Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Fuldstændig og delvis aorta okklusion til behandling af blødende chok hos svin

Published: August 24, 2018 doi: 10.3791/58284
* These authors contributed equally

Summary

Vi præsenterer her, en protokol, der demonstrerer en hæmoragisk chok model i svin, der bruger aorta okklusion som en bro til endelig behandling i traumer. Denne model har ansøgning i test en lang række kirurgiske og farmakologiske terapeutiske strategier.

Abstract

Blødning er fortsat den hyppigste årsag til forebygges dødsfald i traumer. Endovaskulære forvaltning af ikke-Komprimerbar torso blødning har været på forkant med traumebehandlingen i de seneste år. Da komplet aorta okklusion udgør alvorlige bekymringer, har begrebet delvis aorta okklusion fået en stigende opmærksomhed. Vi præsenterer her, en stor dyremodel af hæmoragisk chok at undersøge virkningerne af en roman delvis aorta okklusion ballonkateter og sammenligne det med et kateter, der virker på princippet om fuldstændig aorta okklusion. Svin er bedøvede og instrumenteret for at gennemføre kontrollerede fast volumen blødning, og hæmodynamiske og fysiologiske parametre overvåges. Efter blødning, aorta ballon okklusion katetre er indsat og oppustede i supraceliac aorta i 60 min, hvor dyrene modtager fuldblod genoplivning som 20% af total blodvolumen (TBV). Efter ballon deflation, dyrene bliver overvåget i intensivbehandling omgivelser for 4 h, hvorunder de får væske genoplivning og vasopressors efter behov. Delvis aorta ballon okklusion under ballon inflationen påvist forbedret distale gennemsnitlige arteriel pres (MAPs), faldt markører af iskæmi og faldt væske genoplivning og vasopressor brug. Som svin fysiologi og homeostatiske svar efter blødning har været veldokumenteret og er ligesom dem i mennesker, et svin hæmoragisk kan chok model bruges til at teste forskellige behandling strategier. Ud over behandling af blødning, er aorta ballon okklusion katetre blevet populære for deres rolle i hjertestop, hjerte- og vaskulære kirurgi og andre højrisiko elektive kirurgiske procedurer.

Introduction

Blødning er fortsat den dominerende årsag til forebyggelige dødsfald i patienter, der gennemgår traumatiske begivenheder, tegner sig for 90% af traume-relaterede dødsfald i den militære indstilling og 40% af post-traumatisk dødsfald blandt civilbefolkningen1, 2. selv om direkte pres kan behandle Komprimerbar blødning, ikke-Komprimerbar torso blødning er fortsat vanskelig at behandle og kan være dødbringende uden lynhurtig hæmostatisk kontrol. Den historiske tilgang af genoplivning torakotomi eller laparotomi med aorta cross-fastspænding har vist sig for at være meget invasive3,4. Dette indgreb kræver også en kompleks udvalg algoritme til at afgøre kandidatur af patienter, der har gennemgået en traumatisk fornærmelser5.

I de seneste år har der været en genopblussen af interesse i en tidligere beskrevne tilgang — genoplivning endovaskulære ballon okklusion af aorta (REBOA)6,7,8. Selvom REBOA har fået tillagt en kortsigtet overlevelse fordele i blødning, udgør en langvarig komplet okklusion af aorta under ballon inflationen alvorlige bekymringer, der omfatter irreversibel ende-orgel iskæmi9,10. I et forsøg på at overvinde denne potentielle sygelighed, er alternative endovaskulære strategier til at styre blødning ved at blive udtænkt. En sådan strategi, der har set en stigende opmærksomhed er en delvis okklusion af aorta11,12. Tanken om delvis aorta ballon okklusion frembyder perfusion af vaskulære senge distalt for webstedet af okklusion, forbedret fysiologisk proksimale aorta kort og en gradvis afterload reduktion efter ballon deflation. Disse ændringer i parametre er ønskede ændringer af de fysiologiske egenskaber af et blødende dyr. Før denne metode oversættelse til mennesker, komplet og delvis aorta ballon okklusion katetre er blevet stærkt testet i svin modeller af hæmoragisk chok11,12,13.

Svin har været anvendt i studier medfører hæmoragisk chok i mange år. De fleste af de nuværende forståelse af Patofysiologi af hæmoragisk chok er afledt af undersøgelser, der har udnyttet dyremodeller, herunder svin. Deres fysiologi og homeostatiske svar i fastsættelsen af patologiske volumen udtynding følgende blødning, navnlig vedrørende blod blodpropper og hjerte-kar-svar, har været veldokumenteret og er ligesom dem i mennesker14. Svin modeller af hæmoragisk chok giver også muligheder for at undersøge behandling strategier for hæmoragisk stød og andre traumatiske skader.

I denne undersøgelse viser vi en klinisk realistisk model af hæmoragisk chok i svin at evaluere endovaskulære behandling strategier, herunder fuldstændig og delvis aorta ballon okklusion. Vi hypotesen om, at en delvis okklusion af aorta resulterer i en bedre fysiologisk og laboratorium profil i forhold til en komplet okklusion af aorta hos svin undergår en kontrolleret fast volumen blødning.

Vi havde til formål at sammenligne de fysiologiske virkninger af delvise og fuldstændige aorta okklusion som en behandling blødende chok i en svin model. Delvis aorta okklusion blev opnået ved hjælp af en selektiv aorta ballon okklusion i traumer (SABOT) kateter (figur 1). SABOT kateteret er en to-ballon system, der tillader intra-luminale blodgennemstrømning, hvilket giver en delvis aorta flow til de vaskulære senge distalt for okklusion. Komplet aorta okklusion blev opnået ved hjælp af en enkelt-ballon aorta okklusion kateter (fxCODA) (figur 1). Behandlingsgrupper blev randomiseret til at gennemgå genoplivning aorta okklusion enten med den fuldstændige eller delvise aorta ballon okklusion katetre (n = 2/gruppe).

De vigtigste trin i modellen omfatter induktion af anæstesi og intubation, vedligeholdelse af anæstesi, instrumentering, 35% TBV blødning (20 min. alt; halvdelen over de første 7 min, og halvdelen over de resterende 13 min), aorta ballon okklusion og fuldblod genoplivning (60 min af okklusion; 20% fuldblod genoplivning i løbet af de sidste 20 min af okklusion), intensivbehandling overvågning (240 min) med hæmodynamiske observation og eutanasi med væv høst. Figur 2 viser modellen anvendes i dette eksperiment.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Forsker ved hjælp af dyr, efterforskerne overholdt Animal Welfare Act forordninger og andre føderale vedtægterne om dyr og eksperimenter, der involverer dyr og principperne fastsat i den nuværende version af vejledningen til pleje og brug af forsøgsdyr af de nationale Forskningsråd. Denne undersøgelse protokollen blev godkendt ved University of Michigan institutionelle Animal Care og brug udvalg (IACUC). Forsøgene blev gennemført i overensstemmelse med alle bestemmelser og retningslinjer vedrørende dyrevelfærd i forskning.

1. animalsk udvælgelse og akklimatisering

  1. Brug kvindelige Yorkshire-Landrace krydset svin (n = 2/gruppe, aldersgruppe: 5-6 måneder, vægt interval: 40-60 kg) for forsøget.
  2. Efter deres ankomst til faciliteten, hus dyr individuelt i bure, men sikre, at der er rigelig interaktion mellem dyr i nabolandet bure.
  3. Hus dyr for mindst 5 d, således at de er helt akklimatiseret før du udfører eksperimentet. I denne periode, fodre dyrene med en standard kost og overhold dem at undersøge de er i en god sundhedstilstand.
  4. Holde dyrene fra spise og drikke efter midnat før operationen til at forhindre risikoen for aspiration under intubation.

2. anæstesi og Intubation

  1. Adstadige dyret med 5 mg/kg Tiletamin/zolazepam gives intramuskulært (IM) i gluteus musklen, mens dyret er i området boliger. Samtidigt, give 0,05 mg/kg atropin IM som antikolinerge agent til at minimere sekret under intubation.
  2. Transport af dyr fra området boliger til operationsstuen og placere den i den liggende stilling på en operationsbordet.
  3. Bruge inhaleret isofluran (2% - 5%) til at fremkalde anæstesi. Bruge 21% ilt (0,4 L/min) blandet med luft (4 L/min) som transportør gasser til at levere den inhalerede bedøvende gas.
  4. Mens den ønskede dybde af anæstesi opnås, placere en 20 G perifer intravenøs (IV) kateter i øret vene IV forvaltning af væsker, medicin eller anæstesi, efter behov.
  5. Da dyret erhverver den ønskede dybde af anæstesi, vaskes forsigtigt nogen affald og rester fra de operative websteder, herunder i venstre og højre lyskelymfeknuder regioner, venstre og højre side af halsen og maven. Brug en elektrisk hårklipper til at fjerne alle hår fra de operative websteder. Vurdere dybde af anæstesi ved at knibe hind lemmer af dyret og observere dens (manglende) svar.
  6. Sikre dyret til operationsbordet ved hjælp af kirurgiske bomuld reb omkring hver ende, før intubation.
  7. Bruge et lille stykke kirurgisk bomuld reb til løft underkæben sammen med tungen til at åbne den mundtlige blænde. Bruge et andet stykke af bomuld reb til at trække maxilla nedad. I tilfælde af kæben afslapning er utilstrækkelig eller vokal folder er skjult, øge isofluran kort og Gentag dette trin.
  8. Brug ikke-dominerende hånd for at holde i håndtaget af en konventionel laryngoscope udstyret med en 12 i tændte Miller klinge. Passere spidsen af Miller blade gennem oropharynx. Praksis forsigtighed at bevare tænderne og mundslimhinden mens manøvrering klinge i mundhulen. Langsomt forhånd blade tip indtil strubelåget kan visualiseres tydeligt og gå videre forbi larynx fjorden. Ved hjælp af håndleddet, løfte blade, Højdeindstillelige strubelåget, således at en klar opfattelse af strubehovedet er opnået.
  9. Sted en 6,5 Fr eller 7 Fr endotrakealtube (ETT) med en stylet mellem vokal folder i luftrøret. I tilfælde af laryngospasme på grund af slimhinde irritation, anvende 2% lidocain på vokal folder og feltet median glosso-epiglottic og revurdere.
  10. Fjern stylet inden man fuldt rykkede rør ned i luftrøret mens du holder et fast greb på røret. Puste ballonen manchet med 10-15 cm3 i luften for at forhindre enhver udsivning omkring manchetten og aspiration af maveindhold.
  11. Tilslut ETT til den mekaniske ventilator gennem en vejrtrækning filter (varme og fugt varmeveksler). Sikre ETT ved at binde bomuld bånd omkring snuden (maxilla).
  12. I tilfælde af en mislykket intubation, lad den animalske oxygenater og ventilere kort før eventuelle yderligere forsøg.
  13. Sikre passende mekanisk ventilator indstillinger: en blanding af 21% ilt og luft. en tidalvolumen 7-10 mL/kg legemsvægt; en respirationsfrekvens på 10-15 vejrtrækninger/min til at opretholde en ende-tidevandsenergi pCO2 af 40 mmHg ± 2 mmHg.
  14. Placer en pulsoximeter på enten øret, tungen eller hale til at måle blod iltning og puls. Fremme en rektal sonde gennem den anal blænde for kontinuerlig temperaturovervågning.
    Bemærk: Temperatur af dyret er skal opretholdes mellem 38 ° C til 40 ° C ved hjælp af en opvarmet temperatur-regulerede operationsbordet, heat mat eller varme tæppe.
  15. Bruge isofluran (1% - 3%) til vedligeholdelse af anæstesi under hele proceduren. I løbet af denne tid, vurdere dybde af anæstesi ved test for smerter reflekser ved hjælp af en hind lemmer knivspids. Desuden overvåge respirationsfrekvens på ventilator til at se, om det passer den programmerede ventilator sats.
    Bemærk: Overdreven vejrtrækning angiver en utilstrækkelig dybde af anæstesi.

3. operationsstedet sterilisation (forberedelse og draperinger)

  1. Forberede indsnit websteder, samt et stort område omkring dem for de eksperimentelle procedurer. Snit websteder for eksperimentet omfatte bilaterale lyskelymfeknuder regioner, de bilaterale hals og underlivet. Desinficer de operative websteder ved at skrubbe dem med en rigelige mængder af povidon-jod i 5 min.
  2. Brug tørre, steril gaze til at fjerne povidon-jod sæbe fra huden.
  3. Placer steril kirurgiske håndklæder omkring de operative websteder til at bevare de steril kirurgiske felter. Brug håndklæde pincet til at sikre håndklæder på plads. Dække dyret med en steril drapere at forebygge enhver kontaminering af de kirurgiske websteder.

