Summary
Bu kağıt sensilla basiconica tek sensillum kayıtları için detaylı ve son derece etkili iletişim kuralı böcek ağız dokunacı üzerinde açıklar.
Abstract
Locust ağız dokunacı bir çekirge'nın gıda seçimi, geçici olmayan kimyasal ipuçları aracılığıyla (daha önce terminal sensilla adlı sensilla chaetica tespiti için özellikle önemli bir rol oynamaktadır geleneksel tat organ olarak kabul edilir veya tepeli sensilla) Şimdi bu dokunacı de koku bir işlevi var kanıt artan vardır. Bir propil reseptör (LmigOR2) ve propil-bağlayıcı protein (LmigOBP1) sinir hücreleri ve aksesuar hücreler, sırasıyla, dokunacı sensilla basiconica yerelleştirilmiş. Tek sensillum (SSR) kayıt belirli propil reseptörleri üzerinde etkin ligandlar süzmek için etkili bir yöntem olduğu propil reseptör nöronlar, yanıt kaydetmek için kullanılır. SSR palp sensilla propil reseptörlerinin fonksiyonel çalışmalarda kullanılır. Dokunacı kubbe üzerinde bulunan sensilla basiconica yapısını biraz bu anten üzerinde yapıdan farklıdır. Bu nedenle, bir SSR odorants tarafından elde edildi işlemi sırasında belirli bir tavsiye en iyi sonuçları elde etmek için yararlı olabilir. Bu yazıda, böcek palp sensilla basiconica gelen bir SSR için detaylı ve son derece etkili bir protokol tanıttı.
Introduction
Hayvanlar bir dizi eksojen kimyasal ipuçları anlamda chemosensory organları gelişmiştir. Böcekler, anten ve dokunacı en önemli chemosensory organları vardır. Bu organların chemosensory saç chemosensory sensilla olarak adlandırılan, çeşitli kıllar içinde chemosensory nöronlar (CSNs) tarafından innervated. CSNs chemosensory sensilla içinde kimyasal uyaranlara üzerinden sinyal iletimi için daha sonra merkezi sinir sistemleri1,2kadar,3 transfer edilen elektrik potansiyelleri ile belirli kimyasal ipuçlarını tanımak .
CSNs hızlı çeşitli chemosensory reseptörleri [Örneğin, propil reseptörleri (ORs)], ionotropic reseptörleri (IRS) ve chemosensation farklı türleri ile ilişkili eksojen kimyasal cues kodlamak onların membranlar üzerinde tat reseptörleri (gr) 4,5,6. CSNs karakterizasyonu hücresel ve moleküler mekanizmaları böcek chemoreception için aydınlatma anahtarıdır. Şimdi böcek CSNs dahil olmak üzere birçok böcek antennal sensilla karakterizasyonu7sinekler için tek sensillum kaydı (SSR) yaygın olarak kullanılan bir teknik, pervane8, böcekleri9, yaprak bitleri10, çekirgeler11, ve karıncalar12. Çünkü onların sensilla belirli yapıları yapmak ancak, birkaç çalışmalar bir SSR böcek dokunacı13,14,15,16,17' ye, uyguladığınız bir elektrofizyolojik kayıt zor18.
Çekirge (düz kanatlılar) sürüleri kez ciddi ürün hasar ve ekonomik kayıp19neden. Dokunacı çekirge20,21,22,23,24gıda seçiminde önemli bir rol oynadığı düşünülmektedir. Chemosensory sensilla iki tür bir taramalı elektron mikroskobu (SEM) tarafından incelenmiştir. Genellikle, 350 sensilla chaetica ve 7-8 sensilla basiconica her kubbe locust dokunacı18gözlenir. Sensilla chaetica sensilla basiconica var ise uçucu kimyasal cues algılama bir koku alma işlevi, geçici olmayan kimyasal yardımlar anlamda tat sensilla vardır.
