Summary
Ipertensione oculare cronica è indotta applicando una sutura circumlimbal in ratti e topi, che conduce al deterioramento strutturale e funzionale delle cellule ganglionari retiniche coerente con il glaucoma.
Abstract
La sutura di circumlimbal è una tecnica per indurre glaucoma sperimentale nei roditori cronicamente elevando la pressione intraoculare (IOP), un ben noto fattore di rischio per il glaucoma. Questo protocollo dimostra una guida dettagliata su questa tecnica a lungo Evans ratti e topi C57BL/6. In anestesia generale, una "" sutura viene applicata sul conjunctiva, intorno all'equatore e dietro il limbus dell'occhio. Il collega occhio serve come controllo non trattato. Nel corso della durata del nostro studio, che era un periodo di 8 settimane per ratti e 12 settimane per i topi, IOP è rimanere elevato, come misurato regolarmente di tonometria di rimbalzo in animali coscienti senza anestesia topica. In entrambe le specie, gli occhi suturati ha mostrato le caratteristiche dell'elettroretinogramma costanti con disfunzione retinica interna preferenziale. Tomografia ottica di coerenza ha mostrato selettiva assottigliamento dello strato di fibre nervose retiniche. L'istologia della retina del ratto in sezione trasversale trovato ridotta densità delle cellule nello strato delle cellule del ganglio, ma nessun cambiamento in altri strati cellulari. Macchiatura delle retine di piatto-montato del mouse con un marker specifico di cellule del ganglio (trasformante) ha confermato la perdita delle cellule del ganglio. La sutura di circumlimbal è un semplice, minimamente invasiva e conveniente modo per indurre ipertensione oculare che porta alla lesione delle cellule del ganglio in topi e ratti.
Introduction
Modelli animali forniscono che un'importante piattaforma per la ricerca del laboratorio di cellulare processi sottostanti patogenesi del glaucoma, nonché valutare potenziali interventi terapeutici. Diversi modelli viscoelastici sono stati sviluppati per produrre elevazione sostenuta pressione intraoculare (IOP), il più importante fattore di rischio per il glaucoma. Metodi che sono stati applicati per elevare la IOP includono: iniezione salina ipertonica in episcleral vene1, photocoagulation del laser del trabecolato2 o delle vene limbal3e l'iniezione intracameral di sostanze come fantasma rosso globuli4, microsfere5,6 e viscoelastico agenti7. Ogni approccio presenta vantaggi e limitazioni.
Un buon modello per il glaucoma dovrebbe imitare il processo di malattia, con la minima complicazione come opacities trauma, infiammazione e media. Queste complicazioni sono associate frequentemente con le procedure utilizzate per indurre l'altezza dello IOP e possono confondere l'interpretazione dei risultati. Ad esempio, paracentesi della camera anteriore, anche quando non vengono introdotte sostanze estranee, sono stato indicato per causare il trauma e l'infiammazione che non è rappresentativo di cambiamento glaucomatoso tipico8,9. Oltre all'importanza di evitare l'infiammazione, mantenere chiarezza ottica facilita in vivo imaging ed elettrofisiologia per monitorare la progressione della malattia. Anche se non è chiaro in che misura queste complicazioni possono interessare le indagini di malattia, può essere meglio evitare penetrante dell'occhio durante l'induzione del modello. L'approccio di sutura circumlimbal evita la penetrazione del globo e facilita in vivo valutazione longitudinale della struttura retinica e della funzione. Ancora più importante, questo modello si differenzia da quelle precedenti nella sua capacità di restituire IOP ai valori basali di rimozione della sutura quando richiesto. Normalizzazione di IOP può essere utile per studiare il cellulare e correlati molecolari del ganglio reversibile e irreversibile delle cellule ferita10,11,12,13,14.
Questo articolo si concentra sulla tecnica per l'induzione del modello. Caratterizzazione della lesione retinica indotta da questo modello nei ratti e nei topi può essere trovato più dettagliatamente altrove15,16,17,18,19.
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Protocol
Tutte le procedure sperimentali sono state condotte secondo il codice di pratica australiana per la cura e l'uso degli animali per fini scientifici, l'impostazione del National Health and Medical Research Council in Australia. Approvazione etica è stata ottenuta dal comitato di etica animale di Howard Florey Institute (approvazione numero 13-044-UM e 13-068-UM per ratti e topi, rispettivamente).
1. misurazione della pressione intraoculare in ratti coscienti
- Impostare il tonometro rimbalzo di laboratorio per l'impostazione di ratto. Fasciare il ratto sveglio in un pezzo di panno morbido per calmare l'animale. Esporre la testa e il collo. Premere delicatamente il torso in una mano, con parte posteriore dell'animale che riposa contro il petto dello sperimentatore.
Nota: L'anestesia d'attualità non è necessaria. - Usare l'altra mano per avvicinare il tonometro rimbalzo occhio del ratto, in modo che la punta della sonda IOP è circa 2-3 mm lontano da e perpendicolare all'apice corneale. Utilizzare la mano destra per misurare lo IOP nell'occhio di destra dell'animale e la mano sinistra per l'occhio sinistro.
- Attendere alcuni secondi per il ratto per calmare e premere una volta il tasto di misurazione. Osservare che la punta della sonda IOP colpito delicatamente l'apice corneale una volta; e sente il bip del tonometro di rimbalzo una volta.
Nota: Un singolo beep del tonometro confermerà l'avvenuta misurazione, che può essere letta dallo schermo LCD. Un doppio segnale acustico indica un errore di misura. Errori di misura possono derivare da fattori quali la distanza di lavoro inadeguato tra la sonda e la cornea, un'inclinazione eccessiva nell'orientamento del tonometro, o la sonda colpisce la palpebra o una parte non centrale della cornea. Consultare il manuale del tonometro rimbalzo dal produttore per maggiori dettagli per quanto riguarda gli errori di misura. - Ripetere il passaggio 1.3 dieci volte ad intervalli di 1-2 secondo, da queste misurazioni derivare un valore medio di IOP per quel punto di tempo. Reimpostare il tonometro dopo la lettura dith 5.
- Per il monitoraggio seriale, è possibile misurare lo IOP allo stesso tempo del giorno e in condizioni di luce coerente per minimizzare la variazione diurna IOP ciclo20,21.
2. misura di pressione intraoculare in topi coscienti
- Consente di impostare il tonometro rimbalzo nella posizione del mouse secondo le istruzioni del fabbricante.
- Per frenare il mouse a mano, posizionare il mouse sulla cima di una gabbia di grill e tirare delicatamente la coda all'indietro.
Nota: Questo richiederà l'animale di grip sulla griglia del metallo con le sue zampe anteriori e il tentativo di tirarsi in avanti, che sarà leggermente allungare il suo corpo.- Usare l'altra mano afferrare la pelle flaccida immediatamente dietro le orecchie. Fissare la parte inferiore del corpo dell'animale, tenendo la coda tra l'anulare e il dito medio (o tra il mignolo e il palmo della mano).
Nota: Non tentare di afferrare la pelle troppo stretta, per evitare il soffocamento e applicando pressione sugli occhi.
- Usare l'altra mano afferrare la pelle flaccida immediatamente dietro le orecchie. Fissare la parte inferiore del corpo dell'animale, tenendo la coda tra l'anulare e il dito medio (o tra il mignolo e il palmo della mano).
- Con la mano libera di ora (inizialmente tenendo la coda), avvicinare il tonometro rimbalzo occhio del mouse, in modo che la punta della sonda IOP è circa 2-3 mm da e perpendicolare all'apice corneale. Per misurare l'altro occhio, è necessario ruotare il mouse in modo che l'altro occhio è ora davanti il tonometro.
- Attendere che il mouse calmare e premere una volta il tasto di misurazione. Osservare che la punta della sonda IOP ha colpito delicatamente l'apice corneale; con un segnale acustico conferma l'avvenuta misurazione.
Nota: Un doppio segnale acustico indica un errore di misura. Può essere utile per avere una seconda lettura di sperimentatore e documento le letture di IOP mentre il primo sperimentatore prende le misure. - Ripetere il passaggio 2.4 per ottenere dieci letture con successo per derivare un IOP. Reimpostare il tonometro dopo la lettura dith 5. Consentire un intervallo di 1-2 secondi tra letture.
- Secondo la misura di serie nei ratti, misurare mouse IOP allo stesso tempo del giorno e in condizioni di luce coerente.
3. induzione di elevazione della pressione intraoculare in topi e ratti anestetizzati
- Pulire il banco chirurgico con clorexidina 0,5% in etanolo al 70%. Coprire la panca con teli sterili. Autoclave tutte le apparecchiature chirurgiche in anticipo. Garantire a tutti gli sperimentatori indossano adeguati dispositivi di protezione personale (maschere chirurgiche, camici e guanti sterilizzati).
- Per indurre l'anestesia generale, metti l'animale in una camera di induzione. Formula 3-3,5% isoflurane con O2 ad una portata di 3 L/min.
- Mantenere l'anestesia con isoflurano 1,5% a 2 L/min consegnato tramite una roditore maschera durante la chirurgia. Garantire sufficiente profondità di anestesia per l'assenza di un riflesso di pizzico di zampa.
- Evitare la depressione respiratoria regolando la portata quando necessario per mantenere la frequenza respiratoria a circa 60 respiri/min.
- Selezionare casualmente un occhio per indurre ipertensione oculare, con l'occhio controlaterale per servire come un controllo non trattato. Instillare una goccia di 0.5% proxymetacaine soluzione oftalmica per l'anestesia d'attualità. Per pulire la superficie oculare, sciacquare l'occhio con 3 mL di soluzione salina normale sterile.
- Coprire l'animale con un telo chirurgico sterile, fenestrato, esponendo l'occhio ad essere suturato.
- Eseguire una sutura sulla congiuntiva bulbare intorno al globo. Nei ratti, tessere il suturare di nylon parallelo a 7/0 e 2 mm posteriormente al limbus (Figura 1). Nei topi, posizionare la sutura in nylon 10/0 a 1 mm posteriormente al limbus.
- Fare attenzione a non per penetrare la sclera. Un'improvvisa dilatazione pupillary durante la procedura chirurgica indica che la sclera è probabilmente stata penetrata.
- Ancoraggio la sutura sul conjunctiva usando 5-6 punti di ancoraggio in ratti e 4-5 punti di ancoraggio in topi.
- Evitare la compressione diretta sulle vene principali episcleral infilando la sutura sotto la congiuntiva all'incrocio di queste vene.
Nota: Mentre si consiglia di evitare la compressione della vena episcleral principali in ratti, questo non viene normalmente fatto in topi a causa della scarsa visibilità di queste vene agli occhi del mouse. Anche se le vene principali non vengono compressi direttamente, è probabile che i più piccoli vasi nel plesso di vena episcleral sono sotto pressione, che può essere un fattore che contribuisce all'elevazione IOP sostenuta (vedi discussione per meccanismo dell'altezza dello IOP).
- Fissare la sutura legando un nodo scorsoio poi seguito da un secondo nodo semplice (Figura 1). Per evitare un picco IOP post-chirurgico eccessivamente alto, dispone di un assistente misurare lo IOP immediatamente prima di fissare il secondo nodo.
- Se lo IOP è trovato per essere troppo alto, è possibile regolare il nodo di slittamento rilasciando parzialmente la tensione su un'estremità della sutura (freccia in Figura 1A).
- Dopo aver raggiunto la IOP desiderata (idealmente 30-60 mmHg nei ratti o nei topi di 30-40 mmHg), cravatta fuori il secondo nodo mantenendo una forza di trazione continua su quella estremità della sutura (freccia in Figura 1A).
- Dopo il secondo nodo è stato inasprito, tagliare le estremità della sutura per ridurre al minimo qualsiasi sensazione di corpo estraneo. Monitorare l'animale durante il recupero dall'anestesia generale.
Nota: È importante utilizzare il slipknot quando prima di accasarsi per assicurare un'adeguata compressione verso l'interno sull'occhio. Dopo diverse settimane di solito è notato che le estremità diventano incorporate nel conjunctiva.
4. monitoraggio IOP
- Prendere la prima misurazione della IOP a 2 minuti postoperatorio sotto anestesia isoflurano. Successivamente, monitorare lo IOP quando il roditore ha riacquistato coscienza secondo i suddetti passaggi 1 e 2.
Nota: Monitorare lo IOP due volte durante il primo giorno (2 minuti e 1 ora), tutti i giorni nella prima settimana e una volta o due volte alla settimana da allora in poi.
5. Diluire la funzione e la struttura della retina
- A sperimentale punto finale desiderato (in questo caso dopo 8 settimane in ratti e 12 settimane nei topi), in anestesia generale mediante iniezione intraperitoneale con chetamina/xilazina, misurare la funzione retinica con il scuro-adattato elettroretinogramma (ERG) come descritto più dettagliatamente altrove15,16,17.
Nota: Abbiamo trovato robusti disfunzione delle cellule del ganglio, strato di fibre nervose retiniche assottigliamento e ganglio cellula perdita per durate tra 8-12 settimane. Altri hanno impiegato con successo periodi più lunghi di IOP elevazione14,15. - Immediatamente dopo la misurazione di ERG, misurare lo spessore dello strato di fibre nervose retiniche (RNFL) e dello spessore retinico totale utilizzando il dominio spettrale coerenza ottica tomografia (SD-OCT) 16,18.
- Alla fine dello studio longitudinale, eutanasia degli animali sotto anestesia profonda.
- Sezionare la retina per istologia18, ad esempio immunostaining del intero-supporto retina usando un anticorpo specifico di cella (RGC) ganglionari come RNA-proteina con più d'impionbatura anticorpo (trasformante) o dominio homeobox/POU cervello-specifico 3A di proteina (Brn3a)16,19,22.
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Representative Results
I seguenti risultati in ratti18 e topi16 precedentemente sono stati segnalati e sono riassunti qui. La sutura circumlimbal ha prodotto un modello simile dell'altezza dello IOP nei ratti e nei topi (Figura 2). Una breve impennata IOP, fino a 58,1 ± 2.7 mmHg in ratti e 38,7 ± 2.2 mmHg nei topi, è stata trovata subito dopo la procedura di sutura. Nei ratti, IOP grandezza ridotta gradualmente nel tempo per essere 44 ± 6 mmHg e 32 ± 2 mm Hg, a 3 e 24 ore, rispettivamente15. Dopo questo picco iniziale di IOP IOP è rimanere relativamente stabile per diverse settimane. Durante il periodo sperimentale, IOP agli occhi di ipertesi oculare (OHT) è rimanere elevato di ~ 9 mmHg per 8 settimane in ratti e di ~ 5 mm Hg per 12 settimane in topi.
Per valutare la funzione RGC, ERG scotopico ad energie molto debole stimolo suscita la risposta positiva per soglia scotopica (pSTR), che è stato trovato per essere ridotto agli occhi di OHT, riguardante gli occhi di controllo in ratti ed in topi (Figura 3). C'era anche una piccola riduzione dell'ERG a - e b-onda, che è probabile che riflettono una disfunzione delicata dei fotorecettori e cellule bipolari, rispettivamente. Il più grande deficit tuttavia è stato trovato in pSTR, confermando preferenziale disfunzione retinica interna successiva elevazione cronica delicata di IOP.
Costanti con disfunzione retinica interna, una perdita selettiva di densità delle cellule nello strato RGC era inoltre evidente in sezioni trasversali della retina OHT (Figura 4A - 4C). Al contrario, numeri delle cellule negli strati interni ed esterni nucleari è rimasto inalterato18, suggerendo che fuori bersaglio effetti ischemici erano minimi. Tali risultati nei ratti sono stati confermati dai conteggi delle cellule su retine del mouse intero-monta macchiati usando un anticorpo specifico RGC e microscopia confocale (Figura 4E - 4G). Similmente, scansioni OCT intorno alla testa del nervo ottico ha mostrato che l'elevazione cronica IOP risultati in spessori ridotti RNFL, mentre lo spessore retinico totale è rimasto invariato in entrambe le specie (Figura 4 e 4 H).
Figura 1 . Circumlimbal applicazione di sutura intorno all'Equatore dell'occhio. A: in primo luogo, utilizzare un nodo scorsoio per tendere la sutura tirando solo una stringa (freccia), che garantirà un'adeguata compressione verso l'interno. Un assistente può misurare lo IOP immediatamente prima di fissare il secondo nodo. B: fare successivamente un secondo nodo semplice per bloccare il primo nodo. C: fotografia della sutura circumlimbal su un occhio del mouse. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2 . La sutura circumlimbal sollevato la pressione intraoculare in questo caso per 8 settimane in ratti (A, n = 8) e 12 settimane nei topi (B, n = 23). IOP è rimanere identicamente in occhi di controllo controlaterale. (singoli occhi OHT rappresentati da simboli rossi e gli occhi di controllo dai simboli grigi). Media e deviazioni standard sono sovrapposti in nero. I dati sono replotted con il permesso dal precedente lavoro 16,18). Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3 . Cronica IOP elevazione indotta da deficit funzionali particolarmente nella retina interna in topi (C & D) e ratti (A e B). A: forme d'onda media ERG (n = 8 ratti) in risposta ad uno stimolo luminoso e dim (2.07 e-5.31 log cd.s.m-2 per la parte superiore e inferiore traccia rispettivamente) dopo 8 settimane dell'altezza dello IOP. B: l'ampiezza relativa di pSTR, indicativo della funzione RGC, era più commovente che il photoreceptoral a onda e il bipolare delle cellule b-onda guidato. C e D sono secondo A e B ma derivato dalla media di 23 topi dopo 12 settimane di altezza dello IOP. Ancora una volta, RGC disfunzione era più severa di disfunzione delle cellule photoreceptoral e bipolare. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 4 . ERG: elettroretinogramma; OHT: ipertensione oculare; IOP: pressione intraoculare; pSTR: risposta positiva soglia scotopica; RGC: cellule retiniche del ganglio; * P < 0.05. Barre di errore: errore standard della media. Dati vengono riutilizzati con il permesso di lavoro precedente. 16 , 18 Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
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Discussion
La sutura di circumlimbal è un nuovo modello di ipertensione oculare cronica. Oltre agli studi da cui i risultati rappresentativi sono provenienza16,18, questo modello animale è stato utilizzato in una serie di recenti studi15,23,24,25 ,26. Confronto tra questi rapporti precedenti dimostra che il metodo produce risultati ripetibili, compreso la grandezza dell'altezza dello IOP, come pure il breve picco IOP durante l'induzione del modello (vedi discussione successiva). Anche se la durata dell'altezza dello IOP necessaria per indurre cambiamenti RGC robusti è tra 8 e 12 settimane, il modello può essere mantenuto per più a lungo, con studi che riferiscono i risultati per 15-16 settimane di IOP elevazione14,15. Oltre alla ripetibilità, questo metodo è relativamente semplice, conveniente e può essere utilizzato in entrambi i ratti e topi. Se confrontato con altri approcci che coinvolgono penetrando l'occhio all'induzione del modello, questo modello è favorevole alle indagini che richiedono supporto chiaro ottico, ad esempio elettrofisiologia o in vivo imaging retinico. Uno dei motivi è che evitando di paracentesi, il metodo di sutura circumlimbal mira a preservare il privilegio immunitario dell'occhio e quindi ridurre al minimo la cataratta e trauma-relativo l'infiammazione. Uno studio precedente che impiegano questa tecnica, trovata che l'espressione Iba-1, un indicatore per infiammazione, non era sovraregolati nella retina15, tuttavia la presenza di altri marker infiammatori o infiammazione della camera anteriore non sono stati ancora quantificati in questo modello. Un altro vantaggio è che l'altezza dello IOP può essere invertito da rimozione sutura, che è una procedura semplice che può essere fatto sotto leggera sedazione e l'anestesia d'attualità14,15. Questo rende la sutura circumlimbal un modello unico per indagare la potenziale reversibilità della lesione delle cellule del ganglio nel glaucoma24.
Anche se il meccanismo mediante il quale la procedura di sutura genera IOP completamente non è capito, l'ostruzione dell'uscita acquosa è la causa probabile dopo l'eliminazione diversi altri fattori. Da studi precedenti, abbiamo dimostrato che la sutura circumlimbal non altera significativamente l'angolo di profondità o irido-corneale anteriore dell'alloggiamento entrambi15 e topi, ratti16 e non è quindi un modello di glaucoma ad angolo. Inoltre, come la dilatazione pupillary e dimensioni della pupilla non sono stati alterati, la chiarezza dei supporti ottici è stata conservata e nessun cambiamenti infiammatori franchi è stata osservata con OCT camera anteriore o con sezioni trasversali retiniche, noi non crediamo che la pressione intraoculare elevazione presenta attraverso un meccanismo infiammatorio. Infine, la nostra individuazione che IOP potrebbe essere normalizzato rapidamente dopo la rimozione della sutura circumlimbal suggerisce che il rimodellamento del trabecolato come conseguenza di infiammazione sarebbe una causa improbabile della IOP elevazione16,24. Così, è probabile che altezza dello IOP deriva dall'ostruzione del flusso acquoso, sia tramite compressione del canale di Schlemm o le vene episcleral. L'indagine successiva è in corso per stabilire la causa precisa dell'ostruzione di uscita acquosa indotta da questo modello.
La sutura circumlimbal presenta diverse limitazioni. Una preoccupazione evidente è il picco iniziale di IOP che si verifica durante l'applicazione della sutura, che riduce gradualmente sopra parecchie ore. Infatti, un eccessivo sovraccarico IOP ha il potenziale di indurre la lesione di ischemico-riperfusione, che non è tipica del glaucoma ad angolo aperto cronico. A questo proposito che è opportuno postare chirurgicamente confermare normale perfusione retinica mediante oftalmoscopia o angiografia OCT.
Il potenziale contributo di spike IOP è stato recentemente risolto confrontando gli occhi di controllo non trattato con un gruppo di controllo sham cui la sutura è stata applicata secondo i metodi descritti sopra e poi rimosso dopo 2 giorni. In altre parole, questi occhi di controllo sham subirono la stessa punta IOP acuta ma non l'altezza dello IOP cronico oltre le 48 ore. Abbiamo trovato che i risultati a lungo termine, misurati da ERG, OCT e RGC conta, rimangono inalterate nei controlli sham quando rispetto ai comandi non trattati16, mostrando che il picco iniziale di IOP non aveva un ruolo importante nel disavanzo RGC visto in questo modello. Ciò è supportato anche dal fatto che agli occhi di ipertensione oculare (OHT), non c'era nessuna correlazione fra l'intensità del picco IOP e la disfunzione RGC a lungo termine, considerando che c'era una correlazione significativa con cronica IOP elevazione15. Inoltre, uno studio dove la sutura è stato rimosso dopo 8 settimane Mostra che la cellula del ganglio completamente recuperare, come misurato dal pSTR24, che sostiene l'idea che il breve picco IOP risultanti dall'induzione modello rende piccolo contributo per il disfunzione retinica si è trovata dopo l'elevazione cronica dello IOP. Era il picco IOP transitorio stato un fattore che contribuisce alla lesione delle cellule del ganglio, uno non si aspetterebbe recupero dopo la rimozione della sutura alla settimana 8. Pertanto, nonostante la limitazione di un picco IOP transitoria, il modello di sutura circumlimbal di ipertensione oculare è un'utile aggiunta ai modelli attualmente disponibili piccolo animale glaucoma.
Anche se la suddetta prova sostiene l'utilità di questo modello, ogni sforzo occorre ridurre al minimo il picco IOP transitorio. Di seguito può aiutare con induzione del modello. In primo luogo, il problema più frequente è che IOP può tornare alla normalità in pochi giorni dopo l'applicazione di sutura. La causa probabile di questa normalizzazione di pressione è che il nodo di sutura allenta gradualmente nel tempo. Per risolvere i problemi, garantire che il primo nodo di (slittamento) è fissato saldamente prima di legare il secondo nodo. Ciò può essere ottenuto mantenendo continuamente tensione su un'estremità del nodo di slittamento (freccia in Figura 1A) fino a quando il secondo nodo è legato. Il problema più comune è hyphema che può verificarsi nelle prime ore dopo la sutura. Nella nostra esperienza, questo è stato comunemente associato con un eccessivamente alto IOP spike (solitamente ≥ 80 mmHg in ratti e topi) o perforazione dell'occhio quando la sutura di tessitura. Altre complicazioni della procedura includono cataratta (generalmente reversibile) nel breve termine e perdita della sutura a lungo termine a causa di slittamento di sutura o lacerazione del conjunctiva. Non abbiamo notato lo sviluppo di eventuali infezioni di superficie oculare in qualsiasi gruppo di ratti o topi. Per i novizi di chirurgia microscopica, un po' di pratica è necessario all'applicazione di sutura circumlimbal master. Abbiamo segnalato un tasso di successo iniziale del 50% nella nostra prima coorte di topi (40 su 81 topi)16. Nella nostra esperienza, questo migliora al 70-80% con la pratica. In un successivo gruppo di 60 topi, abbiamo trovato un tasso di successo totale del 70%, con hyphema (13%) e la perdita di sutura (17%) contabilità per il tasso di fallimento del 30%. In una coorte di 20 ratti, abbiamo trovato un tasso di successo superiore (90%) rispetto a topi, con solo 2 ratti essere escluse a causa di hyphema (10%), e gli animali non sono stati esclusi a causa della perdita di sutura. Perforazione durante la chirurgia sono avvenimenti rari nei modelli di ratto e topo (~ 1%).
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Disclosures
Gli autori non hanno nulla a rivelare.
Acknowledgments
Questo lavoro è finanziato dalla National Health e contributo al progetto Medical Research Council of Australia (1046203), Australian Research Consiglio futuro Fellowship (FT130100338).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| normal saline | Baxter International Inc | AHB1323 | Maintain corneal hydration during surgery |
| Chlorhexadine 0.5% | Orion Laboratories | 27411, 80085 | Disinfection of surgical instrument |
| Isoflurane 99.9% | Abbott Australasia Pty Ltd | CAS 26675-46-7 | Proprietory Name: Isoflo(TM) Inhalation anaaesthetic. Pharmaceutical-grade inhalation anesthetic mixed with oxygen gas for suture procedure |
| ocular lubricant | Alcon Laboratories | 1618611 | Proprietory Name: Genteal, ocular lubricant to keep the other eye moist |
| Needle holder (microsurgery) | World Precision Instruments | 555419NT | To hold needle during ocular surgery |
| Proxymetacaine 0.5% | Alcon Laboratories | CAS 5875-06-9 | Topical ocular analgesia |
| Scissors (microsurgery) | World Precision Instruments | 501232 | To cut excessive suture stump during ligation |
| Surgical drape | Vital Medical Supplies | GM29-612EE | Ensure sterile enviornment during surgery |
| Suture needle for rats (microsurgery) | Ninbo medical needles | 151109 | 8-0 nylon suture attached with round needle, cutting edge 3/8, dual-needle, suture length 30cm |
| Suture needle for mice (microsurgery) | Ninbo medical needles | 160905 | 10-0 nylon suture attached with round needle, cutting edge 3/8, dual-needle, suture length 30cm |
| Tweezers (microsurgery) | World Precision Instruments | 500342 | Manipulate tissues during ocular surgery |
| rebound tonometer | TONOLAB, iCare, Helsinki, Finland | TV02 | for intraocular pressure monitoring |
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