Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Biology

نموذج تنوعاً من الإصابة بالقراد الصلب في الأرانب المختبرية

doi: 10.3791/57994 Published: October 6, 2018

Summary

قمنا بتطوير نظام بسيط وتنوعاً لتغذية القراد الصلب في الأرانب المختبرية. لدينا بروتوكول غير شاقة يستخدم مواد يسهل الوصول إليها ويمكن تعديلها تبعاً لاحتياجات مختلف البيئات التجريبية. يسمح الأسلوب الرصد مريحة و/أو أخذ العينات من القراد طوال فترة الرضاعة.

Abstract

استخدام الحيوانات الحية في بحوث التجزئة حاسم بالنسبة لمجموعة متنوعة من الأغراض التجريبية بما في ذلك الحفاظ على المستعمرات القراد الصلب في المختبر. في القراد، جميع مراحل النمو (باستثناء البيض) هيماتوفاجوس، والحصول على وجبة دم عند إرفاق مضيفيهم الفقاريات أمر ضروري للنجاح في إنجاز دورة حياتها. هنا نظهر أسلوب بسيط يستخدم كبسولات أوبينابل بسهولة لتغذية القراد الصلب في الأرانب. وتشمل مزايا الطريقة المقترحة بساطته، وقصيرة المدة وتنوعاً والأهم من التكيف مع احتياجات متطلبات تجريبية محددة. الأسلوب الذي يجعل من الممكن استخدام دوائر متعددة (بأحجام مختلفة) في الحيوان نفسه، الذي يسمح بتغذية متعددة المراحل أو مجموعات تجريبية مختلفة مع خفض شرط الحيوانية عموما. المواد غير مزعجة ويمكن الوصول إليها بسهولة استخدامها يقلل عدم الراحة للحيوانات، والتي يمكن بسهولة استردادها من تجربة وعرضت لاعتماده أو إعادة استخدامها إذا كان بروتوكول أخلاقي يسمح لها.

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

القراد الصلب (اكسودودي) معروفة جيدا المفصليات تغذية بطيئة ويمكن تركيبها على مضيف لعدة أيام، أو أسابيع، تبعاً للأنواع الأحيائية والتنمية المرحلة1. هذه المفصليات هيماتوفاجوس إلزامية ناقلات لمجموعة متنوعة من العوامل المعدية, مثل البكتيريا، البروتوزوا والفيروسات، وهكذا تشكل خطرا كبيرا على البشر وصحة الحيوان1. عند دراسة البيولوجيا التجزئة أو تقييم أساليب التحكم الجديدة، إنشاء التجزئة الفعالة نظام التغذية بالغ الأهمية من أجل فعالية تصميم التجارب وإنجاز الأهداف الدراسة. في الآونة الأخيرة، كانت عدة نظم التغذية التجزئة المصطنعة (تجنب استخدام الحيوانات الحية) المتقدمة2،،من34 وينبغي استخدامها كلما كان ذلك ممكناً. بيد أن هذه النظم لم تكن قادرة على تحل تماما محل التجزئة التي تتغذى على الحيوانات الحية، وأنها ليست بدائل مناسبة لكثير من الظروف الفسيولوجية اللازمة للدراسات العلمية. ولذلك، في بعض الحالات، استخدام المضيفين الحيوانات التجريبية أمر حاسم لضمان ملاءمة النتائج التجريبية.

