Summary
Qui, presentiamo un protocollo per determinare la temperatura ambientale preferita delle larve di Drosophila utilizzando un gradiente termico continuo.
Abstract
Molti animali, tra cui la Mosca della frutta, Drosophila melanogaster, sono in grado di discriminare minuscole differenze nella temperatura ambientale, che permette loro di cercare il loro paesaggio termale preferito. Per definire le preferenze di temperatura delle larve in un definito intervallo lineare, abbiamo sviluppato un'analisi usando un gradiente di temperatura. Per stabilire un gradiente di singolo-direzionale, due blocchi di alluminio sono collegati ai bagni di acqua indipendenti, ognuno dei quali controlla la temperatura dei singoli blocchi. I due blocchi impostare i limiti superiori e inferiori della sfumatura. Il gradiente di temperatura viene stabilito dall'immissione una piastra di alluminio rivestite su agarosio sopra i due blocchi d'acqua controllato in modo che la piastra si estende la distanza tra di loro. Le estremità della piastra in alluminio che è situato in cima ai blocchi d'acqua definisce le temperature minime e massime, e le regioni-tra i due blocchi formano una sfumatura lineare di temperatura. Il dosaggio di sfumato può essere applicato alle larve di diversa età e può essere utilizzato per identificare i mutanti che presentano fenotipi, come quelli con mutazioni a carico di geni che codificano per canali TRP e opsine, che sono necessari per la discriminazione di temperatura.
Introduction
Termotassi sono impiegato dagli animali mobili per selezionare un ambiente con condizioni più favorevoli1,2,3. Se il clima è troppo caldo o troppo freddo, questo comportamento è vitale per la sopravvivenza. Inoltre, molti animali sono sensibili alle differenze molto piccole di temperatura nella gamma confortevole e cercano un ambiente con una temperatura ideale. Questo è di particolare importanza per gli organismi pecilotermi come mosche della frutta, che equilibrare la loro temperatura corporea con l'ambiente. Saggi per monitorare termotassi larvali sono stati strumentali nell'individuare e chiarire i ruoli di sensori molecolari come Drosophila transitoria potenziale del ricevitore (TRP) canali4,5,6, Rhodopsins7,8e ionotropici recettore recettori (IRs)9, che dotare questi animali con le sensibilità di temperatura negli intervalli di temperatura diversi.
Un test a scelta a due vie fornisce un approccio per lo studio termiche preferenze in larve6,7. L'analisi comporta che istituisce due zone di temperatura distinte e permette agli animali di selezionare un lato rispetto a altro. I risultati dalle prove di scelta bidirezionale possono essere robusti, soprattutto se le differenze di temperatura tra le due opzioni sono grandi. Inoltre, poiché ogni dosaggio comporta tabulando solo due gruppi, i dati possono essere espresso come un indice semplice preferenza. La facilità e la semplicità di analisi scelta bidirezionale sono anche suscettibili di schermi genetici. Tuttavia, una limitazione importante è che molti esperimenti sono necessari per stabilire la temperatura preferita degli animali wild-type o mutanti.
Un'analisi di gradiente offre la possibilità di stabilire la temperatura preferita in una sola analisi8. Inoltre, a differenza del test a scelta a due vie, permette la valutazione della distribuzione di un gruppo di animali, quando si confronta con una serie continua di temperature. Un gradiente test utilizza una capsula di Petri e singoli animali ed è adatto per caratterizzare il comportamento dettagliato dei singoli animali10. Tuttavia, poiché le capsule di Petri sono rotondi, le dimensioni delle zone di temperatura variano e sono progressivamente più piccole a seconda della distanza dal centro. Pertanto, questa configurazione non è ideale per monitorare le selezioni di temperatura delle popolazioni di animali.
Un apparato di gradiente termico continuo che ben si adatta per valutare le preferenze di temperatura dei gruppi delle larve impiega un'arena rettangolare ed è descritto qui. L'apparato è semplice da costruire e assemblare. Inoltre, la sfumatura è lineare ed è flessibile in quanto può essere utilizzato per valutare la termotassi sopra ampi range di temperatura da 10 ° C a 42 ° C. Il dosaggio è rapido e semplice da eseguire e produce dati riproducibili. Oltre a segnalare la temperatura favorita delle larve, rivela le preferenze della popolazione degli animali nel corso di un'intera gamma lineare in un singolo esperimento. A causa di questi vantaggi, è una scelta eccellente per l'identificazione dei geni richiesti per la termotassi.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. le attrezzature fabbricazione e montaggio apparecchi per analisi di gradienti
- Fabbricare le piastre di dosaggio di alluminio per il dosaggio di gradiente unidirezionale.
- Tagliare e frantumare ogni piatto di dosaggio di alluminio (Figura 1A) da un unico pezzo di alluminio utilizzando una sega a nastro e taglienti mulino verticale con le seguenti dimensioni: la dimensione esterna è 140 x 100 x 9 mm e la dimensione interna è 130 x 90 x 8 mm (Figura 1B). Anodizzano all'interno di ciascuna piastra di dosaggio con vernice nera per renderlo più facile per visualizzare le larve e prevenire la ruggine.
Nota: Fabbricazione delle piastre di dosaggio di alluminio per la sfumatura di unidirezionale è fatto da un negozio di macchina. L'anodizzazione è eseguita da un fornitore commerciale. - Contrassegnare i bordi superiori e inferiori di ciascuna piastra di dosaggio con 13 delimitazioni, separate da 10 mm usando un pennarello indelebile. Posizionare il prime e l'ultima delimitazioni 5 mm dal bordo interno delle piastre di dosaggio (Figura 1A, B).
- Tagliare e frantumare ogni piatto di dosaggio di alluminio (Figura 1A) da un unico pezzo di alluminio utilizzando una sega a nastro e taglienti mulino verticale con le seguenti dimensioni: la dimensione esterna è 140 x 100 x 9 mm e la dimensione interna è 130 x 90 x 8 mm (Figura 1B). Anodizzano all'interno di ciascuna piastra di dosaggio con vernice nera per renderlo più facile per visualizzare le larve e prevenire la ruggine.
- Per realizzare la piastra di dosaggio di alluminio per la sfumatura di bidirezionale, tagliare una lastra di alluminio con le seguenti dimensioni usando le cesoie lamiera: 250 x 220 x 2 mm. Anodizzi le piastre di dosaggio con vernice nera.
