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Medicine

眼毛刺角膜上皮磨损与角膜创面愈合的模型研究

doi: 10.3791/58071 Published: July 10, 2018

Summary

该协议描述了一种方法, 使磨损的眼睛表面的鼠标, 并遵循伤口愈合过程后。该协议利用眼部毛刺部分去除麻醉小鼠眼中的表面上皮。

Abstract

小鼠角膜为研究创面愈合提供了良好的模型。角膜是眼睛最外层的一层, 因此是第一次伤害的防御。事实上, 在临床上发现的最常见的眼外伤是角膜磨损。在这里, 我们利用眼部毛刺诱发的磨损, 从而消除了在体内的角膜上皮细胞在麻醉小鼠。这种方法允许有针对性的和可再生的上皮中断, 使其他区域完好无损。此外, 我们还描述了荧光素染色的擦伤上皮细胞的可视化, 并就如何直观地观察角膜的擦伤提供了具体建议。然后, 我们遵循伤口愈合的时间线 0, 18 和72小时后, 磨损, 直到伤口重新表皮。角膜损伤的上皮磨损模型是研究角膜上皮细胞增殖、迁移和上皮的理想方法。然而, 在创面愈合过程中, 由于眼毛刺不渗透到基质细胞层, 这种方法不是最佳的研究。该方法也适用于临床应用, 如药物疗效前临床试验。

Introduction

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许多器官的上皮层受到损伤。然而, 它们也包含通过伤口愈合来补偿组织损失的能力。角膜提供了一个很好的模型来研究伤口愈合。它形成眼睛的外部表面并且为敏感的眼部机器提供保护层。因此, 角膜的作用是对病原体和水分损失的物理屏障。它由三层组成;上皮, 基质和内皮。角膜上皮构成角膜的最外层。上皮细胞通过紧密连接1,2,3维持角膜屏障功能。一种脱细胞角膜基底膜, 鲍曼膜, 分离上皮与广泛的基质, 其中含有顽固性基质。在基质下, 内皮细胞将养分、水和氧气输送到上层。

角膜擦伤是非常普遍的在诊所4。角膜损伤是多种多样的, 但主要是由尘埃、沙子、划痕或其他异物等细小微粒引起的。此处描述的协议旨在再现临床上相关的角膜上皮磨损类型。在这样做的时候, 该协议为临床医生和角膜科学家在自己的研究中实施提供了一种可控和精性的方法。我们对小鼠角膜进行了体内损伤修复实验, 用钝性眼毛刺、Algerbrush ii. 研磨组织。在这里, 我们的目标是只对角膜中央上皮进行擦伤, 并使器官的其他部位不受损伤。因此, 该协议是理想的研究角膜上皮细胞动力学或基底膜在重新上皮, 细胞迁移, 增殖和分化在体内5。近年来, 该模型用于分析小鼠角膜祖细胞动力学, 揭示分化的角膜上皮细胞在损伤67后重建角膜干细胞位的能力。随着磨损, 角膜恢复正常的透明度和抗拉强度。有趣的是,体外研究表明, 再上皮发生不增加细胞增殖8。该协议描述了小鼠角膜不间断愈合的时间线。因此, 该方法适用于测试药物对愈合模式和速度的影响。

角膜已广泛用于伤口愈合研究。然而, 许多研究都依赖于其他的损伤模型。一种建立良好的角膜损伤模型是在角膜表面9应用氢氧化钠 (氢氧化钠) 或无滤纸的碱性烧伤。碱性照射会导致大而弥漫性损伤, 不仅影响角膜上皮, 而且还对结膜和基质9,10。强烈的碱性溶液已经被证明能诱发角膜溃疡、混浊和新生血管9。炎症细胞通常侵入6小时内的基质, 并保持在那里直到 24 h11。因此, 碱性损伤是与基质活化有关的研究中的一种可取的方法。另一种化学损伤可以通过应用二甲基亚砜 (亚砜) 在角膜9,10。其他常用的损伤模型包括通过基质和角膜伤口穿透的切口伤口, 这仅限于基质14,15的上部。这些方法也有助于回答有关间质伤口愈合的问题。不同的伤害模式有各自的优缺点。角膜上皮的磨损, 或清创, 首先开发使用钝手术刀或叶片在体外角膜16。该方法后来在鼠、鼠、兔171819202122体内应用。使用眼球毛刺 (图 1), 我们只删除一个选定的区域的上皮, 留下的其余的上皮不受影响。这样, 就可以精确靶向角膜不同部位的上皮切除。此外, 还可以用荧光素染色法评定磨损尺寸。此外, 在这里, 我们遵循磨损关闭在愈合期。

该方法具有多种优点, 包括磨损部位的精确定位, 不能与化学损伤一起进行, ii) 磨损快, iii) 无侵入性。在此, 我们描述了使用 outbred NMRI 鼠标作为模型的方法, 但这可以应用于大量的小鼠遗传模型, 以及大鼠和兔, 这是用来研究人类角膜破坏的常用模型。

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Protocol

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所有实验均经国家动物实验委员会批准。

1. 筹备工作

  1. 准备所有的解决方案并保持室温, 除非另有说明。遵循废弃物处理条例, 处理废旧材料和解决方案。
  2. 使用 NMRI 和 outbred 的股票, 年龄介于4-12 周和任何性别之间。如果使用 C57BL/6 菌株, 请按照 medetomidine 的方法在步骤1.3.2 中执行氯胺酮。有关其他步骤, 请按照 1.3. 3.-1.3. 5 中描述的说明进行操作。
  3. 在开始手术前, 及时准备兽医药品。卡洛芬将在以后使用, 因此没有必要准备它在这一点上。
    1. 为了准备麻醉的氯胺酮 medetomidine 的解决方案, 混合0.375 毫升 (50 毫克/毫升) 氯胺酮 (Ketaminol 兽医) 与0.25 毫升 (库存浓度1毫克/毫升) 的 medetomidine (Cepetor 兽医) 和添加1.25 毫升无菌0.9% 氯化钠。管理 0.15 mL/20 g 的鼠标重量 (7.5 毫克/千克, 氯胺酮和1毫克/千克, medetomidine)。
    2. 为了在 C57BL/6 小鼠身上制备一种更稀的氯胺酮-medetomidine 麻醉溶液, 将氯胺酮的0.375 毫升 (浓度50毫克/毫升) 与0.25 毫升 (浓度1毫克/毫升) medetomidine, 加入2.5 毫升无菌0.9% 氯化钠。管理 0.15 mL/20 g 的鼠标重量 (3.75 毫克/千克, 氯胺酮和0.5 毫克/千克, medetomidine)。
      注意: 这是一个替代的步骤, 只为成年 C57BL/6 小鼠。
    3. 要准备 buprenorfin 镇痛, 添加0.1 毫升 (0.3 毫克/毫升) 的 buprenorfin 到1.9 毫升无菌0.9% 氯化钠。管理 0.2 mL/20 g 鼠标重量 (0.15 毫克/千克)。
    4. 为停止麻醉准备 atipamezole, 添加0.1 毫升 (5 毫克/毫升) 的 atipamezole 到4.9 毫升0.9% 氯化钠。管理 0.15 mL/20 g 鼠标重量 (0.75 毫克/千克)。
    5. 麻醉后使用卡洛芬镇痛。添加0.1 毫升 (库存浓度50毫克/毫升) 的卡洛芬到4.9 毫升0.9% 氯化钠。管理 0.15 mL/20 g 的鼠标重量 (7.5 毫克/千克)。
  4. 准备荧光染色液
    1. 为了可视化钴蓝光下的磨损 (图 1), 请使用荧光溶液。准备一个0.1% 荧光素溶液, 首先测量10毫克的荧光素盐与精细的规模, 然后添加到10毫升磷酸盐缓冲盐水溶液 (PBS)。
    2. 保护荧光素溶液从光和震动5分钟在一个振动筛。
      注意: 荧光素溶液对光敏感;将解决方案从光中覆盖。此解决方案可存储在 +4 °c 2-3 天。使用时, 将荧光素溶液放在用于眼药水的滴管瓶中是很有帮助的。将溶液移至滴管瓶时, 使用无菌过滤器。
  5. 使用前后清洁眼部毛刺提示;首先与 PBS 然后与70% 乙醇。如果在同一操作过程中对几个小鼠进行磨损, 请在每个鼠标之间进行清洗步骤。
  6. 把加热的盘子放在 (37 摄氏度) 上, 然后放上纸巾。