Locust dokunacı üzerinde sensilla basiconica (ca. 12 µm), saç yuva çapları bu sensilla chaetica daha çok daha büyük (ca. 8 µm)18,25. Dokunacı üzerinde sensilla basiconica cuticular duvar antennal sensilla18çok kalın. Buna ek olarak, palp kubbesi sıvı içeriği son derece esnek bir manikür içinde vardır. Bu özellikleri bir elektrot ve iyi elektrofizyolojik sinyalleri bir edinimi bir nüfuz için antennal sensilla daha zor olduğu anlamına gelir. Bu yazıda, detaylı ve son derece etkili SSR Protokolü locust palp sensilla basiconica için bir video ile sunulur.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Araçlar ve böcek hazırlanması
-
Tungsten elektrotlar ve uyaranlara çözümleri hazırlanıyor
- Bir yeni tungsten tel (0,125 mm çap, 75 mm uzunluğu) bir micromanipulator içine düzeltmek ve 10 V stereomicroscope (40 X büyütme) altında yaklaşık 1 dakika için bir güç kaynağı tarafından sağlanan % 10 (w/v) Sodyum nitrit (NaNO2) çözümde bir şırınga keskinleştirmek.
- Bilenmiş tungsten tel art arda % 10 NaNO2 çözüm, 4 mm 5 V < 1 dk (Şekil 1A)'inde içine daldırma.
- Locust palp koku sensillum (Şekil 1B) kütikül nüfuz için iyi olana stereomicroscope altında sık bilenmiş tungsten ipucu çapını inceleyin.
- Uyarıcı çözümleri hazırlayın. Her kimyasal uyarıcı madde madeni yağ içinde biri oranında seyreltin. 1-nonal ve nonanoic asit, %10 dilutions oranında seyreltin. E-2-hexenal ve diehydroabietinal 10-2, 10-3, 10-4ve 10-5oranında seyreltin.
- Pasteur uyaranlara taşıma tüpleri hazırlayın: filtre kağıt şeritler (2 cm uzunluğunda, 0,5 cm genişlik) Pasteur tüpler içine yerleştirin, seyreltilmiş uyarıcı çözümleri (her 10 µl) filtre kağıt şeritler eklemek ve pipet ipuçları (1 ml) Pasteur tüplerini takın.
-
Böcek hazırlamak
- Bağıl nem oranı % 60, 28-30 ° C sıcaklık ve photoperiod 18:6 h (ışık: karanlık) kalabalık koşullarda taze buğday fidan ile arka çekirge (Locusta migratoria). 1 - için 3-bayat 5 seçinlocust perileri biçim ve iyi makas ile kayıt yaparken herhangi bir girişimi engellemek için antenleri kaldırın .
-
Locust üst palp tutucu hazırlanıyor
- Bir cam slayt (25 mm x 75 mm) üst palp tutucu (mil) temel olarak kullanın. Çift taraflı yapışkan bant ile cam slayt köşesinde bir plastik parça (1 mm içinde yükseklik, genişlik, 35 mm uzunluğu 10 mm) ekleyin ve nihayet bir cam (18 x 18 mm) plastik parça üzerine çift taraflı yapışkan bant ile düzeltmek. Kırmızı lastik bant cam üzerine küçük bir parçası bir kaymaz katman yer. Plastik parça ve kapak cam locust palp için platform oluşturmaktadır. Platform yüksekliği yaklaşık 1.5 mm olduğunu.
- 1.5 mm iç paralel olarak bir tungsten tel (0,125 mm çap, 36 mm uzunluğu) yüklemek kenar-in belgili tanımlık peron. Tel platformu üzerine iki ucu çift taraflı yapışkan bant ile düzeltmek.
2. Locust üst dokunacı hazırlanması
- Bir santrifüj tüpü (1,5 ml) dikey olarak yarıya ve alt kesti. Locust hazırlanan tüpün içine yerleştirin. Ventral bölge ve maruz locust Başkanı bırakın. Montaj cam kaymak için çift taraflı yapışkan bant ile (Şekil 2A) düzeltmek.
- Sağ üst palp platformu üzerine çek.
- Tungsten kabloyu palp dördüncü kesim sok. Tungsten tel, 2 mm üst palp (Şekil 2A ve 2B) üzerinden her tarafında yapışkan macun koyun.
3. tek Sensillum kayıtları
- Locust üst palp hazırlık düşük büyütmede (100 X) mikroskop altında bir yer. Palp kayıt elektrodu (Şekil 3A) dikey olana hazırlık konumunu ayarlamak.
- Referans elektrot (tungsten elektrot) bir micromanipulator kullanarak locust göz içine yerleştirin. Micromanipulator (Şekil 3B ve 3 C) ile üst palp yakın kayıt elektrodu (tungsten elektrot) taşıyın.
