Summary
Aquí, presentamos un protocolo para un ensayo de comunicación intercelular cruce nuevo espacio diseñado para el cribado de alto rendimiento de productos químicos modulación de ensambladura de gap para el descubrimiento de medicamentos y evaluación toxicológica.
Abstract
Uniones comunicantes (GJs) son canales de la membrana de la célula que permiten difusión de moléculas más pequeñas que 1 kDa entre células adyacentes. Ya que tienen funciones fisiológicas y patológicas, hay necesidad de high-throughput screening (HTS) ensayos para identificar moduladores GJ en ensayos de toxicología y descubrimiento de drogas. Un ensayo de novela yoduro amarillo fluorescente proteína-gap comunicación Unión intercelular (I-YFP-GJIC) satisface esta necesidad. Es un ensayo basado en células como aceptor y donante de las células que están diseñadas para expresar estable una variante de la proteína amarilla fluorescente (YFP), cuya fluorescencia sensible se apaga por yoduro o SLC26A4, un transportador de yoduro, respectivamente. Cuando el yodo se añade a un cultivo mixto de los dos tipos celulares, entran en las células donantes vía el transportador SLC26A4 y difusa a las células adyacentes aceptador via GJs donde apaga la fluorescencia de YFP. Fluorescencia de YFP se mide bien por bien en un modo cinético. La tasa de amortiguamiento YFP refleja actividad GJ. El ensayo es fiable y rápida para HTS Se describe el protocolo para el ensayo de YFP-GJIC utilizando las células LN215, las células de glioma humano.
Introduction
Uniones comunicantes (GJs) actúan como Canales intercelulares que permiten la difusión de moléculas pequeñas de < 1 kDa como nutrientes, metabolitos y moléculas de señalización entre células adyacentes. Los elementos de Unión incluyen un hemichannel o connexon en cada célula, y cada connexon constituye seis conexinas (Cxs)1. GJs y Cxs se han utilizado en los ensayos de Toxicología de carcinógenos como los hidrocarburos aromáticos policíclicos (PAH), que son inhibidores GJ2,3,4. GJIC interrumpida se ha asociado con nongenotoxic carcinogénesis5,6. Como una diana terapéutica potencial, participación de GJ se ha divulgado en particular subtipos de convulsiones7,8, protección cardiaca y cerebro isquemia/reperfusión lesiones9, migraña con aura10, lesión hepática inducida por drogas6,11y12de cicatrización. Ensayos de high-throughput screening (HTS) son necesarios para identificar productos químicos modulación de GJ o anticuerpos para el descubrimiento de medicamentos, para los ensayos de Toxicología e identificar nuevos celulares reguladores de actividad GJ. Ensayos HTS pueden utilizarse también para investigar las relaciones estructura-actividad de GJ moduladores2,13,14,15.
Algunos ensayos GJIC incluyen transferencia de tinte o técnicas de sujeción de doble parche. Lucifer amarillo CH (LY) y éster acetoxymethyl de calceína (calceína-AM) se han utilizado en los ensayos de transferencia del tinte. Las células no son permeables a LY, que es introducido por microinyección, carga del rascado o electroporación. Una vez dentro de la célula, LY se extiende en vecino las células vía GJs y actividad GJ es analizado por la magnitud de la migración LY del16. Ensayos de calceína-AM implican generalmente recuperación de gap-Fluorescencia Tras Fotoblanqueo17,18. Calceína-AM es un colorante florescente de la célula que se convierte intracelularmente en calceína impermeable por una esterasa intrínseca. El ensayo requiere de un microscopio confocal para observar a la transferencia de calceína-AM en un celular de los que lo rodean después de photobleaching láser. Si GJs funcionales están presentes, calceína-AM en células adyacentes entra en las células photobleached y la fluorescencia se recupera. Actividad GJ es analizado por el grado de recuperación de fluorescencia de las células photobleached. Ensayos de transferencia del tinte están laborioso y desperdiciador de tiempo o tienen baja sensibilidad. Doble parche es un método electrofisiológico que mide conductancia junctional. Es relativamente sensible, con una dependencia directa de la conductancia en el número de GJs abierto19; sin embargo, es técnicamente exigente, lento y costoso20. El ensayo de YFP-GJIC fue desarrollado para su uso en el HTS.
La figura 1 ilustra los componentes y pasos del ensayo GJIC-YFP, que utiliza células de aceptador expresan una variante YFP yoduro sensibles teniendo H148Q y I152L (YFPQL) y células del donante manifestando un transportador de yoduro (SLC26A4)21 . Las dos mutaciones por YFPQL permiten el amortiguamiento de la fluorescencia por yoduro22. Se añaden yoduros aceptador Co cultivado y células de un donante; no entrar en las células del aceptador, pero son tomadas por los transportadores de SLC26A4 presente en las células del donante. Yoduro en las células del donante se difunden a través de GJs funcionamiento en células aceptor adyacente donde apaga la fluorescencia de YFPQL . Si GJs cerrados o bloqueados por inhibidores, yoduro no puede entrar en las células de aceptador para apagar de la fluorescencia. La tasa de amortiguamiento YFPQL refleja actividad GJ. El procedimiento del ensayo-YFP GJIC no es complicado ni mucho tiempo. Es compatible con HTS y puede utilizarse para probar los efectos de un gran número de compuestos en la actividad GJ en un período relativamente corto. Requiere sólo aceptador y células de donante y dos soluciones salinas equilibradas. El protocolo descrito a continuación se basa en células de LN215 cuya principales Cx es de Cx4321. El receptor LN215-YFPQL y LN215-I− células del donante se generaron por transducción con lentivirus expresando YFPQL o SLC26A421,23.
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Protocol
1. generación de lentiviruses expresando YFPQL y SLC26A4
- Crecer las células de riñón embrionario humano HEK293T 80% confluency en las placas de cultivo de 100 mm. Modificado Eagle Medium (DMEM de Dulbecco) suplementado con suero bovino fetal 10%, 100 U/mL de penicilina y estreptomicina μg/mL 100 es el medio de cultivo utilizado en el protocolo de mantener HEK293T y otras células que se mencionan a continuación.
- Capa bien 6 placas por cada bien durante 10 minutos, añadir 2 mL de 0.005% de solución estéril de (PLL) de poli-l-lisina aspiración la solución PLL y enjuague la superficie dos veces con 2 mL de agua estéril.
- Células de lavado el HEK293T con 10 mL de fosfato tampón salino (PBS) y tratan las monocapas de células en cada plato de 100 mm con 2 mL de solución al 0.25% tripsina-EDTA a 37 ° C por 3 minutos agregar 5 mL de medio de cultivo y resuspender las células.
- Contar las células en un hemocitómetro y ajustar la densidad de la suspensión celular a 250.000 células/mL en medio de cultivo y añadir 500.000 células en 2 mL de medio de cultivo cada una lisina revestido de placas de 6 pocillos. Incubar las células en un vapor 5% CO295% aire ambiente a 37 ° C durante 24 h y luego reemplazar el medio de cultivo por DMEM sin penicilina o estreptomicina.
- En un tubo de 1,5 mL, diluir 20 μl de reactivo de transfección con 500 μl de DMEM sin suero ni antibióticos. Mezclar suavemente mediante pipeteo y deje reposar a temperatura ambiente durante 5 minutos.
- Mientras tanto, pipetear 250 μl de DMEM en cada uno de dos tubos de 1.5 mL y luego añadir 1500 ng pLVX-EIP-YFPQL , 1225 ng de psPAX2 y pLenti6P-SLC26A4, 375 ng de pMD2.G a cada uno. La dos plásmidos lentivirales han sido previamente descritos21. Añadir 250 μl de reactivo de transfección diluido a cada tubo de plásmido, mezclar suavemente e incubar durante 20 min a temperatura ambiente.
- Después de 20 min, agregar 500 μl de reactivo y plásmido complejos de transfección en los tubos de 1.5 mL gota a gota a cada placa de cultivo bien en el paso 1.4 y mezcla, meciendo la placa hacia adelante y hacia atrás. Incube las células a 37 ° C en un incubador de CO2 de 12 h.
- Reemplazar el medio con 2,5 mL de medio fresco e incubar durante 48 h adicional. Luego coloque la placa de cultivo en hielo durante 5 minutos mantener el medio acondicionado con lentivirus refrigerados para mantener la infectividad.
- Los medios de comunicación que contiene lentivirus de la cosecha y transferir a tubos cónicos de 15 mL. Centrifugar a 3.000 x g a 4 ° C por 3 min y luego saque flotantes células HEK293T el sobrenadante por filtración a 0.4 μm.
- Almacenar los medios de comunicación que contiene lentivirus a 4 ° C para su uso dentro de 2 días. Para su uso posterior, almacenar 200 alícuotas μl a −80 ° C.
2. generación de LN215-YFPQL y LN215-I− células por transducción lentivirales
- Crecen las células LN215 en las placas de cultivo de 100 mm al 80% confluency en DMEM suplementado con 10% suero bovino fetal (FBS) 100 U/mL de penicilina y estreptomicina 100 de μg/mL como se describe anteriormente.
Nota: Si se lleva a cabo el ensayo de YFP-GJIC utilizando una línea celular diferente, utilice el medio de cultivo apropiado. LN215-YFPQLy LN215-I– las células pueden ser proporcionadas por la Fundación Universidad-empresa, Universidad de Yonsei. Por favor, póngase en contacto con el autor correspondiente. - Un día antes de transducción, lavan las células dos veces con 10 mL de PBS, tratan con 2 mL de 0.25% tripsina-EDTA a 37 ° C por 3 min resuspender las células en 5 mL de medio de cultivo con una pipeta serológica de 10 mL y ajustar la densidad a 50.000 células/mL. Añadir 20.000 células en 400 μL de medios de comunicación a cada pocillo de una placa de 24 pocillos cultura para tratamiento sin control de virus, YFPQL, como células SLC26A4.
- Después de 24 h de incubación a 37 ° C, transduce dos pozos mediante la sustitución del medio de cultivo con 400 μL de una mezcla 1:1 de pLVX-EIP-YFPQL o SLC26A4 pLenti6P lentivirus y fresco medio de cultivo suplementado con polibreno a una concentración final de 4 μg/mL. No hay controles de virus, reemplazar con medio de cultivo.
- Incube las células a 37 ° C durante 15 h, Aspire el medio con lentivirus, agregar medio de cultivo fresco e Incube las células por un adicional 72 h.
PRECAUCIÓN: Para evitar la contaminación de lentivirus entre pozos, utilizar puntas nuevas o pipetas para cada pozo al aspirar el medio de cultivo con lentivirus o servir de medio de cultivo fresco. - Lavado de que las células en cada pozo dos veces con 0,5 mL de PBS, tratan con 300 μL de tripsina-EDTA para 3 minutos resuspender las células en 2 mL de medio de cultivo y placa de la pozo seis placas con 2 puromicina μg/mL.
- Las células en medios que contienen 2 puromicina μg/mL hasta todas las células del control bien muertas de la cultura (en forma redonda o flotando cuando la observa en microscopio), que generalmente toma una semana. Actualizar los medios de cultivo que contienen puromicina cada otro día durante el período de selección. Si LN215-YFPQL o LN215-I– confluyente de las culturas se convierten antes de que termine la selección, transferencia de las células a 100 mm de la placa y seguir la selección como en el paso 2.5.
3. preparación de soluciones necesarias para el análisis de
- Preparar 500 mL de solución C (10 mM HEPES, 140 mM NaCl, 10 mM de glucosa, 5 mM KCl, 1 mM MgCl2y 1 mM de CaCl2) y 500 mL de-solution (10 mM HEPES, 140 mM NaI, glucosa 10 mM, 5 mM KCl y 1 mM de CaCl2).
- Ajustar el pH de ambas soluciones a 7,4 con 1 N NaOH, esterilizar las soluciones por filtraciones en 0,4 μm para el almacenamiento. Almacenar a 4 ° C durante 1 mes. Revise el pH antes de usar.
4. de la galjanoplastia del LN215-YFPQL y LN215-I− células
- La cultura LN215-YFPQL y LN215-I− células en placas de 100 mm por separado en medio de cultivo para alcanzar la población necesaria para el ensayo. LN215-YFPQL y LN215-I− células en 40% y 80% de confluencia en las placas de 100 mm, respectivamente, son suficientes para un ensayo de placa de 96 pocillos.
- Un día antes de realizar el ensayo GJIC-YFP, lave cada placa de cultivo de 100 mm con 10 mL de PBS. Tratar cada placa con 2 mL de solución al 0.25% tripsina-EDTA e incubar a 37 ° C por 5 min resuspender las células en cada placa en 4 mL de medio de cultivo y transferencia a tubos cónicos de 15 mL.
- Sedimenten las células por centrifugación a 1.000 x g durante 3 min descartar el sobrenadante y resuspender cada precipitado con 5 mL de medio de cultivo de células. Romper cualquier grumos de células en las células mediante pipeteo arriba y abajo unas 20 veces con una pipeta serológica de 10 mL.
- Contar las células en un hemocitómetro y diluir las células en el medio de cultivo para hacer suspensiones celulares de LN215-YFPQL 80.000 células/ml y LN215-I− 160.000 células/ml.
- Mezclar 7 mL de LN215-YFPQL y 7 mL de LN215-I− suspensiones celulares en un embalse. Añada 100 μl de la mezcla en cada pocillo de una placa de cultivo celular de 96 pozos utilizando una pipeta multicanal.
Nota: Para agregar 100 μl de la mezcla en cada pocillo de la placa de 96 pocillos de la célula, es necesario aproximadamente 10 mL de la suspensión celular mixta. Se recomienda hacer la suspensión más que lo necesario. - Incubar las células en humidificado 5% CO295% aire a 37 ° C durante 24 h. El LN215-YFPQL y LN215-I−cultivo de celular debe ser 100% confluente cuando se lleva a cabo el ensayo.
5. llevar a cabo el ensayo GJIC -YFP
Nota: Utilice un microscopio de fluorescencia con 20 aumentos y un filtro GFP al verificar las placas de 96 pozos que allí no hay grupos de LN215-YFPQL o SLC26A4 LN215 células y que los cultivos celulares son completamente confluente y bien distribuida antes de llevando a cabo el ensayo.
- Por lo menos 30 min antes de realizar el ensayo, active una microplaca y ajuste a 37 ° C.
- Lavar el tubo de un inyector automático con 3 mL de etanol al 70%, 3 mL de agua destilada y luego 3 mL de solución de a un caudal de 300 μL/s.
- Caliente el C y-soluciones a 37 ° C en el baño de agua.
Nota: 100 μl de cada solución necesaria para cada pocillo de la placa de 96 pozos, aproximadamente 10 mL de cada solución se necesita para cada ensayo. Es necesario un adicional 10 mL de la solución de cebado de cada plato (un total de 20 mL) y un adicional 25 mL de la solución C es necesario para el lavado de cada plato (un total de 35 mL). - Aspirar el medio de crecimiento o invertir la placa para vaciar golpee hacia fuera medio residual.
Nota: El suero bovino fetal Residual en los medios de crecimiento hace fluorescencia del fondo y una disminución en calidad de ensayo. - Añadir 200 μL de solución C a cada pocillo un depósito utilizando una pipeta multicanal. Aspirar la solución C o invertir la placa para vaciar y golpee hacia fuera de la solución residual.
- Añadir 50 μl μl solución C, 1 μl de caldo químico 2,5 mM (ver tabla 1) o dimetilsulfóxido (DMSO) como un vehículo y luego 50 μl μl solución de C en cada pocillo con una pipeta multicanal.
Nota: Más reactivos en una biblioteca química están disuelto en DMSO y se permite hasta un 1% (v/v) en ensayos de células mayor parte24. Como DMSO tiene una mayor densidad que el agua, reactivos disueltos en DMSO tienden a bajar hasta el fondo cuando se añade a los pocillos de la placa de cultivo, que perturba las concentraciones de las soluciones de ensayo. Esto puede eludirse mediante la adición de 50 μl de la solución C, reactivos en DMSO y 50 μl C de - solución en orden. El último 50 μl de la solución C es para la mezcla. - Incube las células a 37 ° C en aire, no en 5% CO2. El tiempo de incubación puede ser modificado, pero 10 minutos es suficiente para moduladores de canales iónicos para actuar.
- Durante la incubación, establecer el programa de lector de microplacas para inyectar 100 μl de solución en cada pocillo en 1 s y medir la fluorescencia para 10 s intervalos de 0,4 s. Configurar el lector para leer la fluorescencia de la parte inferior. La velocidad de inyección recomendada es 135 μl/s. sistema la longitud de onda de excitación a 485 nm y leer la emisión a 520 nm.
Nota: Los siguientes parámetros detallados para los programas de lector de microplacas.- Haga clic en el botón administrar protocolos .
- Haga clic en el botón nuevo . Seleccionar la Intensidad de fluorescencia en la sección de método de medición y Bien en la lectura sección de modo. A continuación, haga clic en el botón OK . Nueva pestaña aparecerán.
- En el menú de Parámetros básicos , establecer la longitud de onda de excitación a 485 nm y la emisión a 520 nm. Seleccione el Fondo óptica leer la fluorescencia de la parte inferior. Set medida empezar a tiempo "0 s", el número de intervalos que "el 25", número de parpadeos por pozo, intervalo que "20" e intervalo de tiempo que "0,4 s".
- En el menú diseño , dibujar la región de la placa para ser leído.
- En el menú de Las concentraciones/volúmenes/Shacking , configurar el lector de microplacas para inyectar 100 μl de solución en cada pocillo con 135 μl/s de velocidad de inyección.
Nota: Evite velocidades más rápidas de la inyección porque puede resultar en el desprendimiento de las células. - En el menú de tiempo de inyección , configurar el tiempo de comienzo de inyección 1 s. Entonces, haga clic en el botón de Inicio de medición .
- Después de la incubación, coloque las placas de 96 pocillos en el lector de microplacas y comenzar la medición haciendo clic en botón de la Medida de comenzar nuevamente.
6. cálculo de actividades GJIC
- Calcular los porcentajes de amortiguamiento de YFPQL y actividades GJIC como23
YFPQL amortiguamiento (%) =
Actividades GJIC (%) =
Nota: En principio, actividades GJIC se calculará por la diferencia de los porcentajes de fluorescencia YFP en pozos con aceptador de la células y células de donante y la correspondiente celda de aceptador solamente pozos. Sin embargo, como LN215-YFPQL las células muestran insignificante YFP Temple por yoduro después de 10 s, tomamos el amortiguamiento de YFP fondo en cuenta al realizar HTS con LN215-YFPQL y LN215-I– las células.
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Representative Results
29 placas 96 pocillos fueron utilizadas para detectar productos 2.320 químicos para identificar moduladores GJIC novela por ensayo GJIC-YFP usando el LN215-YFPQL y LN215-I− células. Los resultados obtenidos con una placa representativa se muestran en la figura 2. El porcentaje de fluorescencia de YFP en cada pozo se muestra como un gráfico de líneas en la figura 2A y el porcentaje de actividades GJIC en cada pozo se muestra en el gráfico de barras en la figura 2B. Los controles positivos y negativos y los 80 productos químicos que fueron evaluados se muestran en la tabla 1. Cada uno bien trataron con 25 μm de un compuesto para 10 minutos Terbinafine totalmente inhibieron GJIC y homosalato inhibieron GJIC aproximadamente en un 50%. La terbinafina se confirmó como un inhibidor GJ. Su respuesta a la dosis, reversibilidad y otros resultados experimentales han sido publicado en otra parte23.
Figura 1 : Los componentes y pasos del ensayo YFP GJIC (A) el aceptador de pentágonos amarillo oscuro y amarillo representan las células expresando YFPQL antes y después del enfriamiento. Los pentágonos negros son células donantes expresan SLC26A4. Las barras azules son GJs y las barras rojas son transportadores de SLC26A4. Los círculos de color rosa son yoduros. Cuando GJs están abiertos (panel superior), yoduros atraviesan SLC26A4 y entrar en la célula donante. Yoduros migran a aceptor adyacente células vía quench GJs. yoduros la fluorescencia de YFP de las células del receptor. Si GJs están cerradas (panel inferior), yoduros entrar en las células del donante no se pueden mover a las células vecinas del aceptador y se conservan solamente en las células del donante. La fluorescencia de YFP de las células del receptor no se reduce significativamente después de la adición de imágenes fluorescentes y contraste de la fase de yoduros (B) obtenido al realizar un ensayo de YFP-GJIC. Cuando aceptor y donante células fueron plateadas en una proporción de 1:1, amortiguamiento de YFPQL observó 1 min después de yoduros agregaron (panel superior). Cuando solamente las células de aceptador fueron plateadas, tratamiento yoduro durante 1 min no produjo significativas YFPQL Temple21. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2 : Representante HTS resultados con el ensayo de YFP-GJIC (A) suspensión de 1:2 mezclas de LN215-YFPQL y LN215-I− células eran plateadas y se incubaron durante 24 h, como se describe en la sección 4 del protocolo. Las células entonces lavadas y tratadas con vehículo o químicos como en la sección 5 del protocolo. Todos los productos químicos se evaluaron como muestras de μm 25 de soluciones madre de 2,5 mM en DMSO durante 10 minutos. Cada uno contenía bien 1 DMSO μl y 100 μl de solución C. La primera y última fila de la placa fueron asignada a controles positivos (carbenoxolone) y negativos (vehículo). Los restantes 80 pozos fueron utilizados para detectar productos químicos enumerados en la tabla 1. Después del tratamiento, el ensayo de YFP-GJIC se realizó bien por bien como en la sección 5 del protocolo. El porcentaje de fluorescencia de YFP en cada bien en cada momento se normalizó el valor en 2 s y graficados contra el tiempo. Las líneas de la figura representan los cambios en la fluorescencia YFP en cada pozo. La fluorescencia de YFP en bien de la mayoría en 10 s entre 70% y 80%. Terbinafina y homosalato fueron éxitos potenciales para inhibidores de GJ (B) el gráfico de barras muestra la actividad GJIC porcentaje de cada uno de los 96 pozos. La actividad GJIC por ciento fue calculada como se indica en el paso de protocolo 6.1 y trazan en el gráfico de barras contra los números bien. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| Bueno, no. | Posición | Producto químico | Bueno, no. | Posición | Producto químico |
| 1 | A01 | DMSO | 49 | E01 | DMSO |
| 2 | A02 | difloxacin clorhidrato | 50 | E02 | propofol |
| 3 | A03 | valerato de betamethasone | 51 | E03 | fosfato de oleandomicina |
| 4 | A04 | eritromicina | 52 | E04 | mianserina clorhidrato |
| 5 | A05 | clorhidrato de ciproheptadina | 53 | E05 | valsartan |
| 6 | A06 | liotironina | 54 | E06 | salsalato |
| 7 | A07 | teofilina | 55 | E07 | hidrocortisona |
| 8 | A08 | tolnaftato | 56 | E08 | rifaximina |
| 9 | A09 | hidrocloruro de trimetobenzamida | 57 | E09 | clorhidrato de adrenolone |
| 10 | A10 | cefamandol nafato | 58 | E10 | Imiquimod |
| 11 | A11 | dimetil fumarato | 59 | E11 | nonoxinol-9 |
| 12 | A12 | CBX | 60 | E12 | CBX |
| 13 | B01 | DMSO | 61 | F01 | DMSO |
| 14 | B02 | piracetam | 62 | F02 | ranolazina |
| 15 | B03 | gluconolactona | 63 | F03 | danthron |
| 16 | B04 | Azlocilina sodio | 64 | F04 | acedapsone |
| 17 | B05 | cloruro de colina | 65 | F05 | clorhidrato de atomoxetina |
| 18 | B06 | Atorvastatina calcio | 66 | F06 | desoxycorticosterone acetato |
| 19 | B07 | clorhidrato de oxyphencyclimine | 67 | F07 | clorhidrato de tramadol |
| 20 | B08 | propafenona clorhidrato | 68 | F08 | clorhidrato de terbinafina |
| 21 | B09 | fluconazol | 69 | F09 | topiramato |
| 22 | B10 | lovastatina | 70 | F10 | gemifloxacina mesilato |
| 23 | B11 | bleomicina (bleomicina b2 se muestra) | 71 | F11 | pravastatina sódica |
| 24 | B12 | CBX | 72 | F12 | CBX |
| 25 | C01 | DMSO | 73 | G01 | DMSO |
| 26 | C02 | potasio de Acesulfame | 74 | G02 | Levalbuterol clorhidrato |
| 27 | C03 | tenipósido | 75 | G03 | clorhidrato de metformina |
| 28 | C04 | ácido tánico | 76 | G04 | Pregabalin |
| 29 | C05 | carprofeno | 77 | G05 | clorhidrato de topotecán |
| 30 | C06 | sulfato de hidroxicloroquina | 78 | G06 | clorhidrato de fenoxibenzamina |
| 31 | C07 | pentoxifilina | 79 | G07 | bromhidrato de arecolina |
| 32 | C08 | clorhidrato de mepivacaína | 80 | G08 | mepartricin |
| 33 | C09 | nilutamida | 81 | G09 | pantoprazol |
| 34 | C10 | clorhidrato de ácido aminolevulínico | 82 | G10 | clorhidrato de loperamida |
| 35 | C11 | aniracetam | 83 | G11 | podofilox |
| 36 | C12 | CBX | 84 | G12 | CBX |
| 37 | D01 | DMSO | 85 | H01 | DMSO |
| 38 | D02 | Metaxalone | 86 | H02 | levodopa |
| 39 | D03 | clorhidrato de chloroguanide | 87 | H03 | ethisterone |
| 40 | D04 | claritromicina | 88 | H04 | ENROFLOXACINA |
| 41 | D05 | modaline sulfato | 89 | H05 | sulfato de esparteína |
| 42 | D06 | protirelin | 90 | H06 | propionato de testosterona |
| 43 | D07 | teobromina | 91 | H07 | bromuro de piridostigmina |
| 44 | D08 | rosiglitazona maleato | 92 | H08 | sulfato de enilconazole |
| 45 | D09 | losartán | 93 | H09 | betametasona sodio fosfato |
| 46 | D10 | Homosalate | 94 | H10 | azaserine |
| 47 | D11 | salicylanilide | 95 | H11 | acrisorcin |
| 48 | D12 | CBX | 96 | H12 | CBX |
Tabla 1. Lista de productos químicos evaluados en este estudio.
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Discussion
El ensayo de YFP-GJIC puede utilizarse para HTS porque es robusto, rápido y barato. Un ensayo HTS es considerado robusto si el Z'-factor está por encima de 0,525. Ver Zhang et al. para una descripción del análisis estadístico utilizado para evaluar la idoneidad de HTS ensayos25. Cuando se utilizaron las células de LN215, el Z'-factor fue > 0,5 sin ninguna optimización de ensayo. Si se utilizan otros tipos de células en el ensayo y su Z'-factor es < 0.5, la robustez puede mejorarse ampliando el tiempo de ensayo21. S de necesidad sólo 10 de células LN215 y HOS, células de osteosarcoma humano, para obtener un Z'-factor > 0,521. El ensayo requiere solamente aceptor y donante de las células, la solución y la solución C. No reactivos adicionales, como LY y calceína-AM se necesitan. Otra ventaja de este ensayo GJIC es que mide la actividad total de GJIC de las células en un solo pozo, que se traduce en poca variabilidad entre bien. En microinyección, recuperación de espacio-fluorescencia después de photobleaching (FRAP) y ensayos de abrazadera de doble parche, una celda en el área de ensayo puede afectar significativamente el resultado. Aunque raspe carga ensayos evaluación GJIC sobre un área relativamente extensa, el procedimiento de carga raspado puede introducir variabilidad significativa26.
Los pasos críticos para la realización exitosa del ensayo YFP-GJIC son los siguientes. El pH de la C--soluciones y debe ajustarse a 7.4 antes de cada uso. Fluorescencia de YFPQL se afecta fuertemente por pH y haluros22. Una diferencia de pH entre las dos soluciones puede llevar a cambio aberrante en fluorescencia de YFP después de la adición de la solución. Las células del donante y del aceptador deben disociar completamente antes de la galjanoplastia. Grupos de células del donante o de aceptador de perturban el ensayo. La confluencia de la cultura mixta debe ser 100% para maximizar la formación de GJs entre las células. La relación de aceptador a células de un donante también afecta los resultados del ensayo como se describe por Lee et al.. 21. como sólo células del aceptador tienen fluorescencia YFP, el cociente y el arreglo del aceptor y donante de las células pueden fácilmente comprobarse con un microscopio de fluorescencia antes de realizar el ensayo. Es importante lavar el co-cultivo con C-solución para eliminar medio residual antes del tratamiento con vehículo o productos químicos. Suero residual o rojo de fenol desde el medio de cultivo puede ser una fuente de la fluorescencia del fondo o un extintor de la fluorescencia no deseados, respectivamente. Así puede interrumpir el ensayo de YFP-GJIC. Factores de crecimiento presentes en los equipos también pueden inhibir la GJIC27. Por otro lado, hambre de suero puede llegar a provocar apoptosis28, que también puede ser acelerada por tratamiento químico. En nuestra experiencia, el aceptor y donante de las células estaban sanas después de tratamiento por defendido más productos químicos de 25 μm en C-solución sin suero durante 10 minutos. Algunos productos químicos no eran tóxicos incluso después del tratamiento durante 4 horas. Como toxicidad química varía, la condición de las células se debe controlar cuando se requiere tratamiento por períodos más largos. Si las células no son saludables, una reducción evidente de la fluorescencia de YFP que ocurre dentro de 1 s después de la introducción de la solución puede resultar de la separación de la célula. Que puede ser confirmado por la observación microscópica de los implicados también.
Las células utilizadas en el ensayo de YFP-GJIC deben cumplir varios requisitos. Debe expresar GJs endógena o inducidas para formar GJs. Como son casi igualmente permeables atómicos cationes y aniones29canales compuestos de Cx43, yoduros pueden migrar a través de los canales presentes en GJIC YFP en las células LN215. Si los canales de Cx en las células de interés tienen una permeabilidad baja yoduro pero libremente permiten difusión de Ca2 +, el ensayo de YFP-GJIC no es posible. La ausencia de la actividad de captación de yoduro es un requisito. Las células que expresan canales funcionales del anión y el yoduro de absorción rápida no son apropiadas para este análisis. Crecimiento de la célula es otro requisito. Las células del receptor y el donante son generadas por transducción de lentiviruses expresando YFPQL o SLC26A4 y selección con puromicina para por lo menos 1 semana19. Las células que crecen lentamente o han limitado el crecimiento como hepatocitos primarios no son adecuadas para este análisis. Adherencia de células a la superficie de la cerámica de la cultura plástica también es importante. Las células que no se adhieren firmemente, como las células HEK293, son fácilmente separadas por la introducción de la solución. Esto se puede solucionar mediante el recubrimiento de placas de 96 pocillos con PLL antes de chapado. Sin embargo, las placas de revestimiento es un paso tedioso, y evitar esos tipos de células se recomienda. En principio, células primarias como astrocitos, hepatocitos y queratinocitos son toxicológicamente, fisiológicamente y farmacológicamente más relevante que las células cancerosas como las células del carcinoma basocelular, glioma y hepatoma. Sin embargo, sus tasas de crecimiento limitado hacen inadecuado para el análisis. Futuros avances en cultivos celulares que permiten el crecimiento de las células primarias que cumplen con los requisitos anteriores por períodos más largos, ampliaría las evaluaciones toxicológicas, fisiológicas y farmacológicas posibles con este ensayo.
El ensayo GJIC-YFP puede utilizarse no sólo para HTS, sino también para determinar si un tipo de células expresa endógenamente GJs funcionales. Si las células no tienen GJs, la tasa de amortiguamiento YFPQL observada en el aceptador de la morfología y las células del donante no sería diferentes de la observada cuando sólo las células del receptor fueron plateadas. Si hubo una diferencia significativa en las tasas de amortiguamiento, las células originales expresan GJs funcionales. Como la diferencia tiende a aumentar con el tiempo como se muestra en la figura 2A, este ensayo tiene una mayor sensibilidad para detectar el débil actividades GJIC que carga por rascado o gap-FRAP ensayos. Datos del curso del tiempo, relaciones de dosis-respuesta y evaluar la reversibilidad de los moduladores GJ pueden obtenerse con el ensayo de YFP-GJIC23,30. Inducir la expresión de un Cx de interés en las células desprovista de GJs funcionales y luego generando aceptadores y donadores, ensayos específicos de GJIC Cx-YFP pueden ser establecido23. Este ensayo permite así determinar valores de IC50 de una sustancia química en un tipo específico de Cx.
Como la mayoría de HTS de ensayos, el ensayo de YFP-GJIC puede producir falsos positivos resultantes de cambios en SLC26A4, YFPQLo permeabilidad celular yoduro. Como inhibición GJ falsos o puede provocar inhibición de SLC26A4 desensibilización de YFPQL al yoduro, cada potencial inhibidor GJ debe analizarse utilizando células que coexpresan YFPQL y SLC26A4. Si un potencial inhibidor GJ es un bloqueador de SLC26A4 o un desensitizer YFP, amortiguamiento de YFP se atenúa. Por el contrario, un verdadero inhibidor GJ no afecta a YFP Temple. Métodos electrofisiológicos o purificada YFPQL puede discriminar entre SLC26A4 bloqueadores y desensibilizadores YFP. Activadores GJ que sensibilizar YFP al yoduro o aumentan permeabilidad de yoduro vía anión, hemichannels Cx, o por efectos tóxicos inespecíficos también dará resultados falsos positivos. Se debe determinar si posibles activadores GJ mejoran YFP apagando cuando solamente las células de aceptador se platean. Si un producto químico sensibiliza YFPQL o aumenta la permeabilidad de yoduro, se incrementará YFPQL Temple en cultivos de células de aceptador sin los donantes. Los dos tipos de activadores GJ falsos pueden distinguirse en otros ensayos de GJ, como carga del rascado o FRAP o usando purificada proteína YFPQL .
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Disclosures
Los autores no tienen conflictos de interés divulgar.
Acknowledgments
Esta investigación fue apoyada por el programa de investigación de ciencia básica a través de la nacional investigación Fundación de Corea (NRF) financiado por el Ministerio de Educación (2011-0023701, 2016R1D1A1A02937397 y 2018R1A6A1A03023718).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 96-well plate | SPL | 30096 | |
| Calcium chloride (CaCl2) | Sigma | C5670 | I-solution |
| D-(+)-Glucose | Sigma | G7021 | C-solution, I-solution |
| Dimethyl sulfoxide (DMSO) | sigma | 276855 | |
| HEPES | Sigma | RES6003H-B7 | C-solution, I-solution |
| Lipofectamine 2000 | Invitrogen | 11668-027 | transfection reagent |
| Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2 6H2O) | Sigma | M2393 | C-solution |
| Microplate reader | BMG LabTech | POLARstar Omega 415-1618 | |
| pMD2.G | Addgene | #12259 | |
| Polybrene | sigma | H9268 | |
| Poly-L-lysine solution | sigma | P4707 | |
| Potassium chloride (KCl) | Sigma | P5405 | C-solution, I-solution |
| psPAX2 | Addgene | #12260 | |
| Puromycin Dihydrochloride | sigma | P8833 | |
| Sodium chloride (NaCl) | Sigma | S5886 | C-solution, I-solution |
| Sodium hyroxide (NaOH) | Sigma | S2770 | |
| Sodium Iodide (NaI) | Sigma | 383112 | I-solution |
References
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