Summary
وتصف هذه الورقة بروتوكول مفصل وفعالة للغاية لتسجيلات سينسيلوم واحد من باسيكونيكا سينسيلا على بالبس من الحشرات فمها.
Abstract
تعتبر بالبس فمها الجراد الأجهزة تطرب التقليدية، التي تلعب دوراً مهما في اختيار الأغذية الجراد، وبخاصة للكشف عن الإشارات الكيميائية غير متغير عن طريق تشايتيكا سينسيلا (المسمى سابقا سينسيلا المحطة الطرفية أو متوج سينسيلا). وهناك الآن تزايد الأدلة على أن هذه بالبس لها أيضا وظيفة حاسة الشم. مستقبلات الرائحة (LmigOR2) وملزم الرائحة بروتين (LmigOBP1) قد تم مترجمة في الخلايا العصبية والخلايا التبعي، على التوالي، في باسيكونيكا سينسيلا بالبس. واحد سينسيلوم تسجيل (SSR) يستخدم لتسجيل استجابات الخلايا العصبية مستقبلات الرائحة، وهو وسيلة فعالة لفحص يغاندس النشطة على مستقبلات الرائحة محددة. وتستخدم الاشتراكية السوفياتية في الدراسات الفنية من مستقبلات الرائحة في سينسيلا المالي. هيكل باسيكونيكا سينسيلا الموجود على قبة بالبس تختلف بعض الشيء عن هيكل تلك على الهوائيات. ولذلك، عند القيام إصلاح قطاع الأمن أودورانتس، بعض النصائح محددة قد تكون مفيدة للحصول على أفضل النتائج. في هذه الورقة، هو عرض بروتوكول مفصلة وفعالة للغاية إصلاح قطاع الأمن من الحشرات المالي سينسيلا باسيكونيكا.
Introduction
وقد تطورت الحيوانات مجموعة من أجهزة تشيموسينسوري أن معنى الرموز الكيميائية خارجية. في الحشرات، هي أهم الأجهزة تشيموسينسوري الهوائيات وبالبس. في هذه الأجهزة، يتم معصب عدة أنواع من الشعر تشيموسينسوري، سينسيلا تشيموسينسوري، ودعا بالخلايا العصبية تشيموسينسوري (المذكرات) داخل الشعر. مذكرات في سينسيلا تشيموسينسوري الاعتراف بالإشارات الكيميائية المحددة عن طريق توصيل الإشارة من المحفزات الكيميائية بالإمكانات الكهربائية التي يتم نقلها في وقت لاحق حتى أنظمة العصبي المركزي1،2،3 .
مذكرات التعبير عن مختلف تشيموسينسوري مستقبلات [مثلاً، مستقبلات الرائحة (أملاح الإماهة الفموية)]، إيونوتروبيك المستقبلات (IRs)، ومستقبلات تذوق (الموارد الوراثية) في هذه الأغشية، التي ترميز خارجية الإشارات الكيميائية المرتبطة بأنواع مختلفة من تشيموسينسيشن 45،،6. وصف مذكرات هو المفتاح للكشف عن الآليات الجزيئية والخلوية للحشرات تشيموريسيبشن. الآن تسجيل سينسيلوم واحد (SSR) تقنية تستخدم على نطاق واسع لوصف الحشرة مذكرات في سينسيلا باللوامس للعديد من الحشرات، بما في ذلك الذباب7، خنافس العث8،9،10من المن،11من الجراد، و 12من النمل. ومع ذلك، طبقت دراسات قليلة إصلاح قطاع الأمن للحشرات بالبس13،14،15،،من1617، نظراً لجعل هياكل خاصة بهم سينسيلا تسجيل الكهربية صعبة18.
أسراب الجراد (أورثوبتيرا) غالباً ما تسبب أضرار خطيرة المحاصيل والخسائر الاقتصادية19. ويعتقد palps تلعب دوراً هاما في اختيار الأغذية من الجراد20،،من2122،،من2324. بالمسح الإلكتروني المجهري (SEM) التحقيق في نوعين من سينسيلا تشيموسينسوري. عادة، يتم مراعاة كاتيكا سينسيلا 350 وباسيكونيكا سينسيلا 7-8 في كل قبة palps الجراد18. كاتيكا سينسيلا هي سينسيلا تطرب أن معنى الرموز الكيميائية غير متقلبة، في حين باسيكونيكا سينسيلا وظيفة حاسة الشم، والاستشعار من الإشارات الكيميائية المتطايرة.
في palps الجراد، أقطار مأخذ الشعر من باسيكونيكا سينسيلا (ca. 12 ميكرومتر)، أكبر بكثير من تلك التي كاتيكا سينسيلا (ca. 8 ميكرومتر)18،25. الجدار كوتيكولار من باسيكونيكا سينسيلا على بالبس أكثر سمكا كثيرا من أن سينسيلا باللوامس18. وبالإضافة إلى ذلك، قد قبة المالي محتويات السوائل داخل بشرة مرنة للغاية. وهذه الخصائص يعني أن اختراق مع ميكروليكترودي وامتلاك الإشارات الكهربية الجيدة أكثر صعوبة من أجل سينسيلا باللوامس. في هذه الورقة، يقدم بروتوكول الاشتراكية السوفياتية مفصلة وفعالة للغاية للجراد المالي سينسيلا باسيكونيكا مع فيديو.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1-إعداد الصكوك والحشرات
-
إعداد التنغستن الأقطاب الكهربائية والمحفزات الحلول
- إصلاح سلك تنغستن جديدة (قطر 0.125 مم وطول 75 مم) إلى ميكرومانيبولاتور وشحذ في محلول 10% (w/v) والنتريت (نانو2) صوديوم في حقنه في 10 الخامس المقدمة من إمدادات طاقة لحوالي 1 دقيقة تحت ستيريوميكروسكوبي (40 X التكبير).
- تراجع سلك التنغستن شحذ مرارا وتكرارا إلى 10% نانو2 الحل، حوالي 4 ملم في 5 الخامس في < 1 دقيقة (الشكل 1A).
- دراسة قطر تلميح التنغستن شحذ غالباً تحت ستيريوميكروسكوبي حتى أنه بخير ما فيه الكفاية لاختراق بشرة الجراد المالي سينسيلوم حاسة الشم (الشكل 1B).
- إعداد الحلول التحفيز. تمييع كل المواد الكيميائية التحفيز في الزيوت المعدنية. 1-نونانول مخفف وحمض نونانويك في تخفيف نسبة 10 في المائة. تمييع ه-2-هيكسينال وهيكسانال على 10-2و 10-3، 10-4و 10-5.
- إعداد باستور أنابيب تحمل المحفزات: إدراج شرائح ورق الترشيح (طول 2 سم وعرض 0.5 سم) في أنابيب باستور، إضافة الحلول التحفيز المخفف (كل 10 ميليلتر) إلى ورق الترشيح الشرائط، وقم بتوصيل أنابيب باستور مع نصائح ماصة (1 مل).
-
إعداد الحشرة
- الجراد من الخلف (ميجراتوريا لوكوستا) مع شتلات جديدة من القمح تحت ظروف مزدحمة في رطوبة النسبية 60% ودرجة حرارة من 28-30 درجة مئوية، وكبيرة من 18:6 ح (الضوء: الظلام). اختر من 1 إلى 3 يوم-عمرها 5th instar الحوريات الجراد وإزالة الهوائيات مع مقص جيد لتجنب أي تدخل عند التسجيل.
-
إعداد الجراد حامل المالي فكي علوي
- استخدام شريحة زجاجية (25 مم × 75 مم) كقاعدة لصاحب المالي فكي علوي (ميل في الساعة). إرفاق قطعة بلاستيكية (1 مم في الارتفاع، 10 مم في العرض، 35 ملم في الطول) إلى زاوية الشريحة الزجاجية بشريط لاصق الوجهين، وأخيراً إصلاح زجاج الغطاء (18 ملم × 18 ملم) على رأس هذه القطعة البلاستيكية بشريط لاصق الوجهين. ضع قطعة صغيرة من الشريط المطاط الأحمر على الزجاج غطاء كطبقة غير قابلة للانزلاق. وتشكل قطعة البلاستيك والزجاج غطاء منهاج المالي الجراد. ارتفاع المنصة حوالي 1.5 مم.