Nota: Fabbricazione delle piastre di dosaggio di alluminio per le pendenze bidirezionale viene eseguita da un negozio di macchina. L'anodizzazione è fatto da un fornitore commerciale. - Fabbricare i blocchi di alluminio.
Nota: Due blocchi sono necessari per la sfumatura di unidirezionale e tre blocchi sono necessari per la sfumatura di bidirezionale.- Tagliare i blocchi di alluminio (Figura 1) da un unico pezzo di alluminio utilizzando una sega a nastro (dimensioni 50 x 255 x 14 mm) (Figura 1, D).
- Trapano il canale di acqua all'interno del blocco (7 mm di diametro) utilizzando un mulino verticale e scanalature di thread nelle estremità aperte su un lato (Figura 1). Chiudere i fori scanalati con bulloni e nastro sigillante per filettature di formare un canale di acqua a forma di U (Figura 1, D).
Nota: La realizzazione dei blocchi di dosaggio di alluminio viene eseguita da un negozio di macchina. - Fissare il connettore del blocco di alluminio (Figura 1) con viti filettate e nastro ad una estremità della guarnizione del filo. Inserire l'altra estremità con barbe multiple (ID 1/4" x 3/8" diametro x 1/16" parete) di tubo in silicone.
- Ottenere due bagni circolanti refrigerata/riscaldata.
- Assemblare i blocchi a temperatura controllata per il sistema di dosaggio gradiente.
- Per il gradiente unidirezionale collegare ciascuno dei due blocchi di alluminio a bagno d'acqua separata affinché la temperatura di ogni blocco è controllata da un indipendente acqua circolante sistema (Figura 2A). Utilizzare tubi in silicone (ID 1/4" x 3/8" diametro x parete 1/16") per collegare l'uscita del bagno d'acqua con il connettore sul lato interno del blocco in alluminio (Figura 2A). Inoltre, è possibile utilizzare tubi per collegare il connettore lato esterno sul blocco di alluminio all'ingresso del bagno d'acqua.
- Per la sfumatura di bidirezionale, posto due dei tre blocchi in basso a sinistra e a destra del piatto e collegarli a bagno d'acqua stessa con il tubo (Figura 2B). Collegare il terzo blocco di alluminio per un secondo bagno di acqua e posto sotto il centro della piastra (Figura 2B).
Nota: Questo apparato e test sono necessari solo se le larve si accumulano nella zona a uno bordo o l'altro della sfumatura unidirezionale. Se è così, è importante valutare se o non c'è un effetto di bordo. Per verificare questa possibilità, stabilire un gradiente di bidirezionale in cui la temperatura della zona bordo preferita dalle larve usando il gradiente unidirezionale (es. 18 ° C) è la temperatura al centro del piatto della sfumatura bidirezionale (Figura 3E , F).
2. larvale sincronizzazione
- Nutrire mosche da utilizzarsi per la deposizione delle uova.
- Granuli di lievito mix e acqua distillata con un pestello per fare il lievito pasta. Accuratamente macinare e mescolare fino a quando la consistenza della pasta è simile al burro di arachidi. Evitare pasta eccessivamente secca, che potrebbe sfaldarsi durante il trasferimento di mosche al freschi fiale, o bagnato pasta, che potrebbe intercettare le mosche.
- Con un pestello, aggiungere la pasta di lievito vicino alle pareti interne dei flaconi di Drosophila , appena sopra la superficie del cibo.
- Le femmine totali 12-35 e fino a metà come molti maschi (ma non più di 10) su un tappetino di CO2 e aggiungere le femmine e i maschi per ogni flaconcino contenente pasta di lievito.
- Per mantenere al volo il cibo con la pasta di lievito in umido, mentre le mosche si nutrono, combinare queste fiale in un vassoio che contiene fino a 100 fiale con 20 fiale aperte contenente solo acqua distillata. Riporlo in un sacchetto di plastica trasparente e guarnizione.
- Incubare la piastra in un incubatore a 25 ° C per 48 h in modo che le femmine sono nutrite adeguatamente, consentendo loro di disporre di un numero elevato di uova.
- Impostare fiale per la deposizione delle uova.
- Trasferire le mosche nutrite in nuovo cibo fiale per la raccolta di uova toccando loro sopra. Non utilizzare CO2, che può causare le mosche a deporre le uova meno la seguente finestra di breve periodo di tempo.
Nota: Fiale cibo Standard Drosophila sono utilizzati senza lievito pasta per la raccolta delle uova. - Consentire le mosche a deporre le uova per 3 h a 25 ° C affinché tutte le uova sono raccolti nel corso di un intervallo di tempo relativamente stretta.
Nota: Ciò consentirà alle larve di essere sincronizzati nella stessa fase inerente allo sviluppo. - Posizionare le fiale che contengono le uova nel vassoio contenente le fiale di acqua e stringere la borsa. Incubare a 25 ° C sotto luce: 12 h 12 h cicli scuri.
- Età le larve per un determinato numero di ore dopo la deposizione delle uova (AEL) a seconda dello stadio larvale desiderato.
Nota: Nella tabella 1 è una stima del rapporto tra le ore AEL e lo stadio larvale, che varia a seconda il brodo volo, alimento usato, allevamento temperatura ecc il rapporto preciso fra AEL e Stadio di sviluppo deve essere verificato da ciascun investigatore utilizzando criteri fisici, quali la morfologia della bocca ganci e spiracoli11.
- Trasferire le mosche nutrite in nuovo cibo fiale per la raccolta di uova toccando loro sopra. Non utilizzare CO2, che può causare le mosche a deporre le uova meno la seguente finestra di breve periodo di tempo.
3. installazione gradiente di temperatura
- Preparare la sfumatura unidirezionale
- Per creare un ambiente ambiente umido durante le analisi, posizionare i due blocchi di alluminio collegati a due bagni su tovaglioli di carta bagnati, separate da 10 cm (Figura 2A).
- Accendere i due bagni ~ 2 h prima di iniziare il dosaggio per consentire tempo sufficiente per la temperatura di blocchi di alluminio per equilibrare.
Nota: Si consiglia di eseguire un esperimento di simulazione per determinare la temperatura di ogni bagno di acqua che è necessario per raggiungere la desiderata sfumatura lineare di temperatura. Alcune coppie di temperatura tipica per impostare l'acqua dei bagni sono elencate nella tabella 2. Si noti tuttavia che le temperature di superficie sono interessate dalla temperatura ambientale. La lunghezza dei tubi anche colpisce le temperature come c'è il raffreddamento nei tubi. La lunghezza della tubazione nel nostro setup è 1,5 m. - Forno a microonde 100 mL di agarosio all'1% l'impostazione ad alta potenza in un 500 mL bottiglia bocca larga e versare 25 mL/piastra su un benchtop livello di analisi. Preparare due piastre di dosaggio, che possono essere posizionati sui blocchi di alluminio allo stesso tempo (Figura 2A).
- Dopo l'agarosio è solidificato (10-20 min), strofinare delicatamente ogni superficie di agarosio con una spugna da cucina standard o una spugna di melamina per rendere la superficie dell'agarosi leggermente grossolana, così che quando si spruzza acqua sul gel dell'agarosi, verrà creata una membrana liscia e sottile dell'acqua, e non le goccioline di acqua si formano.
- Immergere completamente le piastre in un contenitore con acqua distillata fino a quando il dosaggio è pronto per essere eseguita per impedire che le piastre ottenendo essiccata.
- Preparare una sfumatura bidirezionale (opzionale)
- Per creare un ambiente ambiente umido durante le analisi, è possibile inserire tre blocchi di alluminio 8 cm di distanza (Figura 2B) su tovaglioli di carta bagnati.
- Accendere i due bagni ~ 2 h prima di iniziare il dosaggio per consentire tempo sufficiente per la temperatura di blocchi di alluminio per equilibrare.
Nota: Si consiglia di eseguire un esperimento di simulazione per determinare la temperatura di ogni vasca di acqua per la sfumatura di bidirezionale. Alcune coppie di temperatura tipica per impostare l'acqua dei bagni sono riportate nella tabella 3. Si noti tuttavia che le temperature di superficie sono interessate dalla temperatura ambientale. La lunghezza dei tubi anche colpisce le temperature come c'è il raffreddamento nei tubi. La lunghezza della tubazione nel nostro setup è 1,5 m. - Per impedire la fuoriuscita della piastra di agarosio, avvolgere i bordi della piastra in alluminio con etichettatura nastro per formare un muro di 10 mm di altezza (Figura 2B).
- Utilizzando l'impostazione ad alta potenza, forno a microonde 200 mL di agarosio all'1% in un 500ml bottiglia bocca larga rotonda e versare 120 mL su una piastra di dosaggio.
- Dopo l'agarosio è solidificato (~ 30 min), strofinare delicatamente ogni superficie di agarosio con una spugna da cucina standard o una spugna di melamina per rendere la superficie di agarosio leggermente grossolana, in modo che quando si spruzza acqua sul gel dell'agarosi, viene creata una membrana liscia sottile acqua e no forma di goccioline di acqua.
- Immergere completamente le piastre di dosaggio in un contenitore con acqua distillata fino a quando il dosaggio è pronto per essere eseguita per impedire loro di seccarsi.
- Impostare la sfumatura unidirezionale
- Preparare i reagenti e gli elementi su una panchina accanto l'apparato di analisi gradiente (Vedi la Tabella materiali).
- Per promuovere il trasferimento di temperatura efficiente, riempire eventuali spazi vuoti tra i blocchi di alluminio e le piastre di dosaggio spruzzando acqua all'interfaccia tra i blocchi e la piastra.
- Utilizzando guanti, rimuovere le piastre di dosaggio dal contenitore dell'acqua. Se acqua invade tra il gel di agarosio e la piastra e provoca urti alla forma sulla superficie, rimuovere l'acqua con una micropipetta P1000.
- Posizionare le piastre di dosaggio sui blocchi di alluminio affinché coincidano con le delimitazioni che sono 2 cm dal bordo esattamente i bordi dei blocchi di alluminio (Figura 2A, C).
- Spruzzare acqua sulla superficie della piastra (una membrana di acqua sottile che copre la superficie dell'agarosi è sufficiente) per impedire l'essiccazione del gel dell'agarosi. Assicurarsi che la membrana di acqua è continuo e gratuito di goccioline d'acqua, poiché le larve possono rimanere intrappolate nelle goccioline di acqua.
- Coprire il sistema di sfumatura con una scatola di cartone per ridurre l'evaporazione dell'acqua e contribuire a stabilizzare la temperatura della superficie del gel. Attendere 5-10 minuti consentire alla temperatura equilibrare.
- Controllare la temperatura superficiale a 12 punti sulla piastra (Figura 2). Prendere due misurazioni all'interno di ogni zona per stabilire o meno c'è variabilità all'interno di una zona. Assicurarsi che la temperatura in entrambi i punti è un'approssimazione di ± 0,2 ° C della temperatura desiderata.
Nota: Variabilità all'interno di una zona si verifica in genere perché le distanze esatte dei due punti al bordo dei blocchi di alluminio non sono identiche. Regolare la posizione della piastra sui blocchi di alluminio per assicurarsi che le delimitazioni che sono 2 cm dal bordo esattamente corrispondano i bordi dei blocchi di alluminio. - Se il gradiente di temperatura misurato si discosta dal gradiente desiderato, aumentare o diminuire le impostazioni di temperatura vasca acqua e ricontrollare la temperatura in superficie dopo la temperatura del bagno (s) acqua stabilize(s).
- Coprire il sistema di sfumatura con una scatola di cartone fino ad iniziare l'analisi.
- Impostare sfumatura bidirezionale (opzionale)
- Preparare i reagenti e gli elementi su una panchina accanto l'apparato di analisi gradiente (Vedi la Tabella materiali).
- Spruzzi d'acqua sulle superfici dei tre blocchi di alluminio per promuovere il trasferimento di temperatura efficiente dai blocchi di alluminio per le piastre di dosaggio di riempire eventuali spazi vuoti tra le superfici.
- Rimuovere le piastre di dosaggio attentamente dal contenitore dell'acqua e sui blocchi di alluminio. Se l'acqua invade tra il gel di agarosio e la piastra, che potrebbe causare urti alla forma sulla superficie, rimuovere l'acqua con una micropipetta P1000.
- Posizionare la piastra di test sui blocchi di alluminio affinché le mediane delle zone prime e l'ultima da uno dei due bordi coincidano esattamente i bordi dei blocchi di alluminio due laterali (Figura 2B, D).
- Spruzzare acqua sulla superficie della piastra (una membrana di acqua sottile che copre la superficie dell'agarosi è sufficiente) per impedire l'essiccazione del gel dell'agarosi. Assicurarsi che la membrana di acqua sia continuo e privo di gocce d'acqua, poiché le larve possono rimanere intrappolate nelle goccioline di acqua.
- Coprire il sistema di sfumatura con una scatola di cartone per ridurre l'evaporazione dell'acqua e contribuire a stabilizzare la temperatura della superficie del gel. Attendere 5-10 minuti per consentire alla temperatura di equilibrare.
- Controllare la temperatura della superficie in due punti lungo la linea mediana di ognuna delle 10 zone (Figura 2D). Prendere due misurazioni all'interno di ogni zona per stabilire o meno c'è variabilità all'interno di una zona. Assicurarsi che la temperatura in entrambi i punti è un'approssimazione di ± 0,2 ° C della temperatura desiderata.
Nota: Variabilità all'interno di una zona si verifica in genere perché le distanze esatte dei due punti al bordo dei blocchi di alluminio non sono identiche. Regolare la posizione della piastra sui blocchi di alluminio per assicurarsi che le mediane delle zone prime e l'ultima più vicina ogni bordo corrispondono esattamente i bordi dei blocchi di alluminio due laterali. - Se il gradiente di temperatura misurato si discosta dal gradiente desiderato, regolare le impostazioni di temperatura vasca acqua e ricontrollare la temperatura in superficie dopo la temperatura del bagno (s) acqua stabilize(s).
- Coprire i blocchi con una scatola di cartone fino all'inizio del test.
4. lavaggio e raccolta larvale
- Isolare le larve pulite (opzione 1)
- Aggiungere soluzione di saccarosio 18% ~ 40 mL in una provetta 50 mL. Raccogliere tutte le larve dal cibo o i flaconcini con un scoopula e trasferimento alla soluzione di saccarosio al 18%.
- Mescolare accuratamente, ma delicatamente utilizzando un scoopula per separare le larve da residui di cibo. Attendere per 30-60 s galleggiante larve per lo strato superiore del tubo. Versare lo strato superiore contenente le larve (~ 10 mL) ad un altro tubo da 50 mL e riempire il tubo con soluzione di saccarosio fresca 18%. Attendere per 30-60 s galleggiante larve per lo strato superiore ancora una volta.
Nota: Le particelle di cibo grande a volte trasferire insieme a larve e possono influenzare la termotassi larvale se non vengono rimossi. Se le particelle di cibo grande rimangono nello strato superiore, ripetere i passaggi 4.1.1-4.1.2, o rimuovere manualmente mediante un scoopula. - Trasferire lo strato superiore delle larve (~ 10 mL) due altre provette da 50 mL e riempire i due tubi con acqua distillata per ridurre la concentrazione di saccarosio, in modo che le larve affondano rapidamente in acqua. Attendere per 30-60 s le larve affondano sul fondo. Eseguire questo e i seguenti passaggi più rapidamente possibile per evitare che le larve dall'annegamento.
- Gran parte dell'acqua come possibile smaltire inclinando delicatamente i tubi. Combinare le larve in una provetta versando le larve con l'acqua rimanente e riempire il tubo con acqua distillata.
- Attendere per 30-60 s tutte le larve lavandino giù e rimuovere quanta più acqua possibile inclinando delicatamente i tubi. Ripetere questo passaggio di lavaggio 2 - 4 volte a completamente rimuovere saccarosio e visibile tutto il cibo.
- Scartare come molta acqua come possibile e trasferire le larve a un vuoto 35 mm di Petri di decantazione. Spruzzare il tubo con acqua e utilizzare un pennello piccolo per contribuire a trasferire le larve.
- Togliere l'acqua in eccesso di Petri utilizzando una micropipetta P1000. Lasciare ~0.5 mL di acqua per prevenire la disidratazione delle larve.
- Posizionare il coperchio sul piatto per impedire le larve di fuggire. Ruotare il coperchio capovolto per ridurre la capacità delle larve di fuggire attraverso il piccolo spazio tra il coperchio e piatto. Permettere alle larve di recuperare per 10-20 min.
- Isolare le larve pulite (opzione 2)
Nota: Questo metodo alternativo per la pulizia di larve attenua la possibilità di soffocare le larve durante la procedura di lavaggio. Per utilizzare questo metodo, procedere con i passaggi seguenti dopo aver eseguito il 4.1.1-4.1.2 passi sopra.- Posizionare un filtro cella (300 µm, conserva le larve 72h AEL o più vecchi) in cima a un tubo da 50 mL.
- Dopo la conferma che non c'è nessun adulti corpi o i residui di cibo che galleggiano sulla superficie della soluzione di saccarosio, versare lo strato superiore contenente le larve attraverso il colino per intercettare tutte le larve sullo schermo di maglia. Lavare le larve accuratamente con acqua distillata fino a riempita il tubo da 50 mL.
- Rimuovere il filtro cella con le larve e smaltire l'acqua usata dal tubo. Posizionare il filtro contenente le larve in cima il tubo vuoto e lavare le larve nuovamente con acqua distillata fino a riempita il tubo da 50 mL.
- Capovolgere sottosopra il colino un vuoto 35 mm di Petri e spruzzare acqua dalla parte superiore del filtro cella di trasferire le larve per la capsula di Petri. Trasferire le larve rimanenti utilizzando un pennello piccolo.
- Continua al passo 4.1.7 sopra prima di procedere al passaggio 5.
5. analisi e calcolo
- Rimuovere la scatola di cartone e controllare la temperatura di superficie del gel immediatamente prima di trasferire le larve alla piastra. Ridurre al minimo il tempo che la scatola di cartone è aperta per evitare di perturbare l'equilibrio di temperatura. Se la superficie è asciutta, Spruzzare una piccola quantità di acqua sulla superficie.
- Distribuire 150 ± 50 larve vicino al centro di ogni piatto (tra le zone 3 e 4 fuori delle 6 zone) per la sfumatura di unidirezionale (zona di rilascio; Figura 2).
Nota: Per la sfumatura di bidirezionale, distribuire 200-400 larve lungo il centro della zona di ciascuna metà (Figura 2D). - Mettere un coperchio di micropiastre sopra ogni piatto di dosaggio per impedire che le larve strisciando fuori. Coprire il programma di installazione con una scatola di cartone per evitare l'esposizione alla luce, che può influire sulla scelta larvale su gel di agarosio.
Nota: Per la sfumatura di bidirezionale, dovrebbe non essere necessaria per coprire la piastra con un coperchio, perché la piastra è più grande, e la temperatura preferita delle larve è nella zona centrale. Di conseguenza, alcune larve si accumulano ai bordi e abbiano l'opportunità di strisciare fuori. - Consentire l'analisi di procedere per 10-30 min per la sfumatura di singolo-direzionale e per 15-35 min per la sfumatura di bidirezionale, a seconda dell'età delle larve (tabella 4).
- Rimuovere la scatola di cartone e il coperchio di micropiastre. Fotografare le piastre dall'alto con una fotocamera digitale. Prendere due fotografie di ciascuna piastra di dosaggio in modo che lo sperimentatore può scegliere quello con migliore contrasto e luminosità per l'analisi.
- Rimuovere tutte le larve dalle piastre di dosaggio e ovunque di fuori le piastre dall'aspirazione.
- Pulire le piastre di dosaggio, i tubi e il filtro cella accuratamente con acqua distillata. Riutilizzare le piastre di dosaggio preparate quel giorno a meno che la superficie di agarosio è danneggiata.
- Calcolare la distribuzione percentuale delle larve in ciascuna zona.
- Aprire l'immagine fotografica dei risultati del saggio utilizzando qualsiasi software che permette di aggiungere le marcature all'immagine. Per indicare le zone di dosaggio, disegnare linee verticali ogni 2 cm basato su demarcazioni sulla piastra di dosaggio.
- Contare il numero di larve in ciascuna zona e registrare i numeri. Non contano le larve nelle regioni 0,5 cm da qualsiasi delle pareti. Il gel è più spesso vicino alle mura, e le temperature di superficie non sono lineari in queste regioni.
- Per il gradiente unidirezionale, calcolare la distribuzione percentuale in ciascuna zona come segue:
(numero di larve in una determinata zona di 2 cm) / (numero totale delle larve in 6 zone) x 100. - Per il gradiente di bidirezionale, calcolare la distribuzione percentuale in ciascuna zona come segue:
(numero di larve in una determinata zona di 2 cm) / (numero totale delle larve in 5 zone su ciascun lato della sfumatura) x 100.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Per stabilire un singolo 18 ° C - 28 ° C-direzionale gradienti, abbiamo impostato le temperature dei due bagni a 16,8 ° C e 31 ° C. Otteniamo le temperature a 13 punti misurando la temperatura a 26 posizioni all'interno di porzioni superiore ed inferiore di tutte le 6 zone, le linee di confine tra le zone e alle estremità della superficie del gel di agarosio (Figura 2, 2E). La distribuzione di temperatura lungo il gradiente era quasi lineare (Y = 0,9672 * X + 16,19, R2 = 0.9961) (Figura 2E).
Abbiamo analizzato le preferenze di temperatura delle larve di controllo (w1118) alle varie età. 1st (24 ± 1,5 h AEL), 2nd (48 ± 1,5 h AEL) e primi 3rd larve (72 ± 1,5 h) ha mostrato i picchi nella zona di 24 ° C (Figura 3A, B). Le preferenze di temperatura cambiate durante 3rd instar sviluppo larvale. La percentuale maggiore di metà-3rd instar (96 ± 1,5 h AEL) accumulato nella zona di 18 ° C (Figura 3A, B), e questa polarizzazione aumentato con l'età. Tra tardo-3rd instar larve (pre-arrampicata; 120 ± 1,5 h AEL), ~ 50% raggruppati nella zona di 18 ° C, e la selezione di questa temperatura era ~ 4 volte superiore rispetto all'area adiacente 20 ° C (zona di 18 ° C, 50,2%; zona di 20 ° C, 15,1%; Figura 3A B). La propensione ad accumularsi nella zona di 18 ° C in w1118 non era dovuta ad un effetto di bordo poiché il tardo-3rd instar larve ancora accumulate nella zona di 18 ° C, utilizzando un gradiente di temperatura bidirezionale (Figura 3E, F ).
Abbiamo testato anche tardo-3rd instar larve (120 ± 1,5 h AEL) con le mutazioni in geni richiesti per discriminare le differenze di temperatura nella gamma confortevole. Questi includono trpA1, che è richiesto per la selezione di temperatura normale nel 18 ° C - 24 ° C gamma5,7,8. Larve con una mutazione nulla in trpA1 (trpA11) distribuiscono ugualmente sopra l'intero 18 ° C-28 ° C gradiente (Figura 3). Larve mancanti solo le isoforme A e B (trpA1-ABG4) o le isoforme di C e D (trpA1-CDG4) inoltre mostrano i danni severi (Figura 3). Mosche codificano due isoforme di fosfolipasi Cβ (PLC21C e NORPA) e le mutazioni che interessano norpA (norpAP24) ma non plc21c (plc21cP319) anche disturbare accumulo tra i 18 ° C ( Figura 3D).
Figura 1. Apparato per eseguire il dosaggio di gradiente di temperatura unidirezionale. (A) un alluminio prova piastra utilizzata per analizzante comportamento larvale termotassi. Le 13 linee nere nella parte superiore e inferiore demarcare 12 zone (10 mm). Il fondo del piatto è anodizzato con vernice nera così che è più facile visualizzare le larve. (B) dimensioni della piastra in alluminio (indicata in mm). La dimensione esterna della piastra in alluminio è 140 x 100 x 9 mm. La dimensione interna della piastra in alluminio è 130 x 90 x 8 mm. Le delimitazioni sono separate da 10 mm. La delimitazione di prima e l'ultima è 5 mm dai bordi dell'area dell'interno della piastra. Home Page (C) e una vista laterale di uno dei blocchi di alluminio utilizzati per controllare la temperatura della sfumatura. Il blocco ha due connettori usati per collegare ai tubi di silicone, che si collegano a un bagno d'acqua. (D) dimensioni di un blocco di alluminio. La dimensione esterna del blocco in alluminio è 255 x 50 x 14 mm. Il diametro del percorso dell'acqua interna è di 7 mm. Due connettori di 30 mm a sinistra connetterti con tubo in silicone che si estende a bagno d'acqua. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2. Configurazioni di gradiente dosaggio singolo e bidirezionale. (A) il setup gradiente unidirezionale con due piastre di dosaggio di alluminio su due blocchi di alluminio. Le temperature dei blocchi in alluminio sono controllate da circolazione di acqua da due bagni. (B) la disposizione dei tre blocchi di alluminio, bagni di acqua e un piatto di alluminio (250 x 220 mm) per una sfumatura bidirezionale. I blocchi di destro e sinistro sono collegati a bagno d'acqua stessa e il blocco centrale è connesso ad altri bagno d'acqua. La piastra di dosaggio di alluminio è avvolto con del nastro adesivo per formare un muro di 10 mm per contenere l'agarosio all'1%. (C) posizioni per controllare le temperature (indicate da puntini) e rilasciare larve sulla piastra. Prima di iniziare un esperimento, controllare la temperatura in due punti all'interno di ogni zona per confermare che il gradiente di temperatura lineare desiderato è stato stabilito. Le larve vengono rilasciate entro la zona indicata vicino al midline. Le larve vengono conteggiate all'interno di ciascuna delle zone di 2 cm. (D) posizioni per controllare temperature (indicate da punti) e le zone di rilascio per le larve su un gradiente bidirezionale. Un numero uguale di larve vengono rilasciato lungo la linea mediana di ciascuna metà della sfumatura bidirezionale. I numeri delle larve sono contati in ognuna delle 10 (2cm) zone. Un tipico insieme di temperature (18 ° C - 26 ° C) sulla superficie dell'agarosi è indicato. (E) le temperature misurate lungo le linee di confine e mediane di ciascuna zona in una sfumatura di unidirezionale del campione. I dati rappresentano le temperature medie ± SD. n = 8 saggi (150 ± 50 larve/dosaggio). Parti di questa figura sono riportati da Sokabe et al. 8 con lievi modifiche. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3. Risultati rappresentativi utilizzando dosaggi di gradiente unidirezionale e bidirezionale. (A, B) Percentuali medie di larve in 6 zone sul gradiente unidirezionale. I dati comprendono 3rd instar larve degli orari indicati dopo (AEL) la deposizione delle uova. n = 6-7. Le barre di errore in un rappresentano valori. (C) termica distribuzioni del pre-arrampicata tardo-3rd instar larve di controllo (w1118) e trpA1 mutanti sul gradiente unidirezionale. n = 3-4. Le barre di errore rappresentano valori. (D) distribuzioni termiche delle larve instar tardo-3rd di controllo (w1118) e mutanti PLCβ sul gradiente unidirezionale. n = 4-6. Le barre di errore rappresentano valori. (E) distribuzione rappresentativo delle pre-arrampicata, tardo-3rd larve instar (w1118) sul gradiente bidirezionale. Le zone di dosaggio destro e sinistro sono indicate da linee tratteggiate e separate dalla zona no-conteggio nel centro (area ombreggiata). (F) percentuale di pre-arrampicata tardo-3rd instar larve (w1118) in ciascuna zona lungo il gradiente termico. Le larve sono state collocate nella parte sinistra e destra rilascia zone. Le zone di dosaggio sono separate da una zona di no-conteggio di 3 cm nel centro e le distribuzioni sono calcolate in modo indipendente. Le barre di errore rappresentano SEMs. n = 3 saggi (larve/dosaggio di 200-400). Parti di questa figura sono riportati da Sokabe et al. 8 con lievi modifiche. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
| Ore AEL | Stadio larvale | |
| 24 | 1st instar | |
| 48 | 2nd instar | |
| 72 | Primi 3rd instar | |
| 96 | Metà-3rd instar | |
| 120 | Tardo-3rd instar, appena prima di salire la fase | |
Tabella 1. Il rapporto tra le ore dopo (AEL) la deposizione delle uova e stadi larvali.
| Gradiente di temperatura sulla piastra di agarosio (pendenza) | Temperature di bagni d'acqua | Temperature di blocchi di alluminio |
| 10.0-25,0 ° C (1,5 ° C/cm) | ~6.5-7°C/~28.5°C | ~8.5°C/~26.8°C |
| 18.0-28,0 ° C (1° C/cm) | ~16.8°C/~31.0°C | ~17.8°C/~29.7°C |
| 14.0-34,0 ° C (2° C/cm) | ~10.0°C/~40.0°C | ~11.8°C/~36.8°C |
| 12.5-42,0 ° C (2,95 ° C/cm) | ~7.0°C/~55.0°C | ~9.4°C/~49.4°C |
Tabella 2. Gradienti di temperatura tipici e le corrispondenti temperature dei bagni di acqua e blocchi di alluminio per le singole sfumature direzionale.
| Gradiente di temperatura sulla piastra dell'agarosi | Temperature di bagni d'acqua | Temperature di blocchi di alluminio |
| 22/10/22 ° C (1,5 ° C/cm) | ~5.0°C /~25.0°C | ~7.5°C/~24.0°C |
| 26-18-26 ° C (1° C/cm) | ~15.8°C /~30.6°C | ~16.9°C/~28.4°C |
| 30-14-30 ° C (2° C/cm) | ~8.5°C /~36.4°C | ~10.9°C/~32.8°C |
| 36-12,5-36 ° C (2,95 ° C/cm) | ~5.0°C /~47.2°C | ~7.9°C/~40.9°C |
Tabella 3. Gradienti di temperatura tipici e le corrispondenti temperature dei bagni di acqua e blocchi di alluminio per le sfumature bidirezionale.
| Età larvale (AEL) | Tempo di dosaggio (singolo direzionale) | Tempo di dosaggio (bidirezionale) |
| 24 h | 30 min | 35 min |
| 48 h | 22 min | 27 min |
| 72 h | 16 min | 21 min |
| 96 h | 13 min | 18 min |
| 120 h | 10 min | 15 min |
Tabella 4. Diverse età larvale (AEL) e i tempi di test corrispondenti.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Per garantire il successo di questo protocollo, è importante adottare misure per ottenere un numero adeguato di larve per eseguire gli esperimenti. Questi includono pre-alimentazione le mosche in flaconcini contenenti pasta di lievito per 2-3 d migliorare la deposizione delle uova. I flaconcini devono essere collocati in una vaschetta contenente acqua fiale e racchiuso in un sacchetto di plastica trasparente, che mantiene l'umidità del cibo e promuove l'alimentazione efficace dalle larve permettendo l'esposizione a cicli normali di chiaro-scuro. Tuttavia, la pasta di lievito non dovrebbe essere così morbida che le mosche intrappolate. Il numero di femmine per flaconcino dipende dal genotipo. Nel caso di w1118, è solitamente sufficiente consentire ~ 12 femmine e maschi ~ 6 a deporre le uova per 3 h. Due flaconcini in genere forniscono abbastanza larve (larve di 100-200) per mettere su un piatto per il dosaggio di unidirezionale. Se lo stock di Mosca depone uova meno che il selvaggio-tipo o si riduce la percentuale di larve che si schiudono, aggiungere maschi e femmine aggiuntive (fino a 30-35/flaconcino).
Ci sono molte cause della variabilità accidentale durante l'esecuzione di queste analisi. Lo stadio di sviluppo riguarda la preferenza di temperatura delle larve. Pertanto, è assolutamente necessario utilizzare con attenzione le larve di una fase definita. A tale scopo, è necessario raccogliere larve per un lasso di tempo stretto (ad esempio, 3 h). Poiché l'allevamento condizioni (temperatura, umidità, ciclo luce-buio e tipo di alimento) e alcune mutazioni incidono sul tasso di sviluppo, non basarsi strettamente sul tempo dopo per analizzare in modo paragonabile la deposizione delle uova all'età di larve. È anche importante esaminare i tratti fisici, ad esempio le dimensioni della bocca ganci e spiracoli-7 per determinare se le larve di diversi genotipi sono nella stessa fase inerente allo sviluppo. I tempi per 1st, 2nd e 3rd instar larve di sviluppare (tabella 1) sono basate sull'utilizzo di alimenti a base di farina di mais e incubazione a 25 ° C in 12 h luce: 12 h cicli scuri. Le larve crescono più lentamente su alimenti a base di melassa. Corretta idratazione e cibo freschezza colpisce anche la crescita delle larve. La quantità di acqua nel cibo dovrebbe lasciare il cibo troppo sciolto a causa di eccessiva acqua né troppo asciutto a buccia indietro dal flaconcino. Idealmente, il livello di ~ 5 mm più vicina alla superficie del cibo è condizionato dalle larve crescente e si muove facilmente quando la fiala è inclinata o con attacco filettata. Questa condizione può essere ottenuta utilizzando cibo fresco con 50-100 larve.
È essenziale per stabilire un gradiente di temperatura stabile prima di iniziare il dosaggio. Quindi, accendere il bagno d'acqua 1-2 h prima di iniziare il dosaggio, come l'acqua dei bagni produca calore e potrebbe modificare la temperatura ambiente, che a loro volta hanno il potenziale per influenzare la sfumatura. Dopo 1-2 h, equilibra la temperatura ambiente più con aria condizionata camere. Tuttavia, questo deve essere determinato in ogni ambiente. Inoltre, quando si genera un gradiente con un ampio intervallo di temperatura (> 3,0 ° C/cm), può essere difficile ottenere un gradiente stabile. Un piccolo movimento della piastra dosaggio cambia in modo più significativo il gradiente di temperatura quando l'intervallo è grande (ad es. > 3,0 ° C/cm). Abbiamo trovato che una pendenza di 1-2 ° C/cm produce i gradienti più stabili.
Ci sono parecchie considerazioni aggiuntive che devono essere controllati per limitare la variabilità nei saggi termotassi. Le larve di lavaggio è critica, come la presenza di particelle di cibo o saccarosio sulle larve possa influenzare il test. La procedura di lavaggio deve essere eseguita accuratamente, ma rapidamente, perché limitare il loro rifornimento di ossigeno eccessivamente mentre essi sono sommersi nell'acqua può incidere sulla loro salute. Pertanto, si consiglia di utilizzare il filtro cella (opzione 2) per pulire le larve. Un filtro con un diametro dei pori di 300 µm funziona bene per le larve al precoce-3rd instar fase (72h AEL) o più vecchi. Inoltre, è importante eseguire esperimenti allo stesso tempo del giorno, ad esempio da Zeitgeber tempo ZT4 (ZT) a ZT8 (ZT = 0 è quando si accenderanno le luci), per limitare la variabilità a causa di impatti dei ritmi circadiani sulla selezione della temperatura. Il livello di umidità sulla piastra dell'agarosi può anche causare la variabilità nei risultati. Mentre la superficie delle piastre deve essere umido, gocce d'acqua potrebbe intercettare le larve e quindi devono essere evitati.
Limitare la variabilità nei saggi renderà possibile ottenere risultati affidabili senza eseguire un numero elevato di esperimenti indipendenti. In genere, 3-8 esperimenti indipendenti sono sufficienti per ottenere un risultato affidabile. È anche fondamentale per il successo dei saggi termotassi corretta tabulazione dei risultati. Non contano le larve distribuite nelle regioni all'interno di 0,5 cm dalle pareti in alluminio, dal momento che le temperature non sono lineari in queste regioni. Alcune larve saranno posizionati al confine tra due zone, nel momento in cui che il test è concluso. Se più del 50% della lunghezza del corpo si trova in una zona, quindi includere la larva nella tabulazione per quella zona. Se una larva è precisamente il 50% in ognuna delle due zone, poi contare l'animale come 0,5 larve in ciascuna zona.
Mentre l'analisi di gradiente permette alle larve di discriminare una gamma di differenze di temperatura, non ci sono limitazioni alle temperature inferiore e superiore che possono essere testate in modo efficace. Non è fattibile per testare le temperature < 10 ° C, poiché la mobilità delle larve diminuisce notevolmente a temperature più basse. Anche se le sfumature con temperatura superiore raggiungono i 42 ° C possono essere stabilite, quasi nessun larve di controllo soggiorno in qualsiasi zona > 28 ° C. Di conseguenza, saggi di gradiente continui non possono essere utilizzati per discriminare le preferenze di temperatura tra varie zone > 28 ° C. Tuttavia, analisi di gradienti a queste temperature elevate potenzialmente utilizzabili per la caratterizzazione di mutanti se essi altamente scansato preferenze di temperatura calda.
Se un mutante ha un difetto dell'apparato locomotore, può essere necessario condurre ulteriori esperimenti per assicurarsi che la preferenza di temperatura apparente non è imprecisa a causa di un danno di movimento. Per ovviare a questo problema potenziale, può essere necessario stabilire tempi di analisi più lunghi per consentire il tempo aggiuntivo di animali di muoversi nelle loro zone desiderata. Il dosaggio di gradiente bidirezionale può essere impiegato anche per verificare se gli animali selezionare la stessa zona preferita, indipendentemente da dove si trovano inizialmente sulla piastra.
In conclusione, i saggi gradienti descritti qui presentano vantaggi sopra altri saggi termotassi. Mentre la scelta a due vie saggi sono utili, come essi possono portare a risultati robusti, soprattutto quando le differenze di temperatura tra le due zone sono grandi, non sono efficaci nel rivelare la temperatura ideale preferita dalle larve in un singolo esperimento. Per effettuare questa operazione richiede l'esecuzione di molte combinazioni di scelta a due vie per determinare il più preferito temperatura5,6,7. Al contrario, il dosaggio della sfumato fornisce l'animale l'opportunità di selezionare la loro zona di temperatura preferita in un ambiente con un paesaggio di unica temperatura continuo. Così, non è necessario inventare una grande combinazione di scelte a due vie per determinare l'ambiente termale preferito. Studiare termotassi utilizzando un piatto tondo di Petri è stato impiegato per valutare gli effetti della temperatura sulle dinamiche di movimento di una larva10. Tuttavia, è meno utile nel discriminare tra le preferenze tra diverse temperature, poiché ogni zona è una dimensione diversa. Infine, grazie alla semplicità di dosaggio e la sua utilità nelle preferenze di temperatura piccolo discriminante in una sola analisi, può essere impiegato per decine di schermo di geni potenzialmente coinvolti nella preferenza di temperatura larvale che potrebbe in caso contrario essere trascurato utilizzando altri dosaggi
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Gli autori non hanno nulla a rivelare.
Acknowledgments
C.M. è supportato da finanziamenti da nia (EY008117, EY010852), NIDCD (DC007864, DC016278) e il NIAID (1DP1AI124453).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Gradient assay apparatus | |||
| PolyScience 9106, Refrigerated/Heated 6L Circulating Bath | Thomas Scientific | 9106 | This model is discontinued. Updated replacement models include: 1186R00 and 1197U04 for 120 V, 60 Hz, or 1184L08 and 1197U04 for 240 V, 50 Hz. |
| Aluminum assay plate (for single directional gradient) | Outer size: 14 x 10.1 x 0.9 cm, inner size: 12.9 x 8.7 x 0.8 cm, black anodized. | ||
| Aluminum plate (for bidirectional gradient) | 25 x 22 x 0.2 cm, black anodized. | ||
| Aluminum block | Outer size: 25.5 x 5 x 1.4 cm, parameters of inner channels are shown in Figure 1D. | ||
| Connector for aluminum blocks and tubing | McMaster-Carr | 91355K82 | |
| Tygon Sanitary Silicone Tubing | Tygon | 57296 | 1/4" ID x 3/8" OD x 1/16" wall |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Items and reagents for assay | |||
| Pestle | USA Scientific | 17361 | Pestle for 1.5 mL microcentrifuge tubes |
| Thermometer | Fluke | 51II | |
| Thermocouple | Fluke | K type | |
| Universal microplate lid | Corning | 6980A77 | |
| 35 mm dish | Corning | 9380D40 | |
| Labeling tape (for bidirectional gradient) | Fisher Scientific | 15-951 | Fisherbrand labeling tape 2 in x 14 yds |
| Agarose | Invitrogen | 16500500 | Prepare 1% solution |
| Sucrose | Sigma | S0389-5KG | Prepare 18% solution right before starting assay |
| Paint brush | Fisher Scientific | 11860 | |
| 50 mL centrifuge tubes | Denville | C1062-P | |
| Scoopula | Fisher Scientific | 14-357Q | |
| 500 mL round wide-mouth bottle | Pyrex | 1395-500 | |
| Cell strainer (300 mm pore) | PluriSelect | 43-50300 | Optional item for larvae washing |
| Cardboard box (vial tray) | Genesee Scientific | FS32-124 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Drosophila food | |||
| Distilled water | 22,400 mL | ||
| Cornmeal, yellow (extra fine mesh,flocked) 20 kg | LabScientific Inc. | NC0535320 | 1,609 g |
| Brewers yeast 100 lbs | MP Biomedicals | ICN90331280 | 379 g |
| NutriSoy® Soy Flour (10 kg/unit) | Genesee Scientific | 62-115 | 221 g |
| Drosophila Agar, Type II (5 kg) | Genesee Scientific | 66-103 | 190 g |
| Karo light corn syrup | Karo | 1,700 mL | |
| Methyl 4-hydroxybenzoate (suspend in 200 proof ethanol) | Sigma Aldrich | H5501-5KG | 72 g/240 mL |
| Propionic acid puriss. p.a.,>99.5% (GC) | Sigma Aldrich | 81910-1 L | 108 mL |
| Phosphoric acid ACS reagent, ≥85 wt. % in H2O | Sigma Aldrich | 438081-500 mL | 8.5 mL |
References
- Fowler, M. A., Montell, C. Drosophila TRP channels and animal behavior. Life Sci. 92, 394-403 (2013).
- Palkar, R., Lippoldt, E. K., McKemy, D. D. The molecular and cellular basis of thermosensation in mammals. Curr Opin Neurobiol. 34, 14-19 (2015).
- Vriens, J., Nilius, B., Voets, T. Peripheral thermosensation in mammals. Nat Rev Neurosci. 15 (9), 573-589 (2014).
- Rosenzweig, M., et al. The Drosophila ortholog of vertebrate TRPA1 regulates thermotaxis. Genes Dev. 19, 419-424 (2005).
- Kwon, Y., Shim, H. S., Wang, X., Montell, C. Control of thermotactic behavior via coupling of a TRP channel to a phospholipase C signaling cascade. Nat Neurosci. 11, 871-873 (2008).
- Kwon, Y., Shen, W. L., Shim, H. S., Montell, C. Fine thermotactic discrimination between the optimal and slightly cooler temperatures via a TRPV channel in chordotonal neurons. J Neurosci. 30 (31), 10465-10471 (2010).
- Shen, W. L., et al. Function of rhodopsin in temperature discrimination in Drosophila. Science. 331 (6022), 1333-1336 (2011).
- Sokabe, T., Chen, H. S., Luo, J., Montell, C. A switch in thermal preference in Drosophila larvae depends on multiple rhodopsins. Cell Rep. 17, 336-344 (2016).
- Ni, L., et al. The Ionotropic Receptors IR21a and IR25a mediate cool sensing in Drosophila. Elife. 5, 13254 (2016).
- Luo, L., et al. Navigational decision making in Drosophila thermotaxis. J Neurosci. 30 (12), 4261-4272 (2010).
- Ashburner, M., Golic, K. G., Hawley, R. S. Drosophila: a laboratory handbook. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. (2005).