أرانب نيوزيلندا المختبرية أظهرت أن يكون المضيفين الأكثر مناسبة ويمكن الوصول إليها لعدة إيكسوديد التجزئة الأنواع5،،من67،،من89. كثيرا ما تستخدم استراتيجيات مشتركة اثنين من التجزئة تتغذى الأرانب: أ) تتغذى على آذان الأرانب مغطاة بالقطن من القماش أو الجوارب6،7، وب) التغذية في أكياس القطن9أو النايلون زجاجات10 أو النيوبرين الدوائر11 لصقها إلى الخلف للأرنب. تغذية على آذان أرنب ليس نظاما أنيقة، للقراد (المراحل المبكرة خاصة أو اليرقات أو الحوريات) قد الزحف ونعلق في عمق قناة الإذن، وهو غير مريحة للحيوان ويجعل مراقبة تغذية القراد و/أو الاسترداد محتقن علامات التجزئة الصعبة. هذا النظام أيضا تقتصر على اثنين فقط من المجموعات التجزئة على آذان تغطيها كاملة socks يحميها الياقات الاليزابيثي، تمثل مشقة كبيرة للحيوان. أخرى نظم9،10،11 بالتأكيد أكثر تقدما وأيضا مناسبة لصيانة مستعمرة القراد الصلب. ومع ذلك، فهي محدودة في عدد المجموعات التجريبية على الأرنب فضلا عن الأحجام/الأشكال القابلة للتعديل لدوائر التغذية. وبالإضافة إلى ذلك، غالباً ما تتطلب هذه البروتوكولات ضربت أرجل الأرنب الخلفي لتجنب خدش واستخدام أطواق الاليزابيثي لمنع الاستمالة.

هنا نقترح طريقة بسيطة وغير مجهدة وفعالة جداً لتغذية مجموعات متعددة من القراد الصلب في الدوائر المغلقة لصقها على الأرنب مرة أخرى تشملها سترة، مما يلغي الحاجة للياقات الاليزابيثي أو ضربت خلال التجربة. على وجه التحديد، يستخدم نظامنا مطاطا كبسولات مصنوعة من ورقة رغوة خلات (إيفا) الإيثيلين الفينيل تغطيها شبكة البعوض ولصقها على الأرنب حلق مرة أخرى مع الغراء مطاط غير مهيج تمتين سريعة (3 دقائق). هذا الأسلوب يتيح المرفق كبسولات متعددة الشكل أو الحجم المطلوب، وبضعة أسابيع بعد التجربة هي الأرانب تعافي تماما. النظام مناسبة أساسا للمراحل القراد الصلب نيمفال والكبار، ولكن مع القليل من التعديل يمكن استخدامه لليرقات التغذية كذلك. الأساليب المستندة إلى رغوة إيفا للقراد الصلب التغذية قد أن تتكيف مع أنواع أخرى من الفقاريات المضيفين، الأغنام مثلاً (التي تظهر كأحد البدائل في هذه الورقة).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

ملاحظة: في هذه الدراسة، أبقى الأرانب في أقفاص القياسية مع الغذاء والمياه libitum الإعلانية في الوكالة الفرنسية للغذاء، والبيئة والصحة المهنية ومرافق السلامة (الضمان) المعتمدين لدى الحيوان في ميسونسالفورت، فرنسا. الحيوانات وتم رصد مرتين يوميا باثنين من الفنيين ذوي الخبرة لأي ردود فعل الجلد غير طبيعي أو مشاكل صحية أو مضاعفات. تم تأمين الغرفة التجريبية بتأطير داخلية المدخل مع الشريط على الوجهين لتجنب حوادث الهروب من القراد. الأسلوب الذي يعمل بشكل أفضل إذا كان شخصان العمل كفريق واحد، ولكن من الممكن إكمال واحد توازن بشخص من ذوي الخبرة. على الرغم من أن معظم الأرانب سهلة الانقياد والهدوء، قد تحدث علامات الإجهاد خلال التلاعب. لضمان أن أرنب لا تجرح نفسها التي تكافح، قد أنجزت ضبط النفس دليل بالضغط بلطف من القفا العنق في يد واحدة بينما جهة أخرى يدعم ذلك أرباع هند. الستة الشهر القديم، رامبوييه أبقى في مركز للبحوث الطبية الحيوية (CRBM) مرافق الأغنام الإناث في المدرسة البيطرية الوطنية من Alfort (انفة)، حيث المياه والغذاء ad متواصلة، التي تم توفيرها وتم إيداعه مرتين يوميا.

ملاحظة: لدينا مختبر تلقت الإذن باستخدام الأرانب والأغنام للتجزئة التغذية "لجنة الأخلاقيات" للحيوان جاء تجارب الضمان/آنفا/أوبيك وتسمح 01741.01 أرقام 11/10/16-5B، على التوالي. منذ استخدمنا فقط خالية من مسببات المرض القراد في تجاربنا، عرضت جميع الأرانب المستخدمة في هذه الدراسة لاعتماد عن طريق "الرابطة الأرنب الأبيض"، باريس، فرنسا.

1-إعداد كبسولات

  1. تقطع بالحجم المرغوب الكبسولة من ورقة رغوة إيفا (الشكل 1أ). جولة الخارجي زوايا (الشكل 1ب) الكبسولة لتقليل مفرزة العرضي عند الالتصاق على جلد الأرانب.
    ملاحظة: سمك الإطار الكبسولة يجب أن يكون حوالي 8 مم. استخدم ورقة رغوة سميكة 5 مم لليرقات والحوريات، والأنواع الصغيرة التجزئة الكبار مثل إيكسوديس. ورقة رغوة سمك 1 سم يعتبر مناسباً لحجم كبير القراد الكبار مثل ذبابة القراد sp.، هيالوما sp.، إلخ ويختلف الحجم الكبسولة استناداً إلى متطلبات التجريبية. على سبيل المثال، للأزواج الكبار Ixodes 20 أو 200 الحوريات أو اليرقات 1,000، نحن نستخدم حجم كبسولة داخلية 5 × 5 سم2, 6 × 7 سم2 أو 7 × 9 سم2، على التوالي.
  2. قص 8 مم شرائط ذاتية اللصق هوك الشريط (انظر الجدول للمواد)، والتمسك بها لإعداد الإطار رغوة إيفا (الشكل 1ج).
  3. قص الشريط (انظر الجدول للمواد) شرائط الحجم نفسه من حلقة ذاتية اللصق وربطهم إلى الجانبين هوك تعلق على الإطار إيفا رغوة (الشكل 1د).
  4. خفض الحجم المناسب لشبكة البعوض غرامة (حجم فتحات الشباك أقل من 50 ميكرومتر) إلى حجم الإطار رغوة إيفا والتمسك بها إلى حلقة ذاتية اللصق (الشكل 1E و 1F). قص يتدلى إذا لزم الأمر.
    ملاحظة: يمكن استخدام هذا النوع من كبسولة لتغذية الحوريات والبالغين من الأنواع القراد الصلب، بينما يلزم وجود نظام ختم مختلفة من الكبسولات لتغذية اليرقات (تكميلية الشكل 1) لمنع الهروب العرضي لليرقات عن طريق يثبت الجانب هوك وحلقة.

2-إعداد الأرنب قبل الإصابة بالقراد

  1. حلاقة منطقة أرنب الظهر والجانبين ليتم استخدامها مع لوس أنجليس كليبرز (الشكل 2أ).
  2. تطبيق غير مهيج الغراء مطاط لكامل سطح الكبسولة المعدة والانتظار لمدة 1 دقيقة (الشكل 2ب).
  3. الصق الكبسولة بالضغط على الجلد (خاصة في الزوايا) مع الأصابع لمدة 3 دقائق (الشكل 2 و 2D).
    ملاحظة: عند الالتصاق كبسولة واحدة أو أكثر، تأكد من إبقاء على الأقل 5 ملم مسافة بينهما (الشكل 2E و 2F). ونحن عادة تجنب منطقة العمود الفقري، ولكن يمكن استخدامها إذا لزم الأمر.
  4. رفع قليلاً كبسولات للتحقق بصريا من تمسكهم بالجلد. إذا تم العثور على مناطق غير مرفقة، تطبيق الغراء باستخدام ملعقة واضغط لمدة 3 دقائق أخرى.
  5. تطبيق شريط الحماية على آثار أقدام خلفية الأرنب لمنع الضرر سترة (الشكل 2ز).
    ملاحظة: هذه الخطوة اختيارية، وهو أساسا لمنع الأضرار سترة، وعدم الأضرار بالكبسولة القراد.
  6. وضع في سترة أرنب بوضع الأرجل الأمامية من خلال الفتحات وشد الرقبة، صنع أرنب التأكد من التنفس تظل مريحة. ولا وضع الساقين الخلفية عن طريق التسييج مطاطا في هذه الخطوة وترك السوستة مفتوحة (الشكل 2ح).

3-القراد الإصابة

  1. ضع القراد في محقن بلاستيك (1 أو 5 مل تبعاً لعدد الأفراد) مع الإبرة-نهاية قص وتوصيله بالقطن (الشكل 1ز). إذا كانت كمية صغيرة من علامات التجزئة تكون موبوءة، استخدام الملقط.
    ملاحظة: للسماح صيانة مستعمرة القراد القراد انجورجيد female(s) لوضع البيض الفقس لاحقاً داخل المحقن (5 أو 10 مل) تغطيها شبكة البعوض مغلفة ب المطاط فرقة12 لتفادي التلاعب شاقة من اليرقات في الوقت أنهم تطبيق المضيف (الشكل 1ح). أيضا، قد يسمح لليرقات محتقن تماما أن تساقط في المحاقن (1I "الشكل تكميلية"؛ 5 أو 10 مل) للإصابة المباشرة من الأرنب مع الحوريات.
  2. ضع المحاقن عمق الكبسولة عن طريق الفتح الزاوية وتطعيم القراد عن طريق دفع المكبس المحاقن. تويست المكبس تجاه جلد الأرانب لإزالة القراد المتبقية التي تعلق على المكبس ببطء، وفي نفس الوقت تخلعها من الكبسولة (الشكل 2أنا).
    ملاحظة: إذا كان بعض الأفراد الزحف خارج الكبسولة، تعود عليهم باستخدام الملقط.
  3. إغلاق الكبسولة قبل ريفاستينينج الشريط هوك وحلقة.
  4. وضع الأرجل الخلفية للأرنب في مؤخرة مغلقة التسييج مطاطا سترة والرمز البريدي.
    ملاحظة: جعل أن سبابة يمكن أن تناسب بين رقبة السترة والارنب لضمان الراحة وأيضا لتجنب المضغ على السترة.
  5. عودة الأرنب إلى القفص (الشكل 2ياء).
    ملاحظة: الوقت من الإصابة لجمع حافل القراد تختلف بين التجزئة مختلفة الأنواع والمراحل التنموية. على سبيل المثال، سكابولاريس إيكسوديس و Ixodes ريسينوس، مدد التغذية للكبار، والحوريات واليرقات هي 6-9، 3-4، و 2-3 أيام، على التوالي. يمكن الاطلاع على قائمة بالمراجع ل 29 دورة حياة القراد الصلب مختلفة تحت ظروف المختبر ليفين وشمشير (2016)9.

4-جمع ورصد علامات التجزئة

  1. أن الأرنب من القفص إلى مقاعد البدلاء وفك السترة.
  2. كبح جماح الأرنب بيديك بلطف. فتح الكبسولة بواسطة أونفاستينينج الشريط هوك وحلقة (الشكل 2 K و 2 L) وجمع القراد بالفرشاة اليرقات محتقن (تكميلية الشكل 1) أو الحوريات إلى طبق بلاستيك أو استخدام الملقط للكبار (الشكل 2L ). إذا كانت تغذية جزئيا (غير حافل) القراد مطلوبة, استخدام التجزئة الإعصار أو الملقط لفصل لهم.
    ملاحظة: إذا كان الحفاظ على المستعمرات التجزئة يرجى الاطلاع على الملاحظة في الخطوة 3، 1. الحفاظ على محتقن القراد في المناسبة الرطبة وظروف الحرارة وفقا للأنواع خاصة القراد.
  3. إذا لزم الأمر، ريفاستين الشريط هوك وحلقة لإغلاق الكبسولة.

5-استرداد الأرنب

  1. إزالة شبكة البعوض تماما من الكبسولة وترك السترة على الأرنب (الشكل 2متر).
  2. انتظر 3-4 أسابيع، وفي محاولة لإزالة الكبسولة بلطف التشذيب أحد أركانه (الشكل 2ن). إذا كان لا يزال راسخا مرفقا الكبسولة، كرر هذه الخطوة بعد أسبوع واحد.
  3. قم بإزالة الغلاف وتمكنك من استرداد الأرنب في القفص.
    ملاحظة: بمجرد إيقاف الكبسولة، تحقق جلد الأرانب لردود أفعال غير طبيعية. على الرغم من أن عادة لا يوجد علاج غير مطلوب، يمكن استخدام محلول المطرية في حالة تهيج.
  4. إذا كان السماح للبروتوكول وتجارب، يمكن إعادة استخدامها الأرنب المستردة (الشكل 2س) أو المعروضة للتبني.
    ملاحظة: سيظهر الأرانب للحصول على مقاومة القراد مرة تتعرض للتجزئة المتكررة الجراد13؛ ولذلك، لا ينصح رينفيستيشنز ما لم يتطلب التجربة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

هنا نقترح للمرة الأولى طريقة مفصلة خطوة بخطوة تغذية القراد الصلب في رغوة إيفا كبسولات المطبقة على ظهر أرنب حلق، تغطيها سترة (الشكل 1 و الشكل 2). هذا البروتوكول مناسبة لأنواع مختلفة من التجارب عند مجموعات التجزئة مختلفة على نفس المضيف مطلوبة، ويمكن أن تستخدم أيضا لتربية جماعية للقراد الصلب. القراد تغذية النجاح في المختبر معظمها يعتمد على اللياقة البدنية للأفراد القراد ومدى ملاءمة المضيف أرنب للأنواع خاصة القراد، بدلاً من الأسلوب نفسه. لدينا نظام استخدام رغوة إيفا كبسولات لصقها على الأرنب مرة أخرى ثبت أن تكون ناجحة للغاية عند تغذية مختلف مراحل النمو من القراد الصلب المختلفة الأنواع (الجدول 1) وأيار/مايو أيضا تكييفها لنوع آخر من المضيفين المختبر، مثل (الأغنام الشكل 3).

المزايا الرئيسية لهذا الأسلوب هي البساطة، مواد يسهل الوصول إليها (جدول المواد)، والأهم من ذلك، نظام فتح-إغلاق مريحة مما يتيح سهولة رصد القراد أثناء تغذية. وبالإضافة إلى ذلك، هذا الأسلوب تنوعاً يتيح الإمكانية لمجموعة متنوعة من إعدادات تجريبية مختلفة استناداً إلى عدد قابل للتعديل، وشكل وتكوين كبسولات على المضيف (الشكل 2د-F)، مواجهة التحديات دراسة خاصة. يضمن استخدام الغراء مطاط عالية فعالة وسريعة الجفاف، وغير مزعجة الكبسولة ملتصق بشدة في ثلاث دقائق ويظل المرفق لمدة ثلاثة أسابيع على الأقل. يسمح هذا الإجراء أيضا الانتعاش الكامل من الأرنب المضيفين بعد التجارب (الشكل 2س).

Figure 1
الشكل 1 : إعداد إيفا الرغوة كبسولة والقراد. (أ وب) قطع الكبسولة من الرغوة EVA. (ج) وضع الشرائط ذاتية اللصق هوك الشريط إلى الكبسولة. (د) ربط الشرائط الجانبية حلقة وتقشير الشريط من السحابات. (ه، و) الشائكة في mesh البعوض إلى الشرائط اللاصقة. (ز) مثال للقراد الصلب الكبار داخل المحقن (5 مل) مع قطع نهاية الإبرة مشمولة بالقطن. (ح) مثال طازج تفقيس اليرقات داخل المحاقن مع نهاية الإبرة قطع تغطيها شبكة البعوض الذي عقد في مكان بشريط المطاطي. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 2
الشكل 2 : الالتصاق الكبسولة للأرنب، ضع علامة على إزالة الإصابة/يتعافى والكبسولة. (أ) حلق مرة أخرى أرنب. (ب) تطبيق الغراء على استعداد إيفا الرغوة كبسولة. (ج، د) مرفق كبسولات حجم مختلف للأرنب. (ه، و) عرض الظهرية أرنب عرض اثنين أو عدة دوائر إلى الخلف، على التوالي. (ز) الشريط هو المتمركزة حول القدمين الخلفي. (ح) السترة يطبق بدءاً من الأرجل الأمامية والرقبة والجزء الخلفي هو ترك الباب مفتوحاً. ويرد أيضا افتتاح الركن الكبسولة. (أنا) وضع علامات التجزئة للكبسولة عبر زاوية مفتوحة باستخدام المحاقن. (ي) السترة هو من نوع zip تماما وهو نقل الأرنب إلى القفص. (ك) رصد علامات التجزئة خلال على التغذية عن طريق فتح الكبسولة. (ل) جمع القراد مفعمة باستخدام الملقط في. (م) كبسولة فارغة بعد إزالة التجزئة. (ن) مفرزة الكبسولة (بعد 3-4 أسابيع) من الأرانب. (س) تعافي تماما الأرنب الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 3
الشكل 3 : إيفا رغوة نظام يتكيف مع الأغنام. (أ) مرفق كبسولات الرغوة لحلق وتنظيفها في الجهة الجانبية من الأغنام إلى الوراء. (ب) بعد الإصابة، مغطاة كبسولات المرفقة ضمادة (ستوكينيتي العظام)، بدلاً من سترة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

أنواع القراد عدد علامات التجزئة الموبوءة/عدد محتقن القراد (%)
اليرقات الحوريات الإناث
Ixodes ricinus - 692/557 (80.49%) 670/592 (88.35%)
سكابولاريس إيكسوديس - - 40/34 (85%)
ريتيكولاتوس ديرماسينتور 3,550/3255 (91.7%) 900/803 (89.22%) 323/305 (94.42%)
أبينديكولاتوس رهيبيسيفالوس 3,300/2822 (85.52%) 490/421 (85.91%) 370/362 (97.83%)
بولتشيلوس رهيبيسيفالوس - 1,920/1831 (95.36%) 282/257 (91.13%)
Amblyomma variegatum 332/225 (67.77%) 404/308 (76.24%) 207/146 (70.53%)
Amblyomma americanum - 140/134 (95.71%) 31/27 (87.1%)
فيها هيالوما 1,000 * 510 * (58.8%) 380/313 (82.36%)

الجدول 1: معدل تحفل لمختلف مراحل نمو أنواع القراد الصلب تتغذى الأرانب داخل كبسولات رغوة إيفا- * نظراً لعملية التقشر سريع لمراحل غير ناضجة فيها حاء ، تركت اليرقات انجورجيد (البيانات لا تظهر) تساقط في الحوريات محتقن في وقت لاحق في نفس الكبسولة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

أن أهم خطوة في هذا البروتوكول كامل هو الغراء الكبسولة بحزم للجلد حلق. لهذا السبب، الضغط المستمر لمدة 3 دقائق على الأقل الهامة، لا سيما في الزوايا. عند تطعيم القراد في الكبسولة، من المهم أن تنطبق عليها عميقا في الركن المقابل من واحدة مفتوحة إلى تجنب التجزئة الهروب أثناء الختم. عند التخطيط للتجارب، تأكد من أن جميع الكبسولات مشمولة في سترة لتجنب الأضرار بمضغ أو الخدش. تأكد من أن منطقة الرقبة السترة ضيق ما يكفي لمنع مضغ لكن فضفاضة بما فيه الكفاية أن الأرنب لا تزال مريحة.

واحدة من المزايا الرئيسية للأسلوب الذي وصف ببساطته وتلك التعديلات من حيث الحجم ويمكن استخدام عدد من الكبسولات. وخلال تجاربنا، لم تراع مفرزة من كبسولات من الجلد. ومع ذلك، قد تحدث أضرارا عرضية من السترة (ولكن ليس الكبسولة) بالارنب.

في الأرانب، وقد لاحظنا أنه في الكبسولة، ديسيككاتي أسرع محتقن-فصل تماما القراد (مراحل أساسا غير ناضجة مثل اليرقات والحوريات) بسبب درجة حرارة الأرنب. ولهذا السبب، فإننا نقترح لتقدير مدة فترة تغذية الأنواع التجزئة خاصة والمرحلة من خطة جمع التجزئة محتقن فورا بعد هذه المفرزة. على الرغم من أن قد تم اختبار نظامنا لتغذية مختلف أنواع القراد الصلب (الجدول 1)، الأرنب ليس مضيف طبيعي لجميع أنواع القراد الصلب14. قد يمكن التغلب على هذا القيد بتكييف هذا النظام للمضيفين الحيوانات الأخرى مناسبة لأنواع خاصة القراد الصلب. هنا أبلغنا باستخدام نظام رغوة إيفا يتكيف مع الأغنام لتغذية جميع مراحل إنمائية ريسينوس أولاً (الشكل 3). في هذه الحالة بالذات، يلزم الأغنام حلق وغسلها بالقطن المحقونة مع الإيثانول 70% للقضاء على النفط الحالية على سطح الجلد. بعد ذلك تم اتباع نفس الإجراءات الموضحة للأرانب، ولكن بدلاً من سترة، استخدم ضمادة القطن حول الجانب الخلفي كما هو مبين في الشكل 3.

عند وضع هذا النظام، ونحن أولى اهتماما خاصا لتقليل كمية المواد المستخدمة وخطوات الإجراء. ومقارنة بالأساليب الأخرى، نحن لا نستخدم التخدير وأطواق أرنب والجوارب الإذن أو ضربت الأرجل الخلفية5،6،،من78،9،10. وبالإضافة إلى ذلك، هذا البروتوكول ليست شاقة، ومطلوب أي تدريب مكثف لتصبح على دراية بهذا الأسلوب. يتوقع القراد إيفا رغوة على أساس تغذية النظام بالتفصيل في هذه الدراسة لاستخدامها لمجموعة متنوعة من التجارب المختلفة عند دراسة البيولوجيا القراد، التفاعلات المضيف-ناقلات-الممرض، أو تدابير تقييم الرقابة المختلفة مثل أكاريسيديس أو اللقاحات. لدينا الاتجاه المستقبلي سوف يكون تكييف إيفا الرغوة كبسولة نظام التغذية إلى طراز الماوس لتغذية المراحل غير ناضجة للقراد الصلب.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgments

ونعترف المساعدة التقنية لافلين Le ناعور، المعهد الوطني الفرنسي للبحوث الزراعية (الموارد الطبيعية) والعين بيرنييه (معهد) وبيديل Le Océane (الضمان). وأيد المازين كونسويلو على زمالة من "مختبر للتميز"، التكاملية البيولوجيا للناشئة من الأمراض المعدية (لابيكس عبيد)، معهد باستور. وتم شراء الأرانب والأغنام بشؤونها. جزء من هذا العمل بتمويل من المعاهد الوطنية للصحة منحة RO1AI090062 "بارك يوسف". الدكتور جيفري لام بلير المسلم لاستعراض المخطوطة.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
New Zealand Rabbits (2.5-3.5 kg) Charles River  Strain Code 571
Rambouillet sheep Local provider-tick free farm Female 6 months old
EVA foam 5 mm thick  Cosplay Shop EVA-PE451kg (950mm x 450mm) 10 mm PE45 kg foam from the Cosplay Shop may be used for the large adult tick species
Foam Sheet 9" X 12" 6 mm-White Amazon FOAMSHT6-20 6 mm-EVA foam ca be ordered via Amazon as an alternative to the foam from Cosplay Shop
Full length rabbit jackets  Harvard Apparatus, Inc.  620077- medium, 6270078 - large 
Non-toxic latex glue  Tear mender  Fabric & Leather Adhesive
Tubular cotton orthopedic stockinette BSN Medical 9076 (12-15 cm wide)
Mosquito mesh  Loisirs Creatifs Very fine filter nylon mesh fabric Any mosquito mesh, or curtain material with the mesh size less than 50 μm is suitable.
Leukoplast  BSN medical S.A.S LF 72361-02
Adhesive hook-and-loop tape AIEX store AIEX 39.37 Feet/12m Hook and Loop Self Adhesive Tape Roll, 20 mm width, white colour Fullfiled by Amazon
Fast drying glue   Fixtout  Superglue

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sonenshine, D. E., Roe, M. Ticks, People and Animals. Biology of Ticks, Vol I. Oxford University Press. (2014).
  2. Kröber, T., Guerin, P. M. In vitro feeding assays for hard ticks. Trends in Parasitology. 23, (9), 445-449 (2007).
  3. Bonnet, S., Jouglin, M., Malandrin, L., Becker, C., Agoulon, A., L'hostis, M., Chauvin, A. Transstadial and transovarial persistence of Babesia divergens DNA in Ixodes ricinus.ticks fed on infected blood in a new skin-feeding technique. Parasitology. 134, (2), 197-207 (2007).
  4. Bonnet, S., Liu, X. Laboratory artificial infection of hard ticks: A tool for the analysis of tick-borne pathogen transmission. Acarologia. 52, (4), 453-464 (2012).
  5. Khols, G. M. Tick rearing methods with special reference to the Rocky Mountain Wood Tick, Dermacentor andersoni Stiles. Culture methods for invertebrate animals. Dover Pubs. New York. (1937).
  6. Faccini, J. L. H., Chacon, S. C., Labruna, M. B. Rabbits (Oryctolagus cuniculus) as experimental hosts for Amblyomma dubitatum Neumann (Acari: Ixodidae) [Coelhos (Oryctolagus cuniculus) como hospedeiros experimentais de Amblyomma dubitatum Neumann (Acari: Ixodidae). Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia. 58, (6), 1236-1239 (2006).
  7. Chacon, S. C., Freitas, L. H. T., Barbieri, F. S. Relationship between weight and number of engorged Amblyomma cooperi. Nuttal (sic) and Warburton, 1908 (Acari: Ixodidae) larvae and nymphs and eggs from experimental infestations on domestic rabbits. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology. 13, 6-12 (2004).
  8. Sonenshine, D. E. Maintenance of ticks in the laboratory. Maintenance of Human, Animal, and Plant Pathogen Vectors. Science Publishers Inc. Enfield. (1999).
  9. Levin, M. L., Schumacher, L. B. M. Manual for maintenance of multi-host ixodid ticks in the laboratory. Experimental and Applied Acarology. 70, (3), 343-367 (2016).
  10. Bouchard, K. R., et al. Maintenance and experimental infestation of ticks in the laboratory setting. Biology of Disease Vectors. Elsevier. San Diego. (2005).
  11. Jones, L. D., Davies, C. R., Steele, G. M., Nutall, P. A. The rearing and maintenance of ixodid and argasid ticks in the laboratory. Animal Technology. 39, 99-106 (1988).
  12. Slovák, M., Labuda, M., Marley, S. E. Mass laboratory rearing of Dermacentor reticulatus ticks (Acarina, Ixodidae). Biologia, Bratislava. 57, (2), 261-266 (2002).
  13. Rechav, Y., Dauth, J. Development of resistance in rabbits to immature stages of the Ixodid tick Rhipicephalus appendiculatus. Medical and Veterinary Entomology. 1, 177-183 (1987).
  14. Zacarias do Amaral, M. A., Azevedo Prata, M. C., Daemon, E., Furlong, J. Biological parameters of cattle ticks fed on rabbits. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology. 21, (1), 22-27 (2012).
نموذج تنوعاً من الإصابة بالقراد الصلب في الأرانب المختبرية
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Almazán, C., Bonnet, S., Cote, M., Slovák, M., Park, Y., Šimo, L. A Versatile Model of Hard Tick Infestation on Laboratory Rabbits. J. Vis. Exp. (140), e57994, doi:10.3791/57994 (2018).More

Almazán, C., Bonnet, S., Cote, M., Slovák, M., Park, Y., Šimo, L. A Versatile Model of Hard Tick Infestation on Laboratory Rabbits. J. Vis. Exp. (140), e57994, doi:10.3791/57994 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter