrolytes and non-electrolytes. Journal of Experimental Biology. 60, 275-293 (1974).
- Jin, X., Zhang, S., Zhang, L. Expression of odorant-binding and chemosensory proteins and spatial map of chemosensilla on labial palps of Locusta migratoria (Orthoptera: Acrididae). Anthropod Structure & Development. 35 (1), 47-56 (2006).
- Zhang, L., Li, H., Zhang, L. Two olfactory pathways to detect aldehydes on locust mouthpart. International Journal of Biological Sciences. 13 (6), 759-771 (2017).
- Dweck, H. K. M., et al. Olfactory channels associated with the Drosophila maxillary palp mediate short- and long-range attraction. eLife. 5, e14925 (2016).
- Bohbot, J. D., Sparks, J. T., Dickens, J. C. The maxillary palp of Aedes aegypti, a model of multisensory Integration. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 48, 29-39 (2014).
- Delventhal, R., Kiely, A., Carlson, J. R. Electrophysiological recording from Drosophila labellar taste sensilla. Journal of Visualized Experiments. 84, e51355 (2014).
- Ng, R., Lin, H. H., Wang, J. W., Su, C. Y. Electrophysiological recording from Drosophila trichoid sensilla in response to odorants of low volatility. Journal of Visualized Experiments. 125, e56147 (2017).
- Syed, Z., Leal, W. S. Electrophysiological measurements from a moth olfactory system. Journal of Visualized Experiments. 49, e2489 (2011).
- Saha, D., Leong, K., Katta, N., Raman, B. Multi-unit recording methods to characterize neural activity in the locust (Schistocerca Americana) olfactory circuits. Journal of Visualized Experiments. 71, e50139 (2013).
- Liu, F., Liu, N. Using single sensillum recording to detect olfactory neuron responses of bed bugs to semiochemicals. Journal of Visualized Experiments. 107, e53337 (2016).