4. cannulation

  1. Femoralis arterie og vene cannulation
    Bemærk: En cannulation af rigtige femorale arterie, venstre femorale arterie og venstre femur vene er udført. Den rigtige femorale arterie er kanylerede ved hjælp af en 14 Fr indsættelse kappe for aorta ballon okklusion kateter indsættelse. Den venstre femorale arterie er kanylerede med et 5 Fr kateter til distale kort overvågning. En 8 Fr kateteret placeres i den venstre femur vene væske administration og blod tilbagetrækning. Den åbne Seldinger teknik er ansat til at få vaskulær adgang til alle cannulations15.
    1. Før du foretager indsnittet, vurdere dybde af anæstesi ved at klemme hind lemmer af dyret.
    2. Ved hjælp af en skalpel monteret med en steril kirurgiske kniv nummer 10, gøre en lodret 8 cm indsnit i højre lyske 4 cm over og 4 cm under højre lyskelymfeknuder krølle.
    3. Dissekere gennem subkutane væv og muskler og bruge to Weitlaner retraktorer for at få korrekt eksponering. Bruge en hær-flåde retractor for yderligere retraktion, hvis nødvendigt.
    4. Bruge Mixter ret vinkel pincet og Elektrokauterisation for at dissekere gennem bindevævet indtil den neurovaskulære bundt er klart eksponeret.
    5. Forsigtigt dissekere arterie. Bevare den nerve, som er den laterale-mest struktur.
    6. Omhyggeligt dissekere vene, som ligger mest medialt fra arterien.
    7. Få proksimale og distale kontrol af arterie ved hjælp af 2-0 silke bånd.
    8. Bruge en 20 G vinklet introducerende nål til at punktere arteria. Sikre en hensigtsmæssig holdning i fartøjet lumen ved at observere den pulsatile blodgennemstrømningen gennem anden enden af nålen.
    9. Fremme en rundspidsede 0,35 i guidewire gennem lumen af den vinklede nål.
    10. Hæve nålen over guidewire. Sikre ingen migration af guidewire ved at holde det på plads.
    11. Passere en 10 Fr dilator over guidewire til at spile åbning i arterien. Fjerne den 10 Fr dilator. Indsæt en 14 Fr indsættelse kappe over guidewire.
    12. Fjern forsigtigt dilatatoren fra indsættelse kappe sammen med guidewire, holde kanyle inde i arterie.
    13. Skyl indsættelse kappe for at sikre sin stilling inde fartøj lumen.
    14. Fastgør enden af kateteret på plads med en 3-0 polyglactin sutur.
    15. Brug en 3-0 nylon sutur til at udføre en midlertidig kører lukning af den overliggende hud.
    16. Gentag ovennævnte trin for venstre femorale arterie cannulation med et 5 Fr kateter (ingen indledende dilatation). Isolere venstre femur venen på en lignende måde og kanyleres det med en 8 Fr kateter. Brug en 3-0 nylon sutur til at udføre en midlertidig kører lukning af den overliggende hud.
  2. Halspulsåren og eksterne halsfedt cannulation
    Bemærk: En cannulation af den bilaterale eksterne jugularis vener og venstre fælles halspulsåren er udført. En 5 Fr kateteret placeres i den venstre fælles halspulsåren for proksimale kort overvågning og en 8 Fr kateter i den venstre eksterne halsfedt for yderligere central venøs adgang for væske administration og vasopressor infusion. En 9 Fr kateteret placeres i den højre eksterne halsfedt for lungepulsåren kateterisation med pulmonal arterie (fxSwan-Ganz) kateter, mens en carotis flow sonden er placeret omkring den højre fælles halspulsåren for carotis strømningshastighed overvågning. Metoden Seldinger bruges til at få vaskulær adgang til alle cannulations.
    1. Ved hjælp af en 10-bladet skalpel, gøre en 6 cm lodret snit ca 2 cm lateral midterlinjen på venstre side af halsen.
    2. Bruge Elektrokauterisation at dissekere gennem subkutane væv indtil sternocleidomastoideus (SCM) muskel er eksponeret.
    3. Placer Weitlaner retraktorer på de proksimale og distale aspekter af indsnit til en fuld tilbagetrækning.
    4. Dissekere langs den laterale grænse af SCM musklen til at udsætte den venstre eksterne halsfedt.
    5. Fartøjet cannulation kan opnås ved at følge trin 4.1.8 - 4.1.14. Indsætte, flush, og sikre en 8 Fr kateter i venen.
    6. Venstre fælles halspulsåren eksponering, dissekere den mediale kant af SCM muskel. Sted en Weitlaner retractor at øge eksponeringen.
    7. Dissekere gennem bindevæv langs langs den laterale grænse af luftrøret. Bevare halskirtel, hvis de er stødt på.
    8. Udsætte den carotis trekant, som indeholder halspulsåren, den interne halsfedt og vagus nerve. Palpere den fælles halspulsåren for at bestemme dens bane.
    9. Omhyggeligt dissekere den fælles halspulsåren fra venen og nerve.
    10. Udføre den carotis cannulation ved at følge trin 4.1.8 - 4.1.14. Indsætte, flush, og sikre en 5 Fr kateter i arteria som tidligere beskrevet.
    11. Gentag trin 4.1. for dissektion og isolation af lige eksterne halsfedt og højre fælles halspulsåren.
    12. Placer en 4 mm halspulsåren flow sonde omkring den højre fælles halspulsåren. Anvende transducer gel mellem flow sonde og en beholder til en optimal flow signalering og fange.
    13. Efter trin 4.1.8-4.1.14, kanyleres den lige eksterne halsfedt ved hjælp af en 9 Fr introducerende kappe. Skyl og sikre kateter på plads. Brug en 3-0 nylon sutur til at udføre en midlertidig kører lukning af den overliggende hud.

5. PA kateter indsættelse

  1. Skylle injektion port, havnens proksimale og distale havnen i kateter med normal saltvand (NS) og forbinde dem til transducer slangen. Den distale havn er udpeget som lungepulsåren (PA) port, mens den proksimale havn er udpeget som det centrale venetryk (CVP) port.
  2. Check for artefakt sporing på skærmen ved at flytte kateteret. Dette gøres for at sikre, at kateteret fungerer.
  3. Advance PA kateter gennem den sterile ærme.
  4. Brug en 3 cm3 sprøjte, puste ballonen af PA kateter med ikke mere end 1,5 cm3 i luften for at teste for inflation. Deflatere ballonen for at indsætte kateteret i indsættelse kappe.
  5. Indsæt PA kateteret gennem 9 Fr indsættelse kappe. Når PA kateter er indsat i mindst 18 cm, puste ballonen med ikke mere end 1,5 cm3 i luften.
  6. Langsomt forhånd PA kateter og kontrollere skærmen for arytmier under indsættelsen. Ved ventrikulær ectopy, puste og deflatere ballonen for at forhindre progression. Hvis indsættelse bliver svært på nogen måde, ballonen skal deflateres og kateteret skal være tilbagetrukket og genindsat.
  7. Observere monitor til at evaluere overgangen fra højre atrium (RA) til højre hjertekammer (RV) til PA lungepulsåren kile pres (PWP).
  8. Deflatere ballonen og bekræfte, at en PA sporingen vender tilbage til skærmen.
    Bemærk: I passende længde af kateter fra indsættelsesstedet i den højre eksterne halsfedt er ca 45-55 cm.
  9. Tilslut enden af den sterile ærme til indsættelse kappe for at sikre holdning af kateter inde PA.
  10. Tilslut indsættelse porte af PA kateter til capture enhed at opnå minutvolumen (CO) og mætning af venøse ilt (SVO2).
  11. Kalibrere PA kateteret overvågningssystem. Ved hjælp af kroppens længde og vægt for dyret, foretage en i vivo kalibrering af PA kateteret overvågningssystem for dyret. Bruge en venøse blod gas til en yderligere kalibrering ved hjælp af oxygen mætning og hæmoglobin niveau.

6. cystostomy Tube placering

  1. Gøre en 5 cm lavere abdominal snit i midterlinjen ved hjælp af en 10-bladet skalpel.
  2. Ved hjælp af Elektrokauterisation, dissekere gennem subkutane væv og linea alba. Visualisere hvert lag under dissektion.
  3. Extracorporealize urinblæren.
  4. Med to DeBakey pincet, forstå urinblæren på den ventrale overflade fra de ureter åbninger.
  5. Brug Elektrokauterisation, lave en lille åbning i blæren, udsætter de indre lumen.
  6. Bruge suge til at fjerne enhver urin fra inden for blære lumen. Kirurgisk svampe kan bruges til enhver utilsigtet udslip af urin uden for blæren.
  7. Bruge en 4-0 polypropylen sutur til at udføre en midlertidig pung-snor lukning af blæren.
  8. Placer en 18 Fr Foley kateter inde blæren lumen og bruge en 10 cm3 sprøjte til at puste ballonen. Tilslut en urin dræning taske til Foley kateter og fastgøre den til side på operationsbordet.
  9. Bind 4-0 polypropylen sutur for at sikre Foley kateter i blæren lumen.
  10. Brug en 3-0 nylon sutur til at udføre en midlertidig kører lukning af den overliggende hud af bugvæggen.

7. fuldstændig og delvis aorta ballon kateter indsættelse

  1. Randomisere dyr for at modtage enten fuldstændig eller delvis aorta ballon okklusion katetre.
  2. Indsæt en 0,035 i, 260 cm Amplatz stiv Guidewire gennem 14 Fr indsættelse jakke i den rigtige femorale arterie, og guide den i supraceliac aorta (Zone 1) ved hjælp af ultralyd af abdominal og thorax aorta.
  3. Indsæt okklusion ballonkateter over guidewire i Zone 1 af aorta at udføre okklusion efter blødning.
  4. Bekræfte den endelige placering af aorta ballon okklusion kateter i Zone 1 af aorta med ultralyd.

8. intraoperativ hæmodynamiske og laboratorium overvågning

  1. Sikre tilslutning af de invasive katetre til overvågningssystem ved hjælp af slanger, transducere, og rør til de hæmodynamiske skærme. Invasive overvågningssystemer bør være 'nulstillet' på niveauet af dyrets hjerte til at sikre en præcis overvågning.
  2. Fysiologisk postdataene hele eksperimentet, herunder den proksimale og distale kortet, puls (HR), CVP, CO, PA pres, SVO2, ende-tidevandsenergi CO2og kroppens kernetemperatur.
  3. Optage disse variabler hvert 5 min under blødning og ballon inflation fase, så godt som hvert 15 min under resten af forsøget.
  4. Indsamle blodprøver på 4 tidspunkter: baseline (BL), efter chok (PS), efter genoplivning (PR), og ved forsøgets afslutning (E). 10 mL af blod er indsamlet for både plasma og serum analyse for hvert tidspunkt.
  5. Udføre arterielt blod gas (ABG) prøveudtagning ved at indsamle op til 1 mL blod i ABG sprøjten. Udføre ABG prøveudtagning på hver af de ovennævnte tidspunkter, og også når det er nødvendigt under eksperimentet. Bruge en blod gas analysator til analyse.
    Bemærk: Hver prøve skal analyseres indenfor 10 min for at trække blodet fordi forsinkelser længere end 10 min kan nedsætte effektiviteten af resultater16.

9. blødning

  1. Beregne TBV.
    TBV i mL = vægt i g × 0,06 + 0,77
  2. Blødning 35% af TBV ved hjælp af en automatiseret pumpe over en periode på 20 min. Fjern halvdelen over de første 7 min, og anden halvdelen over den næste 13 min.
  3. Indsamle blod i sække til indsamling af standard blod. Opbevar dem ved 4 ° C i forventning om en fremtidig transfusion.
  4. Hvis kortet falder til under 30 mmHg, stoppe blødning, slukke for isofluran og administrere 50-100 mL bolustypen af NS.
  5. Genstarte blødning, når kortet vender tilbage til 30 mmHg.

10. aorta ballon okklusion kateter Inflation og fuldblod genoplivning

  1. Puste aorta ballon okklusion kateter med 9-12 cm3 luft eller indtil ingen yderligere fald i den distale kort følgende bemærkes, en yderligere ballon inflation.
  2. Fjerne kablet fra delvis aorta ballon okklusion kateter at lette distale aorta flow, mens det for komplet aorta ballon okklusion kateter. Bekræfte placeringen af aorta ballon okklusion kateter i Zone 1 bruger ultralyd til at udelukke kateter migration.
  3. Sikre kateter til huden ved hjælp af en afbrudt 3-0 nylon sutur.
  4. Efter 40 min af aorta okklusion, genoplive dyr med fuldblod volumen lig af 20% af TBV via venstre femur vene kateteret over en 20 min periode ved hjælp af automatiserede pumpen. Bruge en varmere blod til blodtransfusion, målretning ved 40 ° C.
  5. Efter genoplivning, punktere ballon trinvist over 5 min.
  6. Fjerne aorta ballon okklusion kateter fra 14 Fr indsættelse kappe.
  7. Overvåge Hæmodynamik nøje i løbet af denne tid, den kendte risiko for iskæmi-reperfusion skade med den tilknyttede hypotension.

11. intensivbehandling, Observation og opsving

  1. Observere dyrene til 4 h med en løbende overvågning af deres fysiologiske og laboratorium parametre.
  2. Give vedligeholdelse intravenøs væske (NS infusion på 50 ml/h).
  3. Målrette en CVP af 6 mmHg ved at administrere 30 ml/kg bolustypen af NS efterfulgt af 20 ml/kg bolustypen når CVP falder under mål. Evaluere væske reaktionsevne hver time.
  4. Målrette et kort over 60 mmHg ved hjælp af en noradrenalin infusion (0,024 mg/ml).
  5. Opretholde en fysiologisk temperatur på 38-40 ° C ved hjælp af en varme tæppe.
  6. I slutningen af perioden på 4 h, aflive dyrene med en natrium pentobarbital (100 mg/kg) injektion.

12. obduktion

  1. Fjerne alle væsentlige linjer og rør fra dyret.
  2. Forberede en container med regelmæssige is og Placer den ved siden af operationsbordet at fastfryse orgel væv umiddelbart efter fjernelse fra kroppen.
  3. Brug en skalpel til at lave en 6 cm lange lodrette snit langs den venstre ribbenskant, dissekere gennem hud, subkutane væv, pectoralis muskler og kystnære brusk. Angiv brysthulen for at udsætte hjertet og lungerne.
  4. Fjerne den perikardievæske membran fra hjertet ved at gøre et snit med en skalpel og grab apex af hjertet med pincet. Brug en skalpel til at skære en 5 x 5 cm afsnit af hjertet ved apex.
  5. Brug saks til at skære en 5 x 5 cm sektion af lunge fra den forreste kant af bunden af lungen.
  6. Udvide torakotomi indsnit i den forreste midterlinjen i maven, udsætter de abdominale organer.
  7. Bruge pincet til at holde den venstre lap af leveren og skære en 5 x 5 cm sektion.
  8. Gentag den samme proces for at få prøver fra milten.
  9. Bruge højre hånd til at oprette et vindue for at angive den venstre retroperitoneum hen til fange nyren. Efter den renale parenkym er mobiliseret, Transekttællinger nyrearteriestenose, vene og ureter. Fjerne den renale kapsel.
  10. Forsigtigt klemme afføring fra en 5 cm lang sektion af tyndtarmen og bruge saks til at skære en 5 cm lang sektion af tarm fra mesenterium.
  11. Brug en skalpel til at skære en 5 x 2 cm lang sektion af quadriceps muskler fra låret.
  12. Behandle disse prøver yderligere ved at skære dem i små sektioner skal placeres i microcentrifuge rør. Flash-fryse disse vævsprøver ved at placere rør i tøris eller flydende nitrogen.
  13. Brug 50 ml konisk rør indeholdende en formalin løsning til at lave 3 cm lang, fint skåret dele af væv til en histologisk vurdering.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Hæmodynamiske og fysiologiske parametre:

KORTET faldt straks efter blødning (tal 3A - 3D). Fasen i inflationen ballon oplevet dyr i gruppen komplette okklusion en højere proksimale kort i forhold til dyr i gruppen delvis okklusion (tal 3A og 3B). Den gennemsnitlige distale kort under ballon inflationen var højere i gruppen delvis okklusion i forhold til gruppen komplette okklusion (gennemsnitlig distale kort, ballon inflation fase; delvis: 31 ± 2.9 mmHg, komplet: 16,5 ± 1.14 mmHg; p > 0,05), afspejler den delvise distale aorta flow (tal 3 c og 3D). Følgende genoplivning, proksimale og distale kortene steg i begge grupper og vendte tilbage til baseline efter ballon deflation i resten af intensivbehandling fase (tal 3A - 3D).

Alle dyr oplevet refleks takykardi umiddelbart efter blødning, som undergik en trinvis stigning i ballon inflation fase i begge grupper (figur 4A). Efter ballon deflation, timer var væsentligt højere for resten af intensivbehandling fase i gruppen komplette okklusion i forhold til gruppen delvis okklusion selv om denne forskel i HR ikke var statistisk signifikant.

Efter blødning faldt CVP i begge grupper (figur 4B). Det undergik en stigende tendens, efter ballon inflationen. Efter ballon deflation demonstreret gruppen komplette okklusion et større fald i CVP i forhold til gruppen delvis okklusion selvom ikke statistisk forskellig. Efter en yderligere genoplivning i fasen for intensivbehandling, CVP genvundet mod baseline i begge grupper. Ligeledes CO faldt efter blødning, steg i ballon inflationen, og vendte tilbage til baseline efter ballon deflation og genoplivning for begge grupper (figur 4 c).

Den carotis flow faldt i begge grupper straks efter blødning (figur 4D). Efter ballon inflationen, komplet okklusion gruppe påviste højere carotis strømningshastigheder i forhold til gruppen delvis okklusion. Efter genoplivning og ballon deflation, carotis strømningshastigheden tilbagebetalt mod baseline i begge grupper. Men denne carotis flow var lavere i gruppen komplette okklusion i forhold til gruppen delvis okklusion.

Laboratoriet parametre:

Ingen mærkbare forskelle i baseline pH og laktat blev konstateret mellem grupperne. Efter inflationen ballon oplevede dyr i begge grupper et fald i pH (figur 5A). PH nadir i gruppen komplette okklusion var især lavere end i gruppen delvis okklusion (komplet: 7,14 ± 0,01, delvis: 7.32 ± 0,02, p = 0,1). Laktat var betydeligt højere i hele ballon inflation og den resterende del af fasen intensivbehandling i gruppen komplette okklusion (komplet: 17,5 ± 0,71 mmol, delvis: 6,1 ± 0,28 mmol, p = 0,03) (figur 5B). Denne forskel i laktat niveauer faldt langsomt indtil niveauerne var ens i slutningen af fasen intensivbehandling.

Genoplivning krav:

Den samlede væske krav for dyr i gruppen komplette okklusion var betydeligt højere end for dyr i gruppen delvis okklusion (i alt yderligere væske genoplivning for dyr i gruppen komplette okklusion: 47,5 ± 3,4 cm3/kg, Total ekstra væske genoplivning for dyr i gruppen delvis okklusion: 3,7 ± 0,4 cm3/kg, p = 0,003) (figur 6A). Ligeledes kravet noradrenalin i gruppen komplette okklusion var betydeligt højere end i gruppen delvis okklusion (komplet: 289.7 ± 25,4 µg/kg, delvis: 32 ± 13,8 µg/kg, p = 0,006) (fig. 6B).

Figure 1
Figur 1: aorta ballon okklusion katetre. (A) delvis aorta okklusion er opnået ved hjælp af en selektiv aorta ballon okklusion i traumer (SABOT) kateter, mens komplet aorta okklusion er opnået ved hjælp af komplet aorta ballon okklusion kateter. (B) den delvise aorta ballon okklusion kateter er en to-ballon system, der tillader en intra-luminale blodgennemstrømning giver en distal aorta flow. Komplet aorta okklusion er fastsat ved hjælp af en enkelt-ballon. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 2
Figur 2: skade protokol. En skade, bestående af en 35% total blod volumen blødning er efterfulgt af en 1 h periode af aorta ballon okklusion. En genoplivning udføres med 20% fuldblod over 20 min, efter 40 min for ballon okklusion. Dyrene bliver overvåget i intensivbehandling fase for 4 h efter ballon deflation. BL = grundlinjen; PS = efter chok; PR = efter genoplivning periode. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 3
Figur 3: hæmodynamiske svar til den skade og ballon inflation. Disse paneler viser intraoperativ målinger af (A) den proksimale pæiske arterielt tryk (kort), (B) den proksimale kort under ballon inflationen, (C) den distale kort og (D) den distale kort under ballonen inflationen. Data er præsenteret som gruppen: ± standardafvigelse (SE). S = chok periode (20 min); Ballon = ballon inflation (60 min); R = genoplivning (20 min); PR = efter genoplivning periode/ballon deflation; E = slutningen af fasen skade (5 h efter chok periode færdiggørelsen); Komplet = den komplette aorta okklusion ballonkateter; Delvis = delvis aorta ballon okklusion kateter. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 4
Figur 4: systemisk og fysiologisk reaktion på den skade og ballon installation. Disse paneler viser intraoperativ målinger af (A) puls (HR), (B) det centrale venetryk (CVP), (C) hjertesygdomme output (CO) og (D) den carotis flow (CF). Dataene præsenteres som gruppe gennemsnit ± SE. S = chok periode (20 min); Ballon = ballon inflation (60 min); R = genoplivning (20 min); PR = efter genoplivning periode/ballon deflation; E = slutningen af fasen skade (5 h efter chok periode færdiggørelsen); Komplet = den komplette aorta okklusion ballonkateter; Delvis = delvis aorta ballon okklusion kateter. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 5
Figur 5: laboratorium parametre i svar til den skade og ballon inflation. Disse paneler viser intraoperativ målinger af (A) pH og (B) laktat. Dataene præsenteres som gruppe gennemsnit ± SE. Stjernerne angiver de tidspunkter, der var signifikant forskellig (p < 0,05). S = chok periode (20 min); Ballon = ballon inflation (60 min); R = genoplivning (20 min); PR = efter genoplivning periode/ballon deflation; E = slutningen af fasen skade (5 h efter chok periode gennemført). Komplet = den komplette aorta okklusion ballonkateter; Delvis = delvis aorta ballon okklusion kateter. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 6
Figur 6: genoplivning krav som reaktion på den skade og ballon inflation. Disse paneler viser intraoperativ målinger af (A) samlede yderligere genoplivning væsker og (B) noradrenalin brugen. Dataene præsenteres som gruppe gennemsnit ± SE. Stjernerne angiver betydelige forskelle (p < 0,05). Komplet = den komplette aorta okklusion ballonkateter; Delvis = delvis aorta ballon okklusion kateter. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

