Summary
Questo protocollo mira a fornire la procedura dettagliata sperimentale di un trattamento al plasma atmosferico freddo su cellule staminali neurali e rilevamento di immunofluorescenza per la valorizzazione di differenziazione.
Abstract
Come lo sviluppo della tecnologia di fisica del plasma, plasmi atmosferici freddi (CAPs) ampiamente sono stati studiati nella decontaminazione, trattamento del cancro, la guarigione della ferita, cura canalare, ecc., formando un nuovo campo di ricerca denominato medicina del plasma. Essendo una miscela di specie reattive elettriche, chimiche e biologiche, tappi hanno dimostrato le loro capacità per migliorare la differenziazione di cellule staminali nervose entrambi in vitro e in vivo e sono diventando una soluzione promettente per il trattamento di malattia neurologica in futuro. La notizia molto più eccitante è che utilizza capsule può realizzare uno stadio e diretto in modo sicuro, differenziazione delle cellule staminali neurali (NSC) per il trasporto del tessuto. Dimostriamo qui il dettagliato protocollo sperimentale di utilizzando un dispositivo di CAP jet self-made per migliorare la differenziazione NSC in C17.2-NSC e cellule staminali neurali del ratto primario, nonché osservando il destino della cellula da invertito e microscopia a fluorescenza. Con l'aiuto della tecnologia di colorazione di immunofluorescenza, abbiamo trovato entrambi la NSC ha mostrata un tasso accelerato di differenziale rispetto al gruppo non trattato, e ~ 75% del NSC differenziato selettivamente nei neuroni, che sono principalmente maturo, colinergici e motore neuroni.
Introduction
La differenziazione di NSC diretto verso una certa linea per il trasporto del tessuto è considerata una delle più promettenti terapie per malattie neurodegenerative e neurotraumatic1. Ad esempio, i neuroni dopaminergici catecholaminergic soprattutto sono desiderati nel trattamento del morbo di Parkinson (PD). Tuttavia, i metodi tradizionali per preparare le cellule desiderate per trasporto hanno molti inconvenienti, come ad esempio tossicità chimica, formazione della cicatrice o altri, che in gran parte ostacola le applicazioni delle CSN in medicina rigenerativa2. Di conseguenza, è molto necessario per trovare un romanzo e un modo sicuro per il differenziamento di NSC.
Il plasma è il quarto stato della materia, seguente solido, liquido e gas, e costituisce oltre il 95% della materia nell'intero universo. Il plasma è elettricamente neutro con unbound positivo/negativo e particelle neutre e viene solitamente generato da una scarica ad alta tensione in laboratorio. Negli ultimi due decenni, l'applicazione del plasma in biomedicina ha attirato grande attenzione in tutto il mondo come lo sviluppo della tecnologia del plasma freddo pressione atmosferica. Grazie a questa tecnica, stabile al plasma a bassa temperatura può essere generato nell'aria circostante atmosfera senza formazione di arco e si compone di varie specie reattive, come specie reattive dell'azoto (RNS), specie reattive dell'ossigeno (ROS), ultravioletto (UV) radiazione, gli elettroni, ioni e campo elettrico3. Tappi presentano i vantaggi unici per inattivazione di microrganismi, la terapia del cancro, cicatrizzazione, trattamento delle malattie della pelle, la proliferazione delle cellule e cellula differenziazione4,5,6,7. Nel precedente lavoro, abbiamo dimostrato che il getto di plasma atmosferico freddo può migliorare il differenziamento di NSC in murino delle cellule staminali neurali C17.2 (C17.2-NSC) e cellule staminali neurali del ratto primario, che esibisce un grande potenziale per diventare un potente strumento per la regia differenziazione di NSC8. Sebbene il meccanismo del potenziamento di CAP di differenziazione NSC completamente non è capito ancora, NO generato da tappi è stato dimostrato di essere un fattore chiave nel processo. In questo lavoro, ci proponiamo di fornire un dettagliato protocollo sperimentale di usando un getto plasma di elio/ossigeno di pressione atmosferica per il trattamento di NSC in vitro, preparazione delle cellule e pretrattamento, osservazione della morfologia di microscopio invertito, e osservazione di microscopia di fluorescenza di immunofluorescenza.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. culture e Predifferentiation delle cellule
-
Predifferentiation e coltura delle cellule staminali neurali
- Preparare vetrini coprioggetti rivestiti con poli-D-lisina. Mettete un coprioggetto sterile (20 mm di diametro) in un piatto di 12-pozzetti. Ricoprire il vetro di copertura con poli-D-lisina, 0,1% p/v, in acqua (Tabella materiali) per migliorare l'aderenza delle cellule su lamelle seguendo i passi successivi.
Nota: Le condizioni ottimale devono essere determinate per ogni linea cellulare e l'applicazione.- Asetticamente rivestire la superficie del coprivetrino con poli-D-lisina, 0,1% p/v, in acqua. Roccia delicatamente per garantire un rivestimento anche della superficie del vetrino coprioggetti.
- Dopo la coltura a 37 ° C durante la notte (~ 12 h), rimuovere la soluzione di poli-D-lisina e sciacquare la superficie 3 x con 1 mL di acqua sterile.
- Asciugare le cellule almeno 30 min prima della semina di loro.
- Preparare vetrini coprioggetti rivestiti con poli-D-lisina. Mettete un coprioggetto sterile (20 mm di diametro) in un piatto di 12-pozzetti. Ricoprire il vetro di copertura con poli-D-lisina, 0,1% p/v, in acqua (Tabella materiali) per migliorare l'aderenza delle cellule su lamelle seguendo i passi successivi.
-
Predifferentiation e cultura C17.2 (C17.2-NSC) murino delle cellule staminali neurali
- Incubare C17.2-NSC in un pallone da2 25 cm in mezzo dell'Aquila di Dulbecco modificato (DMEM) completato con 10% siero bovino fetale (FBS), 5% di siero equino (HS) e 1% di penicillina/streptomicina a 37 ° C e 5% di CO2 per ~ 2-3 d.
- Quando le cellule raggiungono la confluenza di 85%, rimuovere il mezzo, lavare le cellule con 1 mL di PBS e aggiungere 1 mL di tripsina fresca (0,25%) nel pallone. Lasciarlo per 1 min; quindi, aggiungere 1 mL di terreno di coltura nel matraccio e pipetta su e giù parecchie volte per garantire una sospensione unicellulare.
- Contare la densità delle cellule in sospensione utilizzando un emocitometro. Calcolare il volume richiesto di sospensione cellulare per ottenere una concentrazione finale cella di 2 x 104 cellule/mL.
- C17.2-NSC di seme su lamelle rivestite in lastra 12-pozzetti con la densità di ~ 2 x 104 cellule per pozzetto. Controllare la densità delle cellule al microscopio.
Nota: Per un risultato migliore, la densità cellulare ottimale deve essere determinata prima dell'esperimento di immunofluorescenza. - Incubare le cellule a 37 ° C in un'incubatrice di cellulare per 12 h consentire allegato.
- Dopo aver allegato, lavare le cellule 2 x con 1 mL di PBS e coltivare le cellule con mezzo di differenziazione consistente DMEM/F12 con supplemento di 1% N2 per 48 h prima del trattamento al plasma.
-
Predifferentiation e coltura delle cellule staminali neurali primari di ratto
- La sospensione del ratto primario NSC nel mezzo di crescita di ratto NSC in non patinata T25 matracci a una densità di 5 x 105 cellule della coltura.
Nota: Il ratto primario NSC sono stati isolati seguendo il protocollo di Xie et al. 9. - Controllare la formazione di neurosfere sotto un microscopio invertito. Assicurarsi che la morfologia della neurospheres esibisce complessi multicellulari sferici e trasparente.
- Quando i neurosfere raggiungono un diametro di 3 mm o più grandi, trasferire la sospensione neurosphere un 15 mL sterile provetta e lasciare che i neurosfere depositarsi per gravità.
- Rimuovere il surnatante con attenzione per lasciare il neurosfere in un volume minimo del mezzo.
- Sciacquare il neurosfere 1 x 5 ml di PBS e lasciare che i neurosfere depositarsi per gravità. Eliminare il surnatante per lasciare un minimo volume di PBS.
- Aggiungere un volume adeguato di mezzo di differenziazione per regolare la densità delle cellule di neurosfere ~ 12-15 per millilitro. Il mezzo di differenziazione per primari di ratto NSCs consiste in DMEM/F12, 2% B27 e 1% FBS.
- Semi di 1 mL di sospensione neurosphere su ogni vetrino coprioggetti rivestito in lastra 12-pozzetti.
Nota: Agitare la piastra delicatamente per garantire che la neurospheres siano distribuiti uniformemente. Questo passaggio è fondamentale per un migliore risultato di immunofluorescenza. - Posizionare la piastra in incubatrice e consentirle di predifferentiate per 24 h prima del trattamento al plasma.
- La sospensione del ratto primario NSC nel mezzo di crescita di ratto NSC in non patinata T25 matracci a una densità di 5 x 105 cellule della coltura.
2. preparazione dei getti di Plasma
- Scegliere un tubo di quarzo semiaperta con un diametro interno di 2 mm e un diametro esterno di 4 mm. Inserire un cavo dell'alta tensione con un diametro di 2 mm nel tubo.
- Inserire il tubo di quarzo con il filo dell'alta tensione in una siringa da 5 mL e utilizzare un utensile per il montaggio all'interno del centro della siringa. Impostare la distanza tra l'estremità sigillata del tubo al quarzo e la punta della siringa a 1 cm.
- Collegare un tubo di gomma del silicone di 1 m (con un diametro interno di 12 mm) all'estremità aperta della siringa e, quindi, collegare alla valvola gas e flussometro in sequenza.
3. acquisizione dei getti
- Collegare il circuito come mostrato in Figura 1. Collegare il cavo di uscita dell'alimentatore al dispositivo getto plasma e, quindi, collegare la punta della sonda ad alta tensione con l'uscita del filo per rilevare la tensione. Collegare l'altra estremità della sonda ad alta tensione all'oscilloscopio per registrare le informazioni della tensione in uscita. Controllare tutto il circuito e assicurarsi che il cavo di alimentazione, l'oscilloscopio e la sonda ad alta tensione sono tutti a terra.
- Controllare la tubazione del gas. Assicurarsi che il tubo del gas è stato collegato al dispositivo getto plasma; quindi, aprire la valvola del gas della Elio (frazione di volume, 99,999%) e ossigeno (frazione di volume, 99,999%) e impostare il flusso del gas a 1 L:0.01 L/min (He: O2).
Nota: Lasciare che il flusso di gas per alcuni minuti prima di accendere l'alimentazione elettrica per la prima volta. - Impostare l'ampiezza di impulso, frequenza e larghezza di impulso come 8 kV, 8 kHz e ns 1600, rispettivamente. Controllare il circuito di nuovo e, quindi, accendere il pulsante di uscita per creare un getto di plasma.
Attenzione: Non toccare il filo ad alta tensione in qualsiasi momento.
4. plasma trattamento di cellule staminali neurali
- Impostare la distanza tra l'ugello della siringa e il pozzo di cella a 15 mm.
Nota: La distanza è misurata dalla parte inferiore della piattaforma dove si trova la piastra 12-pozzetti. - Prendere la piastra 12-pozzetti fuori l'incubatrice e cambiare il mezzo delle cellule predifferentiated 800 µ l di terreno di differenziazione fresco.
- Le cellule si divide in tre gruppi: un gruppo di controllo non trattato, un gruppo di trattamento di 60 di s He-e-O2 (% 1) gas flusso e un gruppo di trattamento al plasma s 60.
Nota: Non c'è nessuna perdita di liquida evidente sotto la condizione di trattamento. - Posizionare la piastra 12-pozzetti sotto i getti di plasma, accertarsi che l'ugello della siringa è fissato al centro di ogni foro e dare il trattamento relativo ai diversi gruppi indicati al punto 4.3.
Nota: I controlli non trattati erano tenuti in mezzo di differenziazione a temperatura ambiente durante la procedura sperimentale per garantire condizioni di uniformità di trattamento. Il gruppo di trattamento lui-e-O flusso gas2 (% 1) è stato trattato con solo un lui e O2 (% 1) flusso di gas, senza generazione di plasma. Tutti i trattamenti devono essere eseguiti in triplice copia.
5. neural Stem Cell Differentiation
- Dopo il trattamento, rimuovere la cultura originale e aggiungere 1 mL di nuovo mezzo di differenziazione in ciascun pozzetto.
- Incubare le cellule nell'incubatore a 37 ° C e 5% CO2 per 6 d. modificare il mezzo ogni altro giorno.
- Controllare lo stato di differenziazione dei diversi gruppi ogni giorno sotto un microscopio ottico a contrasto di fase invertita. In modo casuale selezionare almeno 12 campi e scattare foto per registrare i cambiamenti morfologici.
6. immunofluorescenza
-
Risciacquo
- Prelevare i campioni fuori l'incubatrice di cellulare e rimuovere il supporto dall'aspirazione. Sciacquare le cellule 1 x con 1 mL di PBS.
Nota: Dopo la differenziazione, le cellule si staccano facilmente. È necessario aggiungere il PBS dal lato dei pozzi cultura per evitare di lavare fuori le cellule.
- Prelevare i campioni fuori l'incubatrice di cellulare e rimuovere il supporto dall'aspirazione. Sciacquare le cellule 1 x con 1 mL di PBS.
-
Fissazione
- Fissare le cellule con 500 µ l di paraformaldeide al 4% per 20 min a temperatura ambiente. Dopo la fissazione, sciacquare delicatamente le cellule 3 x con 1 mL di PBS, 5 minuti ciascuno, per rimuovere il residuo paraformaldeide al 4%.
Nota: Il punto di tempo ottimale per la fissazione delle cellule deve essere determinato secondo i tipi di cellule. Dopo la fissazione, aggiungere 1 mL di PBS dal lato dei pozzi cultura e lasciare il campione sul tavolo per 5 min. Non utilizzare un agitatore di laboratorio, per garantire una minima perdita di cellule.
- Fissare le cellule con 500 µ l di paraformaldeide al 4% per 20 min a temperatura ambiente. Dopo la fissazione, sciacquare delicatamente le cellule 3 x con 1 mL di PBS, 5 minuti ciascuno, per rimuovere il residuo paraformaldeide al 4%.
-
Permeabilizzazione
- Permeabilize i campioni con 0,2% TritonX-100 in PBS per 10 min a temperatura ambiente. Dopo il permeabilization, sciacquare le cellule delicatamente con 1 mL di PBS per tre volte, 5 minuti ciascuno.
Nota: Il punto di tempo ottimale per la permeabilizzazione delle cellule deve essere determinato in base ai tipi di cella. Dopo il permeabilization, aggiungere 1 mL di PBS dal lato dei pozzi cultura, lasciare il campione sul tavolo per 5 min. Non utilizzare un agitatore di laboratorio per garantire la minima perdita di cellule.
- Permeabilize i campioni con 0,2% TritonX-100 in PBS per 10 min a temperatura ambiente. Dopo il permeabilization, sciacquare le cellule delicatamente con 1 mL di PBS per tre volte, 5 minuti ciascuno.
-
Blocco
- Aggiungere 1 mL di siero di capra del 10% in PBS per ogni campione e lasciare il campione sul tavolo per 1 h bloccare eventuali interazioni non specifiche.
Nota: Non utilizzare un agitatore di laboratorio, per impedire alle cellule di scollegamento dalla diapositiva. Un risciacquo non è necessario in questo passaggio.
- Aggiungere 1 mL di siero di capra del 10% in PBS per ogni campione e lasciare il campione sul tavolo per 1 h bloccare eventuali interazioni non specifiche.
-
Incubazione con anticorpo primario
- Diluire l'anticorpo primario mediante tampone di diluizione di anticorpo primario.
Nota: Per risultati ottimali, il rapporto di diluizione finale dell'anticorpo primario deve essere determinato dal pretest. Ai rapporti di diluizione di anti-nestina (per cellule staminali indifferenziate), anti-β-tubulina III (per neurone), anti-O4 (per oligodendrociti), anti-NF200 (dei neuroni maturi), anti-ChAT (per i neuroni colinergici), anti-LHX3 (per i neuroni di motore), anti-GABA (per I neuroni GABAergici), anti-serotonina (per neuroni serotonergic) e anti-TH (per i neuroni dopaminergici) sono 1: 80, 1: 200, 1: 100, 1: 100, 1: 100, 1: 200, 1: 100, 1: 200 e 1: 100, rispettivamente. - Applicare 300 µ l di anticorpi primari diluiti a diversi campioni.
- Incubare i campioni delle cellule durante la notte a 4 ° C.
Nota: È consigliabile per Incubare gli anticorpi primari a 4 ° C per ridurre lo sfondo e colorazione aspecifica. - Rimuovere gli anticorpi primari e sciacquare delicatamente le cellule 3 x con 1 mL di PBS.
- Diluire l'anticorpo primario mediante tampone di diluizione di anticorpo primario.
-
Incubazione con anticorpo secondario
- Diluire i Cy3-coniugati o coniugati Alexa Fluor 488 anticorpi secondari utilizzando siero di capra del 3% in PBS.
Nota: Per risultati ottimali, il rapporto di diluizione finale dell'anticorpo secondario deve essere determinato dal pretest. - Applicare 300 µ l di anticorpi secondari pertinenti per rilevare ogni anticorpo primario.
Nota: Tutti i passi successivi devono essere eseguite al buio per evitare l'estinzione di fluorescenza. - Incubare il campione di cellule al buio per 2 h a temperatura ambiente.
- Rimuovere gli anticorpi secondari e sciacquare le cellule delicatamente con 1 mL di PBS per 10 min a temperatura ambiente.
- Diluire i Cy3-coniugati o coniugati Alexa Fluor 488 anticorpi secondari utilizzando siero di capra del 3% in PBS.
-
Macchiatura nucleare
- Applicare 500 µ l di soluzione di lavoro di Hoechst 33258 per immergere il campione di cellule.
- Incubare il campione di cellule al buio per 8 min a temperatura ambiente per etichettare i nuclei.
- Sciacquare delicatamente le cellule 3 x con 1 mL di PBS, 10 min ciascuno, al riparo dalla luce.
Nota: Per una minima perdita di cellule, la condizione di lavaggio ottimale deve essere determinata empiricamente.
-
Montaggio
- Mettere una goccia di mezzo di montaggio al centro della 250D.
- Togliere i vetrini coprioggetti (con esempi) usando la pinzetta e posizionare accuratamente il campione sopra il mezzo di montaggio. Evitare le bolle d'aria.
- Rimuovere qualsiasi mezzo di montaggio in eccesso con carta assorbente.
-
Osservazione di microscopia di fluorescenza
- Osservare i campioni sotto il microscopio a fluorescenza dotato di filtri per Hoechst 33258, Alexa Fluor 488 e Cy3. Per ogni campione, in modo casuale selezionare almeno 8-12 campi e registrare le immagini con una macchina fotografica.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Morfologia delle cellule è stata osservata al microscopio invertito ogni giorno dopo il trattamento di CAP. La figura 2 Mostra le immagini del microscopio chiaro ordinario invertito in contrasto di fase della differenziazione delle cellule in entrambe le linee cellulari. Il gruppo trattato al plasma presenta un tasso di accelerazione del differenziamento e un rapporto di elevata differenziazione rispetto al gruppo di flusso di controllo e gas.
I risultati immunofluorescenti del C17.2-NSC e primari di ratto NSC coltivate per 6 d dopo il trattamento sono mostrati in Figura 3 e Figura 4, rispettivamente. La nestina (+, verde) è diminuita, β-tubulina III (+ rosso) ha aumentato significativamente, e O4 (+ verde) leggermente aumentato entrambi di cellula rispetto al gruppo di controllo. Trattamenti di CAP di 60 s migliorare efficacemente il C17.2-NSC in linea neuronale rispetto al gruppo di controllo e il gruppo di trattamento del flusso di gas. Flusso di gas puro ha avuto alcun effetto visibile sulla differenziazione NSC.
Figura 5 viene illustrata la specifica di un neurone destino nel gruppo del trattamento al plasma di s 60. Sono state osservate forti espressioni di NF200 (per neurone maturo), ChAT (per neurone colinergico) e LHX3 (per motor neuron). GABAergici e neuroni serotonergic erano raramente, mentre nessun neuroni dopaminergici sono stati rilevati.
Figura 1 : Schematica della disposizione sperimentale. Il getto plasma è collegato al filo di uscita dell'alimentatore ad alta tensione. La sonda per alta tensione con oscilloscopio viene utilizzata per rilevare la tensione di uscita. Quando i gas di lavoro stanno fluendo attraverso la siringa e l'alta tensione è su, il getto di plasma verrà generato e propagare all'aria aperta. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2 : Ordinario invertito immagini del microscopio di contrasto di fase per le C17.2-NSC e primari di ratto NSCs. Questa figura è adattata da Xiong et al. 8 con permesso. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3 : Rilevazione di immunofluorescenza di C17.2-NSC non trattate (a sinistra), 60 s gas flusso-trattato C17.2-NSC (al centro) e 60 s plasma-trattato C17.2-NCSs (a destra) per 6 d della cultura. La nestina (+ verde) / Hoechst; Β-tubulina III (+, rosso) / Hoechst; O4 (+, verde) / Hoechst. Il nucleare è macchiato con Hoechst 33258. Questa figura è adattata da Xiong et al. 8 con permesso. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 4 : Rilevazione di immunofluorescenza di primari di ratto non trattato NSC (a sinistra), 60 s gas flusso-trattati del ratto primario NSC (al centro) e 60 s trattate al plasma del ratto primario NSC (a destra) per 6D della cultura. La nestina (+ verde) / Hoechst; Β-tubulina III (+, rosso) / Hoechst; O4 (+, verde) / Hoechst. Il nucleare è macchiato con Hoechst 33258. Questa figura è adattata da Xiong et al. 8 con permesso. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 5 : Specifica di un neurone destino studiato dall'immunofluorescenza nel gruppo del trattamento al plasma di s 60. NF200 (+, rosso) / Hoechst; ChAT (+ rosso) / Hoechst; LHX3 (+, rosso) / Hoechst; GABA (+ rosso) / Hoechst; Serotonina (+ rosso) / Hoechst; TH (+ rosso) / Hoechst. Il nucleare è macchiato con Hoechst 33258. Questa figura è adattata da Xiong et al. 8 con permesso. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
C17.2-NSC è una sorta di linea di cellule staminali neurali immortalata da cellule di strato granulare cerebellare di topo neonatale, sviluppata da Snyder e altri10,11. C17.2-NSC può differenziarsi in neuroni, astrociti e oligodendrociti e sono ampiamente usate in neuroscienze12. Nel nostro studio precedente, tappi potrebbero migliorare la differenziazione delle C17.2-CSN in neuroni. Uno studio di prova-de-principio è stato anche effettuato usando NSCs primari di ratto, e l'effetto dell'esposizione al plasma sul ratto primario NSCs era qualitativamente simile a quello delle C17.2-CSN, con una più forte differenziazione dei neuroni. Tappi, una nuova tecnologia chimico-fisico, possono rappresentare uno strumento promettente per la terapia di malattie neurologiche, quali morbo di Alzheimer, PD, ferita del midollo spinale e altri.
Trattamento CAP offre un modo One-Step per migliorare C17.2 NSC e primari di ratto NSC differenziazione in vitro con poco danno delle cellule e un breve tempo di trattamento. Inoltre, i risultati hanno mostrato che un ~ 75% diretto differenziamento in neuroni, che hanno reso il trattamento al plasma un metodo promettente per i trapianti di tessuto futuro nella clinica. Tuttavia, l'attuale protocollo assunto soltanto un tipo di dispositivi di CAP per il differenziamento di NSC. La limitazione dell'utilizzo di questo microplasma è la non uniformità quando il pennacchio del plasma considera la piastra 12-pozzetti. Lavoro futuro prenderà in considerazione utilizzando un dispositivo di grande volume del plasma o plasma-attivato medio per un trattamento uniforme.
Ci sono diversi passaggi critici all'interno del protocollo. In primo luogo, ogni fase di lavaggio deve essere eseguito con cura, per le cellule si staccano facilmente dopo la differenziazione. Le procedure di fissazione e di permeabilizzazione sono altri passaggi critici nel immunostaining. Il fissaggio è necessario per preservare la morfologia e l'antigenicità delle cellule13. Permeabilizzazione permette gli anticorpi da associare al antigeni intracellulari e nucleare14. Il momento ottimale punto di fissaggio e permeabilizzazione deve essere determinato attraverso prova preliminare. Incubazione di blocco e dell'anticorpo di immunofluorescenza sono importanti quanto i passaggi di lavaggio delicato. È consigliabile utilizzare siero animale dalla stessa fonte come l'anticorpo secondario per coprire le proteine endogene legame non specifico. Per risultati ottimali, il rapporto di diluizione finale dell'anticorpo deve essere determinato dal pretest. Per quanto riguarda il trattamento al plasma, il dosaggio del plasma deve essere applicato con molta attenzione; trattamento al plasma di lunga data e intenso può indurre apoptosi o necrosi. Di conseguenza, il tempo di trattamento e la distanza deve essere pretestati.
In sintesi, questo manoscritto fornisce un protocollo dettagliato per induzione della differenziazione NSC utilizzando un getto di plasma atmosferico ed evidenzia problemi critici durante l'intero processo. Tappi possono migliorare il differenziamento di NSC in neuroni e chiaramente sarà utile per il trattamento delle malattie neurologiche. Vale anche la pena notare che il protocollo attuale si concentra solo sull'effetto in vitro di tappi su CSN. È necessario per gli studi futuri valutare l'effetto del plasma in vivo utilizzando modelli murini della ferita del nervo.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Gli autori non hanno nulla a rivelare.
Acknowledgments
Questo lavoro è stato supportato dal programma di studioso di Huazhong, il fondo per l'innovazione indipendente of la Huazhong University of Science and Technology (n. 2018KFYYXJJ071) e National Natural Science Foundation of China (nn. 31501099 e 51707012).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Coverslip | NEST | 801008 | |
| Poly-D-lysine | Beyotime | P0128 | |
| DMEM medium | HyClone | SH30022.01B | stored at 4 °C |
| DMEM/F12 medium | HyClone | SH30023.01B | stored at 4 °C |
| N2 supplement | Gibco | 17502048 | stored at -20 °C and protect from light |
| B27 supplement | Gibco | 17504044 | stored at -20 °C and protect from light |
| Fetal bovine serum | HyClone | SH30084.03 | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing |
| Donor Horse serum | HyClone | SH30074.03 | tored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing |
| Penicillin/Streptomycin | HyClone | SV30010 | stored at 4 °C |
| Trypsin | HyClone | 25300054 | stored at 4 °C |
| PBS solution | HyClone | SH30256.01B | stored at 4 °C |
| 4% paraformaldehyde | Beyotime | P0098 | stored at -20 °C |
| TritonX-100 | Sigma | T8787 | |
| Normal Goat Serum Blocking Solution | Vector Laboratories | S-1000-20 | stored at 4 °C |
| anti-Nestin | Beyotime | AF2215 | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing |
| anti-β-Tubulin III | Sigma Aldrich | T2200 | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing |
| anti-O4 | R&D Systems | MAB1326 | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing |
| anti-NF200 | Sigma | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing | |
| anti-ChAT | Sigma | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing | |
| anti- LHX3 | Sigma | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing | |
| anti-GABA | Sigma | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing | |
| anti-Serotonin | Abcam, Cambridge, MA | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing | |
| anti-TH | Abcam, Cambridge, MA | stored at -20 °C, avoid repeated freezing and thawing | |
| Immunol Staining Primary Antibody Dilution Buffer | Beyotime | P0103 | stored at 4 °C |
| Cy3 Labeled Goat Anti-Rabbit IgG | Beyotime | A0516 | stored at -20 °C and protect from light |
| Alexa Fluor 488- Labeled Goat | Beyotime | A0428 | stored at -20 °C and protect from light |
| Anti-Mouse IgG | |||
| 12-well plate | corning | 3512 | |
| 25 cm2 flask | corning | 430639 | |
| Hoechst 33258 | Beyotime | C1018 | stored at -20 °C and protect from light |
| Mounting medium | Beyotime | P0128 | stored at -20 °C and protect from light |
| Light microscope | Nanjing Jiangnan Novel Optics Company | XD-202 | |
| Fluorescence microscopy | Nikon | 80i | |
| High – voltage Power Amplifier | Directed Energy | PVX-4110 | |
| DC power supply | Spellman | SL1200 | |
| Function Generator | Aligent | 33521A | |
| Oscilloscope | Tektronix | DPO3034 | |
| High voltage probe | Tektronix | P6015A |
References
- Temple, S. The development of neural stem cells. Nature. 414 (6859), 112-117 (2001).
- Rossi, F., Cattaneo, E. Neural stem cell therapy for neurological diseases: dreams and reality. Nature Reviews Neuroscience. 3 (5), 401-409 (2002).
- Graves, D. B. The emerging role of reactive oxygen and nitrogen species in redox biology and some implications for plasma applications to medicine and biology. Journal of Physics D: Applied Physics. 45 (26), 263001 (2012).
- Weltmann, K. D., von Woedtke, T. Plasma medicine-current state of research and medical application. Plasma Physics and Controlled Fusion. 59 (1), 014031 (2017).
- Lloyd, G., et al. Gas Plasma: Medical Uses and Developments in Wound Care. Plasma Processes and Polymers. 7 (3-4), 194-211 (2010).
- Yousfi, M., Merbahi, N., Pathak, A., Eichwald, O. Low-temperature plasmas at atmospheric pressure: toward new pharmaceutical treatments in medicine. Fundamental & Clinical Pharmacology. 28 (2), 123-135 (2014).
- Xiong, Z., Roe, J., Grammer, T. C., Graves, D. B. Plasma Treatment of Onychomycosis. Plasma Processes and Polymers. 13 (6), 588-597 (2016).
- Xiong, Z., et al. Selective neuronal differentiation of neural stem cells induced by nanosecond microplasma agitation. Stem Cell Research. 12 (2), 387-399 (2014).
- Xie, Z., Zheng, Q., Guo, X., Yi, C., Wu, Y. Isolation, Culture and Identification of Neural Stem Cells in New-born Rats. Journal of Huazhong University of Science and Technology. [Med Sci]. 23 (2), 75-78 (2003).
- Ryder, E. F., Snyder, E. Y., Cepko, C. L. Establishment and characterization of multipotent neural cell lines using retrovirus vector-mediated oncogene transfer. Journal of Neurobiology. 21 (2), 356-375 (1990).
- Snyder, E. Y., Taylor, R. M., Wolfe, J. H. Neural progenitor cell engraftment corrects lysosomal storage throughout the MRS VII mouse brain. Nature. 374 (6520), 367-370 (1995).
- Snyder, E. Y., Yoon, C., Flax, J. D., Macklis, J. D. Multipotent neural precursors can differentiate toward replacement of neurons undergoing targeted apoptotic degeneration in adult mouse neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94 (21), 11663-11668 (1997).
- Jamur, M. C., Oliver, C. Cell Fixatives for Immunostaining. Methods in Molecular Biology. 588, 55-61 (2010).
- Jamur, M. C., Oliver, C. Permeabilization of Cell Membranes. Methods in Molecular Biology. 588, 63-66 (2010).