- Koku teslim aygıt üst palp (Şekil 3B) yaklaşık 1 cm için ayarlayın.
- Kayıt yazılımı otomatik Spike 32 açın. Kayıt parametrelerini aşağıdaki gibi ayarlayın: 500 µV; kayıt ölçekte 300 Hz, 200 Hz üzerinde düşük kesme filtresinde yüksek kesim; ve 10 pretrigger s.
- Kayıt elektrot 10 x evrensel AC/DC amplifikatör bağlayın.
- Mikroskop yüksek bir büyütme (500 X) geçin. Basiconic sensillum üzerinde üst palp Bankası kayıt elektrot yerleştirin ve kibar bir şekilde iyi spontan sivri (şekil 3D) elde etmek için kayıt elektrot ayarlayın.
- 20 ml, sürekli hava akımı sağlamak için uyarıcı denetleyicisi açmak/s. 10 için 1 s. kaydı sinyalleri stimülasyon zaman Set 10 başlangıç s, s uyarıcı darbe başlangıcından önce.
- 10 x evrensel AC/DC amplifikatör sinyalleri yükseltmek için kullanın. Sinyalleri IDAC 4 içine beslenir. Sinyalleri otomatik Spike 32 yazılımı ile analiz. AC sinyaller bant geçiren filtre 200-300 Hz. arasında en yüksek yalak genlikleri gelen sesler ayırt etmek için kullanın otomatik Spike 32. Nöronlar yanıt Aksiyon potansiyeli Frekanslar (sivri saniyede) artış olarak spontan Frekanslar hesaplamak. İstimal GraphPad prizma 7 istatistiksel çözümleme gerçekleştirme.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
İki sensilla alt türlerinden (pb1 ve pb2) keçiboynuzu üst palp üzerinde farklı yanıt dinamikleri kimyasal odorants (% 10 1-nonal ve % 10 nonanoic asit) göre tanımlanır. Pb1 nöronlarda için 1-nonal nonanoic aside pb2 nöronlarda süre önemli ölçüde daha az 1-nonal nonanoic asit (Şekil 4) ile karşılaştırıldığında tarafından aktive daha önemli ölçüde daha fazla sivri üretmek. Diehydroabietinal ve E-2-Hexenal yanıtı (POR)26açılış locust palp uyandırmak. Hangi gıda kaynağı26doğrulanmadı için katkıda bulunabilir bir bol ana bitki yeşil yaprak uçucu diehydroabietinal olduğunu. Pb1 nöronlarda son elicited sivri E-2-hexenal tarafından (Şekil 4) uyardığında pb2 olanların daha uzun. Pb1 ve pb2 nöronlarda benzer şekilde sağlam yanıt-e doğru diehydroabietinal (Şekil 4) sergi. Tüm sivri önce dönemleri 5 s ile 5 arasında ortalama değişiklikleri karşılaştırma stimülasyon 1-nonal cevaben önemli ölçüde nonanoic asit pb1, ama aksine pb2 daha yüksek olduğunu gösterir sonra s (Şekil 5). Bu iki alt türlerinden sensilla nöronlarda doz bağımlı E-2-hexenal ve diehydroabietinal cevap ve bu iki aldehitler onların yanıt desenleri (Şekil 6A ve 6B) farklı.
Şekil 1. Elektrot hazırlık. Genel bir bakış Elektrot bileme aparatı (A) Bu panel gösterir. % 10 NaNO2 (solda) içeren şırınga (sağda) elektrot netleştirmek için kullanılır. (B) Bu panel elektrot uç (a: uygun; b: uygun olmayan) yakın bir görünümünü gösterir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 2. Locust üst palp tutucu (MPH). (A)mil ve bir çekirge monte edilmiştir cam slayt üzerinde mikroskop altında konumlandırma daha önce. (B) Bu panel locust üst palp, tungsten telin bu tarafında platform üzerinde sabit bir close-up gösterir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 3. Tek sensillum kayıtları. (A) Bu panel Elektrofizyoloji Kur görünümünü gösterir. (B) Bu panel mikroskobunun monte locust hazırlık yakın bir görünümünü gösterir. (C) Bu görüntü 100 X büyütme oranında locust üst palp gösterir. (D) Bu görüntü palp 500 X büyütme oranında gösterir. Ok basiconic sensillum gösterir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 4. Locust üst palp tek sensillum kayıtları yanıt izleri. Bu panelinde, alt için 1 palp sensilla basiconica türü pb1 anlamına gelir; PB2 palp sensilla basiconica alt 2 için duruyor. Uyarıcı süresi Çubuklarõn izlerini yukarıda (1 s). Bu kayıtlar için tüm kokuları % 1'e seyreltilmiş E-2-hexenal ve diehydroabietinal, dışında % 10 dilutions kullanılmaktadır. Bu şekil Zhang ve ark. değiştirildi 26. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 5. Pb1 ve nonanoic asit ve 1-nonal tarafından uyarılan pb2 nöronlarda sivri Ortalama sayıda karşılaştırılması. Sivri Ortalama sayıda dönem 5 s önce ve stimülasyon sonra hesaplanır. PB1, sivri 1-nonal için yanıt nöronlar içinde ortalama sayısını artırmak bu sivri nonanoic asit için yanıt nöronlar içinde daha önemli ölçüde daha yüksek (n = 11 dokunacı; ANOVA post hoc t-testleri ile; p < 0.0001), pb2 aksine (n = 10 dokunacı; ANOVA post hoc t-testleri ile; p 0.0110 =). Hata çubuğu SEM temsil eder. Bu şekil Zhang ve ark. değiştirildi 26. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 6. Nöronlar pb1 ve pb2 doz bağımlı yanıt için E-2-hexenal ve diehydroabietinal şekillerinin. (A) Bu panel gösterir nöronlar şekillerinin pb1 içinde (± SEM; n 12 dokunacı =). (B) Bu panel gösterir nöronlar şekillerinin pb2 içinde (± SEM; n 10 dokunacı =). Bu şekil Zhang ve ark. değiştirildi 26. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Böcekler yiyecek kokular algılamaya dokunacı üzerinde itimat ve onların dokunacı türleşme13,27içinde önemli bir rol oynadığı düşünülmektedir. Dokunacı basit koku organları ve temel chemosensation28neuromolecular keşfi için çekici bir model iletişim gibi artan dikkat alıyorsanız.
Böcek labellar ve palp SSRs başarıyla Drosophila melanogaster, anofel gambiaeve Culex quinquefasciatus13,14,15,16 üzerinde gerçekleştirilen , 17 ama nadiren bir video sunumu16,29şeklinde bildirilmiştir. Buna ek olarak, antennal SSRs üzerinde video verileri Drosophila, göbek orangeworm güve (Amyeloistransitella), Schistocerca Americanave yatak böcek (Cimex lectularius)16, için kullanılabilir 30 , 31 , 32 , 33.
Locust palp sensilla basiconica locust antennal sensilla ve birçok diğer böcek sensilla farklı belirli bir yapısı var. Burada açıklanan yöntemi kullanarak, Aksiyon potansiyelleri locust palp sensilla basiconica alt türlerinden pb1 tarafından oluşturulan ve pb2 kaydedilmiş ve ayrımcılık (Şekil 4 ve Şekil 5).
Kayıt elektrot penetrasyon önemli adımdır. Kayıt elektrot sensillum üsse doğru takılı ve iyi sinyaller elde edilir kadar gelişmiş. Ayrıca, kayıt elektrot sensillum üsse doğru takıldığında çöken palp kubbe önlemek önemlidir. Bunu başarmak için biz bir özel çekirge üst palp tutucu (mil) dahil olmak üzere bir platform ayarla ve tungsten tel palp dördüncü bölümünün sıkıştırmak için kullanılan. Bu yordamın birçok tekrarlama bunun etkili olduğunu göstermektedir. Birkaç odorants için sensilla nöronlarda yanıt desenleri temel, ilk kez, iki alt locust üst palp üzerinde sensilla basiconica yani pb1 ve pb2 belirledik.
Bu yayında açıklanan tekniği büyük böcekler (Örneğin, pervane, böcekler ve çekirge) kaydetmek için kullanılabilir olduğu kısıtlamadır küçük böcekler (Örneğin, sinekler ve sivrisinekler), kendi platformlarına sahiptir değil kaydetmek için süre ve teknikleri13,14,15,16,17. Mevcut yöntemler için tamamlayıcı bir tekniktir.
Sonuç olarak, bir SSR böcek palp sensilla basiconica gelen son derece etkili bir protokol ayrıntılı olarak açıklanmıştır. Bu iletişim kuralı araştırmacılar çalışmada, moleküler ve hücresel mekanizmaları böcek koku alma için yararlı bir yöntem ile üzerinde mouthpart sağlayabilir. Gaz kromatografi ile bağlı bu yöntem doğal electrophysiologically-aktif ligandlar özleri olumlu gıda kaynaklarının içinde tanımlamak için kullanılabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar ifşa gerek yok.
Acknowledgments
Bu eser bir hibe Ulusal Doğal Bilim Vakfı, Çin'den (No.31472037) tarafından desteklenmektedir. Ticari adlar veya ticari ürünler bu makalenin herhangi bir söz sadece bilgi sağlanması amacına olduğunu ve bir tavsiye anlamına gelmez.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Tungsten wire | ADVENT | W559504 | Used for making the electrode and fixing the palp |
| NaNO2 | Sigma-aldrich | 563218-25G | Used for sharpening the tungsten wire |
| AC Power Supply | Syntech | A2-70 | Providing the voltage in sharpening the tungsten wire |
| Stereoscope | Motic | SMZ-163 | Used for observing the sharpening of tungsten wire |
| Microscope | Olympus | W-51 | Used for observing the sensilla on locust maxillary palp |
| Intelligent Data Acquisition Controller | Syntech | IDAC-4 | Real-time on screen display of all signals before and during recording |
| Stimulus controller | Syntech | CS-55 | Used for controlling the stimulus application |
| Electronic micromanipulator | C.M.D.T | CFT-8301D | Used for minor movement of the recording electrode |
| Micromanipulator | Narishige | MN-151 | Used for minor movement of the reference electrode |
| Speaker | EDIFIER | R101T06 | Connected with IDAC-4 and providing sound for the signal |
| Magnetic base | PDOK | PD-101 | Used to hold the electrode, and stimulus delivery tube |
| Vibration Isolation Table | TianHe | HAP-100-1208 | Used for isolating the vibration from the equipment |
| Glass slide | CITOGLAS | ZBP-407 | Used for making the base for the MPH |
| Blu-tack | Bostik | Blu-tack-45g | Fixing the tungsten wire |
| Pasteur tube | YARE | WITEG | Placing the filter paper containing stimuli stimulus solutions |
References
- Carey, A. F., Carlson, J. R. Insect olfaction from model systems to disease control. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (32), 12987-12995 (2011).
- Leal, W. S. Odorant reception in insects: roles of receptors, binding proteins, and degrading enzymes. Annual Review of Entomology. 58, 373-391 (2013).
- Zhang, J., Walker, W. B., Wang, G. Pheromone reception in moths: from molecules to behaviors. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 130, 109-128 (2015).
- Vosshall, L. B., Amrein, H., Morozov, P. S., Rzhetsky, A., Axel, R. A spatial map of olfactory receptor expression in the Drosophila antenna. Cell. 96 (5), 725-736 (1999).
- Benton, R., Vannice, K. S., Gomez-Diaz, C., Vosshall, L. B. Variant ionotropic glutamate receptors as chemosensory receptors in Drosophila. Cell. 136 (1), 149-162 (2009).
- Vosshall, L. B., Stocker, R. F. Molecular architecture of smell and taste in Drosophila. Annual Review of Neuroscience. 30, 505-533 (2007).
- de Bruyne, M., Foster, K., Carlson, J. R. Odor coding in the Drosophila antenna. Neuron. 30, 537-552 (2001).
- Roelofs, W., et al. Sex pheromone production and perception in European corn borer moths is determined by both autosomal and sex-linked genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 84 (21), 7585-7589 (1987).
- Larsson, M. C., Leal, W. S., Hansson, B. S. Olfactory receptor neurons detecting plant odours and male volatiles in Anomala cuprea beetles (Coleoptera: Scarabaeidae). Journal of Insect Physiology. 47 (9), 1065-1076 (2001).
- Zhang, R., et al. Molecular basis of alarm pheromone detection in aphids. Current Biology. 27 (1), 55-61 (2017).
- Cui, X., Wu, C., Zhang, L. Electrophysiological response patterns of 16 olfactory neurons from the trichoid sensilla to odorant from fecal volatiles in the locust, Locusta migratoria manilensis. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 77 (2), 45-57 (2011).
- Sharma, K. R., et al. Cuticular hydrocarbon pheromones for social behavior and their coding in the ant antenna. Cell Reports. 12 (8), 1261-1271 (2015).
- de Bruyne, M., Clyne, P. J., Carlson, J. R. Odor coding in a model olfactory organ: the Drosophila maxillary palp. Journal of Neuroscience. 19 (11), 4520-4532 (1999).
- Syed, Z., Leal, W. S. Maxillary palps are broad spectrum odorant detectors in Culex quinquefasciatus. Chemical Senses. 32 (8), 727-738 (2007).
- Lu, T., et al. Odor coding in the maxillary palp of the malaria vector mosquito Anopheles gambiae. Current Biology. 17 (18), 1533-1544 (2007).
- Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single sensillum recordings in the insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. Journal of Visualized Experiments. 36, e1725 (2010).
- Grant, A. J., Wigton, B. E., Aghajanian, J. G., O'Connell, R. J. Electrophysiological responses of receptor neurons in mosquito maxillary palp sensilla to carbon dioxide. Journal of Comparative Physiology A. 177 (4), 389-396 (1995).
- Blaney, W. The ultrastructure of an olfactory sensillum on the maxillary palps of Locusta migratoria (L.). Cell and Tissue Research. 184 (3), 397-409 (1977).
- Hassanali, A., Njagi, P. G. N., Bashir, M. O. Chemical ecology of locusts and related acridids. Annual Review of Entomology. 50, 223-245 (2005).
- Chapman, R. F. Contact chemoreception in feeding by phytophagous insects. Annual Review of Entomology. 48, 455-484 (2003).
- Chapman, R. F., Sword, G. The importance of palpation in food selection by a polyphagous grasshopper (Orthoptera: Acrididae). Journal of Insect Behavior. 6, 79-91 (1993).
- Winstanley, C., Blaney, W. Chemosensory mechanisms of locusts in relation to feeding. Entomologia Experimentalis et Applicata. 24, 750-758 (1978).
- Blaney, W., Duckett, A. The significance of palpation by the maxillary palps of Locusta migratoria (L.): an electrophysiological and behavioural study. Journal of Experimental Biology. 63, 701-712 (1975).
- Blaney, W. Electrophysiological responses of the terminal sensilla on the maxillary palps of Locusta migratoria (L.) to some electrolytes and non-electrolytes. Journal of Experimental Biology. 60, 275-293 (1974).
- Jin, X., Zhang, S., Zhang, L. Expression of odorant-binding and chemosensory proteins and spatial map of chemosensilla on labial palps of Locusta migratoria (Orthoptera: Acrididae). Anthropod Structure & Development. 35 (1), 47-56 (2006).
- Zhang, L., Li, H., Zhang, L. Two olfactory pathways to detect aldehydes on locust mouthpart. International Journal of Biological Sciences. 13 (6), 759-771 (2017).
- Dweck, H. K. M., et al. Olfactory channels associated with the Drosophila maxillary palp mediate short- and long-range attraction. eLife. 5, e14925 (2016).
- Bohbot, J. D., Sparks, J. T., Dickens, J. C. The maxillary palp of Aedes aegypti, a model of multisensory Integration. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 48, 29-39 (2014).
- Delventhal, R., Kiely, A., Carlson, J. R. Electrophysiological recording from Drosophila labellar taste sensilla. Journal of Visualized Experiments. 84, e51355 (2014).
- Ng, R., Lin, H. H., Wang, J. W., Su, C. Y. Electrophysiological recording from Drosophila trichoid sensilla in response to odorants of low volatility. Journal of Visualized Experiments. 125, e56147 (2017).
- Syed, Z., Leal, W. S. Electrophysiological measurements from a moth olfactory system. Journal of Visualized Experiments. 49, e2489 (2011).
- Saha, D., Leong, K., Katta, N., Raman, B. Multi-unit recording methods to characterize neural activity in the locust (Schistocerca Americana) olfactory circuits. Journal of Visualized Experiments. 71, e50139 (2013).
- Liu, F., Liu, N. Using single sensillum recording to detect olfactory neuron responses of bed bugs to semiochemicals. Journal of Visualized Experiments. 107, e53337 (2016).