I denne protokol fremhævet vi en hæmoragisk chok model i svin. Denne model har vist sig at være både pålidelige og reproducerbare16,17,18,19. Modeller ligner denne har været ansat i flere videnskabelige studier undersøger virkningerne af hæmoragisk chok på Dyrefysiologi16,20. Endvidere, denne model er også blevet brugt til at teste både farmakologiske og kirurgisk behandling interventioner i hæmoragisk chok med markant succes12,13,16,19, 21.

Denne model består af flere trin, der kræver stor sans for detaljer. Intubation af et svin er en kompliceret procedure, da dyret har en lang, næb-lignende snude og en smal, lang svælg cavity. Derudover har svin generelt en høj tendens til at gennemgå laryngospasme, gør orotracheal intubation endnu mere udfordrende22. En passende induktion af anæstesi, fremme god muskuløs afslapning, bør ske før du forsøger at intubation. Vores erfaring, at have en assistent til at bruge kirurgisk bomuld reb til løft underkæben og tungen og trykkes maxilla hjælper med at fremme en bredere åbning af mundhulen for lettere intubation. Hvis intubation bliver vanskelig på grund af laryngospasme, bør aktuel xylocaine spray anvendes. Selv om ikke udnyttes i denne protokol, kan en neuromuskulær blokker administreres for at fremme larynx afslapning. Ved hjælp af en neuromuskulær blokker, men kræver nøje tilsyn af en uddannet professionel. Vi har også fundet det nyttigt at anvende smørende gel til slutningen af den endotrakealtube samt dreje røret samtidig fremme det gennem larynx åbningen. Efter intubation, endotrakealtube placering bør bekræftes med end-tidal CO2. Ikke desto mindre, selv om svin kan være intubated i forskellige positioner, finde vi intubation i den liggende stilling at være den nemmeste, især hvis den enkelte udfører intubation har erfaring med menneskelige intubation.

Femoralis arterie og vene cannulation kan være en teknisk udfordring. Brug af god retraktion er vigtigt og kan opnås ved hjælp af selvstændige fastholde retraktorer. En yderligere retractor, som en hær-flåde, kan anvendes, hvis det er nødvendigt. Pleje bør tages mens dissekere den neurovaskulære bundt, eftersom den femoralis nerve, som er den laterale-mest struktur i bundtet, skal bevares. Dette er især vigtigt, hvis dyr skal overleve eksperimentet. Derudover er cannulation af den rette femorale arterie et afgørende skridt til eksperimentet. Efter guidewire cannulation i fartøjet, en 14 Fr indsættelse kappe er indsat. En vellykket gennemførelse af dette trin kræver en indledende dilatation med en 10 Fr dilator konvertere fartøjet. Også af allerstørste betydning komprimere arteria femoralis i stedet for arteriotomy, efter fjernelse af de 10 Fr dilatatoren, at minimere blodtab. Selv om ikke rutinemæssigt udført i dyreforsøg, at få proksimale og distale kontrol før udførelse af arteriotomy og venotomy, som påvist i denne undersøgelse, kan hjælpe med at minimere blødningen og muliggøre fejlfinding, opstår problemer under den cannulation.

En passende positionering og implementering af aorta ballon okklusion katetre er kritisk. Forsigtighed bør praktiseres samtidig fremme kateter inde i aorta, som aggressive manipulation kan resultere i en iatrogen skade til femoralis arterie eller aorta. Selv om flere steder kan være målrettet til indsættelse af kateteret, valgte vi at placere okklusion balloner i aorta Zone 1, der er supraceliac aorta. Ballon positionering kan bekræftes ved manuel palpering eller fluoroskopi; ultralyd kan dog også bruges til at let bekræfte den ballon placering, som blev brugt til denne undersøgelse. Efter passende positionering, ballon inflation bør gennemføres med omhu. I almindelighed, skal balloner være oppumpet langsomt indtil nogen yderligere fald i den distale kort bemærkes. Overinflation af ballonen kan potentielt forårsage ballon brud, som kan udløse en aorta skade. Opmærksom på den proksimale og distale kort hjælper med at opnå den ønskede grad af aorta ballon okklusion, om hel eller delvis.

Indsættelse skeder og aorta ballon okklusion katetre er blevet mindre i profil i de seneste år. I denne undersøgelse brugte vi en 14 Fr indsættelse kappe inden man rykkede den delvise aorta okklusion ballonkateter (dvs.SABOT) i arteria femoralis. I øjeblikket er denne kateter i fase af sin udvikling, med planer for en fremtidig revision involverer justerbar balloner og den distale aorta flow samt en mindre, lav-profil system. Mindre 7 Fr katetre, men har vundet popularitet i de seneste år, da de er forbundet med færre iskæmiske komplikationer. Mindre, lav-profil skeder og aorta ballon okklusion katetre kan også anvendes til installation i denne hæmoragisk chok model, med fremragende resultater.

Flere modeller af blødning er brugt til at teste hæmoragisk chok i store dyr23,24,25. Vi anvender en fast volumen model af blødning. I denne model trækkes en forudbestemt blødning volumen, der er baseret på en beregnet TBV, fra kroppen over en nærmere fastsat periode. Vi brugte en 35% TBV blødning over 20 min, som er almindeligt anvendt i fast volumen hæmoragisk chok modeller26,27,28,29. Denne model er almindeligt anvendt til at undersøge chok-induceret fysiologiske ændringer samt kompensatoriske mekanismer og patofysiologiske svar i hæmoragisk chok. Selvom denne metode er meget populære, varierer graden af chok, der er foranlediget af fast volumen blødning fra dyr til dyr. Desuden, som blod volumen-til-kropsvægt ratio varierer, det er vigtigt at kontrol for vægt i denne model for at opnå reproducerbare resultater. Andre modeltyper i praksis omfatter et fast pres blødning model, en ukontrolleret blødning model og en blødning model med iskæmisk markører som slutpunkter. Hver af disse modeller, men har sit eget sæt af begrænsninger.

Kontrolleret blødning modeller har været brugt til at teste aorta ballon okklusion katetre med succes12. I denne undersøgelse brugte vi en lukket blødning system, fordi denne type af blødning model kan være ansat i en lang række eksperimenter. Vores mål var at give læserne med foundation til at replikere en hæmoragisk chok model og installere aorta ballon okklusion katetre. Men for at skabe den mest klinisk relevant og meningsfuld sammenligning af delvis versus komplet aorta okklusion, bør disse katetre i sidste ende testes i fastsættelsen af en igangværende distale blødning. I kombination med andre traumatiske fornærmelser, kan denne model af hæmoragisk chok ekstrapoleres til en mere klinisk realistisk model af traumatiske skader16,18.

Genoplivning strategier efter traumatiske skader i dyremodeller varierer meget. Mens nogle er fortalere for «flydende lydhørhed»-vejledende krav til løbende genoplivning28, andre foreslår objektive tærskler for administration af væske bolustypen og vasopressors21,26. I denne undersøgelse, vi ansat tærskler til at bestemme den flydende bolus administration og vasopressors brug for deres brugervenlighed reproducerbarhed. Selv om 'væske lydhørhed' replikater klinisk praksis, kan objektive grænseværdier for flydende administration og vasopressors begrænse en bred variation og subjektivitet genoplivning krav i hæmoragisk chok modeller.

I år, har svin været brugt i forskellige modeller af hæmoragisk chok, der har givet mulighed for at teste en bred vifte af behandling strategier11,12,13,16,17, 19,20,21,30. Det er dog vigtigt at indse, at svin er ikke den perfekte dyremodel og fysiologiske ændringer Oversæt ikke ligefrem til mennesker. For eksempel, kan nogle forskere anbefale splenektomi før det blødende chok til bedre at efterligne den menneskelige fysiologi, selv om dette kontroversielle emne31.

Til sidst, viser denne protokol den grundlæggende fundament for replikere en hæmoragisk chok model i svin og indsættelse af aorta ballon okklusion katetre. Resultaterne af en undersøgelse, der anvendes en lignende model af hæmoragisk chok er i øjeblikket bliver brugt i fase II kliniske forsøg undersøge rollen som valproinsyre (VPA) i traumatiske skader16,19,32,, 33 , 34. også, skal bemærkes, er betydningen af aorta ballon okklusion katetre rolle i den nuværende æra. Aorta ballon okklusion katetre har ikke kun fundet et program i hæmoragisk chok, de bliver også brugt i hjerte- og vaskulære operationer og højrisiko elektive kirurgiske procedurer hvor en kontrol af aorta strømmen er nyttige i en ellers ødelæggende omstændighed. Samlet set mener vi at svin model af hæmoragisk chok beskrevet og aorta ballon okklusion er yderst relevante og kan være ansat i en lang række eksperimentelle undersøgelser.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Dette arbejde støttes af os hær medicinalforskning og Materiel kommando under Kontraktnr. W81XWH-16-C-0102. Synspunkter, udtalelser og/eller resultater, der er indeholdt i denne betænkning er forfatter og skal ikke opfattes som en officiel Institut for hær-position, politik eller beslutning, medmindre udpeget af anden dokumentation.

Acknowledgments

Vi vil gerne anerkende Rachel O'Connell og Jessica Lee for deres hjælp med dyreforsøg. Vi vil også gerne anerkende generalmajor General Harold Timboe, MD, MPH, US Army (Ret.), der har været en rådgiver og mentor for dette projekt.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Yorkshire-Landrace Swine Michigan State University Veterinary Farm
Anesthesia: Telazol Pfizer Dose: 2-8 mg/kg; IM
Anti-cholinergic: Atropine Pfizer Dose: 1mg, IM
Anesthesia: Isoflurane Baxter Dose: 1-5%, INH
Betadine Humco
Alcohol 70% Humco NDC 0395-4202-28
Datex-Aespire Anesthesia Machine GE Healthcare 7900
Endotracheal tube DEE Veterinary 20170518 Appropriate size for animal (6.5 or 7.0F)
Laryngoscope Miller 85-0045
Stylet Hudson RCI 5-151--1
Jelco 20G IV Catheter Smiths Medical 4054
Operating Room Monitor (Vital Signs Monitor) SurgiVet Advisor V9201 May require at least 2
Surgical Gowns Kimberly Clark 90142 Use appropriate size for surgeon.
Sterile surgical gloves Cardinal Health (Allegiance) 22537-570 Use appropriate size for surgeon.
Cautery Pencil Medline ESPB 2000
Suction tubing Medline DYND50251
Sunction tip: Yankauer Medline DYND50130
Bovie Aaron 1250 Electrocautery Unit Bovie Medical Co. FL BOV-A1250U
Salpel Blade - Size #10 Cardinal Health (Allegiance) 32295-010
Scalpel Handle Martin 10-295-11
Debakey Forceps Roboz RS-7562
Weitlander Retractor Roboz RS-8612
Mayo Scissors Roboz RS-76870SC
Army-navy Retractor Teleflex 164715
Mixter Right-angle Forceps Teleflex 175073
5F (1.7 mm) 11 cm Insertion Sheath with 0.35" Guidewire Boston Scientific 16035-05B
8F (2.7 mm) 11 cm Insertion Sheath with 0.35'' Guidewire Boston Scientific 16035-08B
20G angled Introducer Needle Arrow AK-09903-S
14F (4.78 mm) 13 cm Insertion Sheath with 10F dilator Cook Medical G08024
2-0 Silk 18'' 45 cm Ethicon A185H
3-0 Vicryl 36'' 90 cm Ethicon J344H
3-0 Nylon 18'' 45 cm Ethicon 663G
4-0 Prolene 30'' 75 cm Ethicon 8831H
20 ml syringe Metronic/Covidien 8881512878
3 mL syringe Metronic/Covidien 1180300555
6 mL syringe Metronic/Covidien 1180600777
1000ml 0.9% Saline Baxter 2B1324X
Foley Catheter (18F 30 cc) Bard 0166V18S
Urinary Drainage Bag Bard 154002
9F 10 cm Insertion Sheath Arrow AK-09903-S
Swan-Ganz pulmonary artery catheter (8F) Edwards Lifesciences co. CA 746F8
Carotid Flow Probe System Transonic, Ithaca, NY 3, 4, or 6 mm probes
SABOT catheter Hayes Inc.
CODA balloon catheter Cook Medical 8379144
Ultrasound, M-Turbo SonoSite
Amplatz Stiff Guidewire (0.035 inch, 260 cm) Cook Medical G03460
Arterial Blood Gas Syringes Smiths Medical 4041-2
Arterial Blood Gas Analyzer Nova Biochemical ABL800
Masterflex Pump Cole Palmer HV-77921-75
Blood Collection Bags Terumo 1BBD606A
Macro IV drip set Hospira 12672-28
Pentobarbital Pfizer Dose: 100 mg/kg; IV
Eppendorf Tubes Sorenson 11590
50 cc conical tubes Falcon 352097
Formalin Fisherbrand 431121
Bair Hugger Normothermia System Arizant Healthcare, Inc.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kauvar, D. S., Lefering, R., Wade, C. E. Impact of hemorrhage on trauma outcome: an overview of epidemiology, clinical presentations, and therapeutic considerations. The Journal of Trauma: Injury, Infection and Critical. 60, S3-S11 (2006).
  2. Kauvar, D. S., Wade, C. E. The epidemiology and modern management of traumatic hemorrhage: US and international perspectives. Critical Care. 9, S1-S9 (2005).
  3. Mattox, K. L., Allen, M. K., Feliciano, D. V. Laparotomy in the emergency department. Journal of the American College of Emergency Physicians. 8 (5), 180-183 (1979).
  4. Pust, G. D., Namias, N. Resuscitative thoracotomy. International Journal of Surgery. 33 (Pt B), 202-208 (2016).
  5. Burlew, C. C., et al. Trauma Association critical decisions in trauma: resuscitative thoracotomy. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 73 (6), 1359-1363 (2012).
  6. DuBose, J. J., et al. The AAST prospective Aortic Occlusion for Resuscitation in Trauma and Acute Care Surgery (AORTA) registry: Data on contemporary utilization and outcomes of aortic occlusion and resuscitative balloon occlusion of the aorta (REBOA). Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (3), 409-419 (2016).
  7. Biffl, W. L., Fox, C. J., Moore, E. E. The role of REBOA in the control of exsanguinating torso hemorrhage. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 78 (5), 1054-1058 (2015).
  8. Manzano Nunez, R., et al. A meta-analysis of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta (REBOA) or open aortic cross-clamping by resuscitative thoracotomy in non-compressible torso hemorrhage patients. World Journal of Emergency Surgery. 12, 30 (2017).
  9. Gupta, B. K., et al. The role of intra-aortic balloon occlusion in penetrating abdominal trauma. Journal of Trauma. 29 (6), 861-865 (1989).
  10. Inoue, J., et al. Resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta might be dangerous in patients with severe torso trauma: A propensity score analysis. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (4), discussion 378-380 559-566 (2016).
  11. Russo, R. M., et al. Extending the golden hour: Partial resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta in a highly lethal swine liver injury model. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (3), 378-380 (2016).
  12. Russo, R. M., et al. Partial Resuscitative Endovascular Balloon Occlusion of the Aorta in Swine Model of Hemorrhagic Shock. Journal of the American College of Surgeons. 223 (2), 359-368 (2016).
  13. Williams, T. K., et al. Extending resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta: Endovascular variable aortic control in a lethal model of hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (2), 294-301 (2016).
  14. Hannon, J. P. Hemorrhage and hemorrhagic-shock in swine: A review. Swine as Models in Biomedical Research. Swindle, M. M. , Iowa State University Press. Ames, IA. 197-245 (1992).
  15. Garry, B. P., Bivens, H. E. The Seldinger technique. Journal of Cardiothorac Anesthesia. 2 (3), 403 (1988).
  16. Halaweish, I., et al. Addition of low-dose valproic acid to saline resuscitation provides neuroprotection and improves long-term outcomes in a large animal model of combined traumatic brain injury and hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 79 (6), 911-919 (2015).
  17. Alam, H. B., et al. Surviving blood loss without blood transfusion in a swine poly-trauma model. Surgery. 146 (2), 325-333 (2009).
  18. Jin, G., et al. Traumatic brain injury and hemorrhagic shock: evaluation of different resuscitation strategies in a large animal model of combined insults. Shock. 38 (1), Augusta, GA. 49-56 (2012).
  19. Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
  20. Langeland, H., Lyng, O., Aadahl, P., Skjaervold, N. K. The coherence of macrocirculation, microcirculation, and tissue metabolic response during nontraumatic hemorrhagic shock in swine. Physiological Reports. 5 (7), (2017).
  21. Johnson, M. A., et al. The effect of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta, partial aortic occlusion and aggressive blood transfusion on traumatic brain injury in a swine multiple injuries model. Journal of Trauma Acute Care Surgery. 83 (1), 61-70 (2017).
  22. Theisen, M. M., et al. Ventral recumbency is crucial for fast and safe orotracheal intubation in laboratory swine. Laboratory Animals. 43 (1), 96-101 (2009).
  23. Li, Y., Alam, H. B. Modulation of acetylation: creating a pro-survival and anti-inflammatory phenotype in lethal hemorrhagic and septic shock. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 523481 (2011).
  24. Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
  25. Dekker, S. E., et al. Normal saline influences coagulation and endothelial function after traumatic brain injury and hemorrhagic shock in pigs. Surgery. 156 (3), 556-563 (2014).
  26. Causey, M. W., McVay, D. P., Miller, S., Beekley, A., Martin, M. The efficacy of Combat Gauze in extreme physiologic conditions. The Journal of Surgical Research. 177 (2), 301-305 (2012).
  27. Frankel, D. A., et al. Physiologic response to hemorrhagic shock depends on rate and means of hemorrhage. The Journal of Surgical Research. 143 (2), 276-280 (2007).
  28. Morrison, J. J., et al. The inflammatory sequelae of aortic balloon occlusion in hemorrhagic shock. The Journal of Surgical Research. 191 (2), 423-431 (2014).
  29. White, J. M., et al. A porcine model for evaluating the management of noncompressible torso hemorrhage. Journal of Trauma. 71, S131-S138 (2011).
  30. Alam, H. B., et al. Putting life on hold-for how long? Profound hypothermic cardiopulmonary bypass in a Swine model of complex vascular injuries. Journal of Trauma. 64 (4), 912-922 (2008).
  31. Bebarta, V. S., Daheshia, M., Ross, J. D. The significance of splenectomy in experimental swine models of controlled hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 75 (5), 920 (2013).
  32. Georgoff, P. E., et al. Alterations in the human proteome following administration of valproic acid. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (6), 1020-1027 (2016).
  33. Dekker, S. E., et al. Different resuscitation strategies and novel pharmacologic treatment with valproic acid in traumatic brain injury. Journal of Neuroscience Research. 96 (4), 711-719 (2017).
  34. Georgoff, P. E., et al. Safety and Tolerability of Intravenous Valproic Acid in Healthy Subjects: A Phase I Dose-Escalation Trial. Clinical Pharmacokinetics. 57 (2), 209-219 (2017).

Tags

Medicin spørgsmål 138 aorta okklusion komplet aorta okklusion delvis aorta okklusion blødende chok blødning svin model
Fuldstændig og delvis aorta okklusion til behandling af blødende chok hos svin
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Williams, A. M., Bhatti, U. F.,More

Williams, A. M., Bhatti, U. F., Dennahy, I. S., Chtraklin, K., Chang, P., Graham, N. J., Baccouche, B. M., Roy, S., Harajli, M., Zhou, J., Nikolian, V. C., Deng, Q., Tian, Y., Liu, B., Li, Y., Hays, G. L., Hays, J. L., Alam, H. B. Complete and Partial Aortic Occlusion for the Treatment of Hemorrhagic Shock in Swine. J. Vis. Exp. (138), e58284, doi:10.3791/58284 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter