Summary
Мы разработали в целом корковых electrocorticographic массив для общих Мармосет, который постоянно покрывает почти весь боковой поверхности коры, от затылочного полюса с временной и лобной поляков. Этот протокол описывает процедуру хронического вживления массива в эпидуральное пространство мозга игрунка.
Abstract
Electrocorticography (ЭГ) позволяет осуществлять мониторинг потенциалов электрического поля от коры головного мозга с высоким разрешением пространственно-временных. Последние развития тонкие, гибкие ECoG электродов позволило проведение стабильной записей крупномасштабной деятельности коры головного мозга. Мы разработали в целом корковых ECoG массив для общих игрунка. Массив непрерывно охватывает почти весь боковой поверхности коры полушария, от затылочного полюса с временной и лобной поляков, и он захватывает целом корковых нейронной активности в один выстрел. Этот протокол описывает процедуру хронического вживления массива в эпидуральное пространство мозга игрунка. Мартышек имеют два преимущества относительно ECoG записей, одна из которых была организация гомологичных анатомических структур в организме человека и макак, включая лобной, теменной и височной комплексов. Другим преимуществом является, что мозг игрунка lissencephalic и содержит большое количество комплексов, которые более сложны для доступа в макак с ЭГ, которые подвергаются воздействию поверхности мозга. Эти функции позволяют прямой доступ к наиболее корковых областях под поверхностью мозга. Эта система обеспечивает возможность для изучения глобальных корковых информации обработки с высоким разрешением в суб миллисекунды порядок во времени и порядка миллиметра в пространстве.
Introduction
Познание требует координации нейронных ансамблей сетях широко мозга, особенно хорошо развита в организме человека и считается, что быть вовлечены в высших когнитивных поведение коры головного мозга. Однако как коры головного мозга достигает когнитивных поведение является нерешенным вопросом в области нейробиологии. Последние развития тонкие, гибкие electrocorticographic (ЭГ) электродов позволяет проведение стабильной записей от крупномасштабных корковой активности1. Фудзии и коллеги разработали в целом корковых ECoG массив макаки обезьян2,3. Массив непрерывно охватывает почти весь боковой коры, от затылочного полюса лобной и височной поляков и захватывает целом корковых нейронной активности в один выстрел. Мы получили дальнейшее развитие этой системы для применения в общей игрунка4,5, небольшой, новый мир обезьяна с генетическим manipulability6,7. Это животное имеет ряд преимуществ по сравнению с другими видами. Визуальные, слуховые, соматосенсорные, мотор и лобной коры областей этого вида были ранее сопоставлен и сообщается основные гомологичных Организации в тех же районах в людей и макак8,9, 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16. их мозги являются гладкими, и наиболее боковых корковых районы подвергаются поверхности коры, которая труднее доступ с ЭГ в макак. Опираясь на эти возможности, игрунка подходит для electrocorticographic исследования. Кроме того мартышек экспонат социального поведения и был выдвинут в качестве кандидата модель человеческого социального поведения17.
Этот протокол описывает процедуру имплантация эпидурального ECoG массива на всей боковой поверхности коры в общей игрунка. Это обеспечивает возможность мониторинга крупномасштабных корковой активности для приматов корковых неврологии, включая чувств, мотор, высших когнитивных и социальной областях.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Этот протокол была выполнена на 6 общие мартышек (4 кобеля, 2 суки; вес тела = 320-470 g; возраст = 14-53 месяцев). Все процедуры были проведены в соответствии с рекомендациями национальных институтов здравоохранения руководящих принципов для ухода и использования лабораторных животных. Протокол был одобрен RIKEN этическим Комитетом (No. H28-2-221(3)). Все хирургические процедуры выполнялись под наркозом, и были предприняты все усилия для сведения к минимуму количество животных, а также их дискомфорт.
1. Подготовка
- Получите изображение структурной магнитного резонанса (MRI) каждого индивидуального мозга. Это будет использоваться для определения расположения электродов через регистрацию с игрунка мозга Атлас и компьютерная томография (КТ).
- Подготовка ECoG массива: подготовить заказной многоканальный ECoG массив (рис. 1A). Массив ЭГ 96ch состоит из двух листов с 32 и 64 электродов. Для размещения индивидуальных различий в размерах мозга, ЭГ массив имеет гибкие руки. Рука может охватывать временной полюса, в зависимости от формы отдельных мозга. Разместите ссылку электродов, противоположном ECoG электродов и электроды землю лицом в одном направлении.
- Соберите ECoG массив с корпусом разъема (рис. 1B) и печать пробелы разъема (рис. 1 c) с помощью акриловый клей для предотвращения притока жидкости во время операции. Стерилизуйте массив с газом окиси этилена.
- Подготовить и стерилизации инструментов.
Примечание: Все инструменты, используемые, перечислены в Таблице материалов.
2. Имплантация ECoG массива
Примечание: Отказаться от приема пищи и жидкости, более чем 4 ч до операции. Выполните все хирургические с асептической техники, использованием стерилизованное Перчатки и инструментов.
-
Предварительно имплантата процедур
- Побудить анестезии в игрунка инъекций внутримышечно (и.м.) кетамина (15 мг/кг) 5 мин после инъекции и.м. атропина (0,08 мг/кг).
- Анестезировать и поддержания анестезии, с помощью изофлюрановая (1-3%, разбавляют смесь кислорода/закиси) в зависимости от физиологического состояния животного, который должен постоянно контролироваться. Убедитесь, что частота сердечных сокращений 130-180 BPM и монитор температуры тела и насыщения артериальной крови кислородом (SpO2) непрерывно, чтобы судить животного состояния.
- Бритья в верхней части головы животного с Клипперс и удаления волос. Полностью смыть крем удаления волос с кожи мокрой марлей, или это приведет к повреждению кожи.
- Администрирование антибиотиком (cefovecin; 16 мг/кг s.c.), антигипертензивное (фуросемид, и.м. 2,0 мг/кг) и антигеморрагические (carbazochrome сульфонат натрия гидрат; и.м. 0,2 мг/кг).
- Поместите животное на Стереотаксическая рама. В настоящее время применяются 2% лидокаин желе ухо бары и глазная мазь для глаз для предотвращения сухости и послеоперационные боли.
- Дезинфекция хирургические области раствором йода и накрыть стерилизованные шторы. Применение 2% лидокаин желе на место разреза кожи.
-
Процедуры имплантации
- Надрезать кожу около 4 см через средней линии головы с помощью скальпеля. Отсоедините височной мышцы от черепа с кюретка, до тех пор, пока все хирургические области подвергается. Вымойте тканей на поверхности черепа и остановить кровотечение полностью с давлением гемостаз и кости воска, при необходимости. Оберните края кожи и мышц с смоченную марлю. Держите марлей, смоченной во время операции.
- Поместите лобной край массива на краю полюса лобной. Марк запланированных области краниотомии, щели и отверстия на череп с стерильных карандашом. Краниотомия местоположение будет зависеть от конструкции массива (рис. 2).
- Дрель краниотомии вдоль Марк 1, как показано на рисунке 2. Во время бурения кости, удар воздуха на передний край поддерживать четкое представление для хирурга. Далее вырежьте кости весь путь вокруг Марк 2, как кусок кости будет по-прежнему придаваться Дура в центре. Поднимите кусок осторожно от одного края и шелушиться дура с помощью шпателя. Этот процесс должен осуществляться медленно и осторожно, или он будет легко оторвать Дура.
- Удаление кости советы из кусок кости и оберните кусок с смачивают марлевые, как этот кусок будет возвращен после имплантации в массив.
- Выполняйте краниотомии 3 и 4, как показано на рисунке 2. Они позволяют вставки электроды в орбитофронтальной и затылочной областях, соответственно.
- Дрель прорези на Марк 5, как показано на рисунке 2. Эти отверстия позволяют рассмотрение массиве, чтобы гарантировать, что она правильно вставлена.
- Теперь будет подвергаться Дура. Промыть области с соленой и остановить кровотечение с давлением гемостаза и желатин губкой, в случае необходимости. Края открытого краниотомии может потребоваться быть очищены с кюретка или кости rongeur.
- Делают прорези (отмечены 6 на рис. 2) в которой электроды ссылки размещены. Поместите ссылку электродов в эпидуральное пространство на боковое contra сенсомоторной и затылочной области. Позиция должна определяться согласно потребностям экспериментальные.
- Винтовые отверстия в четырех точках вокруг каждого стебля разъема с 1,0 мм винтом (кресты на рис. 2). Чтобы предотвратить повреждение Дура материи, вставьте шпатель под череп. Эти отверстия должны быть ортогональных против черепа. Затем установите винты PEEK (1.4 x 2,5 мм) как якоря, чтобы исправить разъем к черепу.
- Вставьте в ЭГ массив в эпидуральное пространство. Используйте плоскую щипцы для хранения массива.
Примечание: Массив следует вставить без изгиба. Если массив согнута, создайте соответствующие пространства, вставив шпателем между череп и дура. Если изгиба было вызвано относительно небольшой размер мозга, отрезать некоторых электродов. - Исправьте ссылку и наземное электроды Стоматологическая акрилом. Место ссылки электродов в эпидуральное пространство и местах электродов на поверхности черепа. Обе контакты должны столкнуться черепа.
- Положите кусок кости обратно и исправить соединитель и руководитель должности к черепу Стоматологическая акрилом на винтах.
- Шовные кожи с нейлона 6-0 в лоб и сзади головы и исправить кожи по бокам разъема, с помощью закрытия кожи.
-
Процедуры после имплантации
- Удалите из Стереотаксическая рама животного. Убедитесь, что животное остается теплой и предоставляется с кислородом во время следующие шаги.
- Сразу после операции придать животное с мелоксикам (и.м. 0,3 мг/кг) для уменьшения боли в послеоперационном периоде. Администрировать противовоспалительные кортикостероидов (дексаметазон; и.м. 2,0 мг/кг) и подкожной инфузии (раствор лактат Рингера; 5,0 мл), включая фамотидина (0,5 мг/кг) как gastroprotectant.
Примечание: Одновременное использование НПВП с стероиды имеет потенциал для желудочно-кишечные побочные эффекты. - После восстановления животного (подтвердить сердечного ритма и SpO2), удалить жизненно важных признаков мониторинга и передачи животное в СИС для 2-3 дней.
3. послеоперационное лечение
Примечание: Обычно это занимает 5 дней для животных, чтобы полностью оправиться от операции.
- Чтобы предотвратить отек мозга, администрировать противовоспалительные кортикостероидов дексаметазона (2,0 мг/кг) дважды в день в первый день после операции. Затем дозу уменьшают до 1,5 мг/кг два раза в день, на второй и третий день и 1 мг/кг два раза в день на четвертый день.
- Управление боли (Мелоксикам; устный 0,1 мг/кг один раз в день) и антигеморрагические (carbazochrome натрия сульфаната гидрата; 0,2 мг/кг и.м. два раза в день) в течение 5 дней после операции.
Примечание: В нашем случае 1-2 дня после операции, некоторые мартышек (3 из 6) стали менее активными и рвало. Это может вызвано повышенное внутричерепное давление из-за тромба. Когда мартышек представил эти симптомы, мы вновь головы и удалены сгусток под общим наркозом (alfaxalone). Если не на изгиб ECoG массива во время имплантации, сгусток крови был вероятно в пространстве между массив и где кость кусок был возвращен. В этом случае сгусток крови можно помыть прочь путем запуска засоленных в пространство с помощью катетера. Эта процедура обычно приводит к восстановлению в животное. -
Определение расположения электродов
- Около 1 недели после операции, произведите компьютерной томографии (КТ) головы животного.
Примечание: Это хорошая возможность проверить, если сигналы могут быть записаны правильно. Открыть корпус разъем и удалить любые сгустки крови, если они присутствуют. - Совместите T2-взвешенный МРТ для стереотаксического координаты с помощью AFNI программного обеспечения18 (https://afni.nimh.nih.gov) (рис. 3A). Выравнивание изображения КТ изображения T2-взвешенный анатомические магнитного резонанса с AFNI (рис. 3B). Регистрация игрунка Атлас мозга на МРТ (рис. 3 c) с AFNI и МУРАВЬИ19.
- Около 1 недели после операции, произведите компьютерной томографии (КТ) головы животного.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
В целом корковых ECoG массив может одновременно захватить нейронной активности от всего полушария. Рисунок 4 показывает примеры слуховых вызванных потенциалов (СПЗОС) из нескольких слуховой областей в бодрствовать игрунка. ЭГ записи были проведены в условиях пассивного прослушивания. Каждый игрунка была подвержена слуховой раздражители, которые состояли из рандомизированных чистых тонов с 20 типами частоты. Затем мы рассчитали СПЗОС путем усреднения ECoGs соответствие с натисков тонов. Различные волны формы были замечены с ниже и выше слуховой районов, которая указывает, что пространственное разрешение наших ECoG массива может захватить различные обработки информации в различных корковых областях.
Рисунок 1: подготовка массива ECoG. (.A) 32 и 64 ECoG массивы (внизу слева и справа), разъем случае (вверху слева) и для систем записи (вверху справа). «G» и «R» каждого массива указать Гранд и справочник электродов, соответственно. (B) собрал ECoG массив. (C) должны быть закрыты все пробелы (красные прямоугольники). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: пример краниотомии. (A) тонкий черный серый и толстые линии указывают контуры ECoG массива и запланированных области краниотомии, соответственно. Кресты соответствуют якорь отверстия. Кружил число указывает порядок бурения. (B) пример КТ изображение краниотомии. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: локализация каждого электрода. (A) T2-взвешенный МРТ, КТ (B) и (C) электрода места на Атлас. Атлас, используемые в этой рукописи является Вудворд, 3-D версия основана на Hashikawa Атлас20, который является МРТ cytoarchitectual карта. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: примеры слуховых вызванных потенциалов. (A) слуховой области примеры СПЗОС обезьяна J. (B). Электродов, расположенных в разных районах слуховой показать различные волны формы. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
| 9:00 утра | Начать подготовку |
| 10:00 утра | Надрезать кожу |
| Воздействие черепа (10 мин) | |
| Краниотомия (30 мин) | |
| 11:00 часов | Начать, чтобы вставить в массив |
| Вставить массив (60 мин) | |
| 12:30:00 | Закрыть кожи |
Таблица 1: Рекомендуемый курс время хирургии.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Для успешной имплантации животные должны быть обеспечены необходимым питанием до и после операции. Короткое время работы также имеет важное значение для оптимизации восстановления животного. Подготовка должна быть завершена по крайней мере за один день до операции. Чтобы уменьшить время работы, рекомендуется предыдущего краниотомии обучения с электродом массив вставки в прекращено животных для других экспериментальных целей. Таблица 1 показывает пример время курса для этого протокола.
Мы изменили процедуры и послеоперационного лечения анестезии на-на индивидуальной основе. В этом видео-протокол животные были под наркозом и поддерживается с помощью смеси изофлюрановая и кислорода через интубация. Изофлюрановая могут быть заменены севофлюран и интубация может быть заменен с помощью маски. В других случаях мы под наркозом животных с внутримышечной инъекции смесь кетамина и medetomidine. В этом случае хирургический наркоз достигнуто смесью кетамин (и.м. 30 мг/кг) и medetomidine (и.м. 0,35 мг/кг), и животных были первоначально под наркозом с Буторфанол (0,2 мг/кг и.м.).
Потому что ЭГ непосредственно записывает изменения в электрических полей, его временное разрешение ограничено система записи. Максимальное время решения нашей системы записи – 30 кГц. Мы обычно пробы сигналы на 1 кГц частота дискретизации и нашли это будет достаточно для извлечения информации сенсорных/мотор.
Пространственное разрешение зависит от конструкции электрода. В этом протоколе каждый электрод контакт был 0,8 мм в диаметре и расстояние между электродом 2,5 мм. Мы наблюдали различные сигналы от трех электродов, расположенных в разных районах слуховой и разделенных 2,5 мм (ch18, ch19, ch20 на рис. 4). Таким образом пространственное разрешение наших электродов оценивается менее чем 2,5 мм. В некоторых случаях электрод контакты были расположены близко друг к другу. В этих случаях пространственное разрешение был тоньше.
Мы успешно записан долгосрочный, нейронные сигналы с хорошим качеством. В одном случае соединитель и стоматологическая акрил были отделены от черепа, и электрод был сломан 4 месяца после операции. Это было вызвано рост тканей из-за крови содержится между зубов акриловые и черепа во время операции. Другой игрунка был прекращен из-за экспериментальной требование 5 месяцев после операции. Четыре животных по-прежнему участвует в экспериментах (1 год, 7 месяцев, 4 месяцев, и 4 месяца после операции, соответственно).
ЭГ массивы обычно вживляются в субдуральных пространство в организме человека и макак. Однако менее инвазивные эпидуральной имплантаций больше подходит для мартышек, потому что они тонкие животных. Тонкий Дура дело мартышек, позволило нам для мониторинга сигналов ВЧ-мозга, даже если массив ECoG был имплантирован на Дура. Один из недостатков эпидуральной имплантация является трудность доступа к срединной коры и любой коры в борозде. Приближается эти коре требует разрез Дура материи. Кроме того поскольку ECoG массивы являются поверхности электродов, трудно указать источник сигнала с точки зрения корковых глубины. Для того чтобы понять точной обработки информации в коре головного мозга, необходимо включить другие методы, такие как глубина электродов или оптических изображений. Несмотря на эти ограничения наш метод может обеспечить новое понимание обработки корковых информации. Например сенсорные агентство уже считает выйти через быстрого взаимодействия между лобной и сенсорные области; Однако их механизмы остаются неясными, поскольку этот быстрый, крупномасштабные, корковые информационный поток трудно контролировать без метода, представленные здесь.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
МК подачи заявки на патент на целом корковых массив ECoG, она используется в настоящем Протоколе (№ 2018-210975).
Acknowledgments
Мы благодарим Юрий Shinomoto за предоставление ухода за животными, подготовки кадров и проснулся записей. В ЭГ массивы были изготовлены Cir-Tech (www.cir-tech.co.jp). Кроме того мы хотели бы поблагодарить Editage (www.editage.jp) для английского языка редактирования. Эта работа была поддержана картирования мозга путем комплексного нейротехнологии болезни исследований (мозг/разум), Японское агентство для медицинских исследований и развития (AMED) (JP18dm0207001), мозг науки проект центра (Роман научной инициативы НКНИ), национальные институты естественных наук (НИН) (BS291004, м.к.) и Японское общество содействия развитию науки (JSP) KAKENHI (JP17H06034, м.к.).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Beaker (100 cc) | Outocrave | ||
| Cotton ball | Outocrave | ||
| Absorption triangles | Fine Science Tools Inc. | 18105-03 | Outocrave |
| Cotton swab with fine tip | Clean Cross Co., Ltd. | HUBY340 BB-013 | Outocrave |
| Gauze | Outocrave | ||
| Towel forceps | Outocrave | ||
| Scalpel handle | Outocrave | ||
| Needle Holder | Outocrave | ||
| Iris Scissor | Outocrave | ||
| Micro-Mosquito Forceps | Outocrave | ||
| Adson, 1x2 teeth | Outocrave | ||
| Bone Curette | Outocrave | ||
| Micro spatura | Fine Science Tools Inc. | 10091-12 | Outocrave |
| Needle Holders, 12.5 cm, Curved, Smooth Jaws | World Precision Instruments | 14132 | Outocrave |
| Vessel Dilator, 12 cm, 0.1 mm tip | Fine Science Tools Inc. | 18131-12 | Outocrave |
| Vessel Dilator, 12 cm, 0.2 mm tip | Fine Science Tools Inc. | 18132-12 | Outocrave |
| Fine-tipped rongeur | Fine Science Tools Inc. | 16221-14 | Outocrave |
| Manipurator of a stereotaxic frame | Gas sterilization | ||
| Wrench for the manipurator | Gas sterilization | ||
| Hand-made fixture for the connector | Gas sterilization | ||
| Silicon cup for dental acril | Gas sterilization | ||
| Silicon cup hlder | Gas sterilization | ||
| Paintbrush | Gas sterilization | ||
| Pencil | Gas sterilization | ||
| Micro screw, 1.4 mm x 2.0 mm | Nippon Chemical Screw Co., Ltd. | PEEK/MPH-M1.4-L2 | Gas sterilization |
| Screw driver for the micro screw | Gas sterilization | ||
| Micromotor handpiece of a drill | Gas sterilization | ||
| Stainless steel burr, 1.4 mm | Gas sterilization | ||
| Stainless steel burr, 1.0 mm | Gas sterilization | ||
| Drill bit, 1.2 mm | Gas sterilization | ||
| Rubber air blower | Gas sterilization |
References
- Fukushima, M., Chao, Z. C., Fujii, N. Studying brain functions with mesoscopic measurements: Advances in electrocorticography for non-human primates. Current Opinion in Neurobiology. 32, 124-131 (2015).
- Nagasaka, Y., Shimoda, K., Fujii, N. Multidimensional recording (MDR) and data sharing: an ecological open research and educational platform for neuroscience. PLoS One. 6 (7), e22561 (2011).
- Fukushima, M., et al. An electrocorticographic electrode array for simultaneous recording from medial, lateral, and intrasulcal surface of the cortex in macaque monkeys. Journal of Neuroscience Methods. 233, 155-165 (2014).
- Komatsu, M., Sugano, E., Tomita, H., Fujii, N. A Chronically Implantable Bidirectional Neural Interface for Non-human Primates. Frontiers in Neuroscience. 11, 514 (2017).
- Komatsu, M., Takaura, K., Fujii, N. Mismatch negativity in common marmosets: Whole-cortical recordings with multi-channel electrocorticograms. Scientific Reports. 5, 15006 (2015).
- Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459 (7246), 523-527 (2009).
- Okano, H., et al. Brain/MINDS: A Japanese National Brain Project for Marmoset Neuroscience. Neuron. 92 (3), 582-590 (2016).
- de la Mothe, L. A., Blumell, S., Kajikawa, Y., Hackett, T. A. Cortical connections of auditory cortex in marmoset monkeys: lateral belt and parabelt regions. Anatomical Record. 295 (5), 800-821 (2012).
- Kaas, J. H., Hackett, T. A. Subdivisions of auditory cortex and processing streams in primates. Proceedings of National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (22), 11793-11799 (2000).
- Ghahremani, M., Hutchison, R. M., Menon, R. S., Everling, S. Frontoparietal Functional Connectivity in the Common Marmoset. Cerebral Cortex. , (2016).
- Belcher, A. M., et al. Functional Connectivity Hubs and Networks in the Awake Marmoset Brain. Frontiers in Integrative Neuroscience. 10, 9 (2016).
- Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
- Solomon, S. G., Rosa, M. G. A simpler primate brain: the visual system of the marmoset monkey. Frontiers in Neural Circuits. 8, 96 (2014).
- Burman, K. J., Palmer, S. M., Gamberini, M., Rosa, M. G. Cytoarchitectonic subdivisions of the dorsolateral frontal cortex of the marmoset monkey (Callithrix jacchus), and their projections to dorsal visual areas. Journals of Comparative Neurology. 495 (2), 149-172 (2006).
- Bakola, S., Burman, K. J., Rosa, M. G. The cortical motor system of the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Neuroscience Research. 93, 72-81 (2015).
- Krubitzer, L. A., Kaas, J. H. The organization and connections of somatosensory cortex in marmosets. Journal of Neuroscience. 10 (3), 952-974 (1990).
- Miller, C. T., et al. Marmosets: A Neuroscientific Model of Human Social Behavior. Neuron. 90 (2), 219-233 (2016).
- Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29 (3), 162-173 (1996).
- Avants, B. B., et al. A reproducible evaluation of ANTs similarity metric performance in brain image registration. Neuroimage. 54 (3), 2033-2044 (2011).
- Hashikawa, T., Nakatomi, R., Iriki, A. Current models of the marmoset brain. Neuroscience Research. 93, 116-127 (2015).
