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Immunology and Infection

選択したプロウイルス統合サイトの HIV-1 感染の Jurkat レポーターのモデルを生成する CRISPR ベース Cas9 ゲノム工学

Published: November 14, 2018 doi: 10.3791/58572
Automatic Translation
*1,2, *1, 1,3, 1,2,3
1Heinrich Pette Institute, Leibniz Institute for Experimental Virology, 2Department of Anesthesiology, University Medical Center Hamburg-Eppendorf, 3German Center for Infection Research (DZIF)
* These authors contributed equally

Summary

プロウイルス選択したゲノム サイト統合を要約 HIV-1 感染の新しい体外モデルの生成のゲノム工学ワークフローを提案します。記者の HIV 由来のターゲットは、CRISPR Cas9 媒介、サイト固有のゲノム操作によって促進されます。単一細胞クローン生成、スクリーニング、および正しいターゲットの検証のための詳しいプロトコルを提供しています。

Abstract

ひと免疫不全ウイルス (HIV) は、再発のサイトやゲノムのホット スポットでホスト細胞のゲノムに非ランダムにプロウイルス DNA を統合します。ここで CRISPR ベース Cas9 ゲノム工学技術を使用して選ばれたゲノム統合サイトと HIV 感染の新規の in vitro モデルの生成の詳細なプロトコルを紹介します。この方法では、選択の記者のシーケンスに統合できます、選択したターゲットを絞った genomic 位置臨床的に関連する統合サイトを反映しています。

プロトコルでは、HIV 由来の記者の設計およびターゲット サイトと gRNA シーケンスの選択を説明します。両手を相同性ターゲット ベクトルが構築され、Jurkat T 細胞にトランスフェクションします。ターゲット ・ サイトで Cas9 を介した二重鎖切断によって促進される相同組み換えによる記者シーケンスは選択したゲノム サイト向けです。単一細胞のクローンを生成およびフローサイトメトリー PCR によって対象化、イベント上映します。選択されたクローンが展開し、PCR、シーケンシング、および南にしみが付くことによって検証は正しいターゲットします。CRISPR Cas9 を介したゲノム工学の潜在的なターゲットを離れてイベントが分析されます。

このプロトコルは、新しい細胞培養システムを用いた臨床的に関連する統合サイトでそのモデルの HIV 感染を生成できます。正しい記者シーケンス統合の単一細胞クローンの生成と検証は時間がかかるが、結果として得られる系統、機能的プロウイルス統合サイトの選択を分析するための強力なツールです。

Introduction

感染宿主ゲノムにプロウイルス DNA の統合は、ひと免疫不全ウイルス (HIV) のライフ サイクルの重要なステップです。次の統合、HIV はメモリー cd4 陽性 T 細胞など寿命の長い cd 4 + T 細胞のサブセットの遅延を確立することによって永続化します。HIV の統合は、非ランダムな1,2に表示されます。急性と慢性感染した人2,3,4 の統合サイトのシーケンスを通していくつかの研究で反復的統合のプロウイルス DNA ゲノム ホット スポットの数が検出されました、5,6,7,8。興味深いことに、これらの統合サイトのいくつかで同じ軌跡がリカレント サイトの統合も積極的にクローン性増殖1に影響を与える可能性があります考えにつながる、感染細胞の大部分で検出されました。

再発統合サイトの意義の理解を進めるためプロウイルス統合サイトの選択肢を検討する必要があります。ただし、いくつかの技術的な側面を妨げる勉強 HIV 統合サイトの選択と結果。JLat 細胞株は臨床的再発統合サイト9を反映していないような広く HIV 待ち時間の細胞モデルを使用しました。プライマリ患者由来細胞の研究、一方で、配列による統合サイト風景の説明を有効にするが、機能解析を可能にしません。我々 の知識に十分な実験モデルは機能的選択した臨床的に関連する統合サイトを分析する利用可能なありません。

CRISPR ベース Cas9 ゲノム工学技術を使用して HIV 感染のための新しいモデルを生成するための詳細なワークフローをご紹介します。ここ記載されているワークフローは、モデル選択した統合サイトで genomically 統合プロウイルス記者を運ぶ HIV 感染 T 細胞由来のレポーター細胞ラインを生成する使用できます。彼らしたがってプロウイルス統合サイトによる hiv 感染生物学への影響し、provirus が別の治療戦略 (待機時間逆転エージェントによる,誘導など) に応答する方法を探索する新しいツールとして提供しています。本手法は、CRISPR ベース Cas9 ゲノム工学、ターゲット ・ サイトで、Cas9 ヌクレアーゼ誘起の二重鎖切断によって促進される相同組み換えによるシーケンス レポーターの統合の利点を使用します。ターゲット ・ サイトの統合には、HIV 感染者と Cas9 を介したゲノム工学のための適したの PAM モチーフの存在に関する研究から説明再発統合サイトへの近さによって判断されます。

模範的な結果、BTB および CNC の相同性転写レギュレータ 2 のコード BACH2 遺伝子座に注力します。抗レトロ ウイルス療法に慢性的な HIV 感染、個人で BACH2 は統合された HIV-1 シーケンス3,6,7,8,10の濃縮を示す遺伝子座であります。BACH2 イントロン 5 の 2 つの特定のサイトにしようと思いましたが HIV 由来 1 長いターミナル リピート (左から右)、tdTomato コーディング シーケンスとウシ成長ホルモン (BGH) 起こる信号 (PA) から成る最小 HIV 由来の記者をしました。提案するプロトコルは、Jurkat 細胞、ヒト cd4 T 細胞由来の懸濁液セル行が線を使用して他のセルおよびそれに応じて適応プロトコルに最適です。相同性の腕、CRISPR-Cas9-介したレポーターのターゲットに選ばれたゲノム サイト、世代クローン系統の選抜に、包括的な目標点のベクターの構築対象サイトの選択の詳細なワークフローを提案する検証新しく生成された、対象となるレポーター細胞。

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Protocol

1. ゲノム工学とベクトル (テレビ) の設計をターゲットに戦略をターゲット

注:ゲノム工学の最初のステップは、選択と CRISPR Cas9 媒介をターゲットに必要なツールの生成を含みます。ゲノム統合サイトの軌跡の選択は、ターゲットのセル型の選択と統合のため HIV 由来の記者の設計この手順を付けます。このプロトコルは、Jurkat 標的細胞への HIV LTR_tdTomato_BGH PA 最小限記者ターゲットについて説明します。CRISPR ベース Cas9 ターゲット、世代、スクリーニング、クローン系統の検証のワークフローのフローチャートは、図 1に描かれています。記載されているターゲット戦略s. 化膿Cas9 を使用して、選択した統合サイトで gRNA 監督 dsDNA 改を生成する (SpCas9)。相同組換えを介して選択された genomic 位置に記者が対象とし、いわゆる 5' と 3' の相同性 (HA) の腕11が並ぶ記者シーケンスを含む非線形ターゲット ベクトル (テレビ) を提供します。

  1. ターゲットの軌跡、gRNA、およびベクター デザインをターゲットの選択
    1. 個々 の科学的な質問に基づいて対象とする thegenomic の軌跡を選択します。Hiv 感染の再発統合サイトの公開されたリストは、異なる患者で発見した使用研究2,3,4,5,6,7、8ガイドライン。インシリコ抽出対象 (完全な遺伝子のシーケンス) またはゲノムの少なくとも 5 kb 必要な genomic 位置のゲノム シーケンス UCSC のゲノムのブラウザー (http:// genome.edu.ucsc.edu) を使用しています。
    2. 選択ガイド Rna (gRNAs) 20 E カリカリ webtool (http://www.e-crisp.org) を使用して選択された genomic 位置のターゲットのための nt。
      1. 生物として「ホモ ・ サピエンス GRCh38」を選択します。1.1.1 手順で抽出した目的の genomic 位置をカバーするゲノム シーケンスの入力 2,000 bp。
      2. 中規模アプリケーション設定 (任意の PAM、任意 5' 基本、ターゲットを容認のミスマッチ、イントロン/CPG の島が除外されます) を使用して gRNA の検索を開始します。可能な gRNA デザイン一覧は、高い特異性と効率のためのスコアを下げることからランキング表示されます。
      3. できれば特異性と効率性の高いスコアを示していますし、対象とする目的の genomic 位置にできるだけ近く、gRNA を選択します。
        注:目的の genomic 位置への近さと具体的かつ効率的な gRNA の設計間の妥協は発見されていません。
    3. NCBI blast ブラウザー (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov) を使用して gRNA 結合部位の一意性をチェックする参照ゲノムに対して選択した gRNA シーケンスを爆発します。
      1. ゲノムとして「人間」を選択します。クエリ シーケンスとして gRNA シーケンスを入力します。「類似性の高いシーケンス」を選択 (メガブラスト) プログラムとして。GRNA シーケンスが一意であることを確認します。そうでない場合は、再びステップ 1.1.2.3 とブラストからの別 gRNA を選んだ。
    4. GRNA シーケンスを選択すると、それに応じて 5' と 3' HA として 1.1.1 手順で抽出したゲノム配列からインシリコ1,000 bp 上流と下流の gRNA シーケンスを選択します。
      注: 、GRNAs 選択したゲノム統合サイトの軌跡に相同であるべきし、protospacer の隣接するモチーフに隣接 (PAM; 例えば、 SpCas9 の NGG) (図 2 a)。テレビには、5' と 3' HAs が並ぶの記者のシーケンスが含まれています。上流と下流の gRNA シーケンス11カバー 1000 bp があります。完全 gRNA シーケンスは、HA には含めない。最大 5 の重複 nt は受け入れられる (図 2 a)。
  2. GRNA とターゲット ベクトルの生成
    注:ベクター方式、図 2 bを参照してください。
    1. SpCas9 と gRNA の発現用ベクターを生成するには、元 SpCas9 と RNA (sgRNA) の 1 つのガイドの両方同時に表せることのバックボーンとして、pX330-U6-Chimeric_BB-cBh-hSpCas9 を使用します。バックボーンに gRNA シーケンスをクローン、BbsI 制限サイト12を使用します。
    2. テレビを生成する、(, pMK や cDNA3.1 などのバックボーンとして高いコピーのプラスミッドを選択します。
      1. まず、記者を組み立てる (このプロトコルで: LTR_tdTomato_BGH PA) ギブソン アセンブリ clong によって構造物のバックボーンに13クローン商業アセンブリを使用してキット、および 5' と 3' 制限のサイトをご紹介 (例えば、 5' パーチと 3'SmaI) それに続く制限消化がのクローニングのため。
      2. 対象となるセル型のゲノム DNA (gDNA) から 1.1.4 で選んだ HA フラグメントの 1000 bp を増幅 (このプロトコルで: Jurkat 細胞) 活動を校正と DNA ポリメラーゼを用いた (表 1と2の PCR 食材を参照してくださいと循環の条件)。その後、記者が並ぶ各 HA (5' 3' HA の両端に SmaI、両端 HA のパーチ) の 5' と 3' 端に制限のサイトをご紹介します。
      3. 順番にクローンは既に14,15をクローニング制限酵素による記者 (1.2.2.1 の手順で生成された) を含む構造物のバックボーンに持っています。まず、クローンで 5' HA 3' HA でパーチ制限のサイトを使用して、クローン、SmaI 制限のサイトを使用して。
        注:テレビ バックボーンに追加蛍光レポーターがある場合不要なバックボーン統合フローサイトメトリーによって評価される (3.2.2 および 3.2.3 の手順を参照してください)。PCR を用いたバックボーン統合を評価する必要がありますテレビのバックボーンに蛍光レポーターが含まれていない場合 (手順 3.2.8 参照)。

Figure 1
図 1: CRISPR Cas9 仲介されたターゲット、生成、およびワークフロー クローン記者の選択行に定義された統合サイト。(A) 目標点のベクターを生成し、目標点のベクターと Cas9/gRNA 発現プラスミド Jurkat T 細胞を変換します。(B) エンリッチ FACS による transfected セル 72 h ポスト トランスフェクションします。(C) 許可しなさいセル 10 ~ 14 日の成長ターゲットに PCR によるイベントの発生を確認およびフローサイトメトリーします。(D) 生成希釈させクローンを制限することによって単一細胞クローン成長 3 週間。(E) PCR による正しいターゲットのためのクローンを画面し、96 ウェル フォーマットでフローサイトメトリーします。選択されたクローンを展開します。(F) は南しみ、PCR やシーケンシング、および Cas9 a エンドヌクレアーゼ活性のターゲットをイベントの分析によって選択されたクローンのターゲットが正しいを確認します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

Figure 2
図 2: 戦略とベクトル デザインを対象とします。(、) の gRNA と相同性武器の選択。20 nt gRNA は選ばれたゲノムのターゲット ・ サイトに相同と腕 1,000 bp アップを補完するものと、gRNA の下流、gRNA シーケンスを含める必要がありますいない PAM. 相同に隣接して位置しています。(b) ベクトルと gRNA/Cas9 ベクトルをターゲットの模式図。ターゲットのベクトルは、5' と 3' ホモロジー腕が並ぶは、選ばれた記者のシーケンスで構成されます。GRNA/Cas9 ベクターは pX330 U6 Chimeric_BB cBh hSpCas9 バックボーンに基づいています。(c) の相同組み換えによるターゲットの模式図。目標点のベクターと guideRNA/Cas9 ベクトルは Jurkat 細胞に導入しました。Cas9 はゲノムのターゲット ・ サイトで二重鎖切断を仲介する (によって示される *) と相同組換えとゲノムのターゲット遺伝子座に記者シーケンスの統合が容易になります。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

2 Jurkat 細胞のターゲット CRISPR ・ Cas9-ベース

  1. Jurkat 細胞のトランスフェクション
    1. プレート 1.25 x 106 Jurkat T トランスフェクション前に 24 h は 10% (v/v) 牛胎児血清 (FCS) と 4 mM L-グルタミン [と呼ばれる「RPMI w.o. 抗生物質 (AB)」]/6 よく細胞培養プレートのウェルに添加 RPMI 1640 の 2.5 mL のセルします。単一ターゲットの実験の 1 つの完全な 6 ウェル プレートを準備 (すなわち, 6 井戸細胞懸濁液 2.5 mL をそれぞれ)。
    2. 次の日に transfect 円形テレビと pX330-U6-Chimeric_BB-cBh-hSpCas9/gRNA Jurkat 細胞のトランスフェクション試薬特定を使用して細胞が共同。
      1. 反応管でよく混ぜる商業 RPMI 培地の 250 μ L に低下した血清中濃度 (血清の 50% 削減を RPMI) の transfection のために最適化された円形のテレビの 2 μ g と pX330-U6-Chimeric_BB-cBh-hSpCas9/gRNA/ウェルの 2 μ g を追加します。
      2. 管の壁に触れることがなく DNA/メディアにゆっくりとトランスフェクション試薬の 12 μ L を追加し、旋回します。混合物は 15 分間インキュベートし、滴下 1 つよくセルの追加をしましょう。37 ° C と 5% の CO2のセルを孵化させなさい。
        注:トランスフェクション反応の準備をスケール アップすることができます。トランスフェクション後、中型の変更は不要です。
  2. 蛍光活性化セル (FACS) を並べ替えして transfected セルの濃縮
    1. 72 時間後のトランスフェクション プール transfected セル カウントする方法、FACS による濃縮のための準備します。4 分の 300 x gと部屋の温度 (RT) で遠心分離 50 mL の円錐管の細胞を収集、PBS で 1 回洗浄、遠心分離機の再度、1 x 10 FACS バッファー (1% の FCS + 1 mM EDTA を添加した PBS) の適切な量の餌を中断7細胞/mL、最後に FACS チューブに移すと。
    2. FACS のセルを対象し、テレビ (例えばこのプロトコルで, tdTomato) の蛍光レポーターを表すものをソートします。RPMI 1640 年 10 %fcs、4 ミリメートル L-グルタミンと 50 U/mL ペニシリンとストレプトマイシン ("RPMI w/AB"と呼ばれる) を添加した細胞を収集します。
    3. 後 FACS の並べ替え、並べ替えられたセルに AB の w/RPMI 20 mL を追加することによって一度セルを洗浄してルートを再懸濁しますで 4 分の 300 × gで遠心分離機の AB の w/RPMI の適切な量の細胞ペレットとプレート細胞培養プレートのウェル 1 個のセル、セル番号ポスト FACS によると適切なボリューム。
      注:文化は、細胞死のかなりのレベルを最初の週後 (80-90% まで) を対象に観察されているように少量 (例, 24 ウェル) でセルを並べ替えます。
    4. 75 cm ² 細胞培養用フラスコに 1 x 106セル/ml の密度まで混合ターゲット セル人口を拡大します。10-14 日ポスト FACS 並べ替えの周りがかかります。
  3. 混合ターゲット セル人口のフローサイトメトリーによるイベントをターゲットの確認
    1. 拡張 (ときセル 75 cm2細胞培養用フラスコに 1 x 106セル/ml の密度に達している) の 10-14 日後混合の 1 x 10 の6セルのプレート 2 つの井戸は 12 ウェルの細胞培養で AB の w/RPMI 1 mL の細胞集団を対象としました。プレート。
    2. レポーターの HIV LTR を誘発する (テレビの世代は 1.2.2.1 の手順で説明します). 50 ng/mL ホルボール 12-ミリスタート 13-アセタート (PMA) を追加することで井戸の 1 つで、1 μ M イオノマイシン (PMA Iono と呼ばれる)。非誘導制御として 2 番目の井戸のセルを使用します。誘導と 24 h の非誘導細胞を培養します。
    3. (各) 非誘導と誘導の細胞の細胞懸濁液 0.5 mL を取る、pbs は、一度洗って、FACS バッファーの 200 μ L のそれぞれを中断します。
    4. 100,000 細胞をフローサイトメトリーで分析します。前後脇の散布図、サイズに基づいて実行可能な単一セルをゲートし、蛍光レポーター遺伝子発現を解析します。
      注: (10-14 日ポスト FACS 並べ替え) この段階ではトランスフェクションによって蛍光レポーターの一過性の発現を検出できなく必要があります。この時点で蛍光式記者シーケンスのゲノムの統合を示します。
  4. ターゲット混合ターゲット細胞集団のゲノム DNA の PCR によるイベントの検出
    注:デザイン 2 プライマーの 5' 統合 (int.) ジャンクションと 3' int 型ジャンクションの特定、PCR によってターゲットのイベントを検出します。5' int 型ジャンクション PCR、前方のプライマーをバインドする必要があります 5' HA とレポーター (P1 と P2図 3 aでのプライマー) の LTR の逆プライマーの上流。3' int. 接合用プライマー PCR では 100-200 bp 下流の 3' HA (プライマー P3 と P4 の図3 a) レポーターの PA からスパンする必要があります。プライマー P1 および P4 も混合対象人口で対象外の対立遺伝子の増幅のためになるでしょう。回路図、図 3 aを参照してください。
    1. 2.2.4 のステップから混合ターゲット セル人口の細胞懸濁液 2 mL から gDNA を準備します。製造元のプロトコルに従って gDNA 抽出キットを使用します。コントロールとして非標的細胞の gDNA を準備しています。
    2. Int 型ジャンクション PCRs を実行 (5' と 3' int 型ジャンクション、P1 ・ P2 ・ P3 ・ P4 のプライマーそれぞれ) をターゲットとした遺伝子 PCR (プライマー P1 ・ P4) 高忠実度 DNA ポリメラーゼを使用して、(表 3および4 PCR 成分とサイクリング条件参照).5 μ L の 1.5% アガロース/泰ゲルの PCR の製品を分析します。
      注: GDNA をターゲットとした細胞 (マイナス コントロール) の中に検出されている特定の PCR の製品を守らなければ混合対象人口にゲノム エンジニア リングを受けているセルがある場合。非標的遺伝子 PCR、両方対象と非対象のセル (ゲノム P1、P4 のプライマーの肯定的な制御) の同じサイズの製品を守らなければならない 1 つ。バンドは認められなかった、または (例えばを通して DMSO または Mg2 +の増加量を追加)、PCR のバッファーを変更するサイクル数の増加やポリメラーゼによって PCR サイクリング条件を変更することを検討してください。

3. 正しい対象系統およびスクリーニングの生成

注:フローサイトメトリーおよび PCR (セクション 2.2-2.4) による混合ターゲット セル人口のターゲット イベントの確認後単一細胞のクローンを生成 (期間: 28 〜 35 日) と記者のシーケンスの正しい統合のための画面。

  1. 希釈めっきによる単一細胞クローンの生成
    1. Jurkat 付きメディアに事前の準備: 1 x 10 の6セル/mL、300 x gで 5 分間遠心する成長健康、未処理の Jurkat T 細胞から AB 中 w/RPMI 離陸し、0.22 μ m シリンジ フィルター ユニットを使用して上清をフィルター処理します。
      注:短期的なストレージ 4 ° c または-20 ° c 1 週間以上ストレージで馴化培地を保ちます。馴化培地希釈めっき前の 20 に 30 mL を準備します。
    2. 2.2.4 ステップ 10-14 日後膨張から標的細胞をカウントし、AB の w/RPMI で 1 × 105セル/mL の濃度に希釈します。1 x 10 の5セル/mL の溶液を 100 μ l 添加し 1,000 セル/ml の濃度を達成するために媒体の 9.9 mL で希釈します。1,000 セル/ml 溶液 1 mL をとり、100 細胞/mL の濃度を達成するために媒体の 9 mL で希釈します。
    3. ウェルあたり 1 つ含むのセルと 2 細胞/ウェル プレート 96年ウェルをプレートします。ウェルあたり 1 セルの 100 細胞/mL の溶液の 1 mL を取り出して軽く混ぜて馴化培地 5 mL、4 mL 滅菌試薬リザーバーで新鮮な媒体の。
    4. ウェルあたり 2 セルの 100 セル/ml 溶液 2 mL を取るし、馴化培地 5 mL と新鮮な培地 3 mL を混ぜて優しく。マルチ チャンネル ピペットを使用してあたりそれぞれセル希釈の 100 μ L の丸底プレート 96年ウェル プレート。
      注:構築をターゲットあたり 10 の 96 ウェル プレート 5、スクリーニングのためのクローンを得るのに十分です。
    5. 96 ウェル プレートをスタック、3 mL の各ウェルに PBS を含む 6 ウェル プレートと各スタックをカバー、3 週間 5% CO2加湿細胞文化のインキュベーターで 37 ° C で版を孵化させなさい。
      注:この時間の間に細胞培養培地を変更しないでください。週に一度か二度以上インキュベーターを開かないでください。最良の結果は、開いている水の貯水池でインキュベーターで観察されます。
    6. インキュベーションの 3 週間後に、光顕 (4 倍) を使用して成長したコロニーの存在を視覚的に確認し、井戸の底上の点として表示されているので栽培植民地と井戸をマークします。
    7. 1 つ AB w/RPMI の 100 μ L/ウェルの 96 ウェル丸底プレートを準備します。優しくマークの細胞を再懸濁しますピペッティングでよく。既に AB、w/RPMI の 100 μ L を含む新しい 96 ウェル プレートの 1 つのウェルに細胞懸濁液を 100 μ l 添加を転送し、ピペットで穏やかに混合します。第 2 空皿を複製する 96 ウェル丸底プレートにこの細胞懸濁液を 100 μ l 添加を転送します。
    8. 成長したコロニーのすべてのマークされた井戸を続行します。RPMI AB 中 w/200 μ L で空白のすべての井戸を埋めます。37 ° C、5% で版を孵化させなさい CO2.
      注:これらのプレートのいずれかを務める単一細胞クローン (「株式板」) の拡大や、その他検診「重複プレート」。
  2. フローサイトメトリーおよび PCR による単一細胞クローンのスクリーニング
    注:単一細胞クローンを展開すると、PCR (手順 3.2.4–3.2.12) による記者シーケンスの存在とフローサイトメトリー (手順 3.2.2–3.2.3) による蛍光レポーターの発現の画面単一細胞クローンにステップ 3.1.8 から重複するプレートを使用(図 3)。
    1. 重複板 24 〜 48 時間インキュベートし、プレートを再び複製をしましょう。これを行うには、各ウェルに 100 μ L AB w/RPMI を追加、ピペットで穏やかに混合、マルチ チャンネル ピペットを使用して新しい 96 ウェル丸底プレートに 100 μ L を転送します。流れ cytometry スクリーニングと PCR ベースのスクリーニングのための他の 1 つのプレートを使用します。
    2. 流れの cytometry の検診 PMA Iono で細胞を刺激します。0.1 μ l Ionomocin (1 mM ストック)、PMA の 0.1 μ L のマスター ミックスを準備 (50 μ g/μ L 在庫) し井戸の数で AB の w/RPMI の 4.8 μ L、5 μ L/ウェル マスター ミックスを追加。
      注:誘導正常にクローン、LTR は転写活性サイレントかもしれない蛍光レポーターが表記されていないためを識別する必要があります。
    3. セル 24 時間インキュベートし、手順 2.3.3 で説明したフローサイトメトリー用セルを準備しなさいゲートの任意実行可能な単一セルは、前方と脇の散布図のサイズに基づいて、蛍光レポーター遺伝子発現のフローサイトメトリーによる分析 (たとえば、結果が図 3 cを参照)。テレビ バックボーンにプロモーターと 2 番目蛍光レポーターが含まれているかどうか (例えば, GFP)、またバックボーン記者式のいずれかのクローンを画面 (ステップ 1.2.2 と説明、次の注を参照)。
      注:バックボーン記者式バックボーン シーケンスの不要な統合を示します。
    4. 2 つ目の重複したプレートでクローンが十分に成長している一度 (96 ウェル プレートの複製後通常 24 〜 48 時間) gDNA PCR のスクリーニングのための細胞溶解液を準備します。細胞ペレットを乱すことがなく慎重に右で 300 x gで 10 分間遠心するプレートは上澄みを脱ぐ。
      注:マルチ チャンネル ピペットの lysates と PCR 反応の準備のためのすべての手順を実行できます。
    5. 穏やかなピペッティング室温 300 × gで 5 分間プレートを遠心分離して 100 μ L の PBS のセルを洗浄します。PBS を脱いで、換散バッファーの 200 μ L を追加 [200 mM の NaCl 100 mM トリス塩酸 pH 8 〜 8.5、5 ミリメートルの EDTA、0.1 %sds のプロティナーゼ K の 250-1,000 μ g/mL を追加 (凍結乾燥粉末、重量を量るたて)] ウェルあたり。ピペットで穏やかに混合し、懸濁液を新しい PCR プレートに転送します。
    6. パラフィン フィルム プレート シールし、たちに 55 ° C で 1 時間インキュベートします。10 分 (3,000 x g) スピンに最大速度で細胞の残骸を遠心し、上清を新しい PCR プレートに転送。
      注:それ以上の使用まで 4 ° C でこの段階で板のセル lysates を格納できます。
    7. DH2O の 110 μ L、96 ウェル PCR プレートを準備し、細胞溶解液の 10 μ L を追加 (1:12 希釈)。セル lysates は粘性とピペットで移しなさいすることは困難かもしれない。少なくとも使用 20 μ L ピペット先端。
    8. 99 ° c、たちで 10 分間インキュベーションによってプロテイナーゼ K を不活性化します。その後 PCR のスクリーニングの不活化および希薄化後のセル lysates を使用します。
    9. PCR (P5 および P6) 選ばれた記者シーケンスに基づいて記者シーケンスの 500-800 bp を増幅するためのスクリーニングのためのプライマーを設計します。ポジティブ コントロール PCR の野生型、非ターゲット genomic 位置 (NUP188遺伝子) の 630 を増幅するプライマー P7 と P8 bp を使用する (図 3 cと表 5)。テレビ バックボーン シーケンス (バックボーン PCR) の不明確な統合のための制御としてテレビ バックボーンの 500-600 bp を増幅 3 プライマー対を設計します。
    10. スクリーニング、制御、および PCR のバックボーン、商業 PCR マスター ミックスを使用 (表 6および7 PCR 成分とサイクリング条件参照)。2 μ L の希釈と不活化ライセート ステップ テンプレートとして 3.2.8 に用意され、96-well フォーマットの PCR の拡大の 38、40 のサイクルの PCR を実行を使用します。
    11. 5 μ L の 1.5% アガロース/泰ゲルの PCR の製品を分析します。
      注:コントロール PCR、630 の特定のバンドのセル lysates の品質が PCR のために十分であることを確認するすべてのサンプルは、bp を守らなければなりません。スクリーニングの PCR (プライマー デザインに応じて 500-800 bp) で特定の周波数帯は、記者シーケンスの統合を示します。バックボーン PCR (500-600 bp、プライマー設計によって) のための特定のバンドを示します (たとえば、結果参照図 3 c) テレビ バックボーン シーケンスの不要な統合。
    12. フローサイトメトリー (ステップ 3.2.3) と PCR ベースのスクリーニング (ステップ 3.2.12) の結果を結合します。PCR とポジティブ コントロール PCR およびフローサイトメトリーの PMA Iono 誘導後の蛍光レポーターの発現スクリーニングで PCR の製品の適切なサイズを表示するクローンを選択します。バックボーン PCR で PCR の製品やテレビ バックボーンでエンコードされた蛍光タンパク質、テレビ バックボーン シーケンスの不特定の統合を示す式を示すクローンを除外します。
    13. 徐々 にコート t75 フラスコ細胞培養フラスコ形式をすべて 2 〜 3 日新鮮な媒体を追加することによって達成するまで大きいよくフォーマット (48/24/12/6-よく) 96 ウェル株式板から選択したクローンを展開します。1 x 10 の5と 1 x 106セル/mL の細胞密度を維持します。
    14. 展開時にクローンの細胞株を準備することを確認: セルをカウント、常温 5 分間 300 × g で遠心分離機、上澄みを廃棄し、FCS + 5 x 106セル/mL で 10 %dmso に優しく細胞を中断します。セラム チューブで 1 ° C/分 80 ° C に細胞を凍結する使用低温凍結コンテナー因数。長期保存液 N2に転送します。
      注:調製された gDNA 南しみが付くこと (セクション 3.4 を参照) によるターゲット設定の検証のための拡張中にコート t75 フラスコ細胞培養用フラスコ (すなわち,約 1 × 10 の7セル) を保持することをお勧めします。
  3. 選択されたクローンの PCR/シーケンス統合サイトの検証
    注:選択されたクローンの 5' と 3' の int 型接合、PCR 増幅し、提出サンガーを確認するシーケンスをターゲット DNA シーケンス レベルで修正します。
    1. Jurkat 野生型細胞商業 gDNA 抽出キットを使用して、選択されたクローンの gDNA を準備します。
    2. プライマー記者と 5' 5' int 型ジャンクション (P1 と P2 のプライマー) の河の上流 5' 端と 3' 端記者と 3' 3' int 型ジャンクション (P3 と P4 のプライマー) の河の下流ステップ 2.4 で説明されているようにバインドを使用します。記者インテグラル (図 4 a) のない対立遺伝子にターゲットを絞った統合サイトを増幅するのにプライマー P1 および P4 を使用します。
    3. テンプレートとして gDNA の 100-200 ng を PCR 反応を準備し、活動を校正のポリメラーゼを用いた PCR を行う (表 1および PCR 成分とサイクリング条件2を参照)。
      注:バンドが認められなかった場合は、または (たとえば、追加した DMSO または Mg2 +の増加量)、PCR バッファーを変更するサイクル数を増やすことによって PCR の循環状態の変更を検討またはポリメラーゼを変更することによって。
    4. 5 μ L の 1.5% アガロース/泰ゲルの PCR の製品を分析します。正しいバンドのサイズが認められた場合商業キットを使用して残りの PCR の製品の浄化、サンガーの対象シーケンス。予期されるシーケンスとそれらを合わせて、5' int 型ジャンクション、3' int 型ジャンクション、ばれレポーターなしの対立遺伝子の標的となるサイトのシーケンスを確認します。
      注:記者が統合されていない相同遺伝子はヌクレオチドの挿入または削除 (図 4 a) など、ターゲット ・ サイトでの変更の Cas9 を介したそう表示されます。
    5. 配置後正しい int 型ジャンクションのシーケンスを表示するクローン、全体対象の記者を増幅 PCR を実行し、サンガー、インテグラルの正しい順序を確認するシーケンス。
  4. 選択されたクローンのターゲットの検証のため南しみ分析
    注:選択されたクローンの南しみ分析正しいターゲットの設定を確認し、対象となる統合サイトで発生した Cas9 を介する組み換えイベントを除外する必要があります。
    1. 適切な gDNA 消化のための戦略を開発し、実験を開始する前にデザインをプローブします。
      1. 対象サイトで 2 に 10 kb の長さの適切なフラグメントを生成する gDNA 制限の制限酵素を選択します。Asp718、 Bamこんにちは、 Bglなど、特定の制限の酵素エコRV、ハインドIII下士官 BglII、私私は、 PstI, II、 Pvu Scaステュー、私、私とSst私は、正常に高分子量 gDNA を消化のため使用されています。
      2. 2 つの異なる南プローブの設計: レポーターのプローブとゲノム プローブ。レポーターのプローブは、記者 (すなわち, tdTomato 特定プローブ) 内のシーケンスに交配します。(重複していない) が、近くに、ゲノムのプローブが交配ゲノム領域に 1 HA。
      3. ゲノム プローブ結合によって検出される gDNA 消化によって生成されたフラグメントの長さ (2 kb 以上) 対象と対象外の対立遺伝子 (図 4 b) から異なるゲノムのプローブを選択します。プローブ長さ 400 に 1,000 bp をお勧めします。
      4. 2 つの必要なプローブを増幅する PCR プライマーを設計します。高忠実度 DNA ポリメラーゼを使用してテレビ テンプレートからレポーターのプローブを増幅 ( 3および表4 PCR 成分とサイクリング条件を参照)。
      5. 活動を校正と DNA ポリメラーゼを用いた商業 gDNA 抽出キットを使用した野生型 Jurkat gDNA からゲノムのプローブを増幅 (表 1および PCR 成分とサイクリング条件2を参照)。泰/agarose のゲルの PCR の製品を浄化し、製造元の指示に従って商業ゲル抽出キットを使用してフラグメントを抽出します。
    2. 野生型 Jurkat 細胞およびステップ 3.2.14 から選択されたクローンの 1 x 10 の7セルからの高分子量 gDNA を抽出します。
      1. RT で 5 分間 300 × gで遠心分離によって細胞のペレット、PBS で 1 回洗浄および換散バッファーの 4 mL にペレットを中断 [200 mM の NaCL、100 mM トリス塩酸 pH 8、5 ミリメートルの EDTA、0.1 %sds; 250-1,000 μ g/mL, プロテイナーゼ K (凍結乾燥粉末を追加、挽きたてで重量を量る)]。O/n 55 ° c、卓上 thermomixer で 350 rpm で揺れを孵化させなさい。
      2. イソプロパノールの 4 つの mL を追加し、混ぜるインバージョンによる 10 倍から 20 倍。GDNA が白い沈殿として表示されます。常温 (5 〜 10 分) 乾燥の 70 %etoh、750 μ L で新興によって洗い、ガラス ピペットの先に沈殿した gDNA をスプールします。
      3. 1 x TE バッファー (10 mM トリス塩酸 pH 8.0、1 mM EDTA) 500 μ L を含む 1.5 mL の反応管に沈殿物を流すし、o/n 350 rpm で揺れ、4 ° C での溶解に任せます。この段階から gDNA の任意のピペッティング ワイドボア剪断を避けるためにヒントとされるべきであります。
        注:高分子量 gDNA の準備、南しみ分析のため不可欠であり市販 gDNA 準備キットは適していません。
    3. 選択されたクローンの選択された制限の酵素と野生型 Jurkat 細胞 gDNA のダイジェスト (2 回) 15 μ g (手順 3.4.1.1 参照) の酵素 (20 単位/μ L) 6 μ L で 60 μ L 反応: 最初に、DNA を追加消化バッファーと ddH2O、孵化させなさい o/n 37 ° C で、酵素を追加し、特定の酵素消化温 o/n を孵化させなさい。消化された gDNA の 15 の ug は南部のプローブごとに必要です。
    4. 1% のアガロース/TAE のゲルの電気泳動分析に 60 μ L 制限のダイジェストの 7 μ L を使用します。塗抹標本では、完全な消化力およびサザンブロット解析用 DNA 良質をことを示します。
    5. 1:10 を追加することによって残りの制限のダイジェストを沈殿させる 3 M 酢酸ナトリウムと 2 つの容積 100% エタノール、-80 ° C および 4 ° C で 15,600 x gで 30 分間遠心で 1 時間インキュベートし、
    6. 上澄みを廃棄し、ペレットを 70 %etoh。15,600 x gで 4 ° C で 15 分間遠心、上清を破棄、ペレットの常温では、簡単に乾燥し、ddH2o. の 20 μ L に溶解
    7. 1% アガロース/TAE のあぶらとりのゲルは、レーン当たり消化 gDNA の 20 uL の読み込みを実行します。60 V、400 で 2 h のためのゲルを実行 mA。
      注: Agarose のゲルと実行時間/電圧の割合はステップ 3.4.1.1 で計算された南しみの検出のための期待されるフラグメント サイズに応じて調整する場合があります。南しみ分析の次の手順は、補足議定書 (手順 1 に 18) で詳細に説明します。次の手順で構成: ナイロン膜、放射性プローブの生成、プローブの交配、オートラジオグラフィー フィルムの開発にしみが付くこと、しみが付くゲルの洗浄します。南の戦略によると予想されるパターンとステップ 18 (補足議定書) でオートラジオグラフィー開発後得られた帯状の模様を比較 (たとえば、結果図 4 bを参照)。
  5. オフのターゲット イベントの分析
    注: CRISPR Cas9 を介したゲノム工学がオフのターゲット効果、最高位の PCR 増幅 10 in silicoを生成できますので-オフのターゲット サイトのクローンを選択し、サンガーを予測した配列。
    1. CCTop16 (http://crispr.cos.uni-heidelberg.de) を使用して最高ランク 10 のリストを生成するインシリコ予測オフのターゲット シーケンス。
      1. クエリ シーケンスとしてターゲット用の PAM を含む gRNA シーケンスを入力します。オフのターゲット予測の参照として"NGG"PAM と「ヒトゲノム」を選択します。
      2. 設定とターゲットの「4」に最大合計不一致 PAM がない gRNA の長さに長さのサイトします。出力ファイルは、それぞれ gRNA のゲノムのオフのターゲット サイトのランク一覧が提供されます。
    2. インシリコ上流と下流 UCSC のゲノムのブラウザー (http://genome.edu.ucsc.edu) と的外れ CCTop 結果リストからヒットの位置を使用して 10 最高位オフのターゲット ヒットのそれぞれのゲノム シーケンス 500 bp を抽出します。
    3. ごとに分析するターゲット サイトをオフに、PCR プライマー対を設計 600 に 700 のフラグメントを増幅予測オフのターゲット サイトを含む長さの bp。
    4. 選択されたクローンと商業 gDNA 抽出キットを用いた Jurkat 野生型細胞から gDNA を抽出します。オフのターゲット サイトごとにアクティビティを校正と DNA ポリメラーゼを用いた PCR を行う (表 1と2 PCR 成分とサイクリング条件参照) 野生型とそれぞれクローン由来 gDNA。
    5. 5 μ L の 1.5% アガロース/泰ゲルの PCR の製品を分析します。正しいバンドのサイズが認められた場合市販 PCR 精製キットを使用して残りの PCR の製品の浄化、サンガーの対象シーケンス。Jurkat 細胞でオフ対象のサイトとターゲットのクローンのシーケンスを比較します。

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Representative Results

この代表的な実験では、我々 は LTR、tdTomato コーディング シーケンス、および BACH2 遺伝子17のイントロンが 5 で 2 つの座位 polyA 信号系列から成る最小 HIV-1 由来の記者を対象とする分野します。HIV 感染患者2,4,5,6から主な T 細胞のさまざまな研究は、公開された再発統合サイトへの近さに従ってターゲット遺伝子が選ばれました 7,8と PAM モチーフ NGG 二重鎖切断の Cas9 を介した誘導に必要な存在。ターゲット ベクトル建設、説明プロトコルに従って transfected。トランスフェクション、ワークフロー イベントをターゲットにチェック、単一細胞クローン、およびスクリーニングの生成とクローンの選択には図 1に概略示します。

トランスフェクション細胞の FACS 濃縮後 2 週間が統合サイト (データは示されていない) に応じて、セル 4 に 12% および 5' 全体にわたる DNA の PCR の製品にフローサイトメトリーによる PMA Iono 誘導後レポーター遺伝子の発現を検出することができました3' 3 ' HA の記者に 5' HA 記者のシーケンスに、下流の上流から接合部統合シーケンス、それぞれ (図 3 aと3 b).ターゲットにイベントが発生したことを確認した、我々 は希釈めっきを制限することによって単一細胞のクローンを生成する続けました。私たちの手でめっき構造をターゲットあたり 10 の 96 ウェル プレート 5 成功したスクリーンのための十分なクローンを得るのに十分だった。プロトコル (セクション 3.2)、それは複製された 96 ウェルで単一細胞クローンのスクリーニングを実行する方法が説明されます。この点では、時間と労力を節約、唯一肯定的なクローンを展開する必要があります。図 3 c、PMA Iono 誘導と PCR のスクリーニング後 FACS スクリーニングのサンプル データが表示されます。高値、安値、およびない蛍光レポーター遺伝子発現 (図 3 c) クローンの数を見ました。PCR のスクリーニングのためのセル lysates の品質が適切な PCR のためかどうかを決定する選択の genomic 位置を増幅する PCR のコントロールを含めることが重要です。私たちのケースで我々 はコントロール PCR の NUP188 遺伝子座で 630 bp シーケンス分野 (プライマー シーケンス、表 5を参照してください)。PCR のスクリーニングのためのプライマーは、記者にある短いシーケンスを増幅する、設計されていた。また、不特定ターゲット ベクター バックボーン シーケンス (バックボーン PCR、示されていないデータ) を統合した任意のクローンを除外するターゲット ベクター バックボーン上のシーケンスの PCR を行った。

事前に選択されたクローンが拡大し、さらに南しみおよび PCR による正しいターゲット シーケンスの分析します。南しみは genomic 位置バインド ホモロジー腕のターゲット ベクトル内ではなくが、記者の外をレポーター固有プローブと特定のプローブを使用して行った。興味深いことに、サザンブロットでテストしたすべてのクローンが PCR を事前にスクリーニングで陽性であったが、一部だけはサザンブロット解析で正しいバンド サイズを示し heterozygously レポーター (図 4 b) を統合しました。したがって、PCR の結果をスクリーニングに頼るだけでなく、また南にしみが付くことによって正しいターゲットの設定を確認する必要は。PCR によって増幅された統合接合 DNA シーケンス レベルで正しいターゲットの設定を確認するため、製品はサンガー (図 4 a) をシーケンス処理を受けたと。特に、記者が統合されていないターゲット サイト相同遺伝子の塩基配列決定は、Cas9 を介した変化を明らかにしました。図 4 aCas9 を介した削除の例が表示されます。Cas9 を介したオフターゲット効果をテストするため最高ランクのオフのターゲット サイトの一覧は、セクション 3.5 で説明されているように生成されました。10 最高位オフのターゲット サイトが、クローンのゲノム DNA からの PCR 増幅し、製品はサンガーを受けるシーケンス。生成したターゲットを絞った単一細胞クローン、最高位の 10 オフのターゲット サイトで Jurkat 野生型シーケンスからの変化は認められなかった。

Figure 3
図 3: ターゲット イベントの単一細胞クローンのスクリーニングします。混合ターゲット セル人口の PCR によるイベントをターゲットの検出のための (、) プライマーの模式図のデザイン。5' 統合ジャンクション (P1、P2) と 3' 統合ジャンクション (P3、P4) の検出用プライマー対は、矢印として示されます。プライマー P1 および P4 はまた増幅するのに役立つなし記者インテグラル (b) 混合ターゲット細胞集団のゲノム DNA の対立遺伝子の目標とされた軌跡を transfected セルの FACS 濃縮後 10 日を作成し、5' 統合ジャンクション (P1、P2 の分析)、3' 統合ジャンクション (P3、P4; データは示されていない) およびターゲットの軌跡 (P1、P4) の野生型対立遺伝子。野生型 Jurkat 細胞 (wt) コントロールとして提供しています。(c) 96 ウェル プレートで単一細胞クローンの最初の画面。単一細胞のクローンの 96 ウェル プレートは、PMA Iono 誘導と PCR 分析をフローサイトメトリーによる正しいターゲットに上映されました。たとえばクローンの結果が表示されます。レポーター固有プライマー (pcr 法のスクリーニングとセル lysates の PCR を行ったP5、P6) および genomic 位置を増幅するプライマー (ここで PCR を制御: NUP188 の軌跡。P7, P8)。セル lysates の野生型 Jurkat 細胞 (wt) と HIVisB2 からゲノム DNA クローン (B2)18 PCR およびコントロール PCR の陽性コントロールをそれぞれスクリーニング陰性対照として市販のキットを使用しました。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

Figure 4
図 4: 正しい記者統合のため選択した単一細胞クローンの解析。(な) 統合接合とばれレポーターなし対立遺伝子ターゲット遺伝子座の解析。プライマー検出のためのペア 5' 統合ジャンクション (P1、P2)、3' 統合ジャンクション (P3、P4)、レポーターばれなしの対立遺伝子のターゲットの軌跡 (P1、P4) が使用されました。PCR の製品は単一細胞クローンのゲノム DNA から、増幅され、サンガーを受けるシーケンス。シーケンスの結果は、予期されるシーケンスに並べられました。1 つのクローンのデータの例を示します。ゲノム/HA ジャンクションと HA/レポーター ジャンクションからシーケンスのクロマト グラムは、5' と 3' の両方の統合ジャンクションの表示されます。試合はドットで示されます。GRNA の結合部位にはボックスが付いています。Cas9 による突然変異は、赤色でハイライトされます。プライマー デザインの模式図を以下に示します。矢印は、増幅用プライマーの位置を示します。(b) 選択したターゲットを絞った単一細胞クローンおよび Jurkat 野生型細胞の南しみ分析。南しみ分析レポーター固有プローブとプローブ ターゲットと野生型対立遺伝子 (ゲノム プローブ) のゲノム塩基配列を認識し DNA を行った。7 例のクローンのデータが表示されます。正しいバンドのサイズのクローンは、ボックスが付いています。希釈ターゲット ベクトル プラスミドは肯定的な制御 (+) として提供しています。南しみ分析の概略図を次に示します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

試薬 反応あたりを追加します。
プライマーを転送 (20 μ M) 1 Μ L
逆プライマー (20 μ M) 1 Μ L
Taq バッファー x 10 5 Μ L
1 μ L dNTPs (2.5 mM) 1 Μ L
MgCl (50 mM) 1 Μ L
DMSO 1.5 Μ L
gDNA (50-100 ng/μ L) 2 Μ L
ヌクレアーゼ フリー水 最大 49.5 μ L を記入します。
Taq DNA ポリメラーゼ (5 U/mL) 0.5 Μ L
反応量 50 Μ L

表 1: アクティビティを校正のポリメラーゼを用いた PCR のためのレシピです。PCR 反応あたりに追加する各試薬の量が示されます。PCR のテンプレートとしてゲノム DNA を使用して拡大のためものです。1.2.2.2 (相同性武器の増幅) のステップ、ステップ 3.3.3 (統合サイトの確認)、手順 3.4.1.5 (サザンブロット ゲノム プローブの生成)、およびステップ 3.5.4 (オフのターゲット イベントの分析) のレシピを使用します。

手順 温度 時間 サイクル
初期変性 95 ° C 2 分 1
変性 95 ° C 40 s 30-35
アニール 58 ° C 45 s
拡張機能 72 ° C 1 分/kb
最終的な拡張 72 ° C 10 分 1

表 2: 活動を校正のポリメラーゼを用いた PCR のサイクリング条件。サイクリング条件は表 1に示す PCR レシピに対応します。

試薬 反応あたりを追加します。
プライマーを転送 (20 μ M) 1 Μ L
逆プライマー (20 μ M) 1 Μ L
忠実度の高いバッファー x 5 5 Μ L
1 μ L dNTPs (2.5 mM) 1 Μ L
gDNA (50-100 ng/μ L) またはプラスミッド DNA (50 ng/μ L) 2 μ L gDNA または
1 μ L プラスミド DNA
ヌクレアーゼ フリー水 最大 49.5 μ L を記入します。
忠実度の高い DNA ポリメラーゼ 0.5 Μ L
反応量 50 Μ L

テーブル 3: 高品質なポリメラーゼを用いた PCR のためのレシピです。PCR 反応あたりに追加する各試薬の量が示されます。PCR は DNA のテンプレートの堅牢な増幅用です。レシピは、2.4.2 (ターゲット イベントの検出) のステップとステップ 3.4.1.4 (南しみのレポーター固有プローブの生成) で使用されます。

手順 温度 時間 サイクル
初期変性 98 ° C 30 s 1
変性 98 ° C 10 s 30-35
アニール 58 ° C 30 s
拡張機能 72 ° C 30 s/kb
最終的な拡張 72 ° C 10 分 1

表 4: 高品質なポリメラーゼを用いた PCR のためのサイクリング条件。サイクリング条件は、表 3に記載されている PCR レシピに対応します。

プライマー シーケンス (5'-3')
P7 コントロール PCR F CTTTGTTGGGTAAGCATGGAGGTC
P8 コントロール PCR R CAGTTACTCACCTTTGCACATAGG

表 5: コントロール PCR のオリゴヌクレオチド シーケンス。NUP188 軌跡の 630 の bp のフラグメントの増幅の前方および逆のプライマーが示されます。

試薬 反応あたりを追加します。
すぐに使用できる PCR マスター ミックス 8 Μ L
プライマーを転送 (20 μ M) 1 Μ L
逆プライマー (20 μ M) 1 Μ L
ヌクレアーゼ フリー水 8 μ l
細胞ライセート (1:12 希釈) 2 Μ L
全反応量 20 Μ L

表 6: PCR のスクリーニングのためのレシピです。PCR 反応あたりに追加する各試薬の量が示されます。PCR レシピ手順 3.2.11 で PCR をスクリーニングするためのものです。

手順 温度 時間 サイクル
前 PCR 変性 94 ° C 2 分 1
アニール 58 ° C 1 分
拡張機能 72 ° C 1 分
変性 94 ° C 30 s 38
アニール 58 ° C 30 s
拡張機能 72 ° C 1 分
最終的な拡張 72 ° C 10 分 1

表 7: サイクリング条件スクリーニング PCR 。サイクリングの状態に記載されている PCR レシピに対応表 6.

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Discussion

ここでは、選ばれたプロウイルス統合サイト CRISPR ベース Cas9 ゲノム工学の応用と HIV 由来 1 Jurkat 記者のモデルを生成するプロトコルについて述べる。

プロトコルのいくつかのポイントでは、計画段階で細心の注意が必要です。いくつかの遺伝子座は他の人よりもターゲットに簡単かもしれませんので対象となる軌跡を注意深く選択する必要があります最初に、(例,地域とターゲットのクロマチン状態に応じてシーケンス自体)。反復シーケンスはターゲットのベクトルにクローンを作成するは難しい、ゲノム内で一意ではありません多くの場合。抑圧的なクロマチン領域は、CRISPR Cas9 システム19,20をターゲットにする困難です。

第二に、gRNA の選択は、CRISPR Cas9 媒介をターゲットに重要です。代表的な統合サイトと HIV 感染のためのモデルを生成するの目的のための統合のホット スポットにできるだけ近くにバインドする gRNA が欲しい。しかし、このサイトが Cas9 採用に最適なできない場合があります。したがって、gRNA シーケンスの選択と gRNA 品質の統合サイトへの近さの間の妥協がなされなければなりません。我々 は機能 gRNAs を予測する上で信頼性の高い E カリカリ webtool を発見しました。また、一過性対象とする突然変異のスクリーニングに続いてセル型で一緒に Cas9 いくつかの gRNAs を表現することによって gRNA の事前テストを実施することが可能です。適切な gRNA がターゲット ・ サイトに効率的に Cas9 を直接、gRNA 補完サイトが突然変異が表示されます。HAs の長さ (1,000 bp 統合サイトの下流・上流) 以前に発行された研究11によると選ばれました。一般的には、相同性の腕の長さを短く、低いターゲット周波数になります。1,000 の長さホモロジー アームの bp 十分なターゲット頻度とターゲット用ベクター構築の容易さの間の良い妥協点を提示します。

第三に、記者のコンストラクトのグッド デザインに十分な時間を費やして必要があります。HIV 1 NL4-3 が含まれていますこのプロトコルで使用される最低限の記者派生 LTR とシーケンスを符号化 tdTomato、次の原則に基づいて設計されました: 単一 LTRs だけ記載されている残りのクローンのいくつかのケースでプロウイルスの断片慢性的な HIV-1 感染者21の拡大。LTR は強く影響の統合サイトでクロマチン状態と細胞複合体の募集を開催することが期待されます。まずメインの規制遺伝的要素として HIV LTR に焦点を当て最低限 HIV 記者を選択し、ゲノム工学周波数が小さいと高くなるように報告されたと、さらに HIV 1 遺伝子ではなく蛍光 LTR 活動マーカーとして tdTomato を導入ターゲット11を挿入します。テレビのクローン作成、栄養系選抜、スクリーニング、およびクローンの検証の時間のかかる手順、考慮対象に実施される最終的に機能研究のコンテキストで HIV 記者のデザインを慎重に検討することを助言します。セルの行。1 つはギャグ リーダー配列、3' LTR、HIV や記者の他のウイルスの遺伝子のシーケンスを含めることを考慮可能性があります、たとえば。プロトコルはこのような異なる記者コンストラクトに容易に適応することができます。

一般に、単一細胞クローン生成は特定の細胞株では困難なことがありますように対象となるセルの種類の選択を検討することが重要です。Jurkat 細胞が単一のクローンの生成に非常に効率的ではないことがわかったただし、我々 は潜在的な HIV 感染モデル9以前知られている使用のためこの型のセルを選択することを決めた。プレートは週に 3 回以上開かれたインキュベーターで妨げられていない残っていたとき Jurkat クローン希釈メッキ 50% 馴化培地で最高の結果を得た.別のセルの行を使用してが必要な場合は、あらかじめ希釈のメッキ実験を行うことにより単一細胞のクローンを生成する可能性をテストすることをお勧めします。留意すべき別の点は、異なる細胞のトランスフェクション率の変化です。トランスフェクションを選択したセルの行の実行できない場合 electroporating 対象セル必要があります。セルラインのターゲット設定に使用の選択は、トランスフェクションまたは単一のクローン生成の効率など技術面だけによってない決定される可能性がありますに注意してください。転写活性または目標とされた遺伝子の誘導など、機能面も考慮します。これは、ターゲットのワークフローの前に異なる細胞株のスクリーニングを必要があります。

記述されていたプロトコルが時間かかることが強調されるべき。3 ~ 6 カ月最初のステップから最後のクローン細胞をとることは期待する必要があります。サイト固有の単一統合イベントのチェックに使用される、南しみ分析は面倒かもしれませんが、私たちの経験では、非常に重要な - PCR ごと接合が示した予想される統合を示した単一細胞クローンのサブセットのみとして、南しみのパターンを修正します。理想的には、実験者が同じ挿入コントロールいずれかのクローンの効果のために同じ統合サイトを対象とするとクローンの数を生成するその後の実験は、クローンの使用します。ホモ ターゲットだけでなく、ヘテロ接合を行うことが可能です。ヘテロ接合体のレポーター細胞株で、ばれなく対立遺伝子が PCR (図 4 a) によって選別することができますサイトをターゲット、Cas9 で変更を表示する可能性があります。ホモ ターゲットでは両方の対立遺伝子が連続する対象とすることをお勧めします。

これらの考慮事項を考慮して、このワークフローは、慢性的な HIV 感染症の理解を深めるとともに使用することができます強力な携帯電話のモデルを生成する手段を提供します。たとえば、再発統合サイトのコンテキストでエージェントの待機時間反転に応答プロウイルス アクティビティをテストできます。HIV の待ち時間と反転22に影響を与える位置の影響が提唱されたので、これはフィールドでの研究者に特に関心のかもしれません。

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Disclosures

著者が明らかに何もありません。

Acknowledgments

テクニカル サポート、ブリッタ Weseloh とベッティーナのアベルに感謝します。我々 もありがとうアルネ Düsedau、Jana Hennesen (流れ cytometry 技術プラットフォーム ハインリッヒ Pette Institut) テクニカル サポート。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
pX330-U6-Chimeric_BB-cBh-hSpCas9 Addgene 42230 vector for expression of SpCas9 and gRNA
pMK GeneArt mammalian expression vector for cloning
cDNA3.1 Invitrogen V79020 mammalian expression vector for cloning
BbsI New England Biolabs R0539S restriction enzyme
NEBuilder Hifi DNA Assembly Cloning Kit New England Biolabs E5520S Assembly cloning kit used for target vector generation
TaqPlus Precision PCR System Agilent Technologies 600210 DNA polymerase with proofreading activity used for amplification of homology arms (step 1.2.2.2), verification of integration site and reporter sequence (step 3.3.3 and 3.3.5), generation of genomic probe for Southern blot (step 3.4.1.5) and analysis of off-target events (step 3.5.4)
96-well tissue culture plate (round-bottom) TPP 92097 tissue culture plates for dilution plating
Phusion High-Fidelity DNA polymerase New England Biolabs M0530 L DNA polymerase used for detection of targeting events (step 2.4.2) and generation ofreporter-specific probe for Southern blot (step 3.4.1.4)
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D9170 dimethyl sulfoxide as PCR additive
Magnesium Chloride (MgCl2) Solution New England Biolabs B9021S MgCl2 solution as PCR additive
Deoxynucleotide (dNTP) Solution Mix New England Biolabs N0447S dNTP mixture with 10 mM of each nt for PCR reactions
5PRIME HotMasterMix 5PRIME 2200400 ready-to-use PCR mix used for screening PCR (step 3.2.11)
QIAamp DNA blood mini kit Qiagen 51106 DNA isolation and purification kit
QIAquick PCR Purification Kit Qiagen 28106 PCR Purification Kit
RPMI 1640 without glutamine Lonza BE12-167F cell culture medium
Fetal Bovine Serum South Africa Charge PAN Biotech P123002 cell culture medium supplement
L-glutamine Biochrom K 0282 cell culture medium supplement
Penicillin/Streptomycin 10.000 U/mL/ 10.000 µg/mL Biochrom A 2212 cell culture medium supplement
Gibco Opti-MEM Reduced Serum Media Thermo Fisher Scientific 31985062 cell culture medium with reduced serum concentration optimized for transfection
TransIT-Jurkat Mirus Bio MIR2125 transfection reagent
phorbol 12-myristate 13-acetate Sigma-Aldrich P8139-1MG cell culture reagent
Ionomycin Sigma-Aldrich I0634-1MG cell culture reagent
Syringe-driven filter unit, PES membrane, 0,22 µm Millex SLGP033RB filter unit for sterile filtration
Heracell 150i incubator Thermo Fisher Scientific 51026280 tissue culture incubator
Amershan Hybond-N+ GE Healthcare RPN1520B positively charged nylon membrane for DNA and RNA blotting
Stratalinker 1800 Stratagene 400072 UV crosslinker
High Prime Roche 11585592001 kit for labeling of DNA with radioactive dCTP using random oligonucleotides as primers
illustra ProbeQuant G-50 Micro Columns GE Healthcare 28-9034-08 chromatography spin-columns for purification of labeled DNA

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References

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免疫学、感染症、HIV、141 の問題 HIV 遅延、HIV 統合サイト、細胞培養モデル、ゲノム工学、CRISPR Cas9
選択したプロウイルス統合サイトの HIV-1 感染の Jurkat レポーターのモデルを生成する CRISPR ベース Cas9 ゲノム工学
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Bialek, J. K., Walther, T., Hauber, J., Lange, U. C. CRISPR-Cas9-based Genome Engineering to Generate Jurkat Reporter Models for HIV-1 Infection with Selected Proviral Integration Sites. J. Vis. Exp. (141), e58572, doi:10.3791/58572 (2018).

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