- تثبيت سلك تنغستن (قطر 0.125 مم، وطول 36 ملم) على مسافة من 1.5 مم موازية إلى الداخل الحافة لمنهاج العمل. إصلاح طرفي السلك إلى ساحة بشريط لاصق الوجهين.
2-إعداد الجراد بالبس فكي علوي
- قطع أنبوب الطرد مركزي (1.5 مل) عمودياً في نصف وقطع الجزء السفلي. مكان الجراد في أنبوب المعدة. مغادرة المنطقة البطني ورأسه الجراد يتعرض. إصلاح الجمعية العامة على الشريحة الزجاجية بشريط لاصق الوجهين (الشكل 2A).
- سحب المالي الحق فكي علوي على النظام الأساسي.
- وضع سلك التنغستن في الجزء الرابع من المالي. ضع المعجون لاصقة على كل جانب من سلك التنغستن، حوالي 2 مم من المالي فكي علوي (الشكل 2 ألف و 2 باء).
3-واحد سينسيلوم التسجيلات
- مكان إعداد الجراد المالي فكي علوي تحت مجهر تكبير منخفضة (100 X). ضبط موضع الإعداد حتى المالي عمودي على مسرى التسجيل (الشكل 3A).
- إدراج مسرى مرجع (التنغستن القطب) في العين الجراد باستخدام ميكرومانيبولاتور. نقل التسجيل الكهربائي (التنغستن القطب) قريبة من المالي فكي علوي مع ميكرومانيبولاتور (الشكل 3 و 3 ج).
- ضبط الجهاز التسليم رائحة إلى حوالي 1 سم من المالي فكي علوي (الشكل 3B).
- فتح برنامج التسجيل التلقائي سبايك 32. تعيين معلمات التسجيل على النحو التالي: جدول تسجيل على 500 µV؛ قطع عالية من عامل التصفية على 300 هرتز، قطع منخفضة على 200 هرتز؛ وفي بريتريجير في 10 s.
- قم بتوصيل مسرى التسجيل 10 × العالمي كهربية مكبر للصوت.
- التبديل المجهر لتكبير عالية (500 X). إدراج مسرى التسجيل في قاعدة سينسيلوم باسيكونيك على المالي فكي علوي وضبط دقة مسرى التسجيل للحصول على طفرات عفوية جيدة (3D الشكل).
- فتح وحدة تحكم حافزا لتسليم تيار هواء مستمر في 20 مل/س. تعيين وقت التحفيز لإشارات سجل س 1 ل 10 ق، ابتداء من 10 s قبل بداية نبض التحفيز.
- استخدام مكبر الصوت كهربية عالمي 10 x لتضخيم الإشارات. تغذية الإشارات في 4 إيداك. تحليل الإشارات مع البرنامج 32 سبايك السيارات. إشارات AC الفرقة-تمرير تصفية بين 200 إلى 300 هرتز. استخدام السيارات سبايك 32 لتمييز ستريك الذروة للحوض من الضوضاء. حساب الردود الواردة من الخلايا العصبية كالزيادات في إمكانات العمل ترددات (طفرات في الثانية الواحدة) على مدى الترددات عفوية. إجراء تحليل إحصائي باستخدام 7 المنشور جرافباد.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
يتم تحديد اثنين من المخططات سينسيلا (pb1 و pb2) على المالي فكي علوي الجراد تقوم على ديناميات مختلفة استجابة ل odorants الكيميائية (10% 1-نونانول وحمض نونانويك 10%). الخلايا العصبية في pb1 تنتج أكثر بكثير من طفرات إلى 1-نونانول مما لحمض نونانويك بينما الخلايا العصبية في pb2 هي إلى حد كبير أقل تنشيطه بواسطة 1-نونانول مقارنة مع حمض نونانويك (الشكل 4). يمكن أن تثير هيكسانال وهاء-2-هيكسينال المالي الجراد فتح استجابة (البرتغال)26. هيكسانال جريد النباتات خضراء مضيف وفيرة التي متقلبة التي قد تسهم في تأكيد آخر ل المصدر الغذائي26. المسامير وأثارت في الخلايا العصبية pb1 آخر أطول من تلك التي pb2 عندما كانت تحفزها ه-2-هيكسينال (الشكل 4). الخلايا العصبية في pb1 و pb2 يحمل كذلك ردود قوية على هيكسانال (الشكل 4). مقارنة التغيرات يعني من جميع المسامير بين s فترات 5 قبل و 5 s بعد التنشيط يشير إلى أن الاستجابة إلى 1-نونانول أعلى بكثير من أن حمض نونانويك في pb1، بل على النقيض من ذلك في pb2 (الشكل 5). الخلايا العصبية في هذه الأنواع الفرعية اثنين من سينسيلا الاستجابة جرعة [دبندنتلي] إلى ه-2-هيكسينال وهيكسانال، وتختلف أنماط استجابة لهذه الألدهيدات اثنين (الشكل 6 ألف و 6 باء).
رقم 1. إعداد القطب. (أ) هذا الفريق يظهر عامة عرض جهاز شحذ قطب كهربائي. يتم استخدام المحاقن التي تحتوي على 10% نانو2 (على اليسار) شحذ مسرى (يمين). (ب) هذا الفريق يظهر عرض قريبة من طرف القطب (ج: مناسبة؛ باء: غير مناسب). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 2. الجراد المالي فكي علوي حامل (ميلا). MPH (A) والجراد هي التي شنت على الشريحة الزجاجية قبل وضعه تحت المجهر. (ب) يظهر هذا الفريق عن قرب من المالي فكي علوي الجراد، ثابتة بسلك التنغستن على المنصة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الشكل 3. واحد تسجيلات سينسيلوم. (أ) هذا الفريق يظهر عرض الإعداد الكهربية. (ب) يظهر هذا الفريق عرض وثيقة من إعداد الجراد التي شنت على المجهر. (ج) هذه الصورة يظهر المالي فكي علوي الجراد في 100 X التكبير. (د) هذه الصورة يبين المالي 500 X التكبير. يشير السهم إلى سينسيلوم باسيكونيك. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الشكل 4. آثار استجابة لتسجيلات سينسيلوم واحد من المالي فكي علوي الجراد. في هذا الفريق، pb1 تقف على النوع الفرعي 1 من باسيكونيكا سينسيلا المالي؛ pb2 تقف على النوع الفرعي 2 من باسيكونيكا سينسيلا المالي. الأشرطة أعلاه الآثار تشير إلى مدة التحفيز (1 ثانية). لهذه التسجيلات، تستخدم جميع الروائح الكريهة في تخفيف 10% باستثناء ه-2-هيكسينال وهيكسانال، التي تكون مخففة إلى 1%. وقد تم تعديل هذا الرقم من تشانغ et al. 26- الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الرقم 5. مقارنة بين أرقام يعني من طفرات في الخلايا العصبية في pb1 وتحفزها على حمض نونانويك و 1-نونانول pb2- يتم حساب متوسط عدد المسامير في s فترات 5 قبل وبعد التحفيز. في pb1، زيادة متوسط عدد المسامير في الخلايا العصبية وردا على 1-نونانول أعلى بكثير من تلك التي من طفرات في الخلايا العصبية التي تستجيب لحمض نونانويك (n = palps 11؛ ANOVA مع وظيفة المخصص تي-الاختبارات؛ ف < 0.0001)، وعلى النقيض من pb2 (n = 10 بالبس؛ ANOVA مع وظيفة المخصص تي-الاختبارات؛ p = 0.0110). شريط خطأ يمثل sem. وقد تم تعديل هذا الرقم من تشانغ et al. 26- الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الشكل 6. أنماط الخلايا العصبية في pb1 والاستجابة pb2 جرعة [دبندنتلي] إلى ه-2-هيكسينال وهيكسانال- (أ) هذا الفريق يوضح أنماط الخلايا العصبية في pb1 (± ووزارة شؤون المرأة؛ n = 12 palps). (ب) هذا الفريق يوضح أنماط الخلايا العصبية في pb2 (± ووزارة شؤون المرأة؛ n = 10 palps). وقد تم تعديل هذا الرقم من تشانغ et al. 26- الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
الحشرات تعتمد على بالبس لكشف روائح المواد الغذائية، وبها بالبس ويعتقد أن تلعب دوراً هاما في انتواع13،27. Palps أجهزة الشم بسيطة وهي تلقي اهتماما متزايداً كنموذج جذاب للاستكشاف نيوروموليكولار الشبكات الأساسية تشيموسينسيشن28.
حشرة لأبيلار و SSRs المالي قد أجريت بنجاح على melanogaster المورفولوجيةو Anopheles gambiae Culex quinquefasciatus13،14،،من1516 , 17 ولكن نادراً ما تم الإبلاغ في النموذج عرض فيديو16،29. على النقيض من ذلك، تتوفر بيانات الفيديو في SSRs باللوامس المورفولوجيةوالعثة أورانجيوورم السرة (أميلويسترانسيتيلا)، و إلا أمريكاناو بق الفراش (lectularius سيمكس)16، 30 , 31 , 32 , 33.
وقد باسيكونيكا سينسيلا المالي الجراد بنية خاصة تختلف عن الجراد باللوامس سينسيلا والعديد من سينسيلا الحشرات الأخرى. باستخدام الطريقة الموضحة هنا، إمكانات العمل المتولدة عن الجراد المالي سينسيلا باسيكونيكا أنواع فرعية pb1 و pb2 يمكن أن تسجل والتمييز (الشكل 4 و الشكل 5).
أن الخطوة الحاسمة هي تغلغل مسرى التسجيل. وينبغي إدراجها في قاعدة سينسيلوم مسرى التسجيل ومتقدمة حتى يتم الحصول على إشارات جيدة. وبالإضافة إلى ذلك، من المهم للحيلولة دون الانهيار عندما يتم إدراج مسرى التسجيل في قاعدة سينسيلوم قبة المالي. لتحقيق هذا الهدف، إعداد منصة بما في ذلك حامل المالي فكي علوي الجراد خاصة (MPH)، ويستخدم سلك تنغستن لضغط الجزء الرابع للمالي. كثرة التكرار لهذا الإجراء تبين أنها فعالة. استناداً إلى أنماط استجابة الخلايا العصبية في سينسيلا لعدة أودورانتس،، للمرة الأولى، حددنا فرعيين اثنين من باسيكونيكا سينسيلا على المالي فكي علوي الجراد، هما pb1 و pb2.
الحد من هذه التقنية الواردة في هذا المنشور ويمكن استخدامه لتسجيل الحشرات الكبيرة (مثلالفراشات والخنافس، والجراد) بينما ليس لتسجيل الحشرات الصغيرة (مثلالذباب والبعوض)، التي لها مناهج خاصة بهم و تقنيات13،،من1415،،من1617. هذا الأسلوب مكمل للأساليب القائمة.
وفي الختام، هو وصف بروتوكول فعالة للغاية إصلاح قطاع الأمن من الحشرات المالي سينسيلا باسيكونيكا بالتفصيل. هذا البروتوكول يمكن تزويد الباحثين مع تقنية مفيدة في دراسة الآليات الجزيئية والخلوية للحشرات أولفاكشن في موثبارت. يمكن استخدام هذا الأسلوب يرتبط بالفصل اللوني للغاز لتحديد يغاندس اليكتروفيسيولوجيكالي النشطة الطبيعية في مقتطفات موارد الغذائية الملائمة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.
Acknowledgments
ويدعم هذا العمل بمنحه من "مؤسسة العلوم الطبيعية الوطنية الصينية" (No.31472037). أي ذكر للأسماء التجارية أو المنتجات التجارية في هذه المادة هو فقط لغرض توفير معلومات محددة ولا ينطوي توصية.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Tungsten wire | ADVENT | W559504 | Used for making the electrode and fixing the palp |
| NaNO2 | Sigma-aldrich | 563218-25G | Used for sharpening the tungsten wire |
| AC Power Supply | Syntech | A2-70 | Providing the voltage in sharpening the tungsten wire |
| Stereoscope | Motic | SMZ-163 | Used for observing the sharpening of tungsten wire |
| Microscope | Olympus | W-51 | Used for observing the sensilla on locust maxillary palp |
| Intelligent Data Acquisition Controller | Syntech | IDAC-4 | Real-time on screen display of all signals before and during recording |
| Stimulus controller | Syntech | CS-55 | Used for controlling the stimulus application |
| Electronic micromanipulator | C.M.D.T | CFT-8301D | Used for minor movement of the recording electrode |
| Micromanipulator | Narishige | MN-151 | Used for minor movement of the reference electrode |
| Speaker | EDIFIER | R101T06 | Connected with IDAC-4 and providing sound for the signal |
| Magnetic base | PDOK | PD-101 | Used to hold the electrode, and stimulus delivery tube |
| Vibration Isolation Table | TianHe | HAP-100-1208 | Used for isolating the vibration from the equipment |
| Glass slide | CITOGLAS | ZBP-407 | Used for making the base for the MPH |
| Blu-tack | Bostik | Blu-tack-45g | Fixing the tungsten wire |
| Pasteur tube | YARE | WITEG | Placing the filter paper containing stimuli stimulus solutions |
References
- Carey, A. F., Carlson, J. R. Insect olfaction from model systems to disease control. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (32), 12987-12995 (2011).
- Leal, W. S. Odorant reception in insects: roles of receptors, binding proteins, and degrading enzymes. Annual Review of Entomology. 58, 373-391 (2013).
- Zhang, J., Walker, W. B., Wang, G. Pheromone reception in moths: from molecules to behaviors. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 130, 109-128 (2015).
- Vosshall, L. B., Amrein, H., Morozov, P. S., Rzhetsky, A., Axel, R. A spatial map of olfactory receptor expression in the Drosophila antenna. Cell. 96 (5), 725-736 (1999).
- Benton, R., Vannice, K. S., Gomez-Diaz, C., Vosshall, L. B. Variant ionotropic glutamate receptors as chemosensory receptors in Drosophila. Cell. 136 (1), 149-162 (2009).
- Vosshall, L. B., Stocker, R. F. Molecular architecture of smell and taste in Drosophila. Annual Review of Neuroscience. 30, 505-533 (2007).
- de Bruyne, M., Foster, K., Carlson, J. R. Odor coding in the Drosophila antenna. Neuron. 30, 537-552 (2001).
- Roelofs, W., et al. Sex pheromone production and perception in European corn borer moths is determined by both autosomal and sex-linked genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 84 (21), 7585-7589 (1987).
- Larsson, M. C., Leal, W. S., Hansson, B. S. Olfactory receptor neurons detecting plant odours and male volatiles in Anomala cuprea beetles (Coleoptera: Scarabaeidae). Journal of Insect Physiology. 47 (9), 1065-1076 (2001).
- Zhang, R., et al. Molecular basis of alarm pheromone detection in aphids. Current Biology. 27 (1), 55-61 (2017).
- Cui, X., Wu, C., Zhang, L. Electrophysiological response patterns of 16 olfactory neurons from the trichoid sensilla to odorant from fecal volatiles in the locust, Locusta migratoria manilensis. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 77 (2), 45-57 (2011).
- Sharma, K. R., et al. Cuticular hydrocarbon pheromones for social behavior and their coding in the ant antenna. Cell Reports. 12 (8), 1261-1271 (2015).
- de Bruyne, M., Clyne, P. J., Carlson, J. R. Odor coding in a model olfactory organ: the Drosophila maxillary palp. Journal of Neuroscience. 19 (11), 4520-4532 (1999).
- Syed, Z., Leal, W. S. Maxillary palps are broad spectrum odorant detectors in Culex quinquefasciatus. Chemical Senses. 32 (8), 727-738 (2007).
- Lu, T., et al. Odor coding in the maxillary palp of the malaria vector mosquito Anopheles gambiae. Current Biology. 17 (18), 1533-1544 (2007).
- Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single sensillum recordings in the insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. Journal of Visualized Experiments. 36, e1725 (2010).
- Grant, A. J., Wigton, B. E., Aghajanian, J. G., O'Connell, R. J. Electrophysiological responses of receptor neurons in mosquito maxillary palp sensilla to carbon dioxide. Journal of Comparative Physiology A. 177 (4), 389-396 (1995).
- Blaney, W. The ultrastructure of an olfactory sensillum on the maxillary palps of Locusta migratoria (L.). Cell and Tissue Research. 184 (3), 397-409 (1977).
- Hassanali, A., Njagi, P. G. N., Bashir, M. O. Chemical ecology of locusts and related acridids. Annual Review of Entomology. 50, 223-245 (2005).
- Chapman, R. F. Contact chemoreception in feeding by phytophagous insects. Annual Review of Entomology. 48, 455-484 (2003).
- Chapman, R. F., Sword, G. The importance of palpation in food selection by a polyphagous grasshopper (Orthoptera: Acrididae). Journal of Insect Behavior. 6, 79-91 (1993).
- Winstanley, C., Blaney, W. Chemosensory mechanisms of locusts in relation to feeding. Entomologia Experimentalis et Applicata. 24, 750-758 (1978).
- Blaney, W., Duckett, A. The significance of palpation by the maxillary palps of Locusta migratoria (L.): an electrophysiological and behavioural study. Journal of Experimental Biology. 63, 701-712 (1975).
- Blaney, W. Electrophysiological responses of the terminal sensilla on the maxillary palps of Locusta migratoria (L.) to some electrolytes and non-electrolytes. Journal of Experimental Biology. 60, 275-293 (1974).
- Jin, X., Zhang, S., Zhang, L. Expression of odorant-binding and chemosensory proteins and spatial map of chemosensilla on labial palps of Locusta migratoria (Orthoptera: Acrididae). Anthropod Structure & Development. 35 (1), 47-56 (2006).
- Zhang, L., Li, H., Zhang, L. Two olfactory pathways to detect aldehydes on locust mouthpart. International Journal of Biological Sciences. 13 (6), 759-771 (2017).
- Dweck, H. K. M., et al. Olfactory channels associated with the Drosophila maxillary palp mediate short- and long-range attraction. eLife. 5, e14925 (2016).
- Bohbot, J. D., Sparks, J. T., Dickens, J. C. The maxillary palp of Aedes aegypti, a model of multisensory Integration. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 48, 29-39 (2014).
- Delventhal, R., Kiely, A., Carlson, J. R. Electrophysiological recording from Drosophila labellar taste sensilla. Journal of Visualized Experiments. 84, e51355 (2014).
- Ng, R., Lin, H. H., Wang, J. W., Su, C. Y. Electrophysiological recording from Drosophila trichoid sensilla in response to odorants of low volatility. Journal of Visualized Experiments. 125, e56147 (2017).
- Syed, Z., Leal, W. S. Electrophysiological measurements from a moth olfactory system. Journal of Visualized Experiments. 49, e2489 (2011).
- Saha, D., Leong, K., Katta, N., Raman, B. Multi-unit recording methods to characterize neural activity in the locust (Schistocerca Americana) olfactory circuits. Journal of Visualized Experiments. 71, e50139 (2013).
- Liu, F., Liu, N. Using single sensillum recording to detect olfactory neuron responses of bed bugs to semiochemicals. Journal of Visualized Experiments. 107, e53337 (2016).
