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Neuroscience

일반적인 마모 셋에 전체 피 질 Electrocorticographic 배열의 만성 이식

doi: 10.3791/58980 Published: February 1, 2019

Summary

우리는 지속적으로 피 질 측 두 엽에 후 두 극과 정면 기둥에서의 거의 전체 측면 표면 커버 일반적인 마모 셋에 대 한 전체 피 질 electrocorticographic 배열을 개발 했습니다. 이 프로토콜의 비단 뇌 경 막 외 공간에 배열의 만성 이식 절차를 설명합니다.

Abstract

Electrocorticography (ECoG) 고해상도 spatiotemporal 대뇌 피 질에서 전기 분야 잠재력의 모니터링 가능 얇고, 유연한 ECoG 전극의 최근 발전은 대규모 대뇌 피 질의 활동의 안정적인 녹음의 전도 활성화 하 고 있다. 일반적인 마모 셋에 대 한 전체 외피 ECoG 배열을 개발 했습니다. 배열은 지속적으로 후 두 극 측 두 엽에 정면 기둥에서 대뇌 반구의 옆 표면 전체 거의 커버 하 고 그것은 한 번에 전체 대뇌 피 질의 신경 활동을 캡처합니다. 이 프로토콜의 비단 뇌 경 막 외 공간에 배열의 만성 이식 절차를 설명합니다. 자그마한은 ECoG 녹음, 하나 되는 해 부 구조 인간과 원숭이, 정면, 정수 리, 그리고 시간적 복합물을 포함 하 여에서 동종 조직에 관한 두 가지 장점이 있다. 다른 장점은 비단 뇌 lissencephalic 이며, 더 어려운 뇌 표면에 노출 되는 ECoG와 원숭이에 액세스 하는 단지의 많은 수를 포함 되어 있습니다. 이러한 기능 대부분 대뇌 피 질의 영역 두뇌의 표면 아래에 직접 액세스할을 수 있습니다. 이 시스템 글로벌 대뇌 피 질의 정보 및 공간에서 밀리미터 순서 시간에 하위 밀리초 순서에 높은 해상도와 처리를 조사 하는 기회를 제공 한다.

Introduction

인식은 광범위 한 뇌 네트워크, 인간에서 발달 및 더 높은 인지에 관한 행동에 관련 된 것으로 특히 피 질에서 신경 앙상블의 조화를 요구 한다. 그러나,는 피 질이 인지 행동을 달성 하는 방법을 신경 과학 분야에서 미해결된 문제 이다. 얇고, 유연한 electrocorticographic (ECoG) 전극의 최근 개발 대규모 대뇌 피 질의 활동1에서 안정적인 녹음의 전도 수 있습니다. 후 지와 동료 마 카 크 원숭이2,3에 대 한 전체 외피 ECoG 배열을 개발 했습니다. 배열은 지속적으로 거의 전체 측면 피 질, 시간적, 정면 기둥을 후 두 극에서 커버 하 고 한 번에 전체 대뇌 피 질의 신경 활동을 캡처합니다. 우리는 더 일반적인 마모 셋4,5에서 응용, 유전 manipulability6,7, 새로운 세계 작은 원숭이 대 한이 시스템을 개발 했습니다. 이 동물의 다른 종에 비해 몇 가지 장점이 있습니다. 시각, 청각, somatosensory, 모터, 및이 종족의 정면 대뇌 피 질의 영역 이전 매핑된 되었고 인간과 원숭이8,9, 같은 분야에 기본적인 동종 조직을 보고 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16. 그들의 머리는 부드러운, 그리고 가장 측면 대뇌 피 질의 영역 ECoG 원숭이에 액세스 하 고 어렵게 피 질 표면에 노출 되는. 이러한 기능을 바탕으로는 마모 셋은 electrocorticographic 연구에 적합 합니다. 또한, 자그마한 사회적 행동을 전시 하 고 인간의 사회적 행동17의 후보 모델 역할을 제안 되었습니다.

이 프로토콜 일반적인 마모 셋 피 전체 측면 표면에 ECoG 배열의 경 막 외 주입 절차를 설명합니다. 그것은 감각, 모터, 영장류 대뇌 피 질의 신경 과학에 대 한 대규모 대뇌 피 질의 활동을 모니터링 하는 기회를 제공 한다 더 높은 인식과 사회 도메인.