2. 角膜磨损

注意事项: 在处理小鼠时, 使用防护服 (手套、实验室大衣)。称量鼠标估计用药量。

  1. 使用单手 scruffing 方法处理鼠标23。管理氯胺酮-medetomidine 混合腹腔 (ip) 到左下腹部。将鼠标放到一个单独的笼子里, 等待它入睡。这通常需要少于5分钟。然后, 管理第一 buprenorfin, 然后 atipamezole 通过 ip 注射。使用相同的处理技术。
    注: 一旦麻醉被给予, 该议定书不应暂停在任何时刻。
  2. 在继续之前, 检查加热板是否温暖。将麻醉鼠标放在加热板上。如果没有尾部反射, 麻醉的水平很好, 但是脚趾反射是存在的。用手指或镊子捏紧尾巴和脚趾来检查这些反射。不要过度使用武力。麻醉将持续20-25 分钟。
  3. 要使磨损, 使用清洁的眼毛刺。旋转毛刺的底部, 以打开振动, 这是必不可少的, 使磨损。当毛刺正常工作时, 感觉到手上的振动。
    1. 一次睁开一只眼睛, 用手指分别握住眼睑。然后牢固地触碰毛刺到角膜并且移动仪器前后并且侧身在眼睛表面。毛刺振动将执行划痕;不要按压、摇动或撕裂角膜。在角膜中央, 20 研磨在表面上的运动足以诱发伤口。不要提起毛刺, 尽量留在角膜的区域内进行擦伤。要获得标准尺寸的磨损, 需要几轮练习。

    注意: 使用 betadine 眼科溶液可达到角膜无菌磨损。

3. 对磨损的成像

  1. 使用钴蓝笔光 (图 1) 和荧光素溶液照亮磨损区域。眼部表面在周围光线中呈无色。荧光素应用后, 在用笔光照射眼睛时, 擦伤区域荧光绿色。
    1. 如果需要, 同样打开擦伤的眼睛, 如在2.3 和管理一滴荧光素溶液从滴管瓶。用 PBS 或0.9% 氯化钠冲洗眼睛, 以减少荧光素的背景。用吸管瓶或吸管清洗。如果需要的话, 用柔软的擦拭和清洁睫毛来吸掉液体。过量的液体通常收集到眼睛的鼻边界, 靠近泪道的开口。
      注意: 避免接触角膜, 而 cleaining 可能诱发轻微擦伤。
  2. 拍摄角膜磨损的照片。
    1. 要在每个成像会话期间获得相似的图像, 请使用钴蓝钢笔灯和单反相机的稳定附件工具 (图 2)。此协议提供了一个易于重复的设置 (图 2)。
      1. 要连接钢笔灯和照相机, 请分别使用带有挠性手臂和夹具的台灯和可调节的相机臂。电缆-将钢笔灯与台灯和鼠标眼睛上方的位置系在一起。以不同的方式定位光线可能会改变磨损的可视化。图 2描述了定位这些工具的建议。
    2. 使用单反相机拍照的眼睛。将动物置于所需的距离和位置, 并将相机 (1:12) 放在室内光线中。之后, 关闭所有其他的灯, 除了钴蓝钢笔灯。
      注: 在成像过程中, 将钢笔灯手柄向下或使用橡皮筋保持灯亮起。如果图像变得模糊, 这可能会有帮助。与同事一起执行成像步骤是最容易的。

4. 角膜磨损后醒来

  1. 管理第一 buprenorfin, 然后 atipamezole 通过 ip 注射。使用与2.1 相同的处理技术。
  2. 将一滴抗菌剂、fucidin 酸眼膏 (Isathal) 放在磨擦和不擦伤的眼睛上, 在麻醉后保持眼部表面清洁。
  3. 当老鼠在加热板上5-20 分钟内醒来时, 观察老鼠在麻醉后苏醒的时间。当它变成移动, 把它放在一个单独的笼子里。
    注意: 如果醒来需要更长的时间, 把鼠标放在笼子里用加热的垫子, 或者把整个笼子放在加热的盘子上, 定期监视鼠标。当麻醉逐渐消退时, 老鼠通常会摇晃并向上与前体接触。此行为应在3-4 小时后恢复正常, 然后您可以将鼠标放回共享的笼子。
  4. 在磨损后连续两天管理卡洛芬的镇痛和眼膏, 类似于步骤2.2。和4.2。

5. 伤口愈合过程中的影像学

  1. 在本议定书中, 在磨损后使用时间点18小时和72小时观察伤口闭合。
    1. 为连续成像, 麻醉老鼠解释在2.2。
    2. 采取图片解释在3。
    3. 唤醒动物与 atipamezole ip 和监测唤醒期, 如4.3 所述。
      注: 如果不继续随访, 弄死鼠标右5.1.2。安乐死在6.1 被描述。

6. 角膜收集和石蜡嵌入

  1. 在最后的时间点后, 牺牲动物。把鼠标放在可以用 CO2填充的房间里。用 CO 2 填充室内空气.当动物不动时, 将颈椎从尾部的底部牢牢拉起, 同时按下颈部区域, 使其脱臼。
    注意: 始终遵循当地动物福利机构的指导方针。
  2. 用解剖剪刀把皮肤上的开口切开到眼睛侧面, 收集整个眼球。把剪刀放在眼球下, 剪下眼神经, 将眼球从轨道上弹出。使用镊子, 如果眼睛不容易出来。
    1. 在眼睛的背面做一个洞, 在视网膜一侧, 用26G 针让眼睛内的溶液自由穿透。
      注意: 不要让眼睛变得干燥, 而是将它放在 PBS 中, 直到继续使用该协议。
  3. 用 PBS 在2毫升管中采集眼球。此时不要暂停实验。
  4. 删除 PBS 和固定眼球在4% 多聚甲醛 (粉煤灰) 在 +4 °c 4-5 小时。
  5. 将固定眼球移到纸巾盒中进行组织处理。使用组织处理机和以下程序:
    1. 用 PBS 冲洗。
    2. 室温下在70% 乙醇中孵化 2 x 45 分钟。
    3. 室温下在94% 乙醇中孵化 2 x 1 小时。
    4. 室温下在绝对乙醇中孵育 3 x 45 分钟。
    5. 在二甲苯中孵化 3 x 1 小时, 室温和最后二甲苯在37摄氏度。
    6. 在石蜡60摄氏度孵育 3 x 1 小时。
  6. 组织处理后, 使用组织嵌入块将眼球嵌入液体石蜡 (+ 60 °c)。把眼睛放在块里, 这样它就会朝侧面看, 外围的边界朝向向上。让方块凝固在一个凉爽的盘子里5-10 分钟。

7. 角膜石蜡切片

  1. 根据机构或制造商的指示, 准备切片的切片。
    注意: 处理锋利的切片刀片时要小心。
  2. 安置一水浴与室温超纯水在切片旁边和另一个与被加热到 +50 °c 的超纯水。
  3. 使眼球的5µm 厚的部分。
    注意: 在切片过程中镜片容易折断。为避免这种情况, 每次开始新的一排节时, 都要用湿润的纸巾擦拭切口表面。用自来水滋润组织。
  4. 在室温水浴中放置各节, 然后在玻璃滑梯的帮助下将它们移动到热水浴中。伸展热水浴中的部分, 直到所有的皱纹放松和部分变成哑光。
  5. 用 +37 摄氏度一夜之间的玻璃片干燥。
  6. 在 +60 摄氏度的加热板上保持1分钟的滑动, 将各部分连接到幻灯片上。在此之后, 切片可以直接处理染色, 免疫组织化学方法或储存在 +4 °c。

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Representative Results

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本协议描述了一种对小鼠角膜造成磨损损伤的模型, 并提出了在磨损后如何跟踪和可视化愈合过程的方法。最近, 我们使用这种方法来研究角膜上皮祖细胞在伤口愈合过程中的作用6。使用既定的工具是一个成功的磨损实验的关键。我们和其他人使用了 Algerbrush II 眼毛刺 (图 1) 来执行擦伤6,7,24。这个工具有一个迟钝的毛刺尖端0.5 毫米的大小, 刷子, 而不是演习或剪角膜上皮离开。因此, 这个工具是推荐的选择, 在角膜擦伤伤害。

该模型的一个核心部分是, 受影响的区域可以毫不费力地在所需的时间间隔内进行可视化。在图 3A中, 我们将荧光素染色与钴蓝光源 (图 1) 结合使用, 以显示磨损部位。在这个实验中, 我们在中央角膜上进行了大的伤口, 使周围的角膜不接触 (图 3A)。此外, 我们只擦伤了每只老鼠的左眼, 并保持了右, 双侧眼为无磨损控制。双侧眼标本对荧光素信号保持阴性, 提示在实验过程中不发生细胞丢失, 从而作为对照样品。然而, 在眼睛的边界绿色信号显示荧光素溶液积累在眼睛和眼睑之间的交界处。磨损是最大的0小时, 立即在受伤后 (图 3A)。18小时后它明显变小, 在这种情况下, 位于眼睛的上部边界附近。然而, 上皮细胞以同样的速度从磨损的各个侧面关闭暴露的区域。值得注意的是, 在伤后72小时, 没有绿色信号可见。这表明, 在磨损后, 角膜上皮完全重新表皮72小时。

用这种方法, 我们的目的是只专注于角膜上皮的磨损, 使更深的角膜层保持完整。从图 3B的组织学切片可见角膜上皮的去除。在0小时, 磨损的边缘被显示为一个狭窄的, 脱细胞的窗台是连续的, 从常规, 4-5 细胞层厚的角膜上皮。角膜上皮的边缘, 周围的边界, 呈现一个例子区域, 不受磨损影响, 在整个实验时间线 (72 小时)。此外, 组织学切片表明, 深层的角膜, 基质和内皮, 没有损害的眼球毛刺。这两种组织在磨损和双侧眼标本上出现相似。在18小时的损伤后, 愈合过程是积极的和重新上皮正在进行中。这是由领先优势的外观建议的。前缘仅包含1-2 个上皮细胞层, 它覆盖暴露的区域, 然后再分层可能发生25。根据图 3A的结果, 表面完全重新表皮72小时, 当迁移的前面覆盖了伤口, 所有的上皮层再次出现。经证实的双侧眼组织学切片 (图 3A) 观察期间对照眼保持完好。

最后, 我们提供的证据表明, 磨损模型被限制在角膜上皮, 并没有调用的基质反应的伤害, 如新生血管。图 4在磨损后显示小鼠角膜18小时。根据宏观的观点, 这个时间点没有显示一个基质反应, 从而表明我们的协议不会扰乱更深的角膜层。相比之下, 碱性损伤0.75 摩尔/L 氢氧化钠立即诱导新生血管的基质。鉴于碱性损伤的快速新生血管, 本方法的时间点为排除基质中反应的可能性提供了依据。

Figure 1
图 1: 角膜上皮磨损的基本工具.左边是一个振动的眼毛刺。右侧的钴蓝笔灯用于使荧光素染色可见。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 成像角膜磨损。(A)成像工具是一种可调节的摄像机臂, 带有夹子 (左)、单反相机 (中心) 和带有灵活手臂和钳位的台灯 (右)。钴蓝钢笔灯被绑在灯的圆顶上, 有两条电缆连接。(B)成像设置的一般观点;每个附件工具的距离在图像中以 cm 标记。两个夹具是6厘米远离热板和鼠标被放置10厘米远离热板边缘。(C)更仔细地观察与建议的距离和位置的磨损成像在 cm 的鼠标眼睛.请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: 角膜磨损的检测和定位.(一)在0、18和72小时的磨损后, 鼠标眼睛。荧光素信号在明亮的绿色标记被擦伤的区域, 而上皮中的其他区域仍然是黑暗的。双侧眼睛作为控制。虚线标志着伤口的边界和每只眼睛的白点是相机的反射。(B)在0、18和72小时的磨损后, 经组织学切片、苏木精和红红染色的小鼠眼标本。角膜缘是环绕所有侧面的表皮上皮的边界。阿斯特里克斯标志着磨损的边缘。刻度条为100µm.请点击这里查看这个数字的大版本

Figure 4
图 4: 角膜磨损不会激活基质反应.碱性暴露与0.75 摩尔/升氢氧化钠其次是灌溉与 0.9% NaCl 产生角膜新生血管 (治疗后立即收集眼睛)。即使在18小时的磨损部位被划上虚线, 眼球毛刺的磨损也显示无血管新生。缩放栏 1 mm请单击此处查看此图的较大版本.

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Discussion

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伤人方法是研究角膜稳态和病理不同方面的常用工具。磨损模型为解决眼科相关问题提供了一种良好的控制方法。然而, 议定书中的某些关键点值得强调。值得注意的是, 有关兽医医学、伤口愈合时间线和结果的详细说明被优化为与 outbred NMRI 和代表种群一起使用, 但在小鼠26株中可能有所不同。通过这个协议, 实验动物将保持麻醉大约20分钟。这给了一个短但足够的时间窗口来执行磨损。然而, 当使用眼毛刺, 使磨损本身是一个非常快速的操作, 应该可以执行在这个时间框架。

易接触可视化是磨损模型的主要优点之一。结合分子生物学的方法, 这打开了研究上皮细胞的可能性很大的细节。角膜擦伤可以被处理为组织学或免疫学染色, 蛋白质或核酸可以进一步收集和检查。Pajoohesh-甘吉人表明, 角膜上皮细胞中的基因表达模式在角膜侮辱时发生改变, 叶片27变钝。为了确保受控取样, 我们建议在操作后立即采取擦伤的图像, 样本集合正好按照计划的时间线进行。

该协议的使用超出了对角膜上皮的检查。例如, 角膜缘的磨损, 角膜的干细胞利基, 可用于研究干细胞动力学7。我们表明, 在愈合过程中, 上皮的非擦伤区保持正常, 但一些作者声称, 基底膜和底层基质基质受眼球毛刺24,28的影响。基底膜的去除可以用特定的基底膜染色来估计。此外, 在较长时间线上反复擦伤可以揭示有趣的愈合模式。在这项议定书中, 我们没有观察到上皮结构的长期追逐。在受伤242930后一至数周后, 钝刀和眼毛刺损伤均显示角膜糜烂发生率增加。在使用磨损模型进行长期研究时, 应牢记这一点。然而, 关注角膜糜烂的研究可能会发现这个协议是有用的。

其他伤害模型被描述在长度由 Stepp人在回顾5。这项议定书和现有的办法共同提供了各种可供选择的方法来审查基本的生物学问题和实际的临床问题。

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

我们要感谢凯撒 Ikkala 在实施这一方法以及后来在执行我们的中心研究问题时提供的宝贵的技术援助和深刻的帮助。我们还要感谢实验动物中心和安娜 Meller 在规划兽医工作指南方面的帮助。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
NMRI mouse Envigo 275
0.9% NaCl use sterile
Medetomidine Vetmedic Vnr087896 Market name: Cepetor Vet
Ketamine Intervet Vnr511485 Market name: Ketaminol Vet
Buprenorfin Invidior 3015248 Market name: Temgesic
Atipamezol Orion Pharma Vnr471953 Market name: Antisedan Vet
Carprofen Norbrook Vnr027579 Market name: Norocarp Vet
1% fucidin acid eye ointment Dechra Vnr080899 Market name: Isathal
Fluorescein salt Sigma-Aldrich F6377
Phosphate-buffered saline solution PBS
Algerbrush ii ocular burr (0.5 mm tip) Algerbrush 6.39768E+11
Cobalt Blue pen light SP Services DE/003
Hot plate Kunz Instruments 2007-0217
Digital SLR camera Nikon D80
Adjustable camera arm and clamp Neewer 10086132 Height 28 cm
Table lamp with a flexible arm and a clamp Prisma
Soft wipe KimtechScience 7552
CO2 chamber
Dissection toolset Fine Science Tools
Syringes Beckton Dickinson 303172
26G needles Beckton Dickinson 303800
2 mL Eppendorf tube Sarstedt 689
Tissue casette Sakura Finetech 4118F
Tissue processing machine ASP200S Leica
Xylene VWR UN1307
Paraffin wax Millipore K95523361
Tissue embedding mold 32 x 25 x 6 mm Sakura Finetech 4123
Microtome Microm HM355
Water bath for sectioning Orthex 60591
Water bath for sectioning Leica HI1210
Microtome blade Feather S35
Glass slide Th.Geyer GmbH & Co. 7,695,019
Ultrapure water Millipore MPGP04001 MilliQ
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127 PFA

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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眼毛刺角膜上皮磨损与角膜创面愈合的模型研究
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Kalha, S., Kuony, A., Michon, F. Corneal Epithelial Abrasion with Ocular Burr As a Model for Cornea Wound Healing. J. Vis. Exp. (137), e58071, doi:10.3791/58071 (2018).More

Kalha, S., Kuony, A., Michon, F. Corneal Epithelial Abrasion with Ocular Burr As a Model for Cornea Wound Healing. J. Vis. Exp. (137), e58071, doi:10.3791/58071 (2018).

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