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Neuroscience

In Vivo Ciblé d’Expression des protéines Optogenetic, soie/AAV Films

Published: February 26, 2019 doi: 10.3791/58728

Summary

Nous présentons ici une méthode pour délivrer des vecteurs d’expression virale dans le cerveau en utilisant des films de la fibroïne de soie. Cette méthode permet l’administration ciblée des vecteurs d’expression à l’aide de fibres optiques revêtues de soie/AAV, des fibres optiques effilés et windows crâniennes.

Abstract

La quête pour comprendre comment neurales circuits informations de processus afin de sortie comportementale en voiture a été grandement favorisées par récemment mis au point des méthodes optiques permettant la manipulation et le contrôle de l’activité des neurones in vivo. Ces types d’expériences s’appuient sur deux éléments principaux : 1) les implants qui fournissent l’accès optique vers le cerveau et les protéines 2) sensible à la lumière qui changent l’excitabilité neuronale ou fournissent une lecture de l’activité neuronale. Il y a plusieurs façons d’exprimer les protéines sensibles à la lumière, mais injection stéréotaxique de vecteurs viraux est actuellement l’approche plus souple parce que l’expression peut être contrôlée avec précision temporelle, anatomique et génétique. Malgré la grande utilité de vecteurs viraux, livrant le virus sur le site de poses d’implants optique relever de nombreux défis. Des injections de virus stéréotaxiques réclament des chirurgies qui augmentent le temps chirurgical, augmentent le coût des études et posent un risque pour la santé de l’animal. Les tissus avoisinants peuvent être physiquement endommagés par la seringue d’injection et immunogène inflammation provoquée par la brusque remise d’un bolus de haut-titre virus. Injections d’implants optiques d’alignement sont particulièrement difficile lorsque vous ciblez des petites régions profondément dans le cerveau. Pour surmonter ces défis, nous décrire un procédé de revêtement plusieurs types d’implants optiques avec films composés de soie fibroïne et adéno-associés des vecteurs viraux (AAV). Fibroïne, un polymère dérivé du cocon du Bombyx mori, peut encapsuler et protéger des biomolécules et peuvent être transformés en formes allant des films hydrosolubles à la céramique. Lorsqu’elles sont implantées dans le cerveau, soie/AAV revêtements libèrent des virus à l’interface entre les éléments d’optique et cerveau environnant, conduite expression précisément là où elle est nécessaire. Cette méthode est facilement mis en œuvre et promet de faciliter grandement les études in vivo de la fonction des circuits neuronaux.

Introduction

La dernière décennie a produit une explosion d’ingénierie protéines sensibles à la lumière pour la surveillance et de manipuler l’activité neurale1. Virus offrent une flexibilité inégalée pour exprimer ces outils d’optogenetic dans le cerveau. Par rapport aux animaux transgéniques, les virus sont beaucoup plus faciles à produire, transporter et stocker, permettant une mise en œuvre rapide des plus récents outils d’optogenetic. Expression peut être ciblée génétiquement à des populations neuronales distinctes et virus conçus pour le transport rétrograde peuvent même être utilisés pour cibler l’expression fondée sur la connectivité neuronale2.

Les virus sont généralement introduits avec injections stéréotaxiques, qui peuvent être long et difficile. Visant précisément les petites régions peut être difficile, alors que l’expression de conduite sur les grands domaines souvent nécessite plusieurs injections. En outre, lorsqu’un dispositif optique est ensuite implanté dans le cerveau de livrer léger en vivo, l’implant doit être parfaitement aligné avec l’injection virale. Nous décrivons ici une méthode facilement mises en œuvre pour livrer des vecteurs viraux dans les tissus autour d’un implant à l’aide de soie fibroïne films3. Soie fibroïne est disponible dans le commerce, bien tolérée par les tissus nerveux et peut être utilisé pour produire des matériaux aux propriétés variées. Films en soie peuvent être appliquées aux implants à l’aide d’équipement de laboratoire commun comme les pipettes de micro-injection ou pipettes à la main. Films de soie/AAV éliminent le besoin pour les deux procédures chirurgicales et faire en sorte que l’expression induite par le virus est correctement alignée à l’implant optique. L’expression résultante est contraint à l’extrémité des fibres et des résultats moins expression indésirables le long de la piste de fibre que les injections stéréotaxiques.

En plus de produire une expression ciblée à l’extrémité des petites fibres, soie/AAV films peuvent être utilisés pour piloter généralisée (> 3 mm de diamètre) expression corticale sous fenêtres crâniennes. De l’imagerie in vivo 2 photons de sondes fluorescentes activité est devenu un outil indispensable pour l’évaluation du rôle de l’activité neuronale dans la conduite de traitement sensoriel et cognitif. En revanche, pour conduire uniforme expression sur les grandes aires corticales, expérimentateurs souvent effectuer multi-injections. Ces injections peuvent être extrêmement longues et peuvent conduire à l’expression incompatible à travers le champ de vision. En revanche, soie/AAV-enduit crâniennes windows sont extrêmement faciles à fabriquer, de réduire considérablement le temps nécessaire pour les interventions chirurgicales et conduire plus remarquable expression des centaines de micromètres au-dessous de la surface corticale.

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Protocol

Toutes les expériences impliquant des animaux ont été réalisés conformément aux protocoles approuvés par le Comité permanent Harvard animalier directives suivantes décrites dans le NIH nous Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire. Les souris C57BL/6 adultes des deux sexes (6 à 15 semaines d’âge) ont été utilisés pour toutes les expériences.

1. obtenir la fibroïne de soie aqueux

  1. Préparer ou acheter aqueuse fibroïne de soie (5 à 7,5 % p/v).

2. mélange soie aqueuse avec des vecteurs d’AAV Expression

  1. Choisir un vecteur d’expression AAV pour piloter la protéine optogenetic ou indicateur fluorescent de choix.
    Remarque : Pour réduire le volume de soie/AAV qui doivent être appliquée aux implants pendant que vous conduisez toujours expression robuste, stock-titre AAV (stock titres généralement obtenus à partir des carottes de vecteur sont autour de 10 ~13 CG/mL) est recommandé.
  2. Immédiatement avant le revêtement des implants, décongeler une partie aliquote d’AAV et se combinent avec la fibroïne de soie aqueuse 5 à 7,5 % (ce mélange va être dénommé soie/AAV). Dans un tube de PCR 200 µL, mélange aqueux fibroïne et AAV dans un rapport 1:1 (usage windows crânienne 1:4) immédiatement avant l’application. Pipetez doucement la solution à plusieurs fois pour bien mélanger la fibroïne et AAV.
  3. Garder le mélange soie/AAV sur la glace avant de les utiliser.

3. préparer le matériel pour la Fabrication et le stockage des dispositifs soie/AAV-enduit

  1. Se procurer du matériel pour revêtement des fibres optiques et lentilles de Gradient-indice (GRIN) (Figures 1, 2).
    1. Construire un support de bague stable. Pour tenir les bagues en céramique, percer des trous de 1,25 mm dans un bloc de ¼" acrylique de feuille. Touchez les trous pour insérer les vis de réglage sur le côté pour maintenir les viroles en place.
      Remarque : Une pince peut être utilisé à cet effet.
    2. Positionner un manipulateur avec précision submillimétrique pour déplacer les fibres optiques (appareil stéréotaxique ou autre micromanipulateur de précision).
    3. Monter un support stable pour positionner la microinjector.
    4. Un stéréoscope permet de visualiser les fibres optiques et gouttelettes de soie.
    5. Placer une source lumineuse pour éclairer les fibres optiques.
  2. Préparer le matériel pour le revêtement de fenêtres crâniennes (Figure 3).
    1. Choisissez n’importe quel multipipette P10.
    2. Obtenir un récipient avec couvercle.
      Remarque : N’importe quel récipient avec un fond de silicone est suggéré — le fond mou facilite soulevant windows crâniennes.
  3. Préparer le matériel pour stocker les implants finis (Figure 4).
    1. Obtenir une petite chambre à vide (1-5 L).
    2. Assurez-vous qu’il n’y a l’espace pour stocker les implants dans un réfrigérateur à 4 ° C.

4. appliquer le Film de soie/AAV aux dispositifs

  1. Revêtement de fibres optiques à expression focal en voiture à l’extrémité de la fibre
    1. Préparer les implants fibre chronique comme décrit précédemment4.
    2. Avant utilisation, rincer les implants avec de l’éthanol, puis avec de l’eau ultrapure pour s’assurer que les fibres optiques sont propres.
      Remarque : Films de la soie adhèrent plus fiable pour nettoyer les surfaces vitrées.
    3. Préparer un dispositif pour tenir les bagues de fibre. Pour viroles de typique de 1,25 mm de diamètre, utiliser un bloc acrylique transparent, avec ~1.3 de ¼ po mm trous et tapé vis entrant du côté aux implants trou fermement en place (Figure 1 a).
    4. Monter le support de bague dans un appareil stéréotaxique (ou n’importe quelle solution de manipulation avec une précision de Planck) équipé d’un microinjector. Placez le support de bague au-dessus de la microinjector et appliquer le mélange de soie/AAV par-dessous.
      Remarque : C’est parce que résultaient de demandes de grands volumes d’en haut en soie/AAV qui n’était pas limité à la pointe. Toutefois, la demande de nombreux petits volumes séquentielles par dessus ou en dessous peut produire des dépôts AAV/soie qui se limitent à la pointe (bien que nous préférons à appliquer par le bas).
    5. Tirez une pipette d’injection intracrânienne standard de verre borosilicaté capillaire.
      1. Pour le rendre plus facile à
      2. Pour produire un embout d’injection avec un bout plat propre du diamètre désiré, prenez une pipette dans chaque main et utilisez la partie la plus épaisse du cône sur une pipette pour marquer des autre la pipette à l’emplacement du saut souhaité.
      3. Frottez doucement en arrière dans un mouvement de sciage (la méthode de notation de verre sur verre).
      4. Après avoir marqué la pipette, appliquez une légère pression à l’extrémité de la pipette a marqué avec le corps de l’autre pipette pour réaliser une rupture nette.
    6. Positionner un stéréoscope pour donner une vue dégagée sur les visages de la fibre optique.
      Remarque : Le grossissement devrait suffire positionner avec précision la pipette d’injection au-dessus du visage de fibres optiques.
    7. Insérer les implants de fibre dans porte-le cerveau-côté de la fibre optique vers le bas.
    8. Charger la pipette d’injection avec solution de soie/AAV, comme pour toute injection intracrânienne standard5. Charger le montant requis pour le nombre d’implants réalisés, majoré de ~ 30 % supplémentaire pour tenir compte des pertes dues à l’obstruction de pipettes. Par exemple, si 10 implants sont faits, puis chargez avec 100 nL dépôts et retirer ~1.3 µL.
      Remarque : Soie/AAV peuvent sécher à l’embout de la pipette entre les éjections, qui peuvent boucher la pipette. Pipettes de grand diamètre (50-100 µm) sont moins susceptibles de boucher. Sabots peuvent être délogés par un brossage doux vers le bas de l’embout de la pipette avec un tampon de chiffon ou de l’alcool de papier mouillé.
    9. Manœuvrer la pipette d’injection jusqu'à ce qu’il est touchant ou en touchant presque au centre de la surface de la fibre optique. 10-20 nL de soie/AAV solution d’éjection. Retirer la pipette.
      Remarque : Le taux de livraison n’est pas critique, mais les taux typiques sont de 5 à 20 nL/s.
    10. Observer le bolus de soie/AAV sur une surface plane qui apparaît comme un dôme liquid qui sèche un film plat en ~ 1 min (Figure 1 b).
    11. Répétez les étapes 4.1.9-4.1.10 jusqu'à ce que la quantité désirée de soie/AAV est déposé (un total de 20 à 200 nL pour la plupart des applications). Lors de la préparation des implants multiples, faire un implant de soie/AAV et puis passer à enrober d’autres implants avant de retourner à la première.
    12. Laisser 1 h pour le séchage avant de passer les implants.
    13. Sous vide nuit dessécher à ~ 125 Torr (-25 à. Hg), 4 ° C. Cela, en plaçant le titulaire de la virole ensemble dans une chambre à vide.
    14. Évaluer la forme et la position du film soie sous un microscope de haute puissance qui en résulte. Veiller à ce que les films sont confinées à l’extrémité de la surface de la fibre optique, être relativement mince (> 100 µm) et symétrique (Figure 1).
      Remarque : Des films de soie/AAV grands ou asymétriques peuvent déloger de la fibre pendant l’implantation (Figure 1). La cause la plus fréquente des problèmes découle de l’application du seul gros volumes plutôt que l’application séquentielle de plusieurs petits volumes.
  2. Revêtement coniques de fibres optiques à l’expression de la promenade le long de l’axe de la fibre
    1. Obtenir des implants coniques de fibre optique et effectuer les étapes 4.1.2-4.1.8, sauf que la fibre conique est placée latéralement tel qu’il est perpendiculaire à l’injecteur (Figure 2 a). Position de l’injecteur au-dessus de la fibre effilée.
      Remarque : Chargement des gouttelettes de liquide sur la pose de fibres coniques ajouté défis, parce que la tension superficielle tend à provoquer des gouttelettes sauter sur la pipette d’injection ou de migrer vers le haut de la fibre effilée. Les pipettes d’injection plus petites (30 à 50 µm de diamètre) aident à surmonter ce problème, mais augmentent le risque que la pipette d’injection s’obstrueront. En raison de la tension superficielle, gouttelettes ont tendance à adhérer à la zone de plus grande surface, donc l’injection optimale pipetter taille est dépend de la taille de la fibre effilée et sa tolérance pour sabot occasionnel.
    2. Placez la pipette d’injection de soie/AAV contre les parois de la fibre optique au début du cône. S’assurer que la pipette d’injection est en contact avec la fibre optique.
    3. Éjectez 20 nL de soie/AAV pour démarrer le processus de revêtement. S’assurer que la goutte adhère à la fibre optique et qu’il reste à l’interface de la fibre/pipette. Mèche délicatement la goutte vers la fin de l’extrémité de la fibre comme de la soie/AAV dries (~ 45 s). Tenir la pipette d’injection au contact de la gouttelette de séchage pour éviter l’obstruction de l’embout de la pipette.
      Remarque : Chaque dépôt doit enrober environ 400 µm de la fibre effilée (Figure 2 b).
    4. Lorsque le premier bolus est presque complètement sec, éjecter un autre 20 nL et continuer la mèche de la goutte le long de la dépouille.
      Remarque : La soie liquide adhérera à la soie séchée, ancrage à une extrémité de la goutte comme la pipette se déplace le long du cône.
    5. Répétez l’étape 4.2.4 par éjection de petites quantités de soie/AAV ainsi qu’en tirant progressivement la solution sur le côté du cône. 5-6 éjections sont suffisantes pour traverser la surface d’un cône de 2,5 mm.
    6. Pour conduire plus expression uniforme autour de tous les côtés de la fibre, faire pivoter la fibre et répétez les étapes 4.2.2-4.2.5 jusqu'à ce que la quantité désirée de soie/AAV a été déposée.
    7. Si un accrochage chapelet de soie/AAV séchée s’étend au-delà de l’extrémité de la fibre, découpez soigneusement le fil avec des ciseaux, ou utilisez la pipette d’éjection pour plier le brin arrière et il adhère à la conicité de la fibre.
    8. Laisser 1 h pour le séchage avant de passer les implants.
    9. Sous vide dessécher pendant la nuit à 4 ° C. Le titulaire de la virole entière peut être placé dans une chambre à vide.
    10. Évaluer la forme et la position du film soie sous un microscope de haute puissance qui en résulte.
      Note : Les Films ne sont pas nécessairement entièrement uniformes mais n’aient pas de bosses qui s’étendent à plus de 100 µm au-delà de la surface de la fibre afin de minimiser les dommages aux tissus avoisinants pendant l’implantation (Figure 3). Pour minimiser la taille du film, il est essentiel que chaque gouttelette est parfaitement sec avant les dépôts ultérieurs sont effectués.
  3. Lentille GRIN revêtement implants
    1. Obtenir le sourire lentilles6,7 et répétez les étapes 4.1.2-4.1.8. L’injecteur peut être monté dessus.
    2. Déposer soie/AAV dans une éjection unique (1 µL d’une lentille de diamètre 1,0 mm).
      Remarque : Ceci permettra d’obtenir un dôme de liquide qui adhère à la surface de la lentille et sèche pour produire un film uniform (100 à 200 µm d’épaisseur). Cependant, les dans le cas où une seule éjection grande sèche inégalement et réalise un film qui est plus épais près des bords de la lentille GRIN, essayez déposer plusieurs plus petites gouttelettes (100-200 nL) dans le centre de la surface de la lentille (permettant à chaque goutte de sécher avant le dépôt de le prochain) pour s’assurer que le film sera conduirait expression au centre du champ de vision.
    3. Laisser 1 h pour le séchage avant de passer les implants.
    4. Évaluer la forme et la position du film soie résultant sous microscope haute puissance pour s’assurer que le film couvre la surface de la lentille.
  4. Revêtement de vitraux crânienne
    1. Préparer le verre windows crâniennes par deux adhérentes de diamètre 3 mm rond lamelles couvre-objet (épaisseur n ° 1) à une fenêtre de diamètre 5 mm avec adhésif optique (pour plus de détails, voir Goldey Al 20148).
    2. Mélange de soie : virus dans une proportion de 1:4 pour réduire le montant total de soie dans le film. Des quantités excessives de la soie ne se dissolvent pas sous windows crâniennes après l’implantation. Expériences de titrage peuvent être nécessaire pour déterminer le ratio et le volume qui donne le profil d’expression désirée.
    3. Main pipette une goutte de 5 µL sur la surface de la lamelle de 3 mm (parement de cerveau). La goutte doit étaler pour couvrir la surface entière (Figure 3).
    4. Laisser 2-3 h de séchage avant de passer à windows.

5. stockage des implants soie/AAV-enduit

  1. Stocker soie/AAV-enduit de fibres optiques dans un dessiccateur à vide refroidi (~ 125 Torr, 4 ° C) avant utilisation (Figure 4 a).
  2. Ne stockez pas de fenêtres crâniennes et sourire lentilles sous vide, comme grands films soie stockés sous vide ne parviennent pas à se dissoudre complètement après l’implantation. L’implant de windows crâniennes et sourire lentilles immédiatement après le séchage, ou dans une journée de fabrication si stocké à la pression atmosphérique et de 4 ° C.

6. l’implantation des dispositifs

  1. Préparer les animaux pour la chirurgie implantaire comme décrit précédemment4.
    1. En bref, offrir une souris avec une injection intrapéritonéale de kétamine/xylazine (100/10 mg/kg) et vérifier la profondeur de l’anesthésie à l’aide d’un orteil-pinch doux. Se raser le crâne dans la zone de l’implant et nettoyer le cuir chevelu avec l’iode et l’alcool.
    2. Monter les animaux dans un appareil stéréotaxique et de compléter l’anesthésie à l’aide d’un mélange d’oxygène et isoflurane (1-2 %). Faire une incision dans le cuir chevelu au-dessus de la zone d’intérêt, puis effectuez une craniotomie assez grande pour accueillir l’implant.
  2. Fibres optiques9 et microendoscope de lentilles10 selon les procédures précédemment publiées de l’implant. Les implants de poignée avec soin, comme le dépôt de la soie/AAV peut faire tomber une craniotomie imparfait ou l’implant attraper sur le bord du crâne. Abaissez l’implant dans le cerveau lentement (~ 2 mm/min).
  3. Des implants crâniens windows comme décrivent précédemment8. Ne pas toucher le côté enduit de la fenêtre et éviter de rincer la fenêtre avec le fluide si vous effectuez le gavage, comme cela peut enlever le virus. Pour atteindre l’expression maximale, effectuer un durotomy.

7. évaluation de l’Expression et de dépannage

  1. Afin d’évaluer l’expression de protéines exprimées virally, laisser environ 2-3 semaines pour le virus conduire l’expression, puis effectuer perfusion intracardial avec 4 % de paraformaldéhyde en phosphate tamponnée solution saline11 et processus les tissus cérébraux pour fluorescent 12de microscopie.
  2. Évaluer l’expression en utilisant la microscopie fluorescente pour image le modèle d’expression des protéines de fluorophore-le tag optogenetic.
  3. Si le niveau d’expression est insuffisant, augmenter la quantité de virus dans les revêtements en soit en augmentant le volume total de l’enduit soie/AAV, ou de préférence en utilisant un virus de titre plus élevé.

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Representative Results

Pour évaluer le succès des films de soie/AAV dans l’expression de la conduite, nous perfusés animaux 2-3 semaines après l’implantation et préparé des coupes de cerveau de la région d’intérêt. Images de fluorescence des protéines fluorophore-le tag optogenetic (ChR2-YFP) a fourni une mesure de l’étendue de l’expression (Figure 1). Fibres optiques typiques (230 µm de diamètre) peut facilement accueillir 200 nL de soie/AAV. Avec la pratique, les expérimentateurs peuvent atteindre expression hautement fiable autour de la pointe des fibres implantés (Figure 5).

Afin d’évaluer l’expression pilotée par windows crâniennes soie/AAV-enduit, commencer l’imagerie débutant 7-10 jours après l’implantation. Nous avons utilisé deux photons d’imagerie pour la visualisation, mais également de servir les autres méthodes comme la fluorescence imaging avec un CCD. Deux problèmes possibles avec enduit fenêtres crâniennes sont expression insuffisante et films de soie qui ne parviennent pas à dissoudre et masquer le champ de vision. Pour augmenter l’expression, nous vous conseillons d’effectuer un durectomy avant l’implantation de la fenêtre, et/ou en augmentant la quantité de virus dans le film. Nous avons atteint la meilleure expression à l’aide d’un mélange de 1:4 de soie et stock-titre AAV, respectivement. Alors qu’il s’agit d’un nombre sensiblement plus grand de particules virales que sont généralement utilisés dans les injections stéréotaxiques, le temps chirurgical une diminution contredit le coût marginal supplémentaire du virus. Dans le même temps, si les films soie ne parviennent pas à dissoudre sous la fenêtre, réduire encore la quantité de soie utilisé pour recouvrir la fenêtre. Le montant total de la soie dans windows enduits est 10 à 100 fois plus que sur les implants de fibre, et le film est moins intégrée dans le tissu et ainsi ne pas exposer aux mêmes niveaux d’activité protéolytique que peut dissoudre soie films13. Toutefois, la présence de soie est essentielle à la réalisation d’expression sous windows3, probablement parce qu’un film fait de virus seul est rongée par le liquide interstitiel pendant la chirurgie.