Protocol

이 프로토콜 6 일반적인 자그마한에서 수행 되었습니다 (4 남성, 2 여성; 몸 무게 = 320-470 g; 나이 14-53 개월 =). 모든 절차 관리 및 실험 동물의 사용에 대 한 국가 학회 건강 지침의 권고에 따라 실시 했다. 프로토콜 (No. RIKEN 윤리 위원회에 의해 승인 되었다 H28-2-221(3))입니다. 모든 수술은 마 취, 수행 했다 그리고 그들의 불편 뿐만 아니라 사용 하는 동물의 수를 최소화 하기 위해 모든 노력 했다.

1입니다. 준비

  1. 각 개인의 두뇌의 구조 자기 공명 이미지를 (MRI)를 가져옵니다. 이 등록은 비단 뇌 아틀라스와 컴퓨터 단층 촬영 (CT)을 통해 전극 위치를 식별 하기 위해 사용 됩니다.
  2. ECoG 배열의 준비: 준비 하는 사용자 지정된 멀티 채널 ECoG 배열 (그림 1A). 32 및 64 전극 가진 두 시트 96ch ECoG 배열에 의하여 이루어져 있다. 두뇌 크기에서 개별 차이 수용 하기 위해 ECoG 배열 유연한 팔이 있다. 팔은 개인의 두뇌 모양에 따라 일시적인 극을 커버 수 있습니다. ECoG 전극과 접지 전극 같은 방향으로 향하게 반대 직면 참조 전극 배치 합니다.
    1. 커넥터 케이스 (그림 1B)와 ECoG 어레이 조립 하 고 수술 하는 동안 액체의 유입을 방지 하기 위해 아크릴 접착제를 사용 하 여 커넥터 (그림 1C)의 간격을 밀봉. 에틸렌 산화물 가스 배열 소독.
  3. 준비 하 고 악기를 소독.
    참고: 모든 악기를 사용 재료의 테이블에에서 나열 됩니다.

2입니다. ECoG 배열의 주입

참고: 음식과 액체 4 h 수술 이전 보다 더 큰의 섭취를 철회 한다. 멸 균된 장갑과 악기를 사용 하 여 무 균 기법으로 모든 수술 단계를 수행 합니다.

