Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

Неразрушающего контроля развития разложению на основе эшафот инженерии тканей кровеносных сосудов с использованием оптическая когерентная томография

Published: October 3, 2018 doi: 10.3791/58040

Summary

Шаг за шагом протокол для неразрушающего контроля и длительного периода наблюдения за процессом сосудистого ремоделирования и эшафот деградации в реальном времени культуры биоразлагаемые полимерные основанных на эшафот инженерии тканей кровеносных сосудов с пульсирующего стимуляции Здесь описывается использование оптическая когерентная томография.

Abstract

Инженерии сосудистых имплантатов с структурно-механические свойства, аналогичные природные кровеносных сосудов, как ожидается, удовлетворять растущий спрос на артериальной объездной. Характеристика динамики роста и модернизации процесса разложению полимер на основе эшафот инженерии тканей кровеносных сосудов (TEBVs) с пульсирующего стимуляции имеет решающее значение для сосудистой тканевой инженерии. Оптические методы визуализации выделяются как мощные инструменты для мониторинга васкуляризации инженерии тканей позволяет с высоким разрешением изображений в реальном времени культуры. Этот документ демонстрирует неразрушающего и быстро в реальном времени визуализации стратегии для мониторинга роста и реконструкции TEBVs в долгосрочные культуры с помощью оптическая когерентная томография (Окт). Оценивается геометрические морфологии, включая сосудистого ремоделирования процесс, толщина стенок и Сравнение толщины TEBV в моменты времени различные культуры и наличие пульсирующего стимуляции. Наконец OCT предоставляет практические возможности для реального времени наблюдения деградации полимера в реконструкции тканях под пульсирующего стимуляции или не и в каждом сегменте судна, по сравнению с оценкой использования деградации полимера Сканирование, microscopic(SEM) электронов и поляризационный микроскоп.

Introduction

Ткани инженерии кровеносных сосудов (TEBVs) является наиболее перспективных материалов как идеальный сосудистого трансплантата1. Для того, чтобы развивать графтов клинически полезным с аналогичными структурных и функциональных свойств как родной судов, были разработаны несколько методов для поддержания функции сосудистого2,3. Хотя там были инженерии судов с приемлемым проходимость ставок во время имплантации и клиническое исследование III фазы4, долгосрочные культуры и высокой стоимости также показывают необходимость наблюдения за развитием TEBVs. Понимание процессов роста, модернизация и адаптация внеклеточные matrix(ECM) в TEBVs в среде химико механические biomimetic может предоставить важную информацию для развития сосудистой тканевой инженерии.

Идеальной стратегии для отслеживания развития инженерии судов малого диаметра5 должно быть неразрушающего контроля, стерильные, продольная, трехмерные и количественные. TEBVs условиях различные культуры могут оцениваться этой модальности изображений, включая даже изменения до и после трансплантации сосудов. Необходимо разработать стратегии для описания особенностей жизни инженерии судов. Оптические методы визуализации позволяют визуализации и количественной оценки осаждения ткани и биоматериалов. Другими преимуществами являются возможность включить глубокие ткани и этикетка бесплатные изображения с высоким разрешением6,7. Однако изображение конкретных молекул и менее легко доступны оптического оборудования для мониторинга в реальном времени является значительное практическое препятствие, которое имеет ограниченную широкое применение нелинейной оптической микроскопии. Оптическая когерентная томография (Окт) — это оптический подход с внутрисосудистого изображений модальности как широко используется клинический инструмент направлять сердечной интервенционной терапии8. В литературе метод октября было сообщено о том, как способ оценки толщины стенок TEBVs9,10, в сочетании с позитивных изображений условия для сосудистых тканей инженерных исследований. В то время как динамика инженерии сосудистой роста и реконструкции не наблюдалось.

В этой рукописи мы подробно подготовку биоразлагаемые полимерные основанных на эшафот TEBVs для четырех недель культуры. Человека пупочных артерий сосудистой гладкомышечные клетки (HUASMCs) расширил и посеяны в пористых разложению Полигликолидная кислота (PGA) леса в биореактор. Биоразлагаемые полимеры играть роль в временной субстрат для тканевой инженерии и имеют определенные11деградации ставка. С тем чтобы обеспечить соответствующий матч между деградацией лесов и нео-ткани, ECM и PGA подмостей являются важнейшими факторами для эффективного сосудистого ремоделирования. Система перфузии имитирует биомеханических микроокружения родной судов и поддерживает последовательную деформации под давлением стимуляции.

Цель представленных протокола-изложить стратегию относительно простой и неразрушающего контроля для TEBVs изображений и долгосрочный мониторинг культуры. Этот протокол может использоваться для визуализации морфологических изменений и измерения толщины инженерии судов в условиях иной культуры. Кроме того можно выполнить анализ деградации материалов на основе полимеров в ткани, инженерные строительные леса для идентификации. Комбинируя методы сканирования электрон microscopic(SEM) и поляризационный микроскоп, используемые в этот протокол, корреляции и количественной оценки распределения внеклеточного матрикса и PGA деградации может быть сделано, которая может содействовать оценке эшафот деградация в сочетании с октября изображений.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. разложению PGA леску на основе культуры ткани инженерии судов

  1. Изготовление PGA эшафот
    1. Шить PGA сетки (диаметром 19 мм и толщиной 1 мм) вокруг Силиконовая трубка, стерилизована окисью этилена (длина 17 см, диаметр 5.0 мм и толщиной 0,3 мм) с помощью швов 5-0.
    2. Шить политетрафторэтилена (ePTFE, 1 см длиной) с 4-0 швом на каждом конце PGA сетки и перекрывается 2 мм.
    3. Окуните PGA подмости с рукой в 1 моль/Л NaOH за 1 мин, чтобы скорректировать структуру пространственной сетки и смочите водой культуры ткани класса три раза за 2 мин. Нежно погладить сухой леску с папиросной бумаги каждый раз. Затем высушите до леса в капюшон с вентилятором на 1 ч.
  2. Ассамблея биореактора и Y-соединения для октября изображений
    1. Замочить самостоятельно разработанные стекла цилиндрических биореактора (диаметр 10 см и 11,7 см в высоту с четырьмя губы внутри и четыре стороны оружия вне реактора, как показано на рис. 1), PGA подмостей, силиконовые трубки (внешний диаметр 5 мм, толщина 0,3 мм), биосовместимых трубы, разъемы, перемешать бар и оборудование для сборки в баке этанола 95% за 2 ч.
    2. Вытяните PGA леску через сторону герб биореактора, подключенных к одной стороне с разъемом, а также другая сторона с Y-Джанкшн, используются для доставки OCT проволочного проводника. Соберите другую леску PGA в биореакторе таким же образом. Пожалуйста, обратитесь к рис.
    3. Установите ePTFE биореактор губы, затянув с 4-0 швами.
    4. Поместить реактор в этанол бак снова за 1 ч и высохнуть на ночь в капот с вентилятором на.
  3. Заполнение HUASMCs и статические биореактор кондиционирования
    1. Изолируйте HUASMCs от человеческой пуповинной артерии методами стандартных экспланта.
    2. Расширять и поддерживать клетки в гладкомышечные клетки рост среднего, состоящий из среде DMEM, 20% плода бычьим сывороточным, 2,36 мг/мл HEPES, 100 ед/мл пенициллин G, 50 мкг/мл пролина, 20 мкг/мл аланина, 50 мкг/мл глицин, 1,5 мкг/мл CuSO4, аскорбиновая кислота 50 мкг/мл , 10 нг/мл основные фибробластический фактор роста и 10 нг/мл тромбоцитарный фактор роста.
    3. Семена HUASMCs в концентрации 5 × 106 клеток/мл в выше питательной среды на PGA подмостей.
    4. Положите сенсацию бар (1,5 см длины) в биореактор. Вставка одного кормления труб (диаметром 5 мм, длина 15 см) и трех сегментов коротких труб (диаметром 5 мм, длиной 7 см) для газового обмена через крышку пробкой силикона.
    5. Прикрепите фильтры 0,22 мкм PTFE для каждого изменения трубку и один гепарина колпачок для питания трубки. Настройка панели перемешать с перемешивания скорость 13 выстрелов в минуту. Соберите стекла биореактора, силиконовая пробка крышки и PGA леску в системе культуры.
    6. Разрешить HUASMCs следовать за 45 мин, опираясь биореактор каждые 15 мин с подставкой, влево и вправо. Реактор портов и стыки загерметизированы с парафин фильм.
    7. Подключите Луо-Ye насос, PBS мешок, водитель с биосовместимыми трубы как система перфузии. Откроете диск для заполнения трубы с PBS.
    8. Поместите общий биореактор в увлажненные инкубатор с 5% CO2 при 37 ° C. Заполните палаты культуры с 450 мл HUASMCs питательной среды.
    9. Нажмите кнопку «Стоп» и выключите устройство. Посеян подмостки под статической культуры растут на одну неделю.
    10. Измените культуру среднего каждые 3-4 дня, аспирационных половина из старой среды путем кормления трубки и заправки реактора с эквивалентное количество свежей питательной среды.
  4. Подготовка системы перфузии для октября изображений
    1. Перекачивать жидкости в мешке PBS распространить через биосовместимых трубы и обратно в мешок.
    2. Откройте силу водителя и регулировать параметр насос с частотой 60 ударов в минуту и вывода систолическое давление 120 мм рт.ст.. Механические параметры согласно потребностям инженерных сосудистой культуры ткани.
    3. Нажмите кнопку "запустить", чтобы сделать работу системы перфузии. Предоставить выше фиксированных пульсирующего стимуляции для судов на 3 недели, многократно герметизирующего биосовместимых трубы10,12 после 1 недели статической культуры.

2. выполнение оптических изображений с октября

  1. Используйте источник света для обеспечения осевой резолюции 10-20µm и глубина изображения 1-2 мм для определения структуры на основе частотной области октября внутрисосудистого изображений системы9TEBV.
  2. Включите выключатель питания и откройте программное обеспечение захвата изображения.
  3. Подключите волоконно оптических изображений катетер к мотор и оптических контроллер (DOC) с функцией автоматического отступление катетера.
  4. Установка параметров изображения приобретение ставки до 10 кадров в секунду с автоматической обратной протяжке скорость 10 мм/сек.
  5. Придаем изображений катетер Y-Джанкшн через гепарина колпачок с иглой 18G.
  6. Уложите силиконовые трубки катетера и определить герметичность шва PGA сетки перед загрузкой PGA леску на реактор.
  7. Поместите кончик катетера области интереса. Настройте устройство обратной протяжке и проверить качество изображения8.
  8. Получение изображений в 1, 4, 7, 10, 14, 17, 21, 28 дней в культуре для каждого индивидуального TEBV и сохранить последовательно с наблюдения в реальном времени TEBV микроструктуры, включая поверхности морфологии, внутренней структуры и состава.
  9. Повторите измерение для 3 раз, чтобы получить надежное измерение инженерии судов каждый раз. Захват серии изображений на протяжении тестирования с использованием программного обеспечения захвата изображения.

3. томография анализ

  1. Используйте программное обеспечение для анализа изображений для измерения толщины стенок TEBV. Выберите изображение для анализа. Щелкните инструмент отслеживания для определения внутренней стороне TEBV программное обеспечение автоматически и вручную эскиз внешней стороне. На экране появится диаграмма толщины.
  2. Повторите измерение в 5 раз получить надежное измерение конструкции. Был проведен анализ октября два независимых следователей, ослепленный к полученной информации.

4. урожай TEBV и обработки тканей

  1. Открыть крышку пробкой силикона помещен над биореактора по завершении культуры и отбросить питательной среды. Ослабьте ePTFE от биореактор губы и вырезать трубы силиконовые с внешней стороны ПТФЭ с ножницами. Урожай TEBVs от биореактор и нарезать разделы для сканирования электронной микроскопии экспертизы.
  2. Взять из остальной части TEBVs и нарезать 4 µm толщиной секции. Вытяните поддержки силиконовые трубки и исправить разделы с параформальдегида 4%. Выполняйте обычные гистологические окрашивание Массон в trichrome и Сириус красный для изучения морфологии коллагена и PGA10,,1314.
  3. Чтобы оценить PGA контента и компонент коллагена, наблюдать гистологических образцы с Sirius красное окрашивание, поляризационный микроскоп. PGA Остатки четко разграниченные через двойное лучепреломление и остаток области могут быть количественно основанные на площадь поперечного сечения10.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Система трехмерного культуры состояла из палаты культуры в биореактор и перфузии системы с замкнутым циклом жидкости10,13 (рис. 1). Окт изображений катетер был вставлен в дистальный конец Y-Джанкшн и вытащил обратно в силиконовой трубки для изображений. Окт изображений впервые был использован для описания структурных характеристика биоразлагаемые полимерные основанные на эшафот TEBVs возделывание биореактора.