Figure 1
Figure 1 : application de soie/AAV films à fibres optiques. (A) chronique fibre implants sont placés fibre incliné dans un support (en médaillon) monté sur un traducteur XYZ. Une microinjector fixe ci-dessous les fibres dispense soie/AAV sur les conseils de fibre. Un stéréoscope permet la visualisation du processus. (B) appliquer soie/AAV pour des extrémités de la fibre par petites quantités (10-20 nL). Après l’éjection d’un bolus, rétracter la pipette et laisser ~ 60 s pour la goutte sécher un film plat. Répétez le processus jusqu'à ce que le volume requis a été appliqué à l’extrémité de la fibre. (C) examiner les revêtements soie. Les revêtements optimales doivent être centrés sur l’extrémité de la fibre (à gauche), tandis que les mauvais revêtements s’étendent vers l’extérieur de la surface de fibre ce qui les rend plus sujettes à déloger de la fibre (à droite). (D) les fibres représentant recouvert 200 nL de soie/AAV et la résultante pilotée par l’AAV ChR2-YFP expression 2 semaines après l’implantation. Le revêtement de soie/AAV compact à gauche conduit à expression robuste, tandis que le revêtement sur le droit dépassait devant le visage de la fibre et n’entraîné presque aucune expression, probablement parce que la soie/AAV n’adhère pas à la fibre optique au cours de l’implantation. Échelle de barres de 0,2 mm (fibres) et 1,0 mm (tranches de cerveau). S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 2
Figure 2 : configuration pour revêtement fibre conique implants. (A) le microinjector est monté au-dessus du titulaire de la fibre effilée et fibres coniques sont placées perpendiculairement à la seringue d’éjection. (B) débutent à la plus large point (en médaillon) et petits volumes d’éjection tout en déplaçant la seringue d’éjection vers la pointe du cône. Il en résulte un revêtement continu sur toute la longueur du cône. (C) représentant fibres coniques recouverts de soie mélangée avec Fast Green pour aider à la visualisation. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 3
Figure 3 : revêtement crâniennes windows. Soie/AAV peut être appliquées windows crâniennes à l’aide d’une pipette de main. Une fenêtre de diamètre standard 3 mm peut être revêtue d’une goutte de 5 µL, qui sèchera lentement à un film plat. En médaillon : Expression de GCaMP6f résultant de soie/AAV-enduit crâniennes windows implantés avec et sans durectomies. Ce chiffre a été adapté de Jackman et al. (2018) 3. s’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 4
Figure 4 : stockage de soie/AAV enduit implants. (A) pour enlever l’humidité résiduelle et de préserver l’efficacité virale, les implants doivent être conservés sous vide à 4 ° C jusqu'à utilisation. Les implants stockés de cette façon demeurent viables pendant au moins 7 jours. (B) l’Expression résultant 4 fibres revêtues de soie/AAV implantés après 7 jours de stockage. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 5
Figure 5 : fibres optiques de soie/AAV-GFP enduit sûrement conduire expression. Les implants images fluorescentes de tranches de 24 striatale consécutives. Chaque implant a été recouvert de 100 à 400 nL de 1:1 soie/AAV-GFP. Cette cohorte d’implants indique la capacité de la soie à restreindre l’expression sur le site de l’implant (dans ce cas, le striatum dorsal). Fluorescence GFP est indiquée en vert ; La coloration DAPI est affichée en bleu. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

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Discussion

L’utilisation de la soie/AAV pour cibler l’expression des protéines optogentic surmonte les limites des approches qui sont actuellement en cours d’utilisation. Bien que de nombreuses études utilisent avec succès les injections AAV pour exprimer les protéines optogenetic, il est difficile d’aligner l’expression jusqu'à l’extrémité des fibres optiques, aux régions autour de la longueur des fibres coniques et à la région regarde un d’une lentille de sourire. À cause de défaut d’alignement entre l’expression d’optogenetic et de composants optiques, les injections stéréotaxiques peuvent être peu fiables, et beaucoup d’expériences ne parviennent pas. La soie/AAV étiquetage méthode que nous décrivons ici résout ce problème. Il simplifie également la procédure en éliminant une deuxième étape chirurgicale et dans certains cas, éliminant le besoin d’une deuxième chirurgie. Il peut aussi être difficile à utiliser des virus pour obtenir une expression très répandue sous les fenêtres crâniennes et expérimentateur effectuent généralement longs chirurgies pour injecter le virus à plusieurs endroits. La possibilité d’obtenir une expression très répandue sur grandes régions corticales par simplement enduit crânienne windows avec soie/AAV est une simplification qui élimine la nécessité pour les nombreuses injections envahissantes.

Un autre avantage potentiel de la méthode de soie/AAV est qu’il pourrait induire moins l’inflammation dans les tissus neurones par rapport aux injections virales. Injection de haut-titre AAV dans le cerveau peut provoquer des réactions inflammatoires tels qu’astrocytose réactives qui est susceptibles de modifier de14,propriétés cellulaires et circuit15 (bien que ces complications potentielles sont habituellement ignorés). Films en soie induisent peu immunogène réponse sur leur propre13 et soie/AAV films devraient libérer des virus au cours de plusieurs heures ou jours16, qui risque de réduire la charge virale dans le tissu environnant et réponses immunogènes. Avec les approches traditionnelles où l’implantation d’un dispositif est précédée d’une injection d’AAV, réactions inflammatoires peuvent survenir à la fois l’implantation et l’injection. À l’avenir, il sera souhaitable de comparer systématiquement les approches traditionnelles et la méthode de soie/AAV pour déterminer si les films de soie/AAV diminue dans l’ensemble des réponses inflammatoires.

Plusieurs étapes sont essentielles à l’utilisation réussie de soie/AAV films. Plus important encore, la couche des fibres optiques doit être faite soigneusement, comme décrit dans les méthodes et l’emplacement des films secs devrait être évalué avec soin par inspection visuelle au microscope pour s’assurer que les films sont compacts, à l’emplacement approprié, et adhèrent à la surface de la fibre optique. Toute soie/AAV sur les côtés de la fibre optique conduira à la manifestation à l’extérieur de la région d’intérêt, et déformés films qui dépassent de la surface de la fibre peuvent se rompre lors de l’implantation et plomb à peu fiables ou sans expression. Les techniques que nous décrivons pour application soie/AAV aux dispositifs implantables peut être adapté à l’utilisation de tous les matériaux sont qui sont facilement disponibles et permettent la déposition précise de petits volumes de soie/AAV.

Un peu de pratique est nécessaire pour atteindre des résultats précis et reproductibles. Si expression est observée le long de la voie ferrée de la fibre, il est probable que le film de soie séchés sur le côté de la fibre plutôt que le visage de la fibre. Répétez le processus de fabrication et inspecter minutieusement séchées implants pour les signes qui films sécher sur le côté de la fibre. Parce que les films de soie/AAV sont optiquement transparents, il peut aider à la pratique application soie mélangée avec de la teinture (Fast Green ou un colorant semblable) pour mieux voir la forme de films qui en résulte (Figure 2). S’il n’y a pas d’expression, il est probable que le film de soie délogée de l’extrémité de la fibre pendant l’implantation. Nous suggérons l’utilisation du stock-titre virus lors d’implants. Pour fibres optiques, ce qui réduit le volume total qui doit être appliqué aux fibres de petit diamètre. Si la taille de l’enduit est une préoccupation envisager d’attendre plus longtemps entre chaque application nL 10 pour permettre un séchage complet de la gouttelette déposée. Soie/AAV gouttelettes sèchent plus vite sous une lampe chaude. Pour windows crâniennes, haut-titre virus peut être nécessaire de fournir une charge virale suffisante sur l’ÉFVP ou dura. Certains types d’implants peuvent dissoudre soie et libérer AAV plus facilement que d’autres. Nous avons trouvé que windows crâniennes implantés sur la surface du cerveau exigent un ratio inférieur de soie/virus pour atteindre l’expression fiable, peut-être en raison de la dynamique des fluides spinale cérébrale différente ou activité de la protéase. Si l’expression ne peut être augmentée en augmentant les concentrations efficaces de VAA, diminution du volume de soie aqueuse est une alternative plausible.

Enfin, il est important de ranger correctement les composants optiques et implanter assez vite une fois qu’ils sont prêts. Nous avons montré que les enrobés de fibres qui sont réfrigérés sous vide peuvent être conservés pendant plusieurs jours avant d’utiliser. Rangement sous vide élimine l’humidité résiduelle17 qui peut réduire la solubilité des films en soie et aussi aider à maintenir l’efficacité virale. Idéalement, les fibres optiques doivent être implantés dans les 24 heures de fabrication. Toutefois, on constate que les fibres de soie/AAV-enduit entreposés dans des niveaux similaires lecteur vide d’expression lorsqu’ils sont implantés à 7 jours après leur fabrication (Figure 4 b). En revanche, windows crâniennes couchés et sourire lentilles conduit l’expression plus fiable lorsqu’ils ont été séchés à température ambiante et utilisés dans les heures de préparation. On ne sait pas la raison de cette disparité. Outre des études peuvent être nécessaire d’affiner les conditions de préparation et de conservation pour prolonger la durée de conservation.

Soie/AAV-enduit crâniennes windows possèdent un potentiel considérable car ils considérablement raccourcir les temps chirurgicales et sont extrêmement simples à fabriquer, mais à l’heure actuelle cette méthode a des limites. Windows crâniennes enduits uniformément étiqueter des vastes zones du cortex et enfoncent suffisamment expression couche 2/3 pour GCaMP imaging, avec un peu moins expression dans les couches profondes. Toutefois, les injections stéréotaxiques conduire expression plus robuste et offrent plus de contrôle sur les couches ciblées pour l’expression. Expression fiable n’a été possible que si la dure-mère a été supprimée. Bien que la dure-mère est souvent retirée à de nombreuses expériences d’imagerie de 2 photons améliorer l’image de qualité8, de nombreuses expériences, il est souhaitable d’obtenir l’étiquetage d’une manière moins envahissante. Nous avons donc exploré notre capacité à utiliser la soie/AAV pour étiqueter les régions corticales sans enlever la dure-mère. Nous avons obtenu certains étiquetage, mais il est possible qu’il s’agissait d’une conséquence d’endommager la dura en train de préparer la craniotomie. Une étude plus approfondie est nécessaire pour enduits crâniennes windows à utiliser pour étiqueter avec fiabilité le cortex sans enlever la dure-mère.

La préparation de la solution aqueuse fibroïne de soie des cocons du Bombyx Mori est décrite en détail dans Rockwood et al. (2011) 18. aqueux fibroïne de soie est maintenant disponible dans le commerce (5 % p/v). Bien que la plupart de nos expériences ont été effectuée à l’aide de stocks de fibroïne de soie aqueuse préparées dans notre laboratoire (5 à 7,5 % p/v), nous avons obtenu des résultats similaires à l’aide de fibroïne aqueuse commercial. Fibroïne aqueux est stable à 4 ° C pendant jusqu'à trois mois, après quoi il passe spontanément de liquide d’hydrogel18. Nous recommandons que les stocks de fibroïne est divisées en partie aliquote ~ 1 mL et conservés à-80 ° C. Une portion de travail de 1 mL (suffisante pour le revêtement des centaines d’implants) peut être conservée à 4 ° C et utilisée jusqu'à ce qu’il commence au gel. Veillez à ne pas secouer, vortex, agiter ou agressivement pipetter fibroïne aqueux, comme forces de cisaillement peuvent conduire à la gélification19,20.

Soie/AAV films permettent un large éventail de profils d’expression, d’une expression corticale généralisée sous windows crâniennes, pour expression sous-corticale précise à l’extrémité d’une fibre optique de petit diamètre. Ces techniques ont été développées pour tirer parti des vecteurs d’expression communes AAV mais pourraient probablement être utilisés pour disperser les autres vecteurs d’expression comme lentivirus ou virus de la rage dans le cerveau. Soie films pourraient également être fabriquées dans des formes tridimensionnelles pour améliorer le dégagement viral dans les tissus. Par exemple, dans l’ordre à forte expression de lecteur sous corticales vitres sans l’utilisation d’un durotomy, crâniennes windows pourraient être enduits avec des tableaux de soie micro-aiguilles qui perçaient le virus dura et communiqué dans le plus profond des couches corticales21. Affinement entraînera probablement des propriétés améliorées de la libération de virus et de nouvelles applications pour les films de soie/AAV.

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Disclosures

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgments

Les auteurs tiennent à remercier J. Vazquez pour illustrations, d. Kaplan et Preda C. réactifs et indications utiles aux laboratoires de Sabatini B. et C. Harvey pour l’imagerie in vivo . Microscope a été rendue possible par M. Ocana et le centre de formation image de neurobiologie, financée en partie par le centre d’imagerie neurale dans le cadre d’un National Institute of Neurological Disorders et accorder des Stroke (NINDS) P30 Core Center (NS072030). Ce travail a été soutenu par la GVR Khodadad Family foundation, la Fondation Nancy Lurie marques et par des subventions des NIH, NINDS R21NS093498, U01NS108177 et R35NS097284 de NINDS à W.G.R et par une bourse postdoctorale du NIH F32NS101889 à C.H.C.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Aqueous silk fibroin Sigma 5154-20ML Aqueous Silk Fibroin (5% w/v) for making films
Microinjector to deposit silk/AAV Drummond 3-000-207 Nanoject III nanoliter injector
Manipulator to hold implants Narashige MM-33 Micromanipulator
Stereoscope to visualize silk deposits AmScope SM-6TX-FRL 3.5X-45X Trinocular articulating zoom microscope with ring light
Vacuum chamber to store implants Ablaze N/A 3.5 Quart Vacuum Vac Degassing Chamber
Optional, implant holder for storage N/A N/A To store premade optical fibers, drill a grid of ~4 mm-deep holes with a diameter just larger than the ferrule diameter into a plastic block.
Optical fiber Thorlabs FT200EMT Ø200 µm Core Multimode Optical Fiber for fiber implants
Ferrules Kientec FZI-LC-230 LC Zirconia Ferrule for fiber implants
Various materials for manufacturing chronic fiber implants Various N/A For detailed procedure, see Ung K, Arenkiel BR. Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue. Journal of visualized experiments: JoVE. 2012(68).
Tapered fiber implants Optogenix Lambda-B Tapered fiber implants
GRIN lenses GoFoton CLH-100-WD002-002-SSI-GF3 GRIN lenses
Small glass cranial windows Warner 64-0726 (CS-3R-0) Small round cover glass, #0 thickness
Large glass cranial windows Warner 64-0731 (CS-5R-0) Small round cover glass, #0 thickness
Various materials for manufacturing cranial windows Various N/A For detailed procedure, see Goldey GJ et al. Removable cranial windows for long-term imaging in awake mice. Nature protocols. 2014 Nov;9(11):2515.

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References

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Neurosciences numéro 144 Neuroscience Optogenetics chirurgie stéréotaxique fibroïne de soie fibres optiques windows imaging crânienne de Calcium.
<em>In Vivo</em> Ciblé d’Expression des protéines Optogenetic, soie/AAV Films
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Jackman, S. L., Chen, C. H., Regehr, More

Jackman, S. L., Chen, C. H., Regehr, W. G. In Vivo Targeted Expression of Optogenetic Proteins Using Silk/AAV Films. J. Vis. Exp. (144), e58728, doi:10.3791/58728 (2019).

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