  1. 사전 이식 절차
    1. 유도 비단 마 취 마 취 제 (15 mg/kg)의 근육 (인스턴트 메신저) 주입 하 여 5 분 인스턴트 메신저 아트로핀 (0.08 mg/kg) 주사 후.
    2. Anesthetize 및 isoflurane (1-3% 산소/질소 산화물의 혼합물으로 희석)를 사용 하 여 마 취를 유지 동물의 생리 상태에 따라이 지속적으로 모니터링 해야. 그 심장 박동이 130-180 BPM 및 모니터 체온과 동맥 혈 산소 포화 (SpO2) 동물의 상태를 판단 하는 지속적으로 확인 합니다.
    3. 클리퍼 스와 헤어 리무버 동물의 머리의 상단을 면도. 완전히 젖은 거 즈로 피부 머리 제거 크림 린스 또는 그것은 피부 손상을 일으킬 것입니다.
    4. 항생제 관리 (cefovecin; 16 mg/kg 사우스 캐롤라이나), 항 고혈압 제 (furosemide, 인스턴트 메신저 2.0 mg/kg), 그리고 antihemorrhagic (carbazochrome 나트륨 된 하이드 레이트; 0.2 mg/kg 인스턴트 메신저).
    5. 동물 stereotaxic 프레임에 놓습니다. 이 시점에서 귀 바, 건조 및 수술 후 통증을 방지 하기 위해 눈에 안과 연 고 2% 리도 카 인 젤리를 적용 합니다.
    6. 요오드 솔루션 외과 영역을 소독 하 고 소독된 커튼으로 커버. 2% 리도 카 인 젤리 피부 절 개의 장소에 적용 됩니다.
  2. 이식 절차
    1. 피부 메스와 함께 두 피의 중간을 통해 약 4 cm incise 노출은 외과 영역의 모든 때까지 퀴 렛와 두개골에서 일시적인 근육을 분리 합니다. 두개골 표면에 조직 밖으로 청소 하 고 필요한 경우 압력 hemostasis 그리고 뼈 왁 스, 완전히 출혈을 멈추게. 피부와 moistened 거 즈와 근육의 가장자리를 감싸 줍니다. 수술 하는 동안 지 면에 거 즈를 유지.
    2. 정면 장 대의 가장자리에 배열의 정면 모서리에 배치. 살 균 연필로 craniotomy, 슬릿, 및 두개골에 구멍을 위한 계획된 영역을 표시 합니다. Craniotomy 위치 배열 (그림 2)의 디자인에 따라 달라 집니다.
    3. 그림 2와 같이 마크 1, 따라 craniotomy를 드릴. 뼈를 시추 하는 동안 외과 의사에 대 한 명확한 보기를 유지 하기 위해 최첨단에 공기를 불어. 다음, 뼈 조각 것입니다 여전히 연결할 수 센터에서 경질으로 줄곧 마크 2, 주위 뼈를 잘라. 들어올려 조각을 부드럽게 한 가장자리에서 고 주걱으로 경질을 벗기다. 이 과정은 천천히 그리고 신중 하 게, 실시 되어야 합니다 또는 그것 두 라 쉽게 찢을 것 이다.
      1. 뼈 조각에서 뼈 팁을 제거 하 고 랩 moistened 거 즈와 조각이 조각 배열 이식 후 반환 됩니다.
    4. 3, 4 그림 2와 같이 craniotomy를 수행 합니다. 이들은 각각 orbitofrontal 및 후 두 지역으로 전극의 삽입을 허용 한다.
    5. 마크 5 그림 2와 같이 슬릿을 드릴. 이러한 슬릿 올바르게 삽입 되도록 배열의 검사를 허용 합니다.
    6. 경질 이제 노출 됩니다. 식 염 수와 영역을 세척 하 고 필요한 경우 압력 hemostasis와 젤라틴 스폰지, 출혈을 멈추게. 오픈 craniotomy 가장자리 퀴 렛 또는 뼈 rongeur로 청소 될 필요가 있습니다.
    7. (표시 된 그림2에서 6) 슬릿으로 참조 전극 배치를 확인 합니다. 콘트라 측면 sensorimotor 및 후 두 지역에서 경 막 외 공간에 참조 전극 배치 합니다. 위치는 실험의 특정 요구에 따라 결정 되어야 합니다.
    8. 1.0 m m 나사 ( 그림 2에서 십자가)와 커넥터의 각 줄기 주위 4 지점에서 드릴 나사 구멍. 경질 물질의 손상을 방지 하려면 두개골 아래 주걱을 삽입 합니다. 이 구멍은 두개골에 대하여 직각 이어야 한다. 그런 다음, 두개골에 커넥터를 해결 하기 위해 앵커 픽 나사 (1.4 x 2.5 m m) 설치 합니다.
    9. 경 막 외 공간으로 ECoG 배열을 삽입 합니다. 사용 일자는 배열을 보유 하는 집게.
      참고: 배열 굽 힘 없이 삽입 한다. 배열 핀이 구부러지거나 하는 경우 두개골과 경질 사이 주걱을 삽입 하 여 적절 한 공간을 만듭니다. 경우는 절곡 전극의 일부를 차단 하는 두뇌의 상대적으로 작은 크기에 의해 발생 했다.
    10. 치과 아크릴 및 지상 전극을 수정 합니다. 경 막 외 공간에 참조 전극과 접지 전극 두개골 표면에 놓습니다. 두 연락처 두개골을 직면 한다.
    11. 뼈 조각을 다시 넣고 나사에 치과 아크릴 두개골에 커넥터와 헤드 게시물을 수정.
    12. 이 마와 뒷 머리에 6-0 나일론 피부를 봉합 하 고 피부 클로저를 사용 하 여 커넥터의 양쪽에 스킨을 수정.
  3. 후 이식 절차
    1. Stereotaxic 프레임에서 동물을 제거 합니다. 그는 동물 유지 따뜻하고 산소와 함께 제공 된 다음 단계를 확인 하십시오.
    2. 즉시 수술 후, 수술 후 통증 감소 meloxicam (0.3 m g/k g 인스턴트 메신저)와 동물을 주입. 항 염증 제 코르 티 코 스테로이드 (dexamethasone; 인스턴트 메신저 2.0 mg/kg) 및 피하 주입 (lactated 벨의 솔루션, 5.0 mL), 관리는 gastroprotectant로 famotidine (0.5 mg/kg)를 포함 하 여.
      참고: 스테로이드와 NSAIDs의 동시 사용 위장 부작용에 대 한 잠재력이 있다.
    3. 동물 복구 되었습니다 후 (심장 박동 및 SpO2 확인), 감시 하는 중요 한 기호를 제거 하 고 2-3 일 동안 중 환자 실에는 동물을 전송.

3. 수술 후 치료

참고: 그것은 일반적으로 수술에서 완전히 회복 하기 위해 동물에 대 한 일 걸립니다.

  1. 뇌 붓기를 방지 하기 위해 항 염증 제 코르 티 코 스테로이드 dexamethasone (2.0 mg/kg) 수술 후 첫 날에 하루에 두 번 관리 합니다. 다음, 하루에 두 번 두 번째 및 세 일에 1.5 m g/k g을 1 mg/kg 4 번째 날에 하루에 두 번 복용량을 줄일 수 있습니다.
  2. 통증 (meloxicam 0.1 mg/kg 경구, 하루에 한 번)과 antihemorrhagic (carbazochrome 나트륨 된 하이드 레이트, 0.2 mg/kg 인스턴트 메신저, 하루에 두 번) 수술 후 5 일 동안.
    참고: 우리의 경우에는 수술 후 1-2 일 일부 자그마한 (3 개 중에 6) 되었다 덜 적극적이 고 구 토. 이 때문에 혈액 응고 증가 intracranial 압력에 의해 발생 될 수 있습니다. 자그마한 이러한 증상을 제시, 우리 머리를 재개 하 고 일반 마 취 (alfaxalone) 응고 제거. 주입 동안 ECoG 배열의 아무 벤딩 경우, 혈액 응고와 뼈 조각을 반환 된 배열 사이 공간에서 가능성이 했다. 이 경우에, 혈액 응고 멀리 여 실행 염 카 테 터를 사용 하 여 공간으로 세척 될 수 있다. 이 절차는 일반적으로 동물에서 복구를 리드.
  3. 전극 위치 식별
    1. 수술 후 약 1 주 동물의 머리의 컴퓨터 단층 촬영 (CT) 검사를 수행 합니다.
      참고: 이 신호를 제대로 기록 수 경우 확인 하는 좋은 기회입니다. 커넥터 케이스 열고 있는 경우 모든 혈전을 제거 합니다.
    2. Stereotaxic 좌표 AFNI 소프트웨어18 (https://afni.nimh.nih.gov) (그림 3A)를 사용 하 여 MRI T2-가중치를 맞춥니다. CT 이미지를 AFNI (그림 3B)와 해 부 자기 공명 T2가 중 이미지를 맞춥니다. MRI (그림 3C)을 비단 뇌 아틀라스 AFNI와 개미19등록.

Representative Results

전체 외피 ECoG 배열 동시에 반구 전체에서 신경 활동을 캡처할 수 있습니다. 그림 4 는 깨어 비단에 여러 청각 영역에서 청각 갖는 잠재력 (AEPs)의 예를 보여줍니다. ECoG 녹음 수동 수신 대기 조건에서 실시 되었다. 각 비단 무작위로 순수한 음색의 주파수의 20 가지의 유형을 구성 되어 청각 자극에 노출 되었다. 다음, 우리 ECoGs 음색의 낭비할 정렬 평균 AEPs 계산 합니다. 다른 웨이브 형태 관찰 했다 낮은 및 높은 청각 영역, 우리의 ECoG 배열의 공간 해상도 다른 대뇌 피 질의 영역에서 처리 하는 다른 정보를 캡처할 수 있습니다 나타냅니다.

Figure 1
그림 1: ECoG 배열 준비. (A) 32 및 64 ECoG 배열 (왼쪽 및 오른쪽 아래), 커넥터 케이스 (왼쪽 상단), 및 기록 시스템 (오른쪽 상단)에 대 한 프런트 엔드. "G"와 "R" 각 배열의 그랜드 나타내고 전극을 각각 참조 합니다. (B) 조립 ECoG 배열. (C) 모든 간격 (빨간색 사각형)을 밀봉 한다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2:는 craniotomy의 예. (A) 얇은 회색 두꺼운 검은 선을 나타내고 ECoG 배열의 윤곽선 craniotomy의 계획된 지역 각각. 십자가 앵커 구멍에 해당합니다. 동그라미 숫자 드릴링의 순서를 나타냅니다. (B) 예를 들어 CT 이미지는 craniotomy의. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 3
그림 3: 각 전극의 지역화. (A) t 2가 중 MRI, CT (B), 그리고 (C) 전극 위치는 지도 책에. 아틀라스가이 원고에 사용 되는 Hashikawa-아틀라스20, MRI cytoarchitectual 지도 기반으로 3 차원 버전 우드 워드 이다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 4
그림 4: 청각 갖는 잠재력의 예. (A) 원숭이 제이 (B) 예 AEPs의 청각 영역. 전극 다른 청각 영역에 있는 다른 웨이브 형태를 보여줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

9:00 시작 준비
10:00 Incise 피부
두개골 (10 분)의 노출
Craniotomy (30 분)
11:00 삽입 배열 시작
삽입 배열 (60 분)
오후 12 시 30 분 가까운 피부

표 1: 수술의 시간 과정을 권장합니다.

Discussion

수술 전후 성공적인 이식에 대 한 동물 적절 한 영양 섭취와 함께 제공 한다. 짧은 시간 운영은 또한 동물의 복구를 최적화 하는 것이 중요입니다. 준비는 최소 1 일 전에 수술 완료 되어야 합니다. 작동 시간을 줄이기 위해 이전 craniotomy 훈련 종료 동물 다른 실험적인 목적을 위한 전극 배열 삽입 된 것이 좋습니다. 표 1 이 프로토콜에 대 한 시간 코스의 한 예를 보여 줍니다.

우리 마 취 절차와 수술 후 치료에 사건-의해-사건을 기준으로. 이 비디오 프로토콜에서 동물 마 취 되었다 고 isoflurane 및 tracheal 삽 관 법을 통해 전달 하는 산소의 혼합물을 사용 하 여 유지. Isoflurane sevoflurane, 대체 될 수 있습니다 그리고 tracheal 삽 관 법은 마스크와 대체 될 수 있다. 다른 경우에, 우리는 동물 마 취 제와 medetomidine의 혼합물의 근육 주사와 취. 이 경우에, 동물 butorphanol (인스턴트 메신저 0.2 mg/kg)와 함께 진정 처음 했다 고 수술 마 취는 마 취 제 (인스턴트 메신저 30 mg/kg) 및 medetomidine (인스턴트 메신저 0.35 mg/kg)의 혼합물으로 달성 했다.

ECoG는 직접 전기 분야에서 변화를 기록, 때문에 그것의 일시적인 해결책 기록 시스템에 의해 제한 됩니다. 우리의 기록 시스템의 최대 시간 해상도 30 kHz 이다. 우리는 일반적으로 1 kHz 샘플링 속도로 신호를 샘플링 하 고 감각/모터 정보 추출에 대 한 충분 한 것이 발견 했다.

공간 해상도 전극 디자인에 따라 달라 집니다. 이 프로토콜에서 각 전극 접촉 직경에서 0.8 m m이 고 2.5 m m의 전극 간 거리를 했다. 우리는 다른 청각 영역에 있으며 2.5 m m (ch18 ch19, 그림4에서 ch20)으로 구분 된 3 개의 전극에서 다른 파형 관찰. 따라서, 우리의 전극의 공간 해상도 2.5 m m 미만으로 추정 된다. 경우에 따라 전극 연락처 서로 게 더 밀접 하 게 위치 했다. 이러한 경우에 공간 해상도 세밀 하 게 했다.

우리는 성공적으로 좋은 품질을 가진 장기, 신경 신호를 기록 했다. 한 경우, 커넥터 및 치과 아크릴, 두개골에서 분리 된 고 전극은 수술 후 깨진된 4 개월. 이 때문에 수술 하는 동안 치과 아크릴과 두개골 사이 포함 되 고 혈액 조직 성장에 의해 발생 했다. 또 다른 마모 셋 수술 후 5 개월 된 실험적인 요구 사항으로 인해 종료 되었습니다. 4 동물 실험에 여전히 참여 (1 년, 7 개월, 4 개월, 4 개월 수술 후, 각각).

ECoG 어레이 일반적으로 인간과 원숭이에 아 공간에 이식 됩니다. 그러나 그들은 섬세 한 동물 이기 때문에, 보다 적게 침략 적 경 막 외 implantations marmosets에 더 적합 하다. 얇은 경질 자그마한 ECoG 배열 했다 경질에 이식 하는 경우에 높은 주파수 뇌 신호를 모니터링 하는 데 허용의 문제. 경 막 외 주입의 단점 중 하나는 중간 피 질과 한 고 랑 내 모든 피 질에 액세스 하는 어려움입니다. 이러한 외피가 접근 경질 물질의 절 개를 요구 한다. 또한, ECoG 배열 표면 전극 있기 때문에, 대뇌 피 질의 깊이 측면에서 신호 소스를 지정 하기가 어렵습니다. 정확한 정보는 피 질에서 처리 이해, 그것은 깊이 전극 또는 광학 영상 같은 다른 방법을 포함 하는 데 필요한. 이러한 제한에도 불구 하 고 우리의 방법은 대뇌 피 질의 정보 처리에 대 한 새로운 통찰력을 제공할 수 있습니다. 예를 들어 감각 기관 있다 되었습니다으로 정면 및 감각 영역; 사이 급속 한 상호 작용을 통해 등장 그러나, 그들의 메커니즘 때문이 급속 한, 대규모, 대뇌 피 질의 정보 흐름은 여기에 제시 된 방법 없이 모니터링 하기가 불분명 남아 있습니다.

Disclosures

MK는 그녀이 프로토콜 (No. 2018-210975)에서 사용 하는 전체 외피 ECoG 배열에 대 한 특허에 대 한 적용 됩니다.

Acknowledgments

유리 Shinomoto는 동물 보호, 교육, 그리고 깨어 녹음을 제공 하는 감사 합니다. ECoG 배열 Cir-테크 (www.cir-tech.co.jp)에 의해 제조 되었다. 또한, 우리는 영어 편집 Editage (www.editage.jp)를 감사 하 고 싶습니다. 이 작품 질병 연구 (뇌/마음), 의료 연구 및 개발 (아메드) (JP18dm0207001), 소설 과학 이니셔티브 (센터의 뇌 과학 프로젝트에 대 한 일본 기관에 대 한 통합 된 Neurotechnologies에 의해 뇌 매핑 지원 했다 CNSI), 자연과학 (NINS) (BS291004, M.K.), 그리고 일본 사회 과학 (JSP)의 승진을 위한 국가 학회 (JP17H06034, M.K.) KAKENHI.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Beaker (100 cc) Outocrave
Cotton ball Outocrave
Absorption triangles Fine Science Tools Inc. 18105-03 Outocrave
Cotton swab with fine tip Clean Cross Co., Ltd. HUBY340 BB-013 Outocrave
Gauze Outocrave
Towel forceps Outocrave
Scalpel handle Outocrave
Needle Holder Outocrave
Iris Scissor Outocrave
Micro-Mosquito Forceps Outocrave
Adson, 1x2 teeth Outocrave
Bone Curette Outocrave
Micro spatura Fine Science Tools Inc. 10091-12 Outocrave
Needle Holders, 12.5 cm, Curved, Smooth Jaws World Precision Instruments 14132 Outocrave
Vessel Dilator, 12 cm, 0.1 mm tip Fine Science Tools Inc. 18131-12 Outocrave
Vessel Dilator, 12 cm, 0.2 mm tip Fine Science Tools Inc. 18132-12 Outocrave
Fine-tipped rongeur Fine Science Tools Inc. 16221-14 Outocrave
Manipurator of a stereotaxic frame Gas sterilization
Wrench for the manipurator Gas sterilization
Hand-made fixture for the connector Gas sterilization
Silicon cup for dental acril Gas sterilization
Silicon cup hlder Gas sterilization
Paintbrush Gas sterilization
Pencil Gas sterilization
Micro screw, 1.4 mm x 2.0 mm Nippon Chemical Screw Co., Ltd. PEEK/MPH-M1.4-L2 Gas sterilization
Screw driver for the micro screw Gas sterilization
Micromotor handpiece of a drill Gas sterilization
Stainless steel burr, 1.4 mm Gas sterilization
Stainless steel burr, 1.0 mm Gas sterilization
Drill bit, 1.2 mm Gas sterilization
Rubber air blower Gas sterilization

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References

  1. Fukushima, M., Chao, Z. C., Fujii, N. Studying brain functions with mesoscopic measurements: Advances in electrocorticography for non-human primates. Current Opinion in Neurobiology. 32, 124-131 (2015).
  2. Nagasaka, Y., Shimoda, K., Fujii, N. Multidimensional recording (MDR) and data sharing: an ecological open research and educational platform for neuroscience. PLoS One. 6, (7), e22561 (2011).
  3. Fukushima, M., et al. An electrocorticographic electrode array for simultaneous recording from medial, lateral, and intrasulcal surface of the cortex in macaque monkeys. Journal of Neuroscience Methods. 233, 155-165 (2014).
  4. Komatsu, M., Sugano, E., Tomita, H., Fujii, N. A Chronically Implantable Bidirectional Neural Interface for Non-human Primates. Frontiers in Neuroscience. 11, 514 (2017).
  5. Komatsu, M., Takaura, K., Fujii, N. Mismatch negativity in common marmosets: Whole-cortical recordings with multi-channel electrocorticograms. Scientific Reports. 5, 15006 (2015).
  6. Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459, (7246), 523-527 (2009).
  7. Okano, H., et al. Brain/MINDS: A Japanese National Brain Project for Marmoset Neuroscience. Neuron. 92, (3), 582-590 (2016).
  8. de la Mothe, L. A., Blumell, S., Kajikawa, Y., Hackett, T. A. Cortical connections of auditory cortex in marmoset monkeys: lateral belt and parabelt regions. Anatomical Record. 295, (5), 800-821 (2012).
  9. Kaas, J. H., Hackett, T. A. Subdivisions of auditory cortex and processing streams in primates. Proceedings of National Academy of Sciences of the United States of America. 97, (22), 11793-11799 (2000).
  10. Ghahremani, M., Hutchison, R. M., Menon, R. S., Everling, S. Frontoparietal Functional Connectivity in the Common Marmoset. Cerebral Cortex. (2016).
  11. Belcher, A. M., et al. Functional Connectivity Hubs and Networks in the Awake Marmoset Brain. Frontiers in Integrative Neuroscience. 10, 9 (2016).
  12. Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
  13. Solomon, S. G., Rosa, M. G. A simpler primate brain: the visual system of the marmoset monkey. Frontiers in Neural Circuits. 8, 96 (2014).
  14. Burman, K. J., Palmer, S. M., Gamberini, M., Rosa, M. G. Cytoarchitectonic subdivisions of the dorsolateral frontal cortex of the marmoset monkey (Callithrix jacchus), and their projections to dorsal visual areas. Journals of Comparative Neurology. 495, (2), 149-172 (2006).
  15. Bakola, S., Burman, K. J., Rosa, M. G. The cortical motor system of the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Neuroscience Research. 93, 72-81 (2015).
  16. Krubitzer, L. A., Kaas, J. H. The organization and connections of somatosensory cortex in marmosets. Journal of Neuroscience. 10, (3), 952-974 (1990).
  17. Miller, C. T., et al. Marmosets: A Neuroscientific Model of Human Social Behavior. Neuron. 90, (2), 219-233 (2016).
  18. Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29, (3), 162-173 (1996).
  19. Avants, B. B., et al. A reproducible evaluation of ANTs similarity metric performance in brain image registration. Neuroimage. 54, (3), 2033-2044 (2011).
  20. Hashikawa, T., Nakatomi, R., Iriki, A. Current models of the marmoset brain. Neuroscience Research. 93, 116-127 (2015).
일반적인 마모 셋에 전체 피 질 Electrocorticographic 배열의 만성 이식
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Komatsu, M., Kaneko, T., Okano, H., Ichinohe, N. Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset. J. Vis. Exp. (144), e58980, doi:10.3791/58980 (2019).More

Komatsu, M., Kaneko, T., Okano, H., Ichinohe, N. Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset. J. Vis. Exp. (144), e58980, doi:10.3791/58980 (2019).

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