Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Environment

פרוטוקול Rhizobox ממוטבת כדי להמחיש צמיחה השורש והיענות לצרכי מזינים לשפות אחרות

Published: October 22, 2018 doi: 10.3791/58674

Summary

להמחיש ומדידת הבסיס לצמיחה בחיי עיר הוא מאוד מאתגר. אנו מציגים שיטה rhizobox להתאמה אישית כדי לעקוב אחר התפתחות שורש והתפשטות לאורך זמן בתגובה העשרה התזונתי. שיטה זו משמשת כדי לנתח את ההבדלים genotypic תירס שורש פלסטיות בתגובה מקור חנקן אורגני.

Abstract

. השורשים קשה לשמצה ללמוד. אדמה הן מחסום ויזואלי ועל מכניים, ומקשה לנהל מעקב אחר שורשי בחיי עיר ללא קציר הרסנית או ציוד יקר. אנו מציגים שיטה rhizobox להתאמה אישית ובמחירים סבירים זה מאפשר את הפריט החזותי הרסניות של צמיחה השורש לאורך זמן, במיוחד ולסדרם ללמוד שורש פלסטיות בתגובה תיקונים משאב מקומי. השיטה אומתה על-ידי הערכת וריאציה genotypic תירס פלסטיות התגובות תיקונים המכיל 15קטניות התווית על-ידי N שאריות. שיטות מתוארים להשיג נציג מדידות התפתחותיות לאורך זמן, למדוד צפיפות אורך הבסיס בכתמים המכיל משאבים ושליטה, לחשב שיעורי צמיחה השורש של לקבוע 15N שחזור על ידי הצמח רוטס & שוטס. יתרונות אזהרות, יישומים אפשריים בעתיד של השיטה נדונים גם. אמנם יש לנקוט על מנת להבטיח כי תנאי הניסוי לא הטיה נתוני צמיחה השורש, פרוטוקול rhizobox המובאת כאן מניבה תוצאות אמינות אם מתבצעת עם מספיק תשומת לב לפרטים.

Introduction

אמנם לעתים קרובות התעלמו לעומת עמיתיהם מעל פני הקרקע, שורשים לשחק תפקיד קריטי ברכישת חומר מזין הצמח. בהינתן העלות פחמן משמעותי של השורש בנייה ותחזוקה, הצמחים התפתחו מנגנונים לפתח שורשים רק איפה ליקוט מזון הוא שווה את ההשקעה. מערכות שורשים יכול ובכך ביעילות, באופן דינמי שלי משאב תיקונים מאת מתרבים בנקודות חמות, upregulating קולטני שערי ספיגת, והחומרים המזינים translocating במהירות שיפה עבור תחבורה נוספות1. תגובות פלסטיות יכולה להשתנות בין צמח מינים או אחרים2,3 , בהתאם את הטופס הכימי של חומר מזין מעורב4,5. וריאציה של השורש פלסטיות לבחון עוד יותר, כמו הבנת שורש מורכבים התגובות משאבי הקרקע הטרוגנית יכול ליידע הרבייה ואסטרטגיות ניהול כדי להגדיל את יעילות חומר מזין בחקלאות.

למרות הצורך שלה רלוונטיות עבור המערכות של מפעל הבנה, להמחיש וכימות שורש פלסטיות-סולמות הרלוונטיים מציב אתגרים טכניים. סטטורי הכתר שורש מן האדמה ("shovelomics"6) היא שיטה נפוצה, אבל השורשים בסדר לנצל נקבוביות קטנות בין קרקע אגרגטים, חפירה, מה שכמובן מוביל במידה מסוימת של אובדן של שורשים אלה שבירים. יתר על כן, קציר הרסני מקל אפשר לעקוב אחר שינויים במערכת השורש אחת לאורך זמן. ב באתרו שיטות הדמיה כגון טומוגרפיה הממחושבת טומוגרפיה אפשר פריט חזותי ישיר של שורשים, משאבי הקרקע רזולוציה מרחבית גבוהה7, אבל הם יקרים, דורשים ציוד מיוחד. ניסויים הידרופוני להימנע אילוצים הקשורים חילוץ שורשים בקרקע, אך השורש מורפולוגיה ואדריכלות נבדלים מדיה מימית בהשוואה אילוצי מכני והמורכבות ביופיזיקלי של קרקעות8,9. לבסוף, תהליכי rhizosphere ופונקציות לא יכול להיות משולב עם פלסטיות התפתחותית בתקשורת מלאכותיים אלה.

אנו מציגים פרוטוקול בנייה ושימוש rhizoboxes (צר, נקי-צידי מלבני מכולות) כשיטה נמוכים, להתאמה אישית כדי לאפיין צמיחה השורש באדמה לאורך זמן. מסגרות שתוכנן במיוחד מעודדים שורשים לגדול מעדיפים נגד הלוח האחורי בשל gravitropism, הגדלת דיוק מדידות אורך הבסיס. Rhizoboxes משמשים ללמוד צמיחה השורש ו rhizosphere אינטראקציות10,11,12, אבל השיטה המובאת כאן מציע יתרון בפשטות עם עיצוב חד-תא וזולה חומרים, והוא נועד ללמוד שורש התגובות מזינים לשפות אחרות. עם זאת, השיטה יכול גם להיות מותאם ללמוד מגוון של תהליכים אחרים בסיס, rhizosphere למשל, תחרות "אינטרה" / המידע, התפוצה המרחבית של תרכובות כימיות, חיידקים או פעילות אנזים. כאן, אנחנו חוקרים genotypic הבדלים בין כלאיים תירס בתגובה טלאים של 15קטניות התווית על-ידי N שאריות והאר נציג תוצאות כדי לאמת את שיטת rhizobox.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. הכנת חזית לוחות האחורי ואת מפרידי

  1. הכינו את לוחות קדמית ואחורית.
    1. לחתוך שתי חתיכות של ס מ 0.635 ברור אקריליק עבה 40.5 ס מ לרוחב על 61 ס"מ ארוך לארגז או לרכוש חלקים חתוכות מראש (ראה טבלה של חומרים).
    2. באמצעות מקדחה המיועדת אקריליק, לקדוח חורים 0.635 ס מ בקוטר 1.3 ס מ לקצה-2.5, 19, 38 ו: 53.3 ס מ מהחלק העליון. לקדוח חורים 1.3 ס מ מהקצה התחתון-2.5, 20.3, ו- 38 ס מ בצד שמאל (איור 1).
      הערה: זה יעיל ביותר לשימוש ערימה של שישה עד עשרה גיליונות לי. בכל פעם, אבל תרגיל יד יכול לשמש גם.
    3. להסיר כל כיסויי מגן אקריליק, בעדינות לנקות בשתי החלוניות לפני הרכבת בתיבות.

Figure 1
איור 1: הפריסה של קדיחת חורים. חורים הם קדח 1.3 ס מ לקצה 2.5, 19, 38, ו: 53.3 ס מ מהחלק העליון, 1.3 ס מ מהקצה התחתון-2.5, 20.3, ו- 38 ס מ מהשוליים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

  1. להכין בצד והתחתון קפיציות.
    1. חותכים שלושה מפרידי לארגז מפוליאתילן בעל צפיפות גבוהה (HDPE) או לרכוש שני הצד חתוכות מראש מפרידי (0.635 ס מ עבה, רחב של 2.5 ס מ, 57 ס מ), ולא תחתון חתוכות מראש אחד מרווח (0.635 ס מ עבה, רחב של 2.5 ס מ, 40.5 ס מ). עיין בטבלה של חומרים.
    2. יישר קפיציות בין הלוחות קדמית ואחורית לאורך הצדדים, התחתון של התיבה. באמצעות תרגיל יד או העיתונות קודח, נקדח דרך החורים הקיימים בחזית ובחזרה כך החורים לעבור דרך כל שלוש שכבות נקיה
    3. להחזיק השכבות במקום באמצעות מלחציים או על-ידי התקנת שילוב של בריחים, אגוזים, דיסקיות בכל לאחרונה קדח חור (ראה שלב 3.1).

2. התקנה של רצועה של החבטות פוליאסטר בחלק התחתון של התיבה

הערה: זה ימנע קרקע ומים דולף דרך המפרקים בין מפרידי.

  1. לחתוך פוליאסטר החבטות לתוך 2.5 ס מ רחב על ידי 40.5 ס מ באורך רצועות (ראה את הטבלה של חומרים).
  2. עם הלוח האחורי שוכב שטוח, קפיציות מעליו, להניח את החבטות ישירות מעל מרווח התחתון, שיצמיד אותו למקום עם הפאנל העליון (איור 2).

Figure 2
איור 2: מורכבים rhizobox עם החבטות. רצועה צרה של החבטות בתחתית rhizobox מונעת אדמה וחול דולף החוצה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

3. הרכבה של Rhizoboxes

  1. להרכיב את rhizoboxes באמצעות ברגים 20-חוט (3.2 ס מ אורך ידי 0.635 ס מ קוטר), דיסקיות (0.635 ס"מ קוטר פנימי) אגוזים הקסדצימאלי (בגודל מתאים את הברגים, ראה טבלה של חומרים.
  2. הדק כל בורג באמצעות מכונת, הפאנל הקדמי, מרווח, בלוח האחורי, מכונת כביסה, כביסה ומייבש אגוזים הקסדצימאלי. ודא הברגים צמוד מאוד; אם התיבה התכנסה באופן רופף, אדמת יישפך באמצעות הפערים בין לוחות הצד מפרידי.
    הערה: אקריליק בקלות שרוטה, השריטות יכול להפריע שורש מדידות, אז לטפל בתיבות שהורכב בזהירות. להימנע קופסאות הערימה אלא אם חומר מגן מונחת ביניהם.
  3. להכין שני מפרידי כלי תיקון (מפרידי שישמש כדי ליצור את המדבקות לטיפול ושליטה) לארגז. לחתוך מפרידי מפוליאתילן בעל צפיפות גבוהה (HDPE) גליונות או לרכוש אותם גזור מראש (0.635 ס מ עבה, 3.8 ס מ, 28 ס מ; ראה טבלה של חומרים). לקדוח חור אחד 0.635 ס מ קוטר, כל מרווח, 2 ס מ מהחלק העליון לאורך קו אמצע (איור 3).

Figure 3
איור 3: תיקון מפרידי. ברגים מוכנס דרך רצועות מרכז של HDPE למנוע מהם ליפול לתוך התיבה. Rhizobox הוא מלא אדמה מסביב קפיציות, האדמה wetted, קפיציות יוסרו כדי להשאיר ריק המדבקות לטיפול ושליטה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

  1. לאבטח בורג דרך כל חור עם אגוז כך מרווח שניתן חלקית להוסיף את rhizobox עד הבורג המונעת ממנו הולך עוד יותר (איור 3).
    הערה: כאשר הקרקע הוא שנרטבו סביב קפיציות קפיציות יוסרו, שני חללים ריקים יישאר זה יכול להיות מלא עם סובסטרטים המתאים עבור תיקון טיפול המכילות חנקן ו תיקון שליטה.

4. בניית PVC מסגרות כדי לתמוך את Rhizoboxes בזווית

הערה: כאשר התיבה ממוקמת בזווית, gravitropism יעודדו שורשים כדי לגדול נגד הלוח האחורי כך רק שורשים גלויים לעקיבה. פוליויניל כלוריד (PVC) מידות בתוצאת איור 4 בתוך מסגרת המתחזק את rhizobox-כ 55 ° זווית לספסל.

  1. לחתוך חתיכות בקוטר 1.3 ס מ PVC לארגז 13: 2 × 44 ס מ אורך, 3 × 42 ס מ אורך, 2 × 36.3 ס מ אורך, 2 × 25.4 ס"מ אורך ו 4 × 3.8 ס מ אורך (ראה טבלה של חומרים).
    הערה: מסור chop מומלץ מאוד יעילות, אפילו חתכים.
  2. השתמש 4 × 2-way המרפקים, 2 × 3-דרך המרפקים, 4 T-המפרקים (ראה טבלה של חומרים) להרכיב את תיבת כמוצג באיור4.
    הערה: מסגרות צריך להיות יציב ללא דבק נוספים, אך ניתן להשתמש בדבק PVC במידת הצורך.

Figure 4
איור 4: מסגרת לתמיכה rhizoboxes. המסגרת קלת משקל בנוי מ- PVC לחתוך את אורך שצוינו, המחוברים באמצעות סוגי משותפת המצוין. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

5. תפירה המקרים מגן כדי לשקף אור וחום

הערה: שורשים להימנע אור, אז במקרים כאלה לא לכלול אור על מנת לוודא כי נצפו תגובות פלסטיות בסיס מונעים על ידי המקור התזונתי במדבקות ולא על ידי הימנעות אור. קיפוח אור בד גם מפחית את הטמפרטורה בתוך rhizoboxes, המסייע למנוע עומס חום.

  1. לחתוך את הבד קיפוח אור (חומר מיוחד זה לבן בצד אחד ושחור מאידך) חתיכות כ 95 ס"מ ו- 69 ס מ (ראה טבלה של חומרים). חתיכה אחת לכל תיבת נדרש.
  2. מקפלים כל חתיכה במחצית בשולי ארוכים ליצור שרוול 47.5 ס"מ × 69 ס"מ. באמצעות מחט תפירה מכונת תוכנן עבור ג ' ינס, quilting חזקות חוט תפר צר, לתפור לאורך החלק התחתון ו- ¾ דרכו את הצד של כל שרוול. להצמיד את פינות העליון יחד עם סיכת ביטחון.

6. הכנת קרקע 1:1 (V/V): חול המצע כדי למלא את Rhizoboxes

  1. לאסוף את ס מ 1,0003 של אדמת השדה (מתוך האתר של ריבית) לארגז. לייבש את הקרקע על משקל קבוע במגשים רדוד ב 60 מעלות צלזיוס.
    הערה: קרקע עבור ניסוי זה נאסף מיד לאחר הקציר בשדה תירס אורגני מנוהל מ 0\u201210 ס מ עומק.
  2. לטחון את האדמה עם ומכתש לעבור דרך מסננת 2 מ מ. למדוד את הצפיפות בצובר של הקרקע על ידי שקילה נפח ידוע של אדמה.
  3. להשיג חול (כמו חול משחקים, אשר ניתן לרכוש בזול חנות לחומרי; לראות טבלה של חומרים) ולמדוד את הצפיפות בצובר.
  4. למדוד את נפחים שווים חול ואדמה לתוך דלי ומערבבים היטב. השתמש משפך כדי למלא את התיבה לאט ובצורה שווה ל 2.5 ס מ מהחלק העליון, מבלי להרעיד את התיבה כדי לגרום את המצע להתיישב. למדוד את כמות המצע; זה צריך להיות בערך ס מ 1,2723.
  5. הכפל את הצפיפות בצובר של חול ב- חצי אמצעי אחסון זה כדי לקבל את המסה של חול הדרושים עבור כל תיבה. לעשות את אותו הדבר עם הצפיפות בצובר של אדמה על מנת להשיג את המסה של הקרקע הדרושים עבור כל תיבה.
    הערה: עבור שדה אדמה וחול המשמשים את הניסוי הזה, זה היה 976 g של חול ו- g 774 של אדמה, אך סכומים אלה משתנים בהתאם הצפיפות בצובר של הקרקע המשמש.
  6. תווית אחת-zip העליון שקית פלסטיק גדולה לכל rhizobox, שוקל את ההמונים המתאים של חול, אדמה לתוך השקית, homogenize ביסודיות.
  7. לנתח את אדמת 1:1- ו המצע מזין תוכן, את השפע הטבעי של 15N (אלפא15N).

7. המצע לקראת טיפול ותיקוני שליטה

  1. תווית שני-zip העליון שקיות פלסטיק קטן לכל rhizobox, אחד עבור התיקון טיפול ואחד עבור התיקון שליטה. שוקל 30 גרם של הקרקע: חול המצע מ בכל מזוודה גדולה (שלב 6.6) לתוך שתי שקיות קטנות המתאימות.
  2. מערבבים את המצע עם מקור חנקן התווית על-ידי N 15עבור התיקון טיפול. בשביל זה, לשקול את 1g של שארית של צמח התווית על-ידי N 15או N-ממקור אחר (הסכום ניתן לכוונן לפי הצורך) לתוך כל שקית טיפול (בתיק קטן-zip העליון), ומערבבים היטב.
    הערה: עבור ניסוי זה, תערובת של 15תלתן התווית על-ידי N ושיירי וטץ שימש. תלתן ובקיה זרעים היו נטועים תערובת 1:1 של ורמיקוליט וחול, גדלו בתנאים החממה. הצמחים היו שמושקים מדי יום עם מים יונים פעמיים שבועי עם כוח 1/100 מערכו של פתרון ארוך-אשטון13 המכיל 15מקורות חנקן התווית על-ידי N. כל ביומסה מעל פני הקרקע היה נקצרו ארבעה שבועות לאחר השתילה, מיובשים על הקרקע. לעבור דרך מסננת 2 מ מ. אם נבחר של חומרי מזון שונים, במיוחד אם רכיב זה הוא נייד, באדמת טיס ניסויים לבדיקת שטיפת מעודדים. טפסי שחרור איטי של חומרים מזינים יכול לשמש, או בעיצוב שונה rhizobox יכולת לבחור להגביל שטיפת (למשל, על ידי תאים נפרדים10) במידת הצורך.

8. טעינת Rhizobox עם סובסטרט, ומיסוד טיפול ותיקוני שליטה

  1. שוקל כל rhizobox ריק ולהקליט את המשקולות לשימוש מאוחר יותר.
  2. הכנס שני מפרידי כלי תיקון (ראה שלב 3.2) rhizobox אחד עד הבורג מונעת מהם ממשיכים הלאה. לסמן את העומק של הקצה התחתון עם סימן קל בצד rhizobox (איור 3) והסר קפיציות.
  3. באמצעות משפך עם פתיחה גזע זה כמו לצמצם כמו הפתיחה rhizobox, למלא את rhizobox מתוך התיק גדול המתאים של מצע לעומק מסומן. להזיז את המשפך ואחורה לאט ובצורה שווה כך המצע ממלא בצורה אחידה אינה יוצרת ערוצי זרימה מועדף.
  4. כאשר רמת המצע מגיע העומק מסומן, שים קפיציות שם 5 ס מ מכל צד של התיבה. המשך מילוי התיבה עד רמת המצע היא כ- 5 ס מ מהחלק העליון של התיבה (שם צריך להיות המצע שנותרו בשקית).
  5. רטוב ביסודיות סביב כל מרווח.
    הערה: ניסוי זה הושג על-ידי אספקת 50 מ של מים דרך מקרן טפטוף מוכנס בין הקצה החיצוני של כל מרווח ועל הצד של rhizobox שפיכת 50 מ של מים בצורה שווה בין שני קפיציות. השקיה איטי הוא הכרחי עבור הרטבה אחידה.
  6. הסר קפיציות אמנם הקרקע רטובה, עוזב של חלל ריק על המדבקות.
  7. סרט סרט שקיפות עד החלק החיצוני של כל rhizobox (ראה טבלה של חומרים). מארק צד אחד כטיפול ואחד כפקד, ולמלא את המדבקות של התיקים המתאים באמצעות המשפך. לאתר את הגבולות של כל תיקון על השקיפות באמצעות הסמן הקבע.
  8. למלא את rhizobox באופן אחיד המצע הנותרים. להתחקות אחר החלק העליון של המצע על השקיפות.
  9. חזור על rhizoboxes הנותרים. שמור את כל התיקים לקציר.

9. אפילו השקיה ל- 60% קיבולת מים

הערה: נמצאה כמות זו של לחות הקרקע כדי למנוע צמחים חווה בצורת מתח תוך מניעת התפתחות תנאי אנאוקסיים או צמיחה אצה.

  1. למדוד את קיבולת מים (WHC) המצע14.
  2. לחשב את המשקל האידיאלי של כל תיבת; כאן מוגדרת כסכום של המשקל של rhizobox ריקה בשילוב עם המשקל של המצע-קיבולת 60% מים.
  3. להכפיל את WHC (גרם של מים / גרם של מצע יבש) על ידי 0.6 כדי לקבל את כמות המים שהתקיים המצע של 60% WHC. להוסיף את המונית הזו המסה של מצע יבש, המסה של מקור 15N.
  4. להוסיף משקל ריק של כל תיבת המספר שהתקבל לעיל.
  5. שוקלים את התיבות ברגע שהם היו מלאים. להחסיר את המשקל של כל תיבה (ב ז) בשלב זה מן המשקל האידיאלי שלו (ב ז) שחושבו בצעד 9.2. עם זה נפח (ב מ ל) מים מיוננים (DI) מים לאט ובצורה שווה.
    הערה: שלב זה יכול להיעשות באמצעות השקיה בטפטוף או השקיה ידנית. אם השקייה ידנית, לאפשר למים לחלחל לגמרי לפני הוספת יותר להימנע בתנאי לחות קרקע heterogenous ואת ערוצי זרימה מועדף.

10. הזרעים הנביטה והשתלות

  1. אם משתמש פקדים לא זרוע, להפריש rhizoboxes האלה.
  2. השטח-לעקר את גרעיני תירס על ידי בחישה 1 דקות ב- 5% NaOCl, אז יש לשטוף ביסודיות במים DI.
    הערה: בניסוי זה, זרעים של שישה אחרים תירס שונים שימשו כדי לחקור את ההבדלים genotypic שורש פלסטיות.
  3. להנביט זרעים סטיריליים על-ידי הצבתם על ממחטה רטובה מעבדה (למשל, Kimwipe) בתוך צלחות פטרי וכיסוי עם עוד לחות. לא צריך להיות כל מים עומדים. המקום פטרי. במקום חשוך עבור h 48\u201272 עד radicle רק מתחילה להסתמן.
  4. השתמש במרית צר לחפור בור 2.5 ס מ עומק במרכזו של כל rhizobox. השתלה של הזרעים מונבטים לתוך החור, הקפדה radicle מכוון ישירות כלפי מטה.
    הערה: אם radicle הוא בזווית לכיוון או תיקון, השוואת שיעורי צמיחה השורש יהיה מוטה.
  5. לאתר את המיקום של הזרע על השקיפות.
  6. מכסים את הזרע ואת המים עם עד 50 מ ל מים DI.

11. צמחים צמיחה

  1. לגדל צמחים במשך 25 ימים (או זמן רב ככל הרצוי), שמירה על 60% WHC לאורך כל התקופה גדל. לפקח על צמיחה השורש ע י איתור השורשים.
  2. שוקל כל תיבת כל ימי 3\u20124 ומים עד שזה בתוך 5 גר' משקל אידיאלי. להפסיק להשקות את rhizoboxes ארבעה ימים לפני הקציר כדי להקל על הפרדה בין הלוחות. הסר עשבים ביד בתדירות גבוהה כך שורשי צמחים רק עניין נוכחים.
  3. להתחקות אחר שורשי גלוי כל ימים 3\u20124 באמצעות סמן קבוע עם צבעים ניתן להבחנה ברורה לכל יום העקיבה.
    הערה: קוטר שונה סמני יכול לשמש שורשים ראשיים, לרוחב, אם רצונך בכך. זה יכול להיות שימושי להגדיר קריטריונים עבור שורש עקיבה בתחילת מאז מידה מסוימת של הסובייקטיביות מעורבת, במיוחד אם יהיו מספר חוקרים שורשים העקיבה או אם השורשים של הזמנות שונות או קוטר להיות מכובד עם סמנים שונים. בניסוי זה, הדיוק של איתור שורשים גלוי רק על צד אחד של תיבת נבדקה ע י איתור שורשים גלוי משני הצדדים, השוואת אורך הבסיס הכולל נמדדים על השקפים סרוקים אורך הבסיס הכולל נמדד על ידי שטיפה וסריקת שורשים. המתאם בין אורך הבסיס עקיבה וסקר היה משמעותי ללא קשר אם שימשו רק את השקיפות האחורי או שני שקפים. לכן ניתן רק לעקוב אחר השורשים גלוי בלוח האחורי.

12. קצירת נצרי ולאחר קבלת בסיס, דגימות. אדמה לניתוח

  1. להניח את rhizobox הראשונה שטוח ולהסיר את כל הברגים.
  2. הקציר הדגימות לירות. קליפ נצרי בבסיס, לשטוף כל אדמה במים DI ו יבש ב 60 מעלות צלזיוס. לטחון יורה עם ומכתש כדי לעבור דרך מסננת 2 מ מ והוא שוקל subsamples לתוך קפסולות בדיל לניתוח איזוטופ (ראו סעיף 14).
  3. באמצעות השקיפות כמדריך, לחתוך את המדבקות לטיפול ושליטה עם סכין גילוח. השתמש כף או מרית להגיש את השורשים והאדמה rhizosphere adhering לתוך השקית טיפול או שליטה בהתאמה.
    הערה: בעוד שיטות רבות קיימים כדי rhizosphere נפרד אדמה, האדמה תחת השפעתו של צמח שורשים15, rhizosphere יכולה להיחשב הדרגתי יותר מאשר אזור מוגדרים היטב אך ורק16, שיטה זו מלווה בשימוש נרחב הגדרה של הקרקע על פי לשורשי צמחים לאחר טלטול17.
  4. סקופ שורשים ואדמה הנותר לשקית השלישי.
  5. לעבור את הטיפול, שליטה, ולא גורפת דגימות ובמכתש 2 מ מ להפריד שורשים המצע, הסרת כל השורשים גלוי או שברי > 1 ס מ אורך עם פינצטה משובחים. לשמור את הדוגמיות הללו בנפרד אחד מן השני עבור סכום כולל של שורש שלוש שלוש דוגמאות המצע.

13. אימות של תצלומי מעקב, שערוך של שיעורי צמיחה השורש היחסי

  1. סרוק טיפול, בקרה, לרשימת תפוצה דגימות, לחשב את אורך הבסיס.
    1. עבודה עם דוגמא אחת בכל פעם, לשטוף השורשים היטב עם מים די כדי להסיר את כל המצע הנותרים. לסדר דגימות מגש ברורה כך השורשים לא חופפות.
    2. סרוק דגימות באמצעות סורק תואם עם שורש ניתוח תוכנה (לדוגמה, WinRhizo). ודא כי התוכנה מכויל לבידול שורשים רקע תמונה אמינה.
    3. להשתמש בתוכנה כדי למדוד את האורך הכולל בסיס ואורך שורש בכיתות קוטר עניין (לדוגמה, < 0.2 מ מ, 0.2\u20120.4 מ מ, 0.4\u20120.8 מ. מ., 0.8\u20121.6 מ מ, > 1.6 מ מ).
  2. לחשב שורש אורך צפיפות (שהכנסתי) עבור תיקונים הטיפול והשליטה ועבור כל rhizobox בכללותה.
    1. לחשב את עוצמת הקול של מדבקות לטיפול ושליטה על-ידי הכפלת האזור לאתר על כל שקיפות (ראה שלב 8.1) 0.635 ס מ, העומק של התיבה. להשתמש אחסון אלה כדי לחשב את השורש צפיפות אורך בכתמים טיפול ובקרה באמצעות אורך הבסיס סך כל תיקון (ראה שלב 13.1.3).
      Equation 1
    2. לחשב את עוצמת הקול של המצע ב rhizobox כל על-ידי הכפלת האזור במעקב על השקיפות (ראה שלב 8.1) על ידי 0.635 ס"מ. חישוב שהכנסתי באשר המדבקות לטיפול ושליטה.
      Equation 2
  3. אמת השורש עקיבה שיטה על ידי השוואת מערכות שורשים סרוקים ועקב תמונות.
    1. סרוק השקפים, לחשב אורך הבסיס הכולל שימוש בתוכנה. לשמור את התמונה הסרוקה לצמיחה בחישובי שיעור.
    2. לסכם את המידות אורך הבסיס הכולל של טיפול, בקרה, ולא גורפת דוגמאות עבור כל תיבה (ראה שלב 13.1.3).
    3. בדוק את המידות סרוקים, עקיבה של השורש סה כ אורך כדי לראות אם המתאם משמעותיים מבחינה סטטיסטית.
      הערה: אם כן, שיטת מעקב מאומת, שיעורי צמיחה יחסית יכול להיות מחושב בכל נקודה בזמן. אם לא, רק את נתוני מערכת השורשים סרוקים מספק אינדיקציה מדויקת של צמיחה השורש. זה יכול להיות המקרה אם מתודולוגיה מעקב עיקבי או אם השורשים היו לא פחות נראות לעין כל אחרים, למשל.
  4. אם שיטת מעקב אומתה, לחשב שיעורי צמיחה השורש היחסי עבור כל rhizobox.
    1. השתמש בתוכנת ניתוח שורש מכויל כדי להבחין בין הצבעים שבחרת העקיבה כדי למדוד אורך הבסיס הכולל טיפול, בקרה, לרשימת תפוצה דגימות בכל נקודה בזמן. חישוב אורך הבסיס הכולל המצטבר בכל נקודה בזמן.
    2. לחשב שיעורי צמיחה השורש היחסי (שורשRGR) עבור כל rhizobox כמו גם לגבי טיפול ותיקונים פקד עבור כל זמן מרווח זמן t1-t2 כדלקמן.
      Equation 3
      הערה: כאן L1 נמצא שורש סה כ אורך התיקון (סכום מצטבר מ- 11.3) t1 ימים לאחר משתילים (ש), L2הוא אורך הבסיס הכולל תיקון t2 ידיים למעלה

14. אנליזה של 15N מחיצות בין דגימות קרקע שורש, לירות, וטיפול

  1. השורשים יבש ב 60 מעלות צלזיוס, שוקל ביומסה, לטחון לעבור דרך מסננת 2 מ מ.
  2. Subsamples יבש של טיפול אדמה ב 60 מעלות צלזיוס.
  3. חבילת שורשים וטיפול לתוך קפסולות בדיל כמו עם נצרי.
    הערה: משקל מדגם אידיאלי לכל כמוסה יש לחשב בנפרד יורה, השורשים של אדמת המבוססים על היחס C/N המשוער של החומר להגיע לסכום היעד של סה כ N לניתוח. קשר עם. המתקן איזוטופ יציב היכן הדגימות יוגשו לקבלת מידע נוסף. עבור ניסוי זה, הוראות הכנה מדגם של מחשבון משקל לדוגמה שסופק על-ידי המתקן איזוטופ UC יציב דייוויס היו שהופעלו18.
    התראה: לקחת טיפול מיוחד כדי לערבב דגימות אחיד לפני האריזה לתוך קפסולות להכין קפסולות מרובים עבור דגימה. אם הדגימות לא מעורבבים באופן שווה, שחזור לכאורה של 15N יכול לחרוג מהסכום הנוכחי במקור.
  4. לנתח את סה כ N, δ15 ותוכן 15N של כל לירות, שורש, טיפול דגימת האדמה.
    הערה: בניסוי זה, דגימות צמח נותחו באמצעות בעירה עם מנתח היסודות PDZ אירופה לימור קלו-GSL לממשק כדי PDZ אירופה 20-20 איזוטופ יחס ספקטרומטר מסה במתקן ה-UC דיוויס יציב איזוטופ (UCD SIF). דגימות. אדמה נותחו עם מנתח היסודות Elementar Vario EL קוביה לממשק כדי PDZ אירופה 20-20 איזוטופ יחס ספקטרומטר מסה-סיף UCD.
  5. חישוב הסכום של 15N המתקבל התווית בצמח לירות. ושורשי דגימות.
    1. ראשית, לחשב את סכום 15N מעל האטמוספירה 15N בכל בריכה, 15P *:
      Equation 4
      איפה 15P הוא התוכן 15N % אטומי של הבריכה של ריבית.
    2. שנית, לחשב את סכום 15N מעל האטמוספירה 15N בהתווית 15L *:
      Equation 5
      15L איפה התוכן 15N % אטומי של המקור N עם תוויות.
    3. שלישית, לחשב את הסכום של N הכולל בכל בריכה, Np:
      Equation 6
      כאשר mp היא המסה של הבריכה (למשל, הכולל לירות יבש או שורש ביומסה) ו %p הוא האחוזים של N של הבריכה.
    4. לבסוף, להשתמש בתוצאות של 14.5.1\u201214.5.3 משוואת Ndff19 כדי לחשב את הסכום של N המתקבל התווית, Nl:
      Equation 7
      הערה: המשוואה Ndff משמש כדי לקבוע את הסכום של N ממקור שכותרתו הוא התאושש על ידי צמחים. ההנחה היא כי אין אפליה איזוטרופי מתרחשת תוך כדי ספיגת N ליד המפעל, הוא בדרך כלל עבור N מקורות מועשר ~1\u201210%19.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

השורשים גדלו מעדיפים נגד האחורי של התיבה, לפי התכנון. סה כ לייחס שורש אורך על הגב של תיבת נע בין 400 ס"מ 1,956, לעומת 93-758 ס מ בחלק הקדמי של התיבה. Pairwise מקדמי מתאם פירסון חושבו בין אורך הבסיס סרוקים אורך הבסיס עקיבה על החלק הקדמי של התיבה, האחורי של התיבה, ושימש סכום מלפנים ומאחור כדי לקבוע אם עקיבה מדויקת משתקפת שורש סה כ אורך (n = 23, כמו הצמח בתיבה אחת נפטר במהלך הניסוי). אורך השורש הכולל שנסרקו באופן משמעותי היה בקורלציה עם אורך הבסיס עקיבה על הגב של תיבת (איור 5A, p = 0.0059), קבלה של תיבת (איור 5B, p = 0.022), ואת סכום של חזרה, קדמית (איור 5C, p = 0.0036)-מעקב בלבד האחורי של תיבת מאומתת ובכך כמו נותן מדד נציג של צמיחה השורש תוך כדי halving את הזמן הנדרש כדי לאתר את השורשים. יצוין, עם זאת, מעקב לוכדת רק 21.6-54.6% אורך הבסיס הכולל. בעוד שורשים לגדול מעדיפים מפני השטח של rhizobox, השורשים הצדדיים בסדר בפרט אולי לא יהיה גלוי לעקיבה. המעקב הוא מתאים היטב כדי השוואות היחסי של אורך הבסיס לאורך זמן, במיוחד מוקדם בהתפתחות, אבל קצירת וסריקת מערכות שורשים עדיפה אם המטרה היא לכמת במדויק אורך הבסיס הכולל.

Figure 5
איור 5: מתאמים בין איתרו וייסרק נתוני אורך הבסיס. A) Traced שורש אורך באופן משמעותי היה בקורלציה עם אורך הבסיס סרוקים כאשר רק חזית התיבה היה במעקב. B) איתור שורשים על הגב של התיבה, איפה רוב השורשים היו גלויים, שיפור הערך2 R של הרגרסיה נגד אורך הבסיס סרוקים על מעקב חזית התיבה; המתאם שוב היה משמעותי. C) השיטה המדויקת ביותר הוא לשורשים מעקב משני הצדדים של התיבה, כפי שמוצג על-ידי הערך הגבוה ביותר של2 R של שלוש שיטות וייסרק המתאם משמעותית עם אורך הבסיס. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

שיעורי צמיחה השורש במשך הזמן היו דומים בין תיבות, כפי שהראה מדרונות עקבית בעת התוויית ביומן הטבעי של השורש סה כ אורך נגד הזמן (איור 6). בעוד השתנות קלה הוא צפוי, שיעורי צמיחה עקבית מציינים כי תנאי הניסוי היו אחיד עבור כל תיבות. מדרונות שונה באופן דרמטי מצביע על הצמחים צמחו בשיעורים שונים, מציע את הצורך לבדוק הבדלים במשתני כגון חום או לחות.

Figure 6
איור 6: שורש שיעורי צמיחה לאורך זמן. מדרונות דומה של שורש אורך לעומת זמן בין rhizoboxes מציינים כי השורשים גדלו במחירים שווים. מדרונות לא אחיד יכול לציין כי תנאי הניסוי משתנות בין rhizoboxes. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

השורשים של כל אחרים תירס התרבו בכתמים המכיל 15התווית על-ידי N כיסוי יבול משקעים. אנובה דו כיוונית עם סוג תיקון גנוטיפ בתור קבוע גורמים (n = 23) גילה כי צפיפות אורך הבסיס היה גבוה בטיפול תיקונים שליטה באמצעות נתוני הבסיס סרוקים (איור 7 א, p = 0.013) כמו גם נתוני הבסיס עקיבה (איור 7 ב, p = 0.005). שהכנסתי לא היתה שונה באופן משמעותי בקרב אחרים בכל מקרה.

Figure 7
איור 7: שורש אורך בצפיפות על ידי גנוטיפ ושורש הנתונים סוג.) שורש סרוקים הנתונים הראו כי כל אחרים (A-F) התרבו במדבקה טיפול (T), לא היו הבדלים genotypic משמעותית. b) שנקטפו ואישר נתוני הבסיס סרוקים אפקט משמעותי של קטניות שאריות, אבל לא גנוטיפ (A-F), על בסיס אורך צפיפות בכתמים. אותיות A-F מייצגות שישה אחרים שונים ומייצגות קווי שגיאה שגיאה סטנדרטית. C: שליטה; T: טיפול. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

קוטר השורש יכול לשמש כדי להפוך מסקנות על פונקציית שורש והמסירה. שורשים בסדר נוטים יותר להיות שורשים לרוחב במהירות לפתח, להתרבות בתגובה נקודות חמות של משאבים, בעוד שורשים גס יותר נוטים יותר להיות שורשים צירית מאריכים, איטי-כדי-להגיב. מערכות שורשים סרוקים נותחו עבור חלקם של שורשים בכל כיתה קוטר: < 0.2 מ מ, 0.2-0.4 מ מ, 0.4-0.8 מ מ, 0.8-1.6 מ מ, ו- > 1.6 מ מ וכל שיעור גודל נבדקה להבדלים genotypic. אחרים עם שורשים בסדר יותר בכתמים טיפול עשוי להצביע על תגובה הפצה יעילה יותר. חד-כיווני אנובה עם גנוטיפ כגורם קבוע (n = 23) גילה כי אחרים לא נבדלים אורך הבסיס בכל כיתה גודל עבור מערכת השורשים הכללי (איור 8a), טיפול במדבקות (איור 8 ב'), או לשלוט טלאים (איור 8 ג). רוב השורשים היו שורשים בסדר (< 0.2 מ מ).

Figure 8
איור 8: הפרופורציות של שורשים בכיתות קוטר שונה על ידי גנוטיפ ומיקום. ) בכל rhizobox (למעט תיקוני טיפול ובקרה), הרוב המכריע של שורשים היו בסדר גמור (< 0.2 מ מ קוטר). אחרים לא נבדלים הפרופורציות של שורשים בכל כיתה קוטר. b) בכתמים טיפול, שורש אורך כל שיעור גודל באופן דומה פחתה עם הגדלת קוטר על פני אחרים. תיקונים ג) שליטה התאפיינו את אותן התבניות. אותיות A-F מייצגות שישה אחרים שונים ומייצגות קווי שגיאה שגיאה סטנדרטית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

תווית N היה גבוה יותר לירות מאשר בסיס דגימות ברחבי אחרים על פי ANOVA דו כיוונית עם סוג הדגימה, גנוטיפ כגורמים קבוע (n = 23, איור 9), מראה כי 77-81% N שנלקחו התיקון הטיפול היה translocated מהשורשים אל יורה במהלך הניסוי. חד-כיווני אנובה (n = 23) הראה כי אלפא15N של שורש, לירות דגימות לא משתנה על ידי גנוטיפ.

Figure 9
איור 9: חנקן המתקבל ובגרונות קטניות רוטס & שוטס -קציר- כל אחרים היו יעילים באותה מידה תופס N מהמדבקה המכיל 15קטניות התווית על-ידי N שאריות. הרוב המכריע של N שנלקחו התיקון היה translocated מהשורשים אל יורה. אותיות A-F מייצגות שישה אחרים שונים ומייצגות קווי שגיאה שגיאה סטנדרטית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Rhizoboxes המתוארות פרוטוקול זה יכול לשמש כדי לענות על השאלות מגוונים במדעי בסיס, rhizosphere, ומצאו מגוונות משתמשת במקום אחר10,20,21,22,23 , 24 , 25. איזה שימוש אוטומטית מערכות22,27, חוקרים אחרים יש בשבי תמונות בצילום מואץ של rhizoboxes21,25,26. גישות אלה עשוי לשמש כמותני של אורך הבסיס ואדריכלות לא אפשרי עם שיטות מעקב. Rhizoboxes גם שימשו להמחיש קהילות חיידקים עם טכניקות כגון פלורסנט בחיי עיר הכלאה (דג), מיקרו-autoradiography (MAR)21,22, או כדי ללכוד במרחב מפורשת תבניות של משאבי מים, מזין עם RGB הדמיה24 או פעילות אנזים חוץ-תאית עם11,zymography30. Rhizoboxes המובאת כאן לצאו מ עיצובים קודמים הם גדולים יחסית, כך שניתן ללמוד מינים עם מערכות שורשים מקיף; יש עיצוב פשוט תא יחיד; להשתמש בחומרים זמינים, זולים; תוכננו במיוחד כדי ללמוד מדבקות המותאמות לשפות אחרות. צדדיות של פרוטוקול rhizobox זה יכול לאפשר להם להיות מותאם אישית עבור מגוון של יישומים אחרים בתוך השורש פלסטיות ואינטראקציות rhizosphere. מזינים אחרים יכול להחליף חנקן במדבקות. משותק מזינים כגון זרחן יהיה כפוף שטיפת לסר, סביר להניח הפיכתם להתאים גישה זו. Rhizoboxes הם גם מתאים היטב כדי השוואות של אדמת rhizosphere של אוניות צובר, ככל אזור שורש השפעה (הגדרה ארוכת שנים rhizosphere15) יכול להיות יותר ברור מאפשרת יותר במחקרים סיר הופרדו בצובר אדמה עם סכין גילוח -הקציר. התאמת שיטה זו ללמוד תהליכים rhizosphere פותח חדש במגוון רחב של דרכים להאריך את הפרוטוקול, כולל חקר אינטראקציות והאביוטיים וביוטי23.

שיטת rhizobox המוצג כאן הוא מתאים היטב כדי מדידה יחסית הבדלים בין אחרים או מינים צמיחה השורש מוקדם בפיתוח, אפיון קשרים בין תכונות שורש, ולחקור את ההשפעות של מאפייני אדמה על צמיחה השורש . שלבים מסוימים של הפרוטוקול הם קריטיים במיוחד כיוון שהם משפיעים על גורמים עם השפעה בלתי מידתית על צמיחה השורש: אדמה לחות, צפיפות בצובר, מדרון. השקיה באופן שווה, שווה לרוחב תיבות חיוני שניתן את השפעת לחות הקרקע על שורש צמיחת דפוסי1,31. טייס הניסויים הראו גאל באמצעות מקרן טפטוף מים הפך להיות מופץ באופן שווה לאחר 24-48 שעות עקב נימיות; אולם, השתנות בין פולטי בהיקף של מים יועברו במהלך תקופה נתונה השקיה היה גבוה מדי להמליץ על שיטה זו באמצעות ההסדר שלנו. יד השקיה לאט ובצורה שווה היה הטוב ביותר של טכניקות נבדק, אך שיטות השקיה אחרות בהחלט אפשרי. השקיית למשקל בעבר מחושב מבטיחה כי כל תיבות לשמור על תכולת הלחות באותו את הקרקע, מניעת השתנות הבסיס לצמיחה בשל לחץ המים32. המשקל של rhizoboxes ריק יכול להשתנות באופן משמעותי, כל כך חישוב משקל אידיאלי עבור קופסאות הפרט חשוב.

כמו לחות, הקמת צפיפות בצובר אפילו המצע ברחבי rhizobox הוא קריטי כדי למדוד את השורש התפשטות תגובות. שורשים לגדול בצורה מעמיקה יותר אדמה פחות צפוף33 , דחיסת עשוי ליצור ערוצים עבור זרימת המים מועדף, נוספים המשפיעים על משאב הפצה ושורש צמיחה דפוסי34. ייבוש, ניפוי קרקע שדה ביסודיות ערבוב חול ואדמה, הזזת את המשפך ואחורה לאט ובצורה שווה לסייע ביצירת מטריצה הומוגנית לצמיחה שורש.

מספר רכיבים בתוך הניסוי הזה יהיה תלוי שאלות המחקר של עניין, כמו גם את אדמת סוג צמח מינים מנוצל בתוך המחקר. היחס של חול אדמה ייתכן שתצטרך לכוונן את קרקעות מרקמים שונים, על מנת להבטיח כי המצע מרטיבה באופן שווה בלי הצליעה. טייס הניסויים הראו כי קרקע 1:1 (v/v): תערובת חול היה מעולה ל- 1:2 או 1:3 תערובות האדמה המשמשים את הניסוי הזה, טיט חולי דק מאוד. ניתן להתאים את הממדים של rhizoboxes ואת משך הניסוי בהתאם שאלת המחקר, תכונות שורש ו מיני צמחים מעניינים. תירס הוא מין צמח גדל יחסית מהר; לכן בחרנו גדול ממדים rhizobox לעומת שאר rhizobox מחקרים20,35 כדי לספק נפח מספיק של קרקע המאפשרת את הניסוי המשך למשך זמן אופטימלי צמחים הופכים יותר ויותר rootbound לאורך זמן. לבסוף, ההתאמה של מודלים סטטיסטיים כדי צמיחה השורש גלויים ולא לעקוב אחריו צריכה להיקבע עבור כל מחקר וכל מינים של עניין, אולי עם טייס הניסויים. צמיחה השורש גלוי עלול בצע עיקול saturating במקום25,המודל הוא ליניארי36ולאחר השיפוע של הרגרסיה של גלוי על השורשים שנקטפו משתנה לפי מין צמח21.

השורשים של הנטייה הטבועה לרדוף אחרי הכבידה ולהימנע אור37, אך יש לנקוט על מנת להבטיח כי gravitropism והימנעות אור לא הטיה נתוני צמיחה השורש. אם החממה ספסלים הם מוטה מעט, לדוגמה, שורשים יגדל במורד המדרון, ולא להגיב על תיקונים התזונתי. באופן דומה, מעברי צבע בהיר בחממה עלול לגרום משמרות ב לירות צמיחה ושורשים לגדול מעדיפים בצד אחד אם rhizoboxes לא נשמרים חשוך לגמרי. המקרים קיפוח אור בפרוטוקול הן אמצעי יעיל להפחתת התקרית שיטות קלות, אבל אחרים כגון עוטף את rhizoboxes בנייר אלומיניום תיתכן גם עבודה.

השיטה rhizobox הרסניות המובאת כאן מקל על המעקב של שורשים בחיי עיר מעל הזמן38 , יכול להיות מיושם על ידי סטודנט לתואר שני עם ידע בסיסי על כלי חשמל. ככזה, הוא מציע יתרונות על פני שיטות האיסוף הרסני כמו shovelomics6, אשר מותאמים ללמוד אדריכלות שורש בוגר אך אינן מאפשרות מדידות חוזרות של מערכת השורשים אותו לאורך זמן, ו MRI או טומוגרפיה הממחושבת טומוגרפיה39,40, אשר מאפשרים הדמיה באיכות גבוהה של אינטראקציות שורש-המצע אבל דורש ציוד יקר. עם זאת, זה אינה ללא מגבלות. בניית rhizoboxes פקוקה, המבטיח כי גורמים כגון לחות, צפיפות בצובר, מדרון אור הם כמו אחיד ככל האפשר, כמפורט לעיל, הוא לא טריוויאלי. בכל זאת, בהינתן מספיק זמן, תשומת לב לפרטים, rhizoboxes לספק תוצאות אמינות, הניתנים לשימוש חוזר עבור ניסויים רבים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgments

המחברים רוצה להכיר הבודקים אנונימי משוב, שלהם, כמו גם ג'יי קהיל, טאן באו להדרכה ראשונית על פיתוח פרוטוקול rhizobox. מימון סופק על ידי הקרן מזון, למחקר חקלאי, המכון הלאומי אותנו המחלקה של חקלאות (USDA) מזון וחקלאות, חקלאי ניסוי תחנת CA הפרוייקט-D-PLS-2332-H, כדי הכללי ועל ידי מחלקת דיוויס UC של הצמח מדעי באמצעות מלגת י. ס

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1.27 cm diameter PVC pipe JM Eagle 530048 305 cm per box, cut into lengths as specified in the protocol
PVC side elbows Lasco 315498 2 per box
PVC 90-degree elbows Charlotte PVC 02300 0600 4 per box
PVC T joints Charlotte PVC 02402 0600 4 per box
Extruded acrylic panes TAP Plastics N/A 2 per box, 0.64 cm thick x 40.5 cm wide x 61 cm long
HDPE spacers (sides) TAP Plastics N/A 2 per box, 0.64 cm thick x 2.5 cm wide x 57 cm long
HDPE spacers (bottom) TAP Plastics N/A 1 per box, 0.64 cm thick x 2.5 cm wide x 40.5 cm long
HDPE spacers (patch) TAP Plastics N/A 2 per box, 0.64 cm thick x 3.8 cm wide x 28 cm long
Polyester batting Fairfield #A-X90 2.5 cm x 40.5 cm strip per box
20-thread screws N/A N/A 3.2 cm long, 0.64 cm diameter
Washers N/A N/A 0.64 cm internal diameter
Hex nuts N/A N/A sized to fit the screws
Light deprivation fabric Americover, Inc. Bold 8WB26.5 1 piece 95 cm wide and 69 cm long per box
Sand Quikrete No. 1113
Field soil N/A N/A
Transparencies for tracing FXN FXNT1319100S One per side of the box to be traced

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Hodge, A. Roots: The Acquisition of Water and Nutrients from the Heterogeneous Soil Environment. Progress in Botany 71. , 307-337 (2010).
  2. Grossman, J. D., Rice, K. J. Evolution of root plasticity responses to variation in soil nutrient distribution and concentration. Evolutionary Applications. 5 (8), 850-857 (2012).
  3. Melino, V. J., Fiene, G., Enju, A., Cai, J., Buchner, P., Heuer, S. Genetic diversity for root plasticity and nitrogen uptake in wheat seedlings. Functional plant biology. , Available from: http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=US201600101375 (2015).
  4. Zhang, H., Forde, B. G. An Arabidopsis MADS box gene that controls nutrient-induced changes in root architecture. Science. 279 (5349), 407-409 (1998).
  5. Hodge, A., Stewart, J., Robinson, D., Griffiths, B. S., Fitter, A. H. Competition between roots and soil micro-organisms for nutrients from nitrogen-rich patches of varying complexity. Journal of Ecology. 88 (1), 150-164 (2000).
  6. Trachsel, S., Kaeppler, S. M., Brown, K. M., Lynch, J. P. Shovelomics: high throughput phenotyping of maize (Zea mays L.) root architecture in the field. Plant and Soil. 341 (1-2), 75-87 (2011).
  7. Rogers, E. D., Monaenkova, D., Mijar, M., Nori, A., Goldman, D. I., Benfey, P. N. X-ray computed tomography reveals the response of root system architecture to soil texture. Plant Physiology. , (2016).
  8. Groleau-Renaud, V., Plantureux, S., Guckert, A. Effect of mechanical constraint on nodal and seminal root system of maize plants. Comptes Rendus De L Academie Des Sciences Serie Iii-Sciences De La Vie-Life Sciences. 321 (1), 63-71 (1998).
  9. Lin, Y., Allen, H. E., Di Toro, D. M. Barley root hair growth and morphology in soil, sand, and water solution media and relationship with nickel toxicity. Environmental Toxicology and Chemistry. 35 (8), 2125-2133 (2016).
  10. Wenzel, W. W., Wieshammer, G., Fitz, W. J., Puschenreiter, M. Novel rhizobox design to assess rhizosphere characteristics at high spatial resolution. Plant and Soil. 237 (1), 37-45 (2001).
  11. Spohn, M., Carminati, A., Kuzyakov, Y. Soil zymography - A novel in situ method for mapping distribution of enzyme activity in soil. Soil Biology and Biochemistry. 58, 275-280 (2013).
  12. Vollsnes, A. V., Futsaether, C. M., Bengough, A. G. Quantifying rhizosphere particle movement around mutant maize roots using time-lapse imaging and particle image velocimetry. European Journal of Soil Science. 61 (6), 926-939 (2010).
  13. Hewitt, E. J. Sand and Water Culture Methods Used in the Study of Plant Nutrition. , Commonwealth Bureau. London. (1966).
  14. Choudhary, M. I., Shalaby, A. A., Al-Omran, A. M. Water holding capacity and evaporation of calcareous soils as affected by four synthetic polymers. Communications in Soil Science and Plant Analysis. 26 (13-14), 2205-2215 (1995).
  15. Bakker, P. A. H. M., Berendsen, R. L., Doornbos, R. F., Wintermans, P. C. A., Pieterse, C. M. J. The rhizosphere revisited: root microbiomics. Frontiers in Plant Science. 4, 2013 (2013).
  16. McNear, D. H. Jr The Rhizosphere - Roots, Soil, and Everything In Between. Nature Education Knowledge. 4 (3), 1 (2013).
  17. Ortas, I. Determination of the extent of rhizosphere soil. Communications in Soil Science and Plant Analysis. 28 (19-20), 1767-1776 (1997).
  18. UC Davis Stable Isotope Facility. Carbon (13C) and Nitrogen (15N) Sample Preparation. , Available from: https://stableisotopefacility.ucdavis.edu/13cand15nsamplepreparation.html (2018).
  19. Barraclough, D. 15N isotope dilution techniques to study soil nitrogen transformations and plant uptake. Fertilizer research. 42 (1-3), 185-192 (1995).
  20. Belter, P. R., Cahill, J. F. Disentangling root system responses to neighbours: identification of novel root behavioural strategies. AoB PLANTS. 7, (2015).
  21. Nagel, K. A., et al. GROWSCREEN-Rhizo is a novel phenotyping robot enabling simultaneous measurements of root and shoot growth for plants grown in soil-filled rhizotrons. Functional Plant Biology. 39 (11), 891-904 (2012).
  22. Adu, M. O., Yawson, D. O., Bennett, M. J., Broadley, M. R., Dupuy, L. X., White, P. J. A scanner-based rhizobox system enabling the quantification of root system development and response of Brassica rapa seedlings to external P availability. Plant Root. 11, 16-32 (2017).
  23. Neumann, G., George, T. S., Plassard, C. Strategies and methods for studying the rhizosphere-the plant science toolbox. Plant and Soil. 321 (1-2), 431-456 (2009).
  24. Bodner, G., Alsalem, M., Nakhforoosh, A., Arnold, T., Leitner, D. RGB and Spectral Root Imaging for Plant Phenotyping and Physiological Research: Experimental Setup and Imaging Protocols. JoVE (Journal of Visualized Experiments). (126), e56251-e56251 (2017).
  25. Kuchenbuch, R. O., Ingram, K. T. Image analysis for non-destructive and non-invasive quantification of root growth and soil water content in rhizotrons. Journal of Plant Nutrition and Soil Science. 165 (5), 573-581 (2002).
  26. Dresbøll, D. B., Thorup-Kristensen, K., McKenzie, B. M., Dupuy, L. X., Bengough, A. G. Timelapse scanning reveals spatial variation in tomato (Solanum lycopersicum L.) root elongation rates during partial waterlogging. Plant and Soil. 369 (1-2), 467-477 (2013).
  27. Wu, J., et al. RhizoChamber-Monitor: a robotic platform and software enabling characterization of root growth. Plant Methods. 14 (1), 44 (2018).
  28. Rogers, S. W., Moorman, T. B., Ong, S. K. Fluorescent In Situ Hybridization and Micro-autoradiography Applied to Ecophysiology in Soil. Soil Science Society of America Journal. 71 (2), 620-631 (2007).
  29. Eickhorst, T., Tippkötter, R. Detection of microorganisms in undisturbed soil by combining fluorescence in situ hybridization (FISH) and micropedological methods. Soil Biology and Biochemistry. 40 (6), 1284-1293 (2008).
  30. Spohn, M., Kuzyakov, Y. Distribution of microbial- and root-derived phosphatase activities in the rhizosphere depending on P availability and C allocation - Coupling soil zymography with 14C imaging. Soil Biology and Biochemistry. 67, 106-113 (2013).
  31. Lv, G., Kang, Y., Li, L., Wan, S. Effect of irrigation methods on root development and profile soil water uptake in winter wheat. Irrigation Science. 28 (5), 387-398 (2010).
  32. Asseng, S., Ritchie, J. T., Smucker, A. J. M., Robertson, M. J. Root growth and water uptake during water deficit and recovering in wheat. Plant and Soil. 201 (2), 265-273 (1998).
  33. Hernandez-Ramirez, G., et al. Root Responses to Alterations in Macroporosity and Penetrability in a Silt Loam Soil. Soil Science Society of America Journal. 78 (4), 1392-1403 (2014).
  34. Zhang, Y. L., Wang, Y. S. Soil enzyme activities with greenhouse subsurface irrigation. Pedosphere. 16 (4), 512-518 (2006).
  35. Robinson, D., Hodge, A., Griffiths, B. S., Fitter, A. H. Plant root proliferation in nitrogen-rich patches confers competitive advantage. Proceedings of the Royal Society of London B: Biological Sciences. 266 (1418), 431-435 (1999).
  36. Lobet, G., Draye, X. Novel scanning procedure enabling the vectorization of entire rhizotron-grown root systems. Plant Methods. 9, 1 (2013).
  37. Swarup, R., Wells, D. M., Bennett, M. J. Root Gravitropism. Plant Roots: The Hidden Half. , (2013).
  38. Smit, A. L., Bengough, A. G., Engels, C., van Noordwijk, M., Pellerin, S., van de Geijn, S. C. Root Methods: A Handbook. , Springer Science & Business Media. (2000).
  39. van Dusschoten, D., et al. Quantitative 3D Analysis of Plant Roots Growing in Soil Using Magnetic Resonance Imaging1[OPEN]. Plant Physiology. 170 (3), 1176-1188 (2016).
  40. Metzner, R., et al. Direct comparison of MRI and X-ray CT technologies for 3D imaging of root systems in soil: potential and challenges for root trait quantification. Plant Methods. 11, 17 (2015).

Tags

מדעי הסביבה נושא 140 איזוטופ תיוג חנקן ספיגת התזונתי פלסטיות התפשטות rhizobox rhizosphere שורש
פרוטוקול Rhizobox ממוטבת כדי להמחיש צמיחה השורש והיענות לצרכי מזינים לשפות אחרות
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Schmidt, J. E., Lowry, C., Gaudin,More

Schmidt, J. E., Lowry, C., Gaudin, A. C. M. An Optimized Rhizobox Protocol to Visualize Root Growth and Responsiveness to Localized Nutrients. J. Vis. Exp. (140), e58674, doi:10.3791/58674 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter