Summary
Biz floresan etiketlemeyi yüzeysel geçirme yöntemleri tarif Hücre çoğalmasıyla tarafından ve geçiş görselleştirmek için bir düz-mount kültür etiketli hücre hareketinin hızlandırılmış görüntüleme için hücre gelişmekte olan piliç optik tectum davranış .
Abstract
Hızlandırılmış görüntüleme geçirme hücre davranış analiz etmek için güçlü bir yöntemdir. Etiketleme floresan hücre sonra etiketli hücre kültüründe hareket video mikroskobu altında kaydedilir. Gelişmekte olan beyin hücre göç analiz için dilim kültür, hücre göç radyal hücre geçiş gibi dilim bölümüne paralel gözlemlemek için yaygın olarak kullanılır. Ancak, sınırlı bilgi hücre göç teğet hücre geçiş gibi dilim bölümüne dikey analiz etmek için dilim kültür yönteminden elde edilebilir. Burada, gelişmekte olan piliç optik tectum geçişinde teğet hücre görselleştirmek için hızlandırılmış görüntüleme iletişim kurallarını mevcut. Hücre çoğalmasıyla ovo içinde ve bir sonraki düz-mount kültür üzerine hücre kültür yerleştirin etiketleme bir arada yatay düzlemde geçirme hücre hareketinde tespiti sağlar. Ayrıca, bizim Yöntem, tek tek hücre davranış ve bir grup hücreyi toplu eylem uzun vadede kolaylaştırır. Bu yöntem yapının floresan etiketli mikro-aksonal uzama olmayan sinir dokusu sinir doku veya hücre deplasman dahil olmak üzere sıralı değişikliği algılamak için potansiyel olarak uygulanabilir.
Introduction
Hücre göç çalışmanın ilerleyen canlı görüntüleme tekniği ile ilerleme. Etiketleme floresan hücre sonra etiketli hücre kültür çanak veya vivo içinde geçici hareket video mikroskobu altında kaydedilir. Sinirsel gelişim çalışmada, hücreleri geçiş veya aksonlar elongating morfolojik değişiklikleri analiz edilmiştir hızlandırılmış Imaging'i kullanma. Etkin görüntüleme için deney ve analiz amacına bağlı floresan hücre ve doku etiketleme hazırlık için uygun bir yöntem uygulamak esastır. Gelişmekte olan beyin hücre göç analiz için dilim kültür hücre göç gibi radyal hücre geçiş1,2,3dilim bölümüne paralel gözlemlemek için yaygın olarak kullanılmaktadır. Dilim kültür sistemi de teğet hücre geçiş4,5algılamak için kullanılır, ama nerede hücreleri dikey dilim bölümüne dağıtmak durumlarda yönlü analiz için uygun değildir.
Optik tectum radyal ve teğet hücre geçiş embriyonik gelişim sırasında oluşturduğu çok katmanlı bir yapı oluşur. Tectal tabaka oluşumu ventrikül bölgeden postmitotic nöronal öncü hücrelerinin radyal geçiş öncelikle bağlıdır ve gidecekleri katmanlarındaki Doğum tarihlerine ventrikül bölge6' ile karşılıklı olarak ilişkilendirir. Teğet göç gelince, daha önce iki gelişmekte olan bir piliç optik tectum orta ve yüzeysel katmanlarda geçişlerde streams bildirdi. E6 E8 sırasında Orta katmanlarında dorso-ventrally7çalıştırmak tectal efferent aksonlar axon bulunduğu dorsally veya ventrally kadar önde gelen bir işlemi ve ince sondaki işlemi ile bipolar hücreler göç eder. Bu axophilic geçişten sonra içine derin katmanlarda yer alan multipolar nöron hücreleri ayırt etmek. E7-E14 sırasında yüzeysel katmanlarda geçirme hücreleri yatay dallı önde gelen işlem ve dağılım birden fazla yönde8içine reform tarafından dağıtmak. Geçiş dağıtırken sonra ikinci hücre sonunda çeşitli türleri morfoloji yüzeysel nöronların ayırt etmek. Her iki durumda da, bir düz-mount kültür hücre hareketi pial yüzeyine paralel gözlemlemek için etkilidir.
Burada, teğet hücre göç gelişmekte olan piliç optik tectum7,8görselleştirmek için hızlandırılmış görüntüleme için bir iletişim kuralı mevcut. Hücre çoğalmasıyla ovo içindeve bir sonraki düz-mount kültür üzerine hücre kültür yerleştirin etiketleme birlikte geçirme hücre hareketi ve geçiş yönünü tespiti sağlar. Bu yöntem, uzun vadeli ve bir grup hücreyi yatay düzlemde toplu eylem her iki tek hücre davranış algılama kolaylaştırmak için hedeftir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Elektroporasyon Ovo içinde
- İfade plazmid DNA floresan yüksek konsantrasyon etiketleme için hazırlayın. DNA 200 mL bakteriyel kültürünün üreticinin iletişim kuralı (Tablo reçetesi) göre anyon-Satım sütunları kullanarak alkalin lizis yöntemi tarafından izole et. PCAGGS-EGFP ve pCAGGS-mCherryNuc 4 µg/µL her son bir konsantrasyon, karıştırın.
Not: Plazmid DNA arıtma endotoksin-Alerjik Elektroporasyon için tercih edilebilir. - Yatay olarak 38 ° C'de % 70 bağıl nem içinde verimli tavuk yumurtası kuluçkaya.
- 2.5 gün sonra 18 gauge iğne ile 20 mL şırınga kullanarak yumurta sivri tarafındaki Album (yumurta akı) 5 mL ortadan kaldırmak ve bant ile iğne deliği kapatın.
- Yumurta kabuğu üst çapı 2 cm delik açıp stereomicroscope (sahne 17 Hamburger ve Hamilton9) altında embriyonun gelişim aşaması denetlemek için eğri makas ile kesme. Kaseti o deliği tekrar kapatın.
Not: Bu adımı E2.5-E3.0 içinde herhangi bir zamanda yapılabilir. Adım 1.3 ve 1.4 üst kabuk artan embriyo ve kan damarlarının sıkı bir eki önlemek için yumurtayı embriyo seviyesi düşük. - Kuluçka E5.5 kadar devam edin.
- Elektroporasyon önce 10 µL penisilin (100 adet/mL) ve streptomisin (100 μg/mL) ve yapılan Mikropipetler içeren hızlı yeşil (25 mg/mL), 0,5 µL ile autoclaved fosfat tamponlu 10 mL serum fizyolojik renkli bahsedilen plazmid DNA'ın (PBS) hazırlamak Cam kılcal tüpler micropipette işlemci kullanarak. Gözenek enjeksiyon için DNA miktarına bağlı olarak uygun bir boyuta getirmek için micropipette distal ucu kesilmiş.
- 2.5 cm çapında bir delik açın ve stabil stereo mikroskop altında yumurta ayarlamak için makas ile kapalı üst kabuk kesti. PBS birkaç damla yumurtanın içine ekleyin. Embriyo iki iyi forseps kullanarak kanama kapsayan allantoic membran akasındaki. Amnion embriyo başından kaldırın.
- Bir microspatula ile baş dönüm, 0.1-1 enjekte bir micropipette kullanarak sol optik tectum ventrikül boşluğuna renkli DNA'ya μL bağlı bir emme borusu.
Not: DNA enjekte deneme bilerek bağlıdır. Konsantre DNA çözüm lavabo ve ventrikül duvar boyunca ekleyebilirsiniz. - Optik tectumis hedef alan (Şekil 1, adım 1arasında) yerleştirilir bir çift forcep tipi elektrot (3 mm kare elektrotlar 7 mm mesafe ile) yerleştirin.
Not: Electroporated anot tarafı için DNA'sı. - Şarj öncesi nabız 30 V, 1 ms 5 ms aralığı ve 6 V dört sonraki darbeleri ile nabız jeneratör kullanarak 10 ms aralığı ile 5 ms.
Not: Elektronik koşulu büyüklük ve mesafe elektrot bağlıdır. Verimli transfection ulaşmak için güçlü olmalıdır, ancak hedef doku normal gelişimini sağlamak için mütevazı olması gerekir. - Teyp delikle mühür ve kuluçka devam. Elektrotlar albümin interdental bir fırça ile bir plastik tabak içinde kaldırmak için PBS emmek. 1.7-1,11 her yumurta için yineleyin.
2. düz-Mount kültür hücre ekleme
- Bir gün önce düz-mount kültür, kaplamalı hücre kültür Ekle hazırlayın. Bazı hücre kültür ekler bir 10 cm hücre kültür tabak autoclaved distile su üzerinde yüzer. 8 µg/mL laminin ve 80 µg/mL poli-L-gece süzülüyor ekler hücre kültür CO2 kuluçka 37 ° C'de bırakın ve ekler kapağı lizin bir çözüm yükleyin.
Not: 4 ° C'de kaplamalı ekler ertesi gün saklanabilir - Kültür, E7.0 gününde, laminin-poli-L-lizin çözüm gelen Ekle Kaldır ve kültür orta (%60 indirimli serum orta, F12, % 10 fetal Sığır serum, %10 20 1.1 mL ile dolu bir cam alt çanak (Şekil 1Adım 2) eklemek yer % piliç serum, 50 adet/mL penisilin, 50 μg/mL streptomisin). Yemeğin hücre kültür CO2 kuluçka makinesine 37 ° C'de tutmak.
Not: Orta kültür süresi değişiklik olmadan üç gün boyunca kullanılabilir. - Kültür kurulum hazırlamak. Nemli odası birim % 40 O2 ve %5 CO2 (gaz denetleyicisi) 38 ° c (sıcaklık denetleyicisi) bir gaz akışını ters bir confocal mikroskopla ayarlayın.
- Embriyo Başkanı makasla kesme. Dışarı kafa içine buz gibi Hanks dengeli tuz solüsyonu (HBSS) 6-cm hücre kültür tabağına forseps ile çimdik.
- İki iyi forseps kullanarak electroporated optik tectum izole et. Tectum bir plastik Damlalık ile buz gibi HBSS ile dolu başka bir çanak içine aktarın. Bir daire kesme olarak siyah silikon ile temel concaved cam tabak kullanın.
- Floresans stereoskopik mikroskop altında etiketleme konumunu kontrol edin. Mikrocerrahi bıçakla etiketleme alanı çevreleyen tectal doku kesip. Doku yönünü tectum (ön-arka, ventral dorsal) emin olun.
- Böylece pia yan Ekle'nin üzerine bağlı olduğu bir plastik Damlalık ile etiketlenmiş doku Ekle'nin üzerine aktarın. Tectal doku istenen yönde yatıyordu ve aşırı HBSS (Şekil 1Adım 2) kaldırın.
- 2,4-2,7 diğer dokulara aynı hazırlamak için Ekle yineleyin. Ters confocal mikroskop (Şekil 1Adım 3) prewarmed odasında çanak yerleştirin.
3. zaman hata görüntüleme
- Floresan etiketleme kontrol ve ters confocal mikroskop mikroskobik alanına odaklanmak. Lazer confocal birimleri başlatın ve örnekleme yönünü ve X ve y ekseni boyunca dokusunun bulunduğu alanı ayarlamak için confocal tarama deneyin. X 10 ya da 20 X objektif lens olmadan Daldırma yağ kullanın.
- Tarama boyutu seçin (Örneğin, 512 x 512 dpi). Aralığı ve toplam z ekseni boyunca confocal tarama aralığını karar. 5 veya 10 µm aralığı 100 µm Aralık için al. Confocal görüntüleme ve süresi (Örneğin, 10 dk aralıklarla 48 h üzerinden) görüntüleme toplam zaman aralığını karar.
Not: lazer fototoksisite önlemek için yüksek tarama boyutu uzun z aralığının kısa z aralıklarla veya uzun görüntüleme süresi sırasında kısa zaman aralıkları ile tarama yasaklamaktadır. Örneğin, bir yüksek tarama boyutu (Örneğin, 1024 x 1024 dpi) uygularken, z ekseni boyunca taramaları sayısını azaltın. - Confocal çalışan parametrelerinin açıklandığı 3.2 programı ve görüntüleme başlatmak küme.
- Görüntüleme sonra her zaman noktasında hassas odak ayar ile z-yığın görüntüleri sağlamak için farklı z-ekseni, confocal görüntüleri birleştirmek.
- Z-yığın görüntüleri farklı zaman-nokta ekleme ve AVI formatında hızlandırılmış bir film oluşturur.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Şekil 2 kayıt başlangıcından sonra bir süre (0, 9, 18, 27 h) adlı bir düz-mount kültür görüntülenmeyecektir yüzeysel teğet geçiş gösterir. Film 1 bir 28 saat 50 dk boyunca 10 dk aralıklarının hızlandırılmış bir filmdir. Çerçeve etiketlenmemiş alanı (Şekil 3A) geçirme hücrelere çerçevenin etiketli sol alt köşesinden odaklanan için seçilir. Geçirme hücre (GFP; üst sol kapı aynası, film 1) kitle hareketi ve onların çekirdek (mCherry-Nuc; üst doğru kapı aynası) ile birleştirilen film (alt panel, film 1) görülebilir. Yön hücre göç her yöne (film 2, Şekil 3B) dispersiyon hücrelere etiketli Merkezi'nden üzerinde odaklanarak incelenebilir.
Net görüntüler (film 2; mCherry-Nuc, doğru kapı aynası) nükleer hareketinin bir Fiji görüntü işleme ImageJ11 uygulanması bir parçacık izci eklenti10 kullanarak otomatik izleme tarafından hücre nükleer geçiş izlemek için bize izin verir (Film 3, Şekil 3B). Yörüngeler teğet göçün geçici değişiklikler omni-yönlü dispersiyon geçiş kanıtlamak için görüntülenmeyecektir.
Tek hücre davranış süreci ve çekirdekleri izleyen önde gelen işleminin sıralı morfolojik değişiklikle 5 dk-aralıkları (Movie 4, Şekil 3 c) daha yüksek büyütme görüntülerle tecelli olabilir.
Orta kat7 teğet göç başka bir tür benzer Protokolü (film 5, şekil 3D) kullanılarak görüntülenir. Çift yönlü doğrusal geçiş ventral (üst aşağı) dorsal çalıştıran axon bulunduğu boyunca belirgin7' dir.
Şekil 1. Protokolü akış şeması. Adım 1: Elektroporasyon ovo içinde. Adım 2: böylece pia yan Ekle'nin üzerine bağlı olduğu tectal doku döşeme. Adım 3: Ters floresan mikroskop lazer confocal ünitesi ile. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 2. Düz montaj kültür yüzeysel teğet geçiş görselleştirme. Yüzeysel geçirme hücreleri (GFP; üst paneli) ve optik tectum yüzeysel katmanları çekirdeğinde (mCherry-Nuc; alt paneli) 0, 9, 18, E7.0 kültüründen başlangıcından sonra 27 h gösterilir. Çerçevenin sol alt köşesindeki hücre s ( 3A anlamayagörmek) 0 olarak etiketlenir. Ölçek çubuğu: 100 µm. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 3. Şematik resim montaj koşulları için hızlandırılmış düşsel gösteren. (Yeşil) hücre göç (macenta) ve video karesi (siyah kare) ilk yönünü Elektroporasyon (EP günü ile üst alanını büyütme objektif lens (obj) ve dijital yakınlaştırma (zoom) ile resimli, floresan etiketlemeyi şekli ) ve Kültür (kültür) alt alanında başlangıcını. (a) film 1, (B) film 2 ve 3, (C) film 4, (D) film 5. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Film 1. Görselleştirme bir düz-mount kültür yüzeysel teğet göçün. Yüzeysel geçirme hücreleri (GFP; üst sol kapı) ve onların çekirdek (mCherry-Nuc; üst doğru kapı aynası) E7.0 kültüründen başlangıcından sonra optik tectum yüzeysel katmanlar halinde hareket. Birleştirilen görüntüyü alt panelinde gösterilir. Çerçevenin sol alt köşesindeki hücre 0 h olarak etiketlenir (bkz. Şekil 3A) ve hızlandırılmış görüntüleri üzerinde 28 h ve 50 dk. ölçek çubuğu ele geçirildi: 100 µm. lütfen bu videoyu izlemek için tıklayınız. İndirmek için sağ tıklatın.
Film 2. Yüzeysel geçirme hücreleri (GFP; sol paneli) ve onların çekirdek (mCherry-Nuc; doğru kapı aynası) hareketi her iki panelleri Merkezi'nden Dispergatör 48 h üzerinden gösterilir (bkz. Şekil 3B). Ölçek çubuğu: 100 µm. lütfen bu videoyu izlemek için tıklayınız. İndirmek için sağ tıklatın.
Film 3. Yörüngeler teğet göçün. Hücre çekirdeği (doğru kapı aynası film 2) deplasman teğet geçiş yörüngeleri görselleştirmek için takip edildi. Ölçek çubuğu; 100 µm. lütfen bu videoyu izlemek için tıklayınız. İndirmek için sağ tıklatın.
Film 4. Tek hücre davranış daha yüksek büyütme. Tek tek hücreleri (GFP; sol paneli) ve onların çekirdek (mCherry-Nuc; doğru kapı aynası) daha yüksek büyütme (bkz. Şekil 3 c) üzerinde 24 s gösterilir. Önde gelen sürecinin dallanma işlemi kabul edilebilir. Ölçek çubuğu: 100 µm. lütfen bu videoyu izlemek için tıklayınız. İndirmek için sağ tıklatın.
Film 5. Orta tabaka geçiş. Yüzeysel geçirme hücreleri (GFP; sol paneli) ve onların çekirdek (mCherry-Nuc; doğru kapı aynası) tectal orta katmanlarında hareket E6.0 sonra kültür başlangıçlı 24 h üzerinden gösterilir (bkz. şekil 3D). Doğrusal geçiş dorso-ventral ekseni (üst aşağı için) dikkat çekicidir. Ölçek çubuğu: 100 µm. lütfen bu videoyu izlemek için tıklayınız. İndirmek için sağ tıklatın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Yukarıda açıklanan protokol yüzeysel katmanları6,8' hücre göç algılamak için optimize edilmiştir. Sadece değişen Elektroporasyon (E4.5 E5.5) zamanlaması ve kültür başlangıcı ve (E6.0 E7.0) görüntüleme tarafından orta tabaka göç akışları (film 5)6,7, algılamak için geçerlidir.
Sunulan yordamı etiketleme Hücre çoğalmasıyla ovo içindedüz-mount kültür ve hızlandırılmış confocal görüntüleme (Şekil 1) tarafından oluşur. İlk olarak, kültür koşulları doku sağlıklı ve normal olarak vivo içindebüyüyen tutmak için optimize edilmelidir bir önkoşuldur. Doku yönünü hücre göç algılamak için uygun olduğundan emin olmak önemlidir. Bu tür amaçlar için biz gözlem yatay hücresi dispersiyonu kolaylaştırır ve yüksek oksijen ile zengin ortam sağlayan Hücre Ekle bir düz-mount kültür uygulayın. Kültür durumu ve yön kontrol ettikten sonra daha iyi floresan az ile elektronik etiketleme çakışan koşulları ve fotoğraf görselleştirme için kritik zararlar. Daha iyi etiketleme için bir ifade vektör ile verimli bir düzenleyici seçebilirsiniz ve DNA electroporate konsantre. En azından hasar ulaşmak için elektroporasyon elektrik durumunu orta, DNA konsantrasyonu düşük ve lazer ile toplam süresini en aza indirmek önemlidir.
Bir düz-mount kültür hücre ekle bu iletişim kuralı'nı teğet hücre geçiş uzun vadede gözlemleyebilirsiniz avantajdır. Genel olarak, ne kadar doku kültürü ile karşılaştırıldığında bu ovofizyolojik şartlarda tutar belirlemek zordur. En azından, yüzeysel teğet geçiş devam ediyor üzerinde 72 h sonra normal hücresel dağılım benzer o ovo içinde8gösterir E7.0 kültür başlangıcı. Ayrıca, taze doku kültürü ve görüntüleme listesinin başında geçiş daha sonraki aşamalarında gözlemlemek için hazırlanmıştır. Hücreleri objektif lens yakın olan tectum, yüzeysel düz yaprak yatay olarak hareket kaldıkları için hücre deplasman uzun dönemde izlenebilir avantajlıdır. Confocal sistemi kullanarak izleme kolaylaştırır hücre z ekseni boyunca hareket. Öte yandan, bu yöntemin bir dezavantajı düz-mount kültür her zaman geçiş radyal geçiş gibi diğer türleri özetlemek ilgili olmayabilir olduğunu. Radyal göç üzerine yerleştirin tectal dilim gözlemlemek için yöntem uygulandığında, tectal doku kalınlığı olarak hızlı bir şekilde o ovo içindeartırmaz. Kollajen jel dilim kültür yönteminde böyle katman geliştirme özetlemek için daha iyi olabilir.
Yatay hareketi kültür Ekle'nin üzerine paralel gözlenmesi bizim yöntem sağlar beri bu potansiyel olarak yapının floresan etiketli mikro-aksonal uzama sinir dokusu da dahil olmak üzere sıralı değişikliği algılamak için uygulanabilir veya Sigara-nöro doku hücre deplasman. Örneğin, gelişmekte olan nöral tüp commissural akson Elektroporasyon tarafından sonra etiketleme, öncesi ve sonrası geçiş aksonlar üzerinde kat plaka hareketleri çatı plaka incising açık-kitap kültür görüntülenmeyecektir. Hücre Ekle uygun kültür şartla vivo içinde koşulları yeniden üretmek için kullanılabilir şartıyla, bizim Yöntem çeşitli hücre tipleri ve yapıları yatay hareketleri görselleştirmek için etkili bir tekniği sağlar.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.
Acknowledgments
Bu eser JSP'ler KAKENHI Grant numarası tarafından desteklenen 15K 06740 Y.W. için
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials | |||
| NucleoBond Xtra Midi Plus EF | MACHEREY-NAGEL | 740422.5 | endotoxin-free plasmid DNA purification kit |
| 20 ml syringe | TERUMO | SS-20ESZ | |
| 18 gauge needle | TERUMO | NN-1838R | |
| Fast Green | Wako | 061-00031 | |
| 100x penicillin and streptomycin | Gibco | 15140-122 | |
| glass capillary tube | Narishige | G-1 | |
| cell culture insert | Millipore | Millicell CM-ORG | |
| Laminin | SIGMA | L2020 | coating of culture insert |
| poly-L-Lysine | Peptide Institute | 3075 | coating of culture insert |
| glass bottom dish | Matsunami | D11130H | |
| Opti-MEM | Gibco | 31985-070 | culture medium |
| F12 | Gibco | 11765-054 | culture medium |
| fetal bovine serum | Gibco | 12483 | culture medium |
| chick serum | Gibco | 16110082 | culture medium |
| 10xHBSS | Gibco | 14065-056 | |
| microsurgical knife | Surgical specialties cooperation | 72-1501 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| curved scissors | AS ONE | No.11 | |
| micropipette processor | SUTTER INSTRUMENT | P97/IVF | |
| forceps-type electrode | BEX | LF646P3x3 | |
| pulse generator | BEX | CUY21EX | electroporator |
| fluorescence stereoscopic microscope | Leica | MZ16F | |
| inverted fluorescence microscope | Olympus | IX81 | |
| gas controller | Tokken | MIGM/OL-2 | |
| temperature controller | Tokai Hit | MI-IBC | |
| laser confocal unit | Olympus | FV300 |
References
- Marín, O., Rubenstein, J. L. R. Cell migration in the forebrain. Annual Reviews of Neuroscience. 26, 441-483 (2003).
- Nadarajah, B., Alifragis, P., Wong, R. O. L., Parnavelas, J. G. Neuronal migration in the developing cerebral cortex: Observations based on real-time imaging. Cerebral Cortex. 13, 607-611 (2003).
- Tabata, H., Nakajima, K. Multipolar migration: the third mode of radial neuronal migration in the developing cerebral cortex. Journal of Neuroscience. 23, 9996-10001 (2003).
- Martini, F. J., et al. Biased selection of leading process branches mediates chemotaxis during tangential neuronal migration. Development. 136, 41-50 (2009).
- Polleux, F., Whitford, K. L., Dijkhuizen, P. A., Vitalis, T., Ghosh, A. Control of cortical interneuron migration by neurotrophins and PI3-kinase signaling. Development. 129, 3147-3160 (2002).
- Watanabe, Y., Yaginuma, H. Tangential cell migration during layer formation of chick optic tectum. Development, Growth and Differentiation. 57, 539-543 (2015).
- Watanabe, Y., Sakuma, C., Yaginuma, H. NRP1-mediated Sema3A signals coordinate laminar formation in the developing chick optic tectum. Development. 141, 3572-3582 (2014).
- Watanabe, Y., Sakuma, C., Yaginuma, H. Dispersing movement of neuronal tangential migration in superficial layers of the developing chick optic tectum. Developmental Biology. 437, 131-139 (2018).
- Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88, 49-92 (1951).
- Cordelières, F. P., et al. Automated cell tracking and analysis in phase-contrast videos (iTrack4U): development of Java software based on combined mean-shift processes. PLOS One. 8, e81266 (2013).
- Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9, 676-682 (2012).