На рисунке 2 показан процесс инженерии сосудистого ремоделирования через эти поперечного сечения изображений микроструктуры ткани в режиме реального времени. Была проведена оценка геометрические морфологии, включая толщины стенок, разложению PGA содержание и Сравнение толщины TEBV в моменты времени различные культуры, а также наличие пульсирующего стимуляции. Тенденция снижения толщины и резко изменений инженерных ткани в течение первых двух недель культуры был замечен, предлагая сигнал-богатые люди PGA постепенной деградации и структура новой ткани от свободной до жесткой. На 21 день в культуре сосудистую сформировали гладкой структуры с внеклеточного матрикса равномерно распределены и высокий сигнал компонентов основном рассеялись. Толщина стенок TEBVs с даже сигнала увеличена постепенно после трех недель культуры. Эта реконструкция произошла раньше и морфологические изменения проявляется более очевидно в группе динамических (рис. 3). Тем самым OCT позволяет визуализации инженерных сосудистой морфологии для отображения на месте и в режиме реального времени в ходе длительных культуры.

Рисунок 4 сравнение OCT изображения с гистопатологические находки TEBV после 4 недель культуры. Массон trichrome окрашивание демонстрирует коллагеновые волокна, распределенных в определенном направлении, а также PGA остатки в слое СМИ инженерии судов (рис. 4В). Сириус красное окрашивание показали PGA остатки и коллаген компонент с помощью поляризационный микроскоп (рис. 4 c). Сканирования электрона микроскопии инженерии судов с компактным микроструктурой были сопоставлены с гистологической оценки (Рисунок 4 d). Взятые вместе, Окт изображений показал, что PGA был с разных размеров и структуры пористых сети. Структура леса PGA имеет никаких очевидных изменений и опухшие путем прямого контакта с питательной среды в ранней стадии культуры. Однако интенсивность сигнала PGA было сокращено. PGA компоненты распался и заменены клетки и внеклеточного матрикса. Меньшее количество фрагментов были замечены four-week период. SEM изображений поперечного сечения инженерии судов продемонстрировал разрыва волокна на продление время инкубации. В Сота подобную структуру с более компактной и менее прозрачности материала и внеклеточной матрицы композитов.

Figure 1
Рисунок 1 . Схема из ткани сосудистой культуры системы, которая состояла из палаты культуры в биореактор и перфузии системы визуализации OCT. Пульсирующего насос условии стабильного потока жидкости, имитируя биомеханических микроокружения. Окт изображений катетер был вытащил обратно в силиконовой трубки в зале культуры. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2 . Микроструктуры ткани инженерии кровеносные сосуды во время культуры. Со временем культуры PGA сигнал-богатые люди постепенно деградировали и жесткой структуры новой ткани было от свободно. TEBVs была гладкой поверхности и обильный внеклеточный матрикс равномерно распределены после четырех недель культуры. Он показал процесс инженерии сосудистого ремоделирования через поперечные изображения в режиме реального времени. Этот рисунок был изменен с Чэнь, W. et al. 10 толщина силиконовые трубки используется здесь составляет 0,8 мм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3 . Сравнение изменения толщины стены TEBV во время сосудистого ремоделирования в динамических и статических групп, полученных в результате измерений Окт. Планки погрешностей указывают стандартную ошибку. Этот рисунок был изменен с Чэнь, W. et al. 10 Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 4
Рисунок 4 . Imaging биоразлагаемых полимерных инженерии тканей кровеносных сосудов. (A) октября изображение TEBV после четырех недель культуры. M: питательной среды; S: силиконовые трубки; Толщина силиконовые трубки используется здесь составляет 0,8 мм. Белая стрелка указал TEBV. Красная стрелка указала PGA фрагмент. (B) Массон trichrome окрашивание продемонстрировал хорошо организованные коллагеновых волокон вместе с остаточное содержание PGA в слое СМИ инженерии судов. Шкалы бар = 100 мкм. (C) Сириус красное окрашивание показали PGA остатки с помощью поляризационный микроскоп. Зеленая стрелка указывает фрагмент PGA. Линейки: 100 µm. (D) проверка электрона микроскопии инженерии судна с компактным микроструктуры проявились для сравнения с гистологическим оценки. Шкалы бар = 50 µm. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Для создания инженерии судов с структурных и механические свойства аналогичны родной кровеносных сосудов может привести к сократить время для клинического использования и является конечной целью сосудистой техники. Оптические методы визуализации позволяют визуализации сосудистой конкретных компонентов инженерии тканей, которые не могут контролировать отдельные конструкции всей культуры и воздействия графтов в среде культуры без ущерба для бесплодия7. В этой статье культуры Камера отделена от перфузии системы. Относительно независимых перфузии система гарантирует снижение риска загрязнения во время культуры и размещение OCT проволочного проводника. Тем временем этот внутрипросветная визуализации механизм принял легко и мониторинг безопасности TEBVs в situs с высоким разрешением приближается что гистопатология, который произвел оценку TEBV роста статуса более практичным и даже, как ожидается, использоваться до или После имплантата.

