Summary
פיתחנו מערך שלם-קורטיקליים electrocorticographic עבור המרמוסט נפוצות שמכסה כמעט לרוחב השטח של קליפת המוח, מן המוט העורפית כדי הזמני הפולנים פרונטלי ללא הרף. פרוטוקול זה מתאר הליך ההשתלה כרונית של המערך בחלל אפידורלי של המוח מרמוסט.
Abstract
Electrocorticography (ECoG) מאפשר בקרה של השדה החשמלי פוטנציאל מ קליפת עם רזולוציה גבוהה ייתכן. התפתחות של אלקטרודות ECoG רזה, גמיש אפשרה הולכה של הקלטות יציבה של פעילות קורטיקלית בקנה מידה גדול. פיתחנו מערך שלם-קורטיקלית ECoG עבור המרמוסט נפוצות. המערך ברציפות מכסה כמעט לרוחב השטח של האונה בקליפת המוח, מן המוט העורפית כדי הזמני הפולנים חזיתית, היא לוכדת כל-קורטיקלית פעילות עצבית במכה אחת. פרוטוקול זה מתאר הליך ההשתלה כרונית של המערך בחלל אפידורלי של המוח מרמוסט. מרמוסטיים יש שני יתרונות ביחס ECoG הקלטות, אחד להיות ארגון הומולוגיים של מבנים אנטומיים בני האדם, קופי מקוק, כולל מתחמי חזיתית, הקודקוד ואת זמני. היתרון השני הוא כי המוח מרמוסט lissencephalic והוא מכיל מספר רב של קומפלקסים, אשר קשה יותר לגשת בקופי מקוק עם ECoG, הנחשפות על פני השטח של המוח. תכונות אלה מאפשרות גישה ישירה אל אזורים קורטיקליים רוב מתחת לפני השטח של המוח. מערכת זו מספקת הזדמנות לחקור מידע בקליפת המוח הגלובלי עיבוד עם רזולוציות גבוהות ב סדר משנה מילי-שניות זמן וסדר מילימטר בחלל.
Introduction
קוגניציה דורש התיאום של הרכבים עצבית ברשתות המוח נפוצה, במיוחד קליפת מפותח אצל בני אדם, האמין להיות מעורבים בהתנהגויות קוגניטיבית גבוהה יותר. עם זאת, איך קליפת משיגה את התנהגות קוגניטיבית זו היא בעיה לא פתורה בתחום מדעי המוח. התפתחות של אלקטרודות electrocorticographic רזה, גמיש (ECoG) מאפשרת הולכה של הקלטות יציב בין פעילות קורטיקלית בקנה מידה גדול1. Fujii ועמיתיו פיתחו מערך שלם-קורטיקלית ECoG עבור2,קופי מקוק3. המערך ברציפות מכסה כמעט את כל לרוחב cortex, מהקוטב העורפית לקטבים הטמפורלי, חזיתית, ו לוכדת כל-קורטיקלית פעילות עצבית במכה אחת. בהמשך פיתחנו מערכת זו עבור יישומים נפוצים מרמוסט4,5, קוף קטן, העולם החדש עם6,manipulability גנטית7. חיה זו יש מספר יתרונות בהשוואה למינים אחרים. חזותי, שמיעתי, המגע, מנוע, ואזורים בקליפת המוח חזיתית של מין זה יש כבר בעבר ממופה ודיווח חייב הארגון הומולוגי הבסיסי בין אותם אזורים של בני האדם, קופי מקוק8,9, 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16. במוחם החלקה, ביותר לרוחב אזורים קורטיקליים נחשפים השטח של קליפת המוח, אשר קשה לגשת עם ECoG ב קופי מקוק. על סמך תכונות אלה, המרמוסט מתאים ללימודי electrocorticographic. יתר על כן, מרמוסטיים שהפגינו התנהגויות חברתיות, הוצעו כדי לשמש מודל המועמד של התנהגויות חברתיות האדם17.
פרוטוקול זה מתאר הליך ההשתלה אפידורל של המערך ECoG על פני כל לרוחב של קליפת בקוף נפוצות. היא מספקת הזדמנות לעקוב אחר פעילות קורטיקלית בקנה מידה גדול עבור neuroscience בקליפת המוח בקופים, כולל חושית, מוטוריים, תחומים קוגניטיבי וחברתי גבוה יותר.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
פרוטוקול זה בוצע מרמוסטיים נפוצות 6 (4 זכרים, 2 נקבות; משקל הגוף = g 320-470; גיל = 14-53 חודשים). כל ההליכים בוצעו בהתאם להמלצות של מוסדות לאומיים של בריאות הנחיות טיפול, שימוש של חיות מעבדה. הפרוטוקול שאושר על ידי הוועדה האתית RIKEN (מס ' H28-2-221(3)). כל הניתוחים בוצעו בהרדמה, כל המאמצים נעשו כדי לצמצם את מספר בעלי החיים שבהם משתמשים כמו גם את חוסר הנוחות שלהם.
1. הכנה
- להשיג את תמונת מבניים תהודה מגנטית (MRI) של כל המוח בודדים. זה ישמש כדי לזהות עמדות אלקטרודה דרך רישום מרמוסט המוח אטלס והמחשב טומוגרפיה ממוחשבת (CT).
- הכנה של המערך ECoG: להכין מערך ECoG רב-ערוצי מותאם אישית (איור 1 א'). מערך ECoG 96ch מורכב שני גיליונות עם אלקטרודות 32 ו 64. כדי להתאים את הערכות להבדלים בודדים בגודל המוח, המערך ECoG יש זרוע גמישה. הזרוע יכולה לכסות הקוטב הטמפורלי, בהתאם המוח בודדים צורה. מקם את האלקטרודות הפניה מול מול האלקטרודות ECoG ואלקטרודות הקרקע פונות לאותו הכיוון.
- להרכיב את המערך ECoG עם תיק מחבר (איור 1B), לסגור פערים של מחבר (איור 1C) באמצעות דבק אקרילי כדי למנוע בתנאיי נוזלים במהלך הניתוח. לחטא את המערך בגז אתילן אוקסיד.
- להכין ולחטא כלים.
הערה: כל הכלים נעשה שימוש מפורטים בטבלה של חומרים.
2. השרשת ECoG מערך
הערה: תיסוג בליעה של מזון ונוזלים גדול מ- 4 שעות לפני הניתוח. לבצע את כל הצעדים כירורגית עם הטכניקה aseptic באמצעות כפפות סטיריליים וכלי נגינה.
-
השתל טרום הליכים
- לגרום הרדמה ב המרמוסט בזריקה תוך שרירית (i.m.) של קטמין (15 מ"ג/ק"ג) 5 דקות לאחר הזרקת אטרופין (0.08 מ"ג/ק"ג) i.m..
- עזים ומתנגד ולשמור על הרדמה באמצעות איזופלוריין (1-3% מדולל עם תערובת של תחמוצות החנקן/חמצן) בהתאם למצב פיזיולוגי של החיה, אשר צריך להיות ברציפות לפקח. להבטיח את קצב הלב 130-180 טמפרטורת הגוף BPM וצג רווית חמצן בדם (SpO2) ללא הרף כדי לשפוט המצב של החיה.
- לגלח בראש של החיה עם קוצץ, מסיר שיער. מלא לשטוף קרם להסרת שיער את העור עם גזה רטוב, או זה יגרום נזק לעור.
- לנהל אנטיביוטיקה (cefovecin; 16 מ"ג/ק"ג ספורטינג), נוגדות יתר לחץ דם (פורוסמיד (משתן); i.m. 2.0 מ"ג/ק"ג), ו- antihemorrhagic (carbazochrome סולפונאט נתרן הידרוקסיד; i.m. 0.2 מ"ג/ק"ג).
- במקום החיה על מסגרת stereotaxic. בשלב זה, החלים ג'לי לידוקאין 2% על האוזן-ברים אופטלמולוגיות משחה לעיניים למניעת יובש וכאב לאחר הניתוח.
- לחטא את האזור הכירורגי עם יוד פתרון, לכסות אותו. עם וילונות מעוקר. ג'לי לידוקאין 2% חלות על המקום של החתך בעור.
-
השרשת נהלי
- פצעים וחתכים בעור כ- 4 ס מ דרך האמצע של הקרקפת עם אזמל. ניתוק בשריר הטמפורלי של הגולגולת עם מגרד עד כל השטח כירורגי חשוף. לנקות רקמות על פני הגולגולת ולעצור את הדימום לחלוטין עם הלחץ hemostasis, ועם שעווה לאיטום, במידת הצורך. לעטוף את הקצה של העור והשרירים עם גזה בטעימת. שמור את הגזה לחלח במהלך הניתוח.
- מניחים בקצה המערך על הקצה של המוט חזיתית חזיתית. סימון אזור המתוכנן גולגולת, חריצים וחורים על הגולגולת עם עיפרון סטרילי. המיקום גולגולת יהיה תלוי בעיצוב של המערך (איור 2).
- תרגיל את הניתוח לאורך סימן 1, כפי שמוצג באיור2. בזמן קידוח העצם, לנשוף אוויר בחוד החנית כדי לשמור על תצוגה ברורה של המנתח. הבא, חותכים את העצם סביב כל סימן 2, כמו פיסת עצם עדיין יהיה קשור דורא במרכז. . תרים את החלק בעדינות מקצה אחד, קילוף השכבה הקשה של המוח עם מרית. תהליך זה חייב להתנהל באיטיות ובזהירות, או זה יקרע את דורא בקלות.
- להסיר את קצות העצם פיסת עצם, לעטוף את החתיכה עם גזה בטעימת, כמו קטע זה יוחזר לאחר השתלת המערך.
- לבצע גולגולת 3 ו- 4 כפי שמוצג באיור2. אלה מאפשרים החדרת אלקטרודות לתוך orbitofrontal ואת אזורי עורף, בהתאמה.
- תרגיל חרכי בסימן 5 כמוצג באיור2. החריצים האלו מאפשרים בחינת המערך על מנת להבטיח כי זה הוכנס כהלכה.
- עכשיו תהיה חשוף השכבה הקשה של המוח. לשטוף את האזור עם תמיסת מלח ולעצור את הדימום ועם הלחץ hemostasis בספוג ג'לטין, במידת הצורך. הקצה של גולגולת ייתכן שיהיה עליך לנקות עם rongeur מגרד או עצם.
- להפוך את החריצים (מסומן ב- 6 באיור2) אשר ממוקמים האלקטרודות הפניה. הצב האלקטרודות הפניה בחלל אפידורלי ב האזורים sensorimotor ו העורפית קונטרה-צדדי. המיקום צריך להיקבע על פי הצרכים הספציפיים ניסיוני.
- התרגיל חורי הברגים ב- 4 נקודות מסביב לכל גזע של המחבר עם בורג 1.0 מ מ (צלבים באיור2). כדי למנוע נזק לנושא דורא, הכנס מרית מתחת לגולגולת. את החורים האלו צריך להיות אורתוגונלית לגולגולת. לאחר מכן, התקן הצצה ברגים (1.4 x 2.5 מ מ) כעוגן לתקן את מחבר הגולגולת.
- הכנס את המערך ECoG לחלל אפידורל. שימוש קיפון מלקחיים להחזיק את המערך.
הערה: המערך צריך להיות מוכנס בלי להתכופף. אם המערך כפופה, ליצור חלל המתאים על-ידי הוספת מרית בין הגולגולת דורא. אם נגרם הכיפוף בגודל קטן יחסית של המוח, לחתוך חלק האלקטרודות. - לתקן את האלקטרודות הפניה ועל קרקעי עם אקריליק שיניים. מקם את הפניה אלקטרודות בחלל אפידורלי ואת הקרקע אלקטרודות על פני הגולגולת. שני אנשי הקשר צריך להתמודד עם הגולגולת.
- להחזיר את פיסת עצם ולתקן את ההודעה המחבר ואת הראש בגולגולת עם שיניים אקריליק על הברגים.
- תפר את העור עם ניילון 6-0 על המצח ועל הראש האחורי, לתקן את העור בצדדים של המחבר באמצעות סגר העור.
-
הליכים שלאחר ההשתלה
- הסר את החיה המסגרת stereotaxic. ודא כי החיה נשמרת שסופקו עם חמצן וחמים במהלך השלבים הבאים.
- מיד לאחר הניתוח, להחדיר את החיה meloxicam (i.m. 0.3 מ"ג/ק"ג) כדי להקטין את הכאב לאחר הניתוח. ניהול של הסטרואידים אנטי דלקתי (דקסאמתאזון; i.m. 2.0 מ"ג/ק"ג), עירוי תת-עורי (תמיסת הרטמן; 5.0 mL), לרבות לסי (0.5 מ"ג/ק"ג) כמו gastroprotectant.
הערה: שימוש בו-זמני של NSAIDs עם סטרואידים יש פוטנציאל לתופעות לוואי במערכת העיכול. - לאחר שיחזר לחיה (אשר על-ידי קצב הלב, SpO2), להסיר את סימן חיוני ניטור ולהעביר את החיה לטיפול נמרץ במשך 2-3 ימים.
3. לאחר הניתוח טיפול
הערה: זה בדרך כלל לוקח 5 ימים לבעלי להתאושש לחלוטין הניתוח.
- כדי למנוע נפיחות במוח, לנהל את דקסמתזון הסטרואידים אנטי דלקתי (2.0 mg/kg) פעמיים ביום ביום הראשון לאחר הניתוח. לאחר מכן, להפחית את המינון ל- 1.5 mg/kg פעמיים ביום בימים השני והשלישי, ו 1 מ"ג/ק"ג פעמיים ביום ביום הרביעי.
- לנהל לשיכוך כאבים (meloxicam; 0.1 מ"ג/ק"ג דרך הפה פעם ביום), של antihemorrhagic (סולפונאט carbazochrome נתרן הידרוקסיד; i.m. 0.2 מ ג/ק ג; פעמיים ביום) במשך 5 ימים לאחר הניתוח.
הערה: במקרה שלנו, 1-2 ימים לאחר הניתוח, קצת מרמוסטיים (3 מתוך 6) הפך פחות פעיל הקיא. עלול להיגרם על ידי לחץ תוך-גולגולתי מוגבר עקב קריש דם. כאשר מרמוסטיים הציג הסימפטומים הללו, אנחנו נפתח מחדש את הראש והוציאו את הקריש בהרדמה כללית (alfaxalone). אם היה אין כיפוף של המערך ECoG במהלך ההשתלה, קריש הדם היה סביר במרחב בין המערך, איפה פיסת עצם הוחזרה. במקרה זה, קריש הדם יכול לרחוץ משם על ידי הפעלת מלוחים לחלל באמצעות קטטר. הליך זה בדרך כלל מוביל השחזור של החיה. -
זיהוי של מיקומים אלקטרודה
- בסביבות 1 שבוע לאחר הניתוח, לבצע סריקת טומוגרפיה ממוחשבת (CT) המחשב של ראשה.
הערה: זה הזדמנות טובה לבדוק אם אותות ניתן להקליט כראוי. פתח את האירוע מחבר ולהסיר כל קרישי דם אם הן קיימות. - יישר משוקלל T2 MRI כדי קואורדינטות stereotaxic באמצעות דפנה אבן תרשיש תוכנה18 (https://afni.nimh.nih.gov) (איור 3 א). ליישר את התמונה CT לתמונות משוקלל T2 תהודה מגנטית אנטומי עם דפנה אבן תרשיש (איור 3B). רישום של אטלס המוח מרמוסט ל MRI (איור 3C) עם דפנה אבן תרשיש ונמלים19.
- בסביבות 1 שבוע לאחר הניתוח, לבצע סריקת טומוגרפיה ממוחשבת (CT) המחשב של ראשה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
המערך כולו-קורטיקלית ECoG יכול ללכוד בו זמנית פעילות. עצבית של מכלול של האונה. איור 4 מציג דוגמאות של רופא בכיר (AEPs) מרובות באזורים מרמוסט ערה השמיעה. הקלטות ECoG נערכו בתנאי האזנה פסיבי. כל מרמוסט נחשף לגירויים שמיעתיים, שכללה גוונים טהור אקראי עם 20 סוגים של תדר. לאחר מכן, אנחנו מחושב AEPs על ידי חישוב ממוצע ECoGs מיושר עם onsets של הצלילים. טפסים שונים גל נצפו מן התחתונה ומעלה השמיעה אזורים, אשר מציין כי הרזולוציה המרחבית של מערך ECoG שלנו יכול ללכוד מידע שונה עיבוד באזורים קורטיקליים שונים.
איור 1: הכנת מערך ECoG. (א) 32 ו 64 ECoG מערכים (למטה משמאל ומימין) תיק מחבר (למעלה משמאל), חזיתי עבור מערכות הקלטה (למעלה מימין). "G" ו- "R" של כל מערך מצביעים על גרנד וצור הפניה אלקטרודות, בהתאמה. (B) התאספו ECoG מערך. (ג) כל הפערים (מלבנים אדומות) צריך להיות אטום. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 2: דוגמא הניתוח. (א) שחור אפור ועבה דק הקווים מצביעים על קווי המתאר של המערך ECoG האזור המתוכנן של גולגולת, בהתאמה. חוצה תואמות עוגן חורים. המספר חגו מציין את הסדר של קידוח. (B) דוגמה CT תמונה של הניתוח. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 3: לוקליזציה של כל אלקטרודה. (א) משוקלל T2 MRI, CT (B) ו- (ג) אלקטרודה מקומות על הרי האטלס. הרי האטלס השתמשו בכתב היד הוא וודוורד גירסה תלת-ממדי מבוסס על ה Hashikawa-אטלס20, אשר הוא מפה של MRI-cytoarchitectual. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 4: דוגמאות של רופא בכיר. (א) שטח השמיעה של דוגמאות AEPs של קוף ג' (B). אלקטרודות ממוקמים באזורים שונים השמיעה להציג צורות גל שונים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
| בתשע בבוקר | אתחיל את ההכנות |
| 10:00 בבוקר | פצעים וחתכים בעור |
| חשיפה של הגולגולת (10 דקות) | |
| גולגולת (30 דקות) | |
| .11: 00 | מתחילים להכניס את המערך |
| הוסף את המערך (60 דקות) | |
| 12:30 | העור קרוב |
טבלה 1: מומלץ מסלול הזמן של הניתוח.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
עבור השתלה מוצלחת, חיות צריך להינתן עם תזונה נאותה לפני ואחרי הניתוח. קיצור משך הפעולה חשוב גם לייעל את השחזור של החיה. ההכנות להסתיים לפחות יום אחד לפני הניתוח. כדי לצמצם את זמן הפעולה, מומלץ הכשרה קודמת גולגולת עם אלקטרודה מערך הכניסה שהופסקו בבעלי חיים למטרות ניסוי אחר. טבלה 1 מציגה דוגמה של מסלול הזמן עבור פרוטוקול זה.
שינינו את הליך הרדמה וטיפול שלאחר הניתוח על בסיס מקרה לגופו. ב פרוטוקול וידאו זה, החיות היו מרדימים ומתוחזק בעזרת תערובת של איזופלוריין וחמצן גאל באמצעות צנרור קנה. איזופלוריין יכול להיות מוחלף עם sevoflurane, צנרור קנה יכול להיות מוחלף עם מסיכה. במקרים אחרים, אנחנו מרדימים בעלי חיים עם זריקה תוך שרירית של תערובת של קטמין medetomidine. במקרה זה, בעלי חיים היו בתחילה עם butorphanol (i.m. 0.2 מ"ג/ק"ג), ויתרה על הרדמה כירורגי הושגה עם תערובת של קטאמין (30 מ"ג/ק"ג i.m.) medetomidine (i.m. 0.35 מ ג/ק ג).
מאחר ECoG מקליט ישירות שינויים בשדות חשמליים, רזולוציה טמפורלית שלה מוגבל על ידי מערכת הקלטה. הפתרון הזמן המרבי של מערכת הקלטה שלנו הוא 30 קילו-הרץ. אנו בדרך כלל דגימת האותות בקצב דגימה קילוהרץ, מצאו שזה יהיה מספיק עבור הפקת מידע חושי/מנוע.
רזולוציה מרחבית תלויה אלקטרודה עיצוב. ב פרוטוקול זה, כל איש קשר אלקטרודה היה 0.8 מ מ קוטר, על המרחק בין אלקטרודה של 2.5 מ מ. הבחנו ואת שונה משלוש אלקטרודות ממוקמים באזורים שונים השמיעה, המופרדים 2.5 מ מ (ch18, ch19, ch20 באיור4). לפיכך, הרזולוציה המרחבית של אלקטרודות שלנו מוערך פחות מ 2.5 מ מ. במקרים מסוימים, היו אנשי הקשר אלקטרודה ממוקם קרוב יותר אחד לשני. במקרים אלה, הרזולוציה המרחבית היתה עדינה יותר.
בהצלחה הקלטנו את אותות עצביים, לטווח ארוך עם איכות טובה. במקרה אחד, המחבר ואת אקריליק שיניים היו מנותקים הגולגולת, האלקטרודה היה שבור 4 חודשים אחרי הניתוח. זה נגרם על ידי גידול רקמות עקב דם מוחזקים בין שיניים אקרילי הגולגולת במהלך הניתוח. מרמוסט אחר הופסקו עקב הדרישה ניסיוני 5 חודשים לאחר הניתוח. ארבע חיות עדיין משתתפים בניסויים (1 שנה, 7 חודשים, 4 חודשים, 4 חודשים אחרי הניתוח, בהתאמה).
מערכים ECoG מושתלים בדרך כלל במרחב לשטף של בני האדם, קופי מקוק. עם זאת, השתלות אפידורל פולשני פחות מתאימים מרמוסטיים, כי הם בעלי חיים עדינים. השכבה הקשה של המוח דק משנה של מרמוסטיים אפשרה לנו לעקוב אחר אותות בתדירות גבוהה במוח, אפילו אם המערך ECoG הושתל על השכבה הקשה של המוח. אחד החסרונות של ההשתלה אפידורל הוא קשיים בגישה אל קליפת המוח קו האמצע ואת כל בתוך sulcus קליפת המוח. מתקרבים cortices אלה דורש החתך של החומר דורא. יתר על כן, מכיוון במערכים ECoG הם אלקטרודות שטח, קשה לציין את מקור האות מבחינת עומק קורטיקלית. על מנת להבין מידע מדויק עיבוד בקליפת, זה הכרחי לכלול שיטות אחרות, כגון אלקטרודות עומק או הדמיה אופטית. למרות מגבלות אלו, השיטה שלנו יכול לספק תובנה חדשה לעיבוד אינפורמציה קורטיקלית. לדוגמה, יש האמינו סוכנות חושית לצוץ במהלך האינטראקציות מהירה בין אזורי החישה חזיתית; עם זאת, מנגנוני שלהם נותרו בלתי ברורים מאז לזרימה מהירה, בקנה מידה גדול, בקליפת המוח מידע קשה לנטר מבלי השיטה המובאת כאן.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
ח"כ בקשה פטנט על כל-קורטיקלית מערך ECoG היא להשתמש בפרוטוקול זה (מס '. 2018-210975).
Acknowledgments
אנו מודים יורי Shinomoto על מתן טיפול בבעלי חיים, אימון, הקלטות ער. מערכי ECoG של יוצרו על ידי Cir-טק (www.cir-tech.co.jp). יתר על כן, ברצוננו להודות Editage (www.editage.jp) עבור עריכה בשפה האנגלית. עבודה זו נתמך על ידי מיפוי מוח על-ידי Neurotechnologies משולב ללימודי המחלה (המוח/מחשבות), הסוכנות יפן מחקר רפואי ופיתוח (AMED) (JP18dm0207001), פרויקט המדע המוח המרכז (רומן מדע יוזמות CNSI), המכונים הלאומיים של מדעי הטבע (NINS) (BS291004, מ. ק), ועל ידי האגודה יפן לקידום המדע (JSPS) KAKENHI (JP17H06034, מ. ק).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Beaker (100 cc) | Outocrave | ||
| Cotton ball | Outocrave | ||
| Absorption triangles | Fine Science Tools Inc. | 18105-03 | Outocrave |
| Cotton swab with fine tip | Clean Cross Co., Ltd. | HUBY340 BB-013 | Outocrave |
| Gauze | Outocrave | ||
| Towel forceps | Outocrave | ||
| Scalpel handle | Outocrave | ||
| Needle Holder | Outocrave | ||
| Iris Scissor | Outocrave | ||
| Micro-Mosquito Forceps | Outocrave | ||
| Adson, 1x2 teeth | Outocrave | ||
| Bone Curette | Outocrave | ||
| Micro spatura | Fine Science Tools Inc. | 10091-12 | Outocrave |
| Needle Holders, 12.5 cm, Curved, Smooth Jaws | World Precision Instruments | 14132 | Outocrave |
| Vessel Dilator, 12 cm, 0.1 mm tip | Fine Science Tools Inc. | 18131-12 | Outocrave |
| Vessel Dilator, 12 cm, 0.2 mm tip | Fine Science Tools Inc. | 18132-12 | Outocrave |
| Fine-tipped rongeur | Fine Science Tools Inc. | 16221-14 | Outocrave |
| Manipurator of a stereotaxic frame | Gas sterilization | ||
| Wrench for the manipurator | Gas sterilization | ||
| Hand-made fixture for the connector | Gas sterilization | ||
| Silicon cup for dental acril | Gas sterilization | ||
| Silicon cup hlder | Gas sterilization | ||
| Paintbrush | Gas sterilization | ||
| Pencil | Gas sterilization | ||
| Micro screw, 1.4 mm x 2.0 mm | Nippon Chemical Screw Co., Ltd. | PEEK/MPH-M1.4-L2 | Gas sterilization |
| Screw driver for the micro screw | Gas sterilization | ||
| Micromotor handpiece of a drill | Gas sterilization | ||
| Stainless steel burr, 1.4 mm | Gas sterilization | ||
| Stainless steel burr, 1.0 mm | Gas sterilization | ||
| Drill bit, 1.2 mm | Gas sterilization | ||
| Rubber air blower | Gas sterilization |
References
- Fukushima, M., Chao, Z. C., Fujii, N. Studying brain functions with mesoscopic measurements: Advances in electrocorticography for non-human primates. Current Opinion in Neurobiology. 32, 124-131 (2015).
- Nagasaka, Y., Shimoda, K., Fujii, N. Multidimensional recording (MDR) and data sharing: an ecological open research and educational platform for neuroscience. PLoS One. 6 (7), e22561 (2011).
- Fukushima, M., et al. An electrocorticographic electrode array for simultaneous recording from medial, lateral, and intrasulcal surface of the cortex in macaque monkeys. Journal of Neuroscience Methods. 233, 155-165 (2014).
- Komatsu, M., Sugano, E., Tomita, H., Fujii, N. A Chronically Implantable Bidirectional Neural Interface for Non-human Primates. Frontiers in Neuroscience. 11, 514 (2017).
- Komatsu, M., Takaura, K., Fujii, N. Mismatch negativity in common marmosets: Whole-cortical recordings with multi-channel electrocorticograms. Scientific Reports. 5, 15006 (2015).
- Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459 (7246), 523-527 (2009).
- Okano, H., et al. Brain/MINDS: A Japanese National Brain Project for Marmoset Neuroscience. Neuron. 92 (3), 582-590 (2016).
- de la Mothe, L. A., Blumell, S., Kajikawa, Y., Hackett, T. A. Cortical connections of auditory cortex in marmoset monkeys: lateral belt and parabelt regions. Anatomical Record. 295 (5), 800-821 (2012).
- Kaas, J. H., Hackett, T. A. Subdivisions of auditory cortex and processing streams in primates. Proceedings of National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (22), 11793-11799 (2000).
- Ghahremani, M., Hutchison, R. M., Menon, R. S., Everling, S. Frontoparietal Functional Connectivity in the Common Marmoset. Cerebral Cortex. , (2016).
- Belcher, A. M., et al. Functional Connectivity Hubs and Networks in the Awake Marmoset Brain. Frontiers in Integrative Neuroscience. 10, 9 (2016).
- Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
- Solomon, S. G., Rosa, M. G. A simpler primate brain: the visual system of the marmoset monkey. Frontiers in Neural Circuits. 8, 96 (2014).
- Burman, K. J., Palmer, S. M., Gamberini, M., Rosa, M. G. Cytoarchitectonic subdivisions of the dorsolateral frontal cortex of the marmoset monkey (Callithrix jacchus), and their projections to dorsal visual areas. Journals of Comparative Neurology. 495 (2), 149-172 (2006).
- Bakola, S., Burman, K. J., Rosa, M. G. The cortical motor system of the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Neuroscience Research. 93, 72-81 (2015).
- Krubitzer, L. A., Kaas, J. H. The organization and connections of somatosensory cortex in marmosets. Journal of Neuroscience. 10 (3), 952-974 (1990).
- Miller, C. T., et al. Marmosets: A Neuroscientific Model of Human Social Behavior. Neuron. 90 (2), 219-233 (2016).
- Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29 (3), 162-173 (1996).
- Avants, B. B., et al. A reproducible evaluation of ANTs similarity metric performance in brain image registration. Neuroimage. 54 (3), 2033-2044 (2011).
- Hashikawa, T., Nakatomi, R., Iriki, A. Current models of the marmoset brain. Neuroscience Research. 93, 116-127 (2015).
