Summary
Ex vivo estudos de ilhotas pancreáticas são importantes para a pesquisa da diabetes. Técnicas existentes para estudar ilhotas cultivadas em sua arquitetura nativa 3-dimensional são demorados, ineficientes e raramente usado. Este trabalho descreve um método novo, simples e eficiente para a geração de cortes de parafina de alta qualidade de todo cultos Ilhéus.
Abstract
Experimentos utilizando ilhotas pancreáticas isoladas são importantes para a pesquisa do diabetes, mas ilhéus são caros e de abundância limitada. Ilhéus contêm uma população mista de célula em uma arquitetura estruturada que afeta a função e ilhotas humanas são amplamente variável na composição do tipo de célula. Atuais métodos usados com frequência para estudar ilhotas cultivadas incluem estudos moleculares, executados em toda Ilhéus, amontoando ilhéu diferentes tipos de células juntos, ou microscopia ou estudos moleculares em células das ilhotas dispersas, rompendo a arquitetura do Ilhéu. Estudos em vivo ilhéu, seccionamento de pâncreas de parafina é uma técnica poderosa para avaliar resultados de células específicas no ambiente nativo do pâncreas. Estudando a pós-cultura ilhotas secionando parafina que oferecem várias vantagens: deteção de vários resultados na mesmas ilhotas (potencialmente até as exato a mesma ilhotas, usando seções seriais), medições específicas do tipo de célula e mantendo nativo Ilhéu célula-célula e célula-substrato interações durante a exposição experimental e para análise. No entanto, as técnicas existentes para a incorporação de isolaram ilhotas pós-cultura são ineficientes, demorado, propenso a perda de material e geralmente produzem seções com números ilhéu inadequada para ser útil para quantificar os resultados. Instalações da preparação do bloco de célula laboratoriais de patologia clínica são inacessíveis e impraticável para laboratórios de pesquisa básica. Nós desenvolvemos um método de bancada melhorado e simplificado que gera seções com rendimento robusto e distribuição de ilhotas. Fixo de Ilhéus é resuspended em gel de agarose histológica quente e pipetado em um disco plano em uma corrediça de vidro padrão, tal que os ilhéus são distribuídos em um avião. Após desidratação padrão e incorporando, seções múltiplas (10 +) 4-5 µm podem ser cortadas do mesmo bloco ilhéu. Usando esse método, análises histológicas e imunofluorescência podem ser executadas em rato, rato e ilhotas humanas. Esta é uma abordagem eficaz, barata, economia de tempo para avaliar resultados de célula tipo-específicas, intacto-arquitetura de ilhotas culturas.
Introduction
Pancreáticas ilhotas de Langerhans, a única fonte de insulina, em circulação são um tecido crítico para os investigadores a estudar diabetes mellitus. De um determinado organismo, Ilhéus têm tamanho variável, frequência do tipo de célula e arquitetura1,2,3. A estratégia convencional para estudar na vivo estrutura e composição de células endócrinas das ilhotas pancreáticas é secionando pâncreas tecido4,5. Desde Ilhéus compõem apenas uma pequena fração do conteúdo total de celular do pâncreas, estudos moleculares são executados em ilhotas isoladas. Ex vivo ilhéu cultura experiências testando a resposta aos nutrientes, modulação de gene (transfeccao, transdução), ou tratamentos experimentais fornecem importantes insights sobre mecanismos de modulação da função, proliferação e sobrevivência de células endócrinas 5 , 6.
Ex vivo experimentos ilhéu frequentemente são analisados usando estudos moleculares de ilhotas inteira ou estudos histológicos ou moleculares das ilhotas dispersas células cultivadas em monocamada5,6. Análise molecular de ilhotas toda introduz a séria advertência entremear tipos de células, que podem produzir resultados falso-negativos ou falso-positivos quando extrapolados para qualquer tipo de célula individual. Dispersão de célula para lamínulas para microscopia de pós-cultura permite a medição de resultado de célula-tipo específico, mas interrompe a arquitetura do Ilhéu, que pode alterar a resposta à intervenção e impede a identificação dos resultados relacionados com arquitetura. Além disso, geralmente apenas um único resultado pode ser medido; por exemplo, para medir a proliferação de células beta e morte de células beta, nas mesmas condições, dois experimentos separados precisam ser executadas. Essas abordagens também são cegas à variabilidade inter ilhéu, uma área de interesse crescente no campo. Classificação células das ilhotas por citometria de fluxo para estudos moleculares de célula tipo-específicos, ou estudos de RNA de célula única são elegantes, mas caro, demorado, limitado pela abundância de tecido, erradicar a arquitetura e não é bem adequado para análises de cultura celular de rotina 5 , 7. imagem latente confocal de ilhotas immunostained toda a montagem fornece alta qualidade intacta-arquitetura dados, mas é trabalhoso, e dados obtidos de cada amostra são limitados aos resultados identificáveis em um único immunostaining8.
A capacidade de gerar seções de alta qualidade da parafina de ilhotas toda pós-cultura abordaria muitas dessas preocupações. Tecido de ilhéu de alto custo e baixa-abundância de modelos genéticos únicos ou de doadores de órgãos humanos, ou ilhotas status post vivo em ou em vitro experimental manipulação, são preciosos. Obtenção de várias seções de parafina de Ilhéus mesmos permitiria múltiplas análises específicas do tipo de célula, arquitetura intacta no mesmo experimento.
Técnicas existentes para gerar pelotas ilhéu para secionar são imperfeitas. Histologia-otimizado agarose é um gel aquoso baixo ponto de fusão que é amplamente utilizado no processamento de amostras histológicas e citológicas, incluindo amostras de tecido pequeno ou fragmentados que são difíceis de processo9. Um ilhéu, incorporando a abordagem é para suspender as ilhotas em agarose em um tubo de microcentrifugadora, centrifugar para o material de Pelotas, recuperar a ficha de agar, então processar e incorporar para secionar10,11. Extrair a amostra solidificada da parte inferior do tubo é demorado e difícil, levando a fragmentação ocasional da amostra e risco de danos pessoais. Os ilhéus concentram-se na ponta do plugue, levando a distribuição inadequada Ilhéu em seções obtidas por este método. O fundo redondo do plugue complica incorporando tais que uma região pobre em ilhéu possam ser apresentada para corte. Em geral, esse método leva ao baixo rendimento e distribuição ilhéu agrupados nas seções resultantes.
Este novo método é uma abordagem simplificada e melhorada para a preparação das seções do Ilhéu. Ilhotas são concentradas em um pequeno volume e então colocadas sobre a superfície lisa de uma lâmina de microscópio para formar um disco pequeno, com as ilhotas em um avião. O disco Histogel-ilhéu é processado posteriormente para incorporação em uma desidratação encurtada e protocolo de infiltração de xileno de parafina. A abordagem anterior, que concentra os ilhéus na parte inferior de um tubo de microcentrífuga, também é realizada como uma comparação. Essa nova técnica melhora o rendimento de ilhotas por seção, a distribuição das ilhotas em cada seção e leva menos tempo para transferir os blocos do Ilhéu para fitas. Essa técnica é útil para os biólogos ilhéu ou outros cientistas estudando pequenos pedaços de tecido que desejam maximizar produtivo usam de um baixa abundância tecido medindo vários resultados em uma única amostra em sua arquitetura de tecido nativo.
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Protocol
Todos os procedimentos que envolvam animais foram aprovados pelo Comitê de uso e UMass Medical School institucional Animal Care. Estudos de ilhota humana foram determinados pelo Conselho de revisão institucional de UMass não qualificar para revisão do IRB ou isenção porque não envolvem o uso de cobaias humanas.
1. cultura e isolamento ilhéu
- Ilhotas de isolar e separar de contaminar o tecido exócrino e ductal, usando o método de sua escolha.
Nota: Este método foi otimizado usando ilhotas isoladas por insuflação ductal colagenase e Cyp2e1 separação12 (roedores) ou pós-embarque ilhotas do programa de distribuição integrada ilhéu (IIDP13; humanos). Ilhéus foram escolhidos a dedo com uma micropipeta P200. - Para otimizar a morfologia do Ilhéu, permitir ilhotas de recuperar durante a noite em 10 mL de meio de ilhéu completa (RPMI com 10% FBS, penicilina/estreptomicina e glicose 5,5 mmol/L) numa câmara umidificada contendo 5% CO2 a 37 ° C. Embora este passo não é necessário para obter as seções, os ilhéus são mais intactos após um período de recuperação (consulte a Figura 2).
2. ilhéu fixação
- Usando uma ponta de P200 baixa-ligação, escolher aproximadamente 250 ilhéu equivalentes (IEQ)13 usando uma grade calibrada sob um estereomicroscópio em um tubo de microcentrífuga de ligação baixa 1,5 mL. Dicas e tubos de ligação de baixa reduzem a perda de ilhéu.
- Permitir que Ilhéus repousar no fundo do tubo de microcentrífuga. Remova o sobrenadante mais com uma ponta da pipeta P200, tomando cuidado para não remover qualquer ilhotas.
- Adicione 1 mL de PBS. Centrifugar o tubo em uma centrífuga de balde balançando até a velocidade atinge 200 x g e depois parará o spin. Remova o sobrenadante. Repita a lavagem PBS, para um total de duas lavagens.
- Adicione 500 µ l de solução de formalina 10% ou paraformaldeído 4% acabadas. Fixar-se à temperatura ambiente durante 30 minutos. Para os resultados testados neste método, estes métodos de fixação eram indistinguíveis. Fixação mais curta também pode ser possível; é recomendável para otimizar a duração de fixação para o resultado desejado.
- Retire o fixador com uma ponta de P200.
- Adicione 1 mL de PBS. Tubo de centrifugação até a velocidade atinge 200 x g e depois parará o spin. Remova o sobrenadante. Repita a lavagem PBS, para um total de duas lavagens.
- Dirijam-se para a próxima etapa.
3. preparação do Ilhéu disco (Figura 1)
- Na primeira utilização, derreta o gel (por exemplo, Histogel) a 70 ° C e faça alíquotas em 1,5 mL a tubos de microcentrífuga para armazenamento a longo prazo. Volume alíquota não é crítica, pois alíquotas podem ser reutilizadas.
- Aquecer o gel (aproximadamente 100 µ l por amostra) a 70 ° C, colocando o tubo de microcentrífuga contendo gel de alíquota em um bloco de calor conjunto a 70 ° C.
- Transferi contas de agarose azul (10 µ l de cada amostra) em um tubo de microcentrífuga limpos de 1,5 mL. Resuspenda minuciosamente as contas antes de pipetagem.
Nota: Grânulos azuis são misturados com os ilhéus para auxiliar na identificação visual do material incorporado no botão de agarose e o bloco de parafina. O número de grânulos azuis usado não é crítico para o resultado, mas evitar excessivos grânulos (> 5 x o número de ilhotas) para permitir a distribuição ideal de ilhotas em seções. - Lave os grânulos azuis com 1mL de PBS, duas vezes. Para cada lavagem, gire os grânulos 1 min a x 800 g. Após a segunda lavagem, resuspenda os grânulos em (n+ 2) x 10 µ l de PBS, onde n é o número de tubos de amostra; por exemplo, para 2 tubos de amostra, o volume de PBS para adicionar as contas seria 40 µ l.
- Centrifugar o tubo de microcentrífuga contendo ilhotas (breve spin para x 200g) e remover a maior parte do sobrenadante. Corte a ponta de uma dica de micropipeta de 10 µ l com tesoura ou lâmina e adicionar 10 µ l de grânulos para cada tubo ilhéu, usando uma ponteira limpa para cada amostra. Não misture (para evitar a perda de Ilhéus).
- Centrifugação de Ilhéus e grânulos (breve spin para 200 x g). Remova o PBS tanto quanto possível com uma ponta de micropipeta de 10 µ l sem cortes.
- Rotule as corrediças do microscópio para a identificação da amostra. Duas ou três amostras podem ser preparadas em cada slide. Coloque o slide no banco perto do bloco de calor com gel aquecida. Corte as pontas de três a cinco 20 pontas de micropipeta de baixa vinculação µ l por amostra com uma lâmina de barbear ou tesoura. Carrega duas micropipetas P20 com dicas de corte para permitir a rápida mudança de um para o outro.
- Usando a primeira micropipeta, adicionar 15 a 20 µ l de gel quente para o tubo de microcentrífuga Ilhéus/grânulos; imediatamente misture, evitando bolhas; e aplique a mistura líquida de agar/Ilhéus/grânulos para o slide para formar um < disco de diâmetro de 1 cm. Coloque o disco perto da borda do slide, deixando espaço para o anel exterior gel (próximo passo). Toque o slide suavemente várias vezes para acertar as ilhotas e grânulos.
- Usando uma segunda micropipeta, adicione 20 µ l de gel quente para o tubo de amostra. Em seguida, usando a primeira micropipeta, mistura novo gel com qualquer restantes Ilhéus/grânulos, re-aquecimento do bloco de calor se ele começa a se solidificar, aplica esta mistura para o slide, cercando o disco original. Repita, se necessário, usando dicas adicionais pré-cortada, até que o disco é o tamanho desejado e espessura.
Nota: Manipular o disco gelificado é mais fácil se o anel exterior é ligeiramente mais grosso. Geralmente, 3 x 20 µ l de gel é suficiente. Esta etapa minimiza a perda de Ilhéus pelo tubo lavagens e adiciona agarose ilhéu-pobres para o exterior do disco para facilitar a manipulação de disco. - Prepare-se individualmente a cada disco e manter o controle cuidadoso da ordem da amostra se colocar vários discos em cada slide.
- Coloque os slides sobre uma superfície plana de gelo molhado, com uma tampa, por 10 minutos ou até que o gel se solidifica. É mais difícil deslizar o disco fora do vidro se seca para fora.
- Biópsia de rótulo processamento/incorporação de fitas de tecido com lápis, um por exemplo. Seca a parte de trás do slide para evitar molhar o papel azul.
- Utilizando a extremidade sem corte de uma lâmina de barbear, empurre suavemente o disco em cada direção para livrá-lo do copo. Quando desliza facilmente, empurre lentamente o disco da lâmina de microscópio para o papel de tecido azul. Coloque o disco, o lado liso para baixo, diretamente no papel.
- Mantendo o disco liso, dobre o papel ao redor do disco para evitar o movimento, coloque o disco no papel dobrado na gaveta e fechar a gaveta. Se o disco não deslizar limpa do copo, adicionar mais gel e/ou retornar a corrediça para gelo por mais alguns minutos.
- Mergulhe a fita em PBS num copo. Processo para incorporação no mesmo dia para morfologia ideal de parafina.
4. parafina incorporação
Nota: O gel do Ilhéu de processo discos para blocos de parafina, usando uma série de desidratação abreviado conforme descrito abaixo. Esta técnica foi otimizada usando um processador automatizado, mas processamento manual deve produzir resultados semelhantes.
- Mergulhe fitas em 85% de etanol durante 15 minutos.
- Mergulhe fitas em etanol a 95% por 15 minutos.
- Mergulhe fitas em etanol 100% por 15 minutos. Repita duas vezes para um total de três lavagens.
- Mergulhe fitas em xilol durante 15 minutos. Repita duas vezes para um total de três lavagens.
- Mergulhe fitas em parafina derretida por 10 minutos.
- Transferi fitas para fresca parafina derretida por 10-30 minutos.
- Cuidadosamente Abra a gaveta e desembrulhei o papel azul. Retire o disco de gel, mantendo-se a par da superfície plana que se opunha ao jornal. Inserir o disco em um molde pequeno, com a superfície plana (contendo ilhéu) para baixo, paralelo à superfície de corte. Para a ficha, cuidadosamente retire a gaveta e incorporá-lo em um molde pequeno com a ponta apontando em direção à superfície de corte.
5. parafina, corte e coloração
- Rotular slides em sequência se seções seriais são necessárias.
- Têm 5 µm parafina seções cortadas por um histotechnologist experiente. Para maximizar o rendimento, salve todas as seções que contenham material. Geralmente, coletar 20 seções permite a captura da maioria do material.
- Armazenar as seções à temperatura ambiente. As seções são favoráveis à rotina histológicas manchas (por exemplo, H & E) e imunofluorescência (por exemplo, insulina, glucagon e DAPI). Otimize a fixação para outros antígenos, se necessário.
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Representative Results
Uma esquema ilustrada das etapas para preparar o gel de disco é mostrada na Figura 1. Este gel de disco método resulta em cortes de parafina que contêm um número suficiente de ilhotas distribuídas em um único plano para permitir significativa quantificação dos resultados. A Figura 2 mostra imagens de baixo-ampliação das seções resultantes para ilustrar o número de ilhotas capturado por seção. Em geral, > 35 Ilhéus eram visíveis em cada seção quando IEQ 250 foram utilizados para o procedimento, e > 10 seções (4-5 µm) contendo ilhotas foram obtidas de cada amostra. Aumento do número de ilhotas, usado para o procedimento aumentou o número de ilhotas nas seções. Ilhéus em seções foram estruturalmente diverso e de tamanhos variados, apoiando o conceito novo e interessante dados pode ser obtido usando seções, ao invés de técnicas cegas às diferenças inter ilhéu. O método funcionou igualmente bem para roedores ilhotas isoladas em laboratório (rato, rato) e para humanas ilhotas recebidas após o envio pelo IIDP. Ilhotas de roedores tinham visivelmente mais morfologia intacta após recuperação pós-isolamento durante a noite no meio da ilha, com uma superfície lisa e arredondada e compacta forma esférica(Figura 2). Morfologia humana ilhéu foi semelhante quando incorporado no dia de chegada ou quando incorporado após a recuperação pós-embarque durante a noite, talvez porque os ilhéus já tinham se recuperado do estresse de isolamento antes do embarque. O método de microtubo rendeu uma área transversal menor tecido, com menos ilhotas por seção e densamente ilhotas e grânulos (Figura 2B). As imagens de microtubo, mostradas na Figura 2B eram o melhor que fomos capazes de obter com este método; Dentre as amostras teve que ser enviado de volta para cortar seções mais porque não ilhéus foram encontrados no primeiro conjunto de seções.
Esta técnica gera seções de ilhéu de alta qualidade para histológica e mancha (Figura 3). Insulina e glucagon coloração mostraram a composição diversificada e heterogeneidade da arquitetura da ilha. As seções recapitulada claramente as diferenças de arquitetura conhecida entre humanos, camundongo e rato de Ilhéus, com ilhotas humanas compostas de α-células abundantes misturaram com células beta, Considerando que o camundongo e rato de Ilhéus mostraram arquitetura semelhante com um núcleo de célula beta e as células alfa na periferia. Seriais secções foram obtidas; os painéis na Figura 3 mostram seriais seções da mesma ilha manchado por H & E (esquerda) e imunofluorescência (à direita).
Figura 1 . Ilustração das etapas críticas para fazer o disco de gel de ilhéu. Gel aquecido a 70 ° C, em um bloco de calor (A) é transferido para o tubo de microcentrífuga de baixa ligação contendo a pelota ilhéu/pérola (B). Os ilhéus são resuspended no gel quente e transferidos para uma lâmina de vidro, espalhando o material em forma de disco (C-D). Gel de limpeza adicional é transferido para o tubo de microcentrífuga e, em seguida, todo o material restante é removido e espalhado circunferencialmente o disco inicial ilhéu/grânulo-contendo sobre a lâmina de vidro (E-F). Após a coagulação no gelo, o disco é lado transferido, liso, papel de histologia (G), que é dobrado e colocado em uma gaveta (H) para processamento. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2. Cortes de parafina de discos de gel contêm um grande número de ilhotas bem-distribuída. Painéis de baixa ampliação (A) (40 X, 3 x 3 imagens costuradas, com 15% de sobreposição) de rato, o rato ou seções de ilhota humana coradas com H & E mostram que muitas ilhotas são visíveis em cada seção. Inserções de alta ampliação (200 X) mostram representativas ilhotas. Painéis esquerdos mostram seções de ilhotas incorporadas imediatamente após o isolamento (rato, rato) ou expedição (humana); painéis de certo mostram ilhotas incorporadas após a recuperação durante a noite na cultura. Círculos azuis pálidos vistos em 40 imagens X estão as contas incluídas para visualização durante a incorporação e seccionamento. Estas amostras particulares são de um mouse de C57BL/6N (1 ano de idade) e o rato BBDR (4 semanas de idade), ilhotas isoladas por injeção de colagenase ductal e separação de Ficoll e humano T2D Ilhéus recebidas o IIDP. (B) 250 IEQ de ilhotas humanas incorporado pela velha técnica tubo de microcentrífuga, para comparação. Painéis de ampliação de baixa (40 X; uma única imagem unstitched capturou todo o material) e inserções mag alta (200 X) mostram seções representativas. Meio de cultura foi RPMI com 10% FBS, penicilina/estreptomicina e glicose 5,5 mmol/L. Escala de barras para painéis de baixa ampliação são 1000 µm; escala de barras para os painéis de alta ampliação são 50 µm. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3 . Representante histochemical e mancha em seções ilhéu serial. Seções de rato, rato e ilhotas humanas incorporado depois de cultura durante a noite foram manchadas por H & E e fotografada por microscopia brightfield (200 X; esquerda). Uma seção adjacente foi manchada para o glucagon insulina (vermelho), (verde), montado em meios contendo DAPI (azul) e fotografada usando microscopia fluorescente (200 X; direito). Barras de escala: 50 µm. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
Este método de encastre modificado baseados em gel-disco fornece um simples, barato e eficiente maneira de gerar um alto rendimento de ilhotas por seção. Construir o disco de gel sobre uma superfície plana de vidro facilita o espalhamento ilhotas em uma distribuição uniforme sobre uma área bem definida. Espalhar as ilhotas em um disco plano oferece a vantagem de colocar muitas ilhotas no plano da secção, otimizando o rendimento e permitindo menos ilhotas ser usado. A espessura do disco pode ser ajustada para atender às necessidades dos investigadores. Como várias seções podem ser obtidas, seriais seções dos ilhéus mesmos podem ser analisadas, aumentando o número de resultados distintos, que podem ser medidos com a mesma amostra experimental. Apesar de otimizado aqui para ilhotas pancreáticas, a técnica poderia ser aplicada a outro baixa abundância material, incluindo aqueles com pequenos pedaços, natureza friável ou amostras viscosas que seriam difíceis de processo. Este método é otimizado para Ilhéus fresco-fixo e não foi testado para outros tipos de material, tais como ilhotas previamente congeladas. Essas seções também podem ser úteis para em situ ensaios de hibridização detectar o DNA ou RNA. A adição de gel extra tem duas finalidades: para maximizar a coleção ilhéu e para proteger o centro do disco rico em ilhéu de interrupção durante a manipulação/transferência. O disco fino gel solidifica rapidamente e permite xileno e desidratação encurtada passos de infiltração para a incorporação de parafina. Formar o disco em uma superfície plana em vez de um recipiente secundário (microcentrífuga tubo ou cultura placa bem) torna mais fácil para transferir fisicamente o disco para a fita para processamento. Quando comparado com os resultados de técnica do disco, a técnica de microtubo tinha reduzido rendimento ilhéu e aglutinado distribuição ilhéu, embora o arranjo de tecido não-planas poderia gerar um maior número de ilhotas, contendo seções.
Os passos críticos do protocolo incluem a fixação de tecidos, a formação do disco gel, parafina, incorporação e de corte. Com relação a fixação, como testado por H & E e imunofluorescência para insulina e glucagon, nenhuma diferença foi detectada entre PFA e formol ou duração de fixação variando de 10-30 minutos (não mostrados). No entanto, duração e intensidade de fixação devem ser otimizadas para as necessidades do usuário final. A principal inovação contida neste protocolo é a preparação do gel de disco ilhéu; passos críticos estão resumidos na Figura 1. Etapas-chave incluem usando um pequeno volume de gel para concentrar o tecido em uma pequena área e formando o disco sobre uma superfície plana para organizar o tecido em um único plano de corte. Uso de tubos de microcentrífuga baixa vinculação e dicas e uma centrífuga de balde oscilante para todas as rodadas melhora o rendimento do tecido; ilhotas que grudar plástico após a fixação. Adição de grânulos facilmente visíveis auxilia com formação de disco, incorporação e seccionamento. Removendo a PBS tanto quanto possível antes de adicionar que o gel é fundamental para evitar a diluição o agarose, que leva à solidificação pobre e a dificuldade de transferir o disco para o papel. Mantendo o disco fino intacto enquanto deslizando-a partir da lâmina de vidro para o papel pode ser um desafio. Se uma ruga ocorre no disco, deixe-o voltar à posição original, adicionar mais gel e re-relaxar o slide. No que diz respeito a incorporação de parafina, é importante que o disco ser incorporado plano-lado para baixo e paralelo ao plano de corte. Um histotechnologist experimentada com corte cortes de parafina é essencial para o sucesso deste procedimento, desde que o material está concentrado na extremidade dianteira do bloco. Excessivo voltado para cima o bloco pode levar à perda da amostra. Recomenda-se começar a recolher seções, assim que os grânulos azuis são visíveis.
Duração e intensidade de fixação devem ser otimizadas para tecidos específicos e as necessidades do usuário final. O número de ilhotas, usado por exemplo pode ser modificado, se necessário; no entanto, reduzindo a matéria-prima gera seções com menos ilhotas. Discos maiores ou mais grossos podem ser gerados usando esta técnica; desidratação e passos de infiltração de xileno podem precisar ser alongada e devem ser otimizados. Se seções resultantes contém apenas uma forma de disco parcial, considere a possibilidade de que o disco não foi incorporado paralelo à superfície de corte. Se seções também são obtidas, o tecnólogo pode ter perdido material durante a preparação do bloco inicial.
Esse método gera seções contendo tecido ilhéu fixo e, como tal, só pode ser usado para os resultados histológicos. Para obter um grande número de ilhotas por seção, IEQ de 200-250 começar o material foi usado, que é um desafio para gerar para alguns tipos de experimento. Seções de alta qualidade são dependentes tendo um histotechnologist experiente.
A capacidade de gerar 10 + seções contendo muitas ilhotas de uma única condição experimental permitirá a quantificação dos resultados múltiplos no mesmo material, melhorando a eficiência experimental. Análise de rotina de ilhotas intactas pode levar a avanços na compreensão na heterogeneidade do tecido, não só a nível celular, mas também a nível da ilha, sobre a qual é entendida atualmente. Aplicar esta técnica para outras amostras de tecido limitada-abundância pode oferecer benefícios para outros campos também.
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Disclosures
Os autores têm sem conflitos de interesse para declarar.
Acknowledgments
Reconhecemos com gratidão o grupo de biologia de células Beta UMass Diabetes centro de excelência para as discussões e conselhos úteis. Ilhotas pancreáticas humanas foram fornecidas pelo NIDDK-financiado integrado ilhéu distribuição programa (IIDP) na cidade da esperança. Este trabalho foi financiado pelo NIH/NIDDK: R01-DK114686 (LCA), R01-DK105837 (CY), 2UC4DK098085 (IIDP) e pela Associação Americana de Diabetes conceder #1-15-BS-003 (LCA) em colaboração com a ordem do Amaranto.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1.5 mL Eppendorf tube | Norgen Bioteck Corp | P/N 10113 | |
| Ranin Classic Starter Kit | ShopRanin | 17008708 | |
| Ranin ClassicPipette PR-2 | ShopRanin | 17008648 | |
| Low Binding Tip (1000 μL) | Genesee Scientific | 24-430 | |
| Low Binding Tip (200 μL) | Genesee Scientific | 24-412 | |
| Low Binding Tip (20 μL) | Genesee Scientific | 24-404 | |
| Low Binding Tip (10 μL) | Genesee Scientific | 24-401 | |
| 10% Formalin solution | Sigma | HT501128 | |
| Paraformaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 15710-S | |
| Heatblock | VWR | 949312 | |
| HistoGel | Thermo Scientific | HG-4000-012 | |
| Agarose blue beads- Affi-gel | Bio-Rad | 153-7301 | |
| Dulbecco's PBS | Life technologies | 14190-144 | |
| Tissue processing cassette | Simport | M492-10 | |
| Bio-Wraps | Leica-Surgipath | 3801090 | |
| Citadel 2000 tissue processor | Thermo-Shandon LLC | ||
| Ethanol 200 proof | Decon Laboratories, INC | 2701 | |
| Xylene | Fisher Chemical | X5SK-4 | |
| Paraffin | McCormick Scientific | 39503002 | |
| Microtome | Thermo-Shandon LLC | Finesse ME+ | |
| Insulin antibody | DAKO | A0564 | |
| Glucagon antibody | Sigma | G2654 | |
| Fluoroshield with DAPI | Sigma | F6057 | |
| Alex fluor 594 secondary antibodies | Life technologies | A11076 | |
| Alex fluor 488 secondary antibodies | Life technologies | A11001 |
References
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