Текущий протокол указывает доступной, быстрый режиме реального времени и неразрушающего визуализации стратегии для оценки развития разложению на основе полимерной инженерии судна с помощью катетера основе OCT. Путем наблюдения за динамичного процесса некоторые основные факторы, влияющие на сосудистой инженерии, например загрязнение или непревзойденной взаимодействия клеток материал, привели к потере ткани, можно отличить с раннего обнаружения. Важнейшие шаги для обеспечения эффективности Протокола включают изготовление NaOH модифицированные PGA эшафот, успешного посева семян HUASMCs в эшафот, стерильные культуры системы разделения от системы мониторинга, быстрый и процесс работы квалифицированных катетер .

Этот метод может использоваться для оценки деградации государствам и сложную структуру PGA подмостей, смешивается с новой ткани. Полимерные леску с пористой сетевой структурой постепенно деградирует и доминирует процесс сосудистого ремоделирования в первые три недели, которые важны для клеточной адгезии и внеклеточной матрицы осаждения с трех концевые структурой для обмен питательных веществ и как сигнал несущей15,16. Для количественной оценки PGA остатки в инженерии судов четко определены Сириус красно окрашенных изображений, использование Поляризационные микроскопы17 разложению на основе эшафот сосудистой инженерии имеет потенциал, чтобы стать стандартной оценки после культивирование. Поэтому OCT изображений в сочетании с поляризационный микроскоп может служить качественные и количественные методы для оценки деградации PGA в сосудистой инженерии.

Ограничением этой методики является предел разрешения для оценки распространения, распределение, -клеток и клеток ECM взаимодействия клеток во время инженерии сосудистого ремоделирования. Мы надеемся найти подходящий метод для расследования TEBVs микроструктуры на клеточном и субклеточном уровне18 и количественно Кинетика роста. Количественный анализ среднего оптических сигналов OCT изображений мы могли бы быть более осведомлены о механизм деградации материала в сосудистой инженерии. Такие эксперименты в настоящее время рассматриваются для наших будущих исследований.

В целом наши результаты показывают, что октября является легкодоступной, быстрый режиме реального времени и неразрушающего визуализации стратегии для мониторинга роста и реконструкции TEBVs. Он используется для охарактеризовать структурные архитектурные особенности и долгосрочный процесс реконструкции инженерных судов. Приложение поляризационный микроскоп, который представил дополнительные доказательства для количественной оценки полимерных остатки в инженерии судов может быть полезным для оценки деградации лесов в сочетании с октября изображений. Взятые вместе, текущий протокол содержит перспективные значение OCT для его применения в сосудистой тканевой инженерии.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Acknowledgments

Мы хотели бы отметить науки и технологии планирования проекта в провинции Гуандун Китая (2016B070701007) для поддержки этой работы.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
PGA mesh Synthecon
silicone tube Cole Parmer
connector Cole Parmer
intravascular OCT system St. Jude Medical, Inc ILUMIEN™ OPTIS™ SYSTEM
scanning electron microscopic Philips FEI Philips XL-30
polarized microscope Olympus Olympus BX51
sutures Johnson & Johnson
pulsatile pump Guangdong Cardiovascular Institute
LightLab Imaging software St. Jude Medical, Inc

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Chan-Park, M. B., et al. Biomimetic control of vascular smooth muscle cell morphology and phenotype for functional tissue-engineered small-diameter blood vessels. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 88, 1104-1121 (2009).
  2. Ballyns, J. J., Bonassar, L. J. Image-guided tissue engineering. Journal of Cellular & Molecular Medicine. 13, 1428-1436 (2009).
  3. Smith, L. E., et al. A comparison of imaging methodologies for 3D tissue engineering. Microscopy Research & Technique. 73, 1123-1133 (2010).
  4. Chang, W. G., Niklason, L. E. A short discourse on vascular tissue engineering. NPJ Regenerative Medicine. 2, (2017).
  5. Appel, A. A., Anastasio, M. A., Larson, J. C., Brey, E. M. Imaging challenges in biomaterials and tissue engineering. Biomaterials. 34, 6615-6630 (2013).
  6. Rice, W. L., et al. Non-invasive characterization of structure and morphology of silk fibroin biomaterials using non-linear microscopy. Biomaterials. 29, 2015-2024 (2008).
  7. Niklason, L. E., et al. Enabling tools for engineering collagenous tissues integrating bioreactors, intravital imaging, and biomechanical modeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , 3335-3339 (2010).
  8. Zheng, K., Rupnick, M. A., Liu, B., Brezinski, M. E. Three Dimensional OCT in the Engineering of Tissue Constructs: A Potentially Powerful Tool for Assessing Optimal Scaffold Structure. Open Tissue Engineering & Regenerative Medicine Journal. 2, 8-13 (2009).
  9. Gurjarpadhye, A. A., et al. Imaging and characterization of bioengineered blood vessels within a bioreactor using free-space and catheter-based OCT. Lasers in Surgery and Medicine. 45, 391-400 (2013).
  10. Chen, W., et al. In vitro remodeling and structural characterization of degradable polymer scaffold-based tissue-engineered vascular grafts using optical coherence tomography. Cell & Tissue Research. 370, 417-426 (2017).
  11. Naito, Y., et al. Characterization of the natural history of extracellular matrix production in tissue-engineered vascular grafts during neovessel formation. Cells Tissues Organs. 195, 60-72 (2012).
  12. Ye, C., et al. The design conception and realization of pulsatile ventricular assist devices-from Spiral-Vortex pump to Luo-Ye pump. Chinese Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 9, 35-40 (2002).
  13. Chen, W., et al. Application of optical coherence tomography in tissue engineered blood vessel culture based on Luo-Ye pump. Chinese Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 31, 687-690 (2015).
  14. Pickering, J. G., Boughner, D. R., et al. Quantitative assessment of the age of fibrotic lesions using polarized light microscopy and digital image analysis. American Journal of Pathology. 138, 1225-1231 (1991).
  15. Martinho, J. A., et al. Dependence of optical attenuation coefficient and mechanical tension of irradiated human cartilage measured by optical coherence tomography. Cell Tissue Bank. 16, 47-53 (2015).
  16. Poirierquinot, M., et al. High-resolution 1.5-Tesla magnetic resonance imaging for tissue-engineered constructs: a noninvasive tool to assess three-dimensional scaffold architecture and cell seeding. Tissue Engineering Part C Methods. 16, 185-200 (2010).
  17. Naito, Y., et al. Beyond burst pressure: initial evaluation of the natural history of the biaxial mechanical properties of tissue-engineered vascular grafts in the venous circulation using a murine model. Tissue Engineering Part A. 20, 346-355 (2014).
  18. Smart, N., Dube, K. N., Riley, P. R. Coronary vessel development and insight towards neovascular therapy. International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 90, 262-283 (2009).

Tags

Биоинженерия выпуск 140 биоинженерия оптическая когерентная томография сосудистой тканевой инженерии Полигликолидная кислота биодеградация механические условия
Неразрушающего контроля развития разложению на основе эшафот инженерии тканей кровеносных сосудов с использованием оптическая когерентная томография
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Chen, W., Liu, S., Yang, J., Wu, Y., More

Chen, W., Liu, S., Yang, J., Wu, Y., Ma, W., Lin, Z. Nondestructive Monitoring of Degradable Scaffold-Based Tissue-Engineered Blood Vessel Development Using Optical Coherence Tomography. J. Vis. Exp. (140), e58040, doi:10.3791/58040 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter