Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Kronisk implantering av hele-kortikale Electrocorticographic matrise i den vanlige Marmoset

doi: 10.3791/58980 Published: February 1, 2019

Summary

Vi har utviklet en hel-kortikale electrocorticographic matrise for den vanlige marmoset som kontinuerlig dekker nesten hele laterale overflaten av cortex, fra occipital pole timelige og frontal polakker. Denne protokollen beskriver en kronisk implantasjon fremgangsmåte for tabellen i epidural plass i marmoset hjernen.

Abstract

Electrocorticography (ECoG) lar overvåking av elektriske feltet potensialer fra hjernebarken med høy spatiotemporal oppløsning. Siste utviklingen av tynt, fleksibelt ECoG elektroder har aktivert gjennomføring av stabil opptak av storskala kortikale aktivitet. Vi har utviklet en hel-kortikale ECoG matrise for den vanlige marmoset. Matrisen dekker kontinuerlig nesten hele laterale overflaten av kortikale halvkule, fra occipital pole timelige og frontal polakker, og den fanger opp hele-kortikale nevrale aktivitet i ett skudd. Denne protokollen beskriver en kronisk implantasjon fremgangsmåte for tabellen i epidural plass i marmoset hjernen. Silkeaper har to fordeler om ECoG innspillinger, en homologe organiseringen av anatomiske strukturer hos mennesker og aper, inkludert frontal parietal og tidsmessige komplekser. Den andre fordelen er at marmoset hjernen er lissencephalic og inneholder et stort antall komplekser, som er vanskelige å adgang i aper med ECoG, som er utsatt for hjernen overflaten. Disse funksjonene gir direkte tilgang til de fleste kortikale områder under overflaten av hjernen. Dette systemet gir en mulighet til å undersøke globale kortikale informasjonsbehandling med høy oppløsning sub millisekund rekkefølgen tid og millimeter rekkefølgen plass.

Introduction

Kognisjon krever koordinering av nevrale ensembler over utbredt hjernen nettverk, spesielt neocortex som er godt utviklet hos mennesker og antatt for å være involvert i høyere Kognitiv atferd. Men er hvordan neocortex oppnår dette kognitive et uløst problem i feltet nevrovitenskap. Siste utviklingen av tynt, fleksibelt electrocorticographic (ECoG) elektroder kan gjennomføring av stabil opptak fra store kortikale aktivitet1. Fujii og kolleger har utviklet en hel-kortikale ECoG matrise for macaque apekatter2,3. Matrisen kontinuerlig dekker nesten hele laterale cortex, occipital Pole til timelige og frontal polene, og fanger hele-kortikale nevrale aktivitet i ett skudd. Videre har vi utviklet dette systemet for programmet i vanlige marmoset4,5, en liten, nye-verden ape med genetisk manipulability6,7. Dette dyret har flere fordeler sammenlignet med andre arter. Visuell, auditiv, somatosensory, motor, og frontal kortikale områder av denne arten er tidligere kartlagt og rapportert grunnleggende homologe organisasjon på samme områder i mennesker og aper8,9, 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16. hjernen er glatt, og mest lateral kortikale områder er utsatt på overflaten av cortex, som er vanskeligere å adgang med ECoG i aper. Basert på disse funksjonene, er marmoset egnet for electrocorticographic studier. Videre silkeaper exhibit atferd og foreslått som en kandidat modell av menneskelig atferd17.

Denne protokollen beskriver en epidural implantasjon prosedyre av ECoG array på hele laterale overflaten av cortex i en felles marmoset. Det gir en mulighet til å overvåke store kortikale aktivitet for primas kortikale nevrovitenskap, inkludert sensoriske, motor, høyere kognitive og sosiale domener.

Protocol

Denne protokollen er utført på 6 vanlige silkeaper (4 menn, 2 kvinner; kroppsvekt = 320-470 g; alder = 14-53 måneder). Alle prosedyrer ble utført i samsvar med anbefalingene av nasjonale institutter for helse retningslinjer og bruk av forsøksdyr. Protokollen ble godkjent av RIKEN etiske komiteen (nr. H28-2-221(3)). Alle kirurgiske prosedyrer ble utført under narkose, og alle forsøk ble gjort for å minimere antallet av dyr samt deres ubehag.

1. forberedelse

  1. Få en strukturell magnetisk resonans bilde (MRI) av hver individuelle hjernen. Dette brukes til å identifisere elektrode posisjoner gjennom registrering med en marmoset hjernen atlas og datamaskinen tomografi (CT).
  2. Utarbeidelse av ECoG matrisen: forberede en tilpasset flerkanals ECoG matrise (figur 1A). Et 96ch ECoG utvalg består av to ark med 32 og 64 elektroder. For å imøtekomme individuelle forskjeller i hjernestørrelse, har ECoG array en fleksibel arm. Armen kan dekke timelige pole, avhengig av individuelle hjernen figur. Plass referanse elektrodene mot motsatt ECoG elektrodene og bakken elektrodene vendt i samme retning.
    1. Montere ECoG matrise med et koblingen tilfelle (figur 1B) og forsegle hullene av kontakten (figur 1 c) bruke akryl lim for å hindre tilførsel av væske under operasjonen. Sterilisere matrise med etylenoksidgass.
  3. Forberede og sterilisere instrumenter.
    Merk: Alle instrumenter er oppført i Tabellen for materiale.

2. implantering av ECoG matrise

Merk: Trekke inntak av mat og væske større enn 4 timer før operasjonen. Utfør alle kirurgiske trinn med steril teknikk bruke steriliserte hansker og instrumenter.

  1. Før protesen prosedyrer
    1. Indusere anestesi i marmoset av intramuscular (IM) injeksjon av ketamin (15 mg/kg) 5 min etter im atropin (0,08 mg/kg) injeksjon.
    2. Bedøve og vedlikeholde anestesi med isoflurane (1-3% fortynnet med en blanding av oksygen/Dinitrogenoksid) avhengig av dyret fysiologisk tilstand, som bør være kontinuerlig overvåket. Kontroller at pulsen er 130-180 BPM og overvåke kroppstemperatur og arteriell blod oksygenmetning (SpO2) for kontinuerlig å dømme dyrets tilstand.
    3. Barbere toppen av dyrets hodet med avklipt og en hår remover. Skylle fullt-hårfjerning krem av huden med våt gasbind, eller det vil føre til skade huden.
    4. Administrere et antibiotikum (cefovecin, 16 mg/kg SC), antihypertensive (furosemid, 2,0 mg/kg im), og antihemorrhagic (carbazochrome natrium sulfonate hydrat; 0,2 mg/kg im).
    5. Plassere dyret på en stereotaxic ramme. Foreløpig gjelde 2% lidocaine gelé øre-barer og ophthalmica salve for øynene å hindre tørrhet og postoperativ smerte.
    6. Desinfiser det kirurgiske området med joden løsning og dekke det med sterilisert gardiner. Gjelde stedet for huden snitt 2% lidocaine gelé.
  2. Implantasjon prosedyrer
    1. Incise huden ca 4 cm gjennom midtlinjen av hodebunnen med skalpell. Koble timelige muskelen fra skallen med en curette til alle kirurgiske området er utsatt. Rense vev på skallen overflaten og stoppe blødningen helt med press hemostasen og med bein voks, om nødvendig. Pakk kanten av huden og musklene med fuktet gasbind. Hold gasbind fuktet under operasjonen.
    2. Plass frontal kanten av matrisen på kanten av frontal pole. Merke et planlagt område for craniotomy, sprekker og hull på skallen med en bakteriefri blyant. Hvor craniotomy avhengig av utformingen av matrisen (figur 2).
    3. Bore craniotomy langs merke 1, som vist i figur 2. Under boring benet, blåse luft i forkant å vedlikeholde et klart syn for kirurgen. Deretter skjær benet hele veien rundt merke 2, som bein stykket vil fortsatt være knyttet til dura på center. Løft stykke forsiktig fra en kant og løsner dura med en slikkepott. Denne prosessen må utføres sakte og forsiktig, eller vil det rive dura lett.
      1. Fjerne bein tips fra bein stykket og vikle brikken med fuktet gasbind, som dette stykke returneres etter implanting matrisen.
    4. Utføre craniotomy 3 og 4 som vist i figur 2. Disse tillate innsetting av elektroder i orbitofrontal og occipital områder, henholdsvis.
    5. Bore åpninger på merke 5 som vist i figur 2. Disse åpninger tillater undersøkelse av matrisen slik at det settes skikkelig.
    6. Dura vil nå bli utsatt. Vaske området med saltvann og stoppe blødningen med press hemostasen og en gelatin svamp, om nødvendig. Kanten av den åpne craniotomy må rengjøres med en curette eller Ben rongeur.
    7. Lage åpninger (merket 6 i figur 2) i som referanse elektrodene er plassert. Plass referanse elektrodene i epidural plass på contra-lateral sensorimotor og occipital områder. Stillingen skal fastsettes etter eksperimentelle behov.
    8. Bore hullene på fire punkter rundt hver stamme av kontakten med en 1.0 mm-skruen (krysser i figur 2). For å unngå skade dura saken, setter du inn en slikkepott under skallen. Disse hullene skal ortogonale mot skallen. Deretter Installer titt skruene (1,4 x 2,5 mm) som utgangspunkt å fikse koblingen til skallen.
    9. Sett inn ECoG matrisen i epidural plass. Bruk flathead tang å holde matrisen.
      Merk: Matrisen skal settes uten å bøye. Hvis matrisen er bøyd, kan du opprette et ved å sette inn en slikkepott mellom skallen og dura. Hvis bøying ble forårsaket av den relativt lille størrelsen på hjernen, kuttet noen av elektrodene.
    10. Løse referanse og bakken elektrodene med en tannlege akryl. Plassere referanse elektrodene i epidural plass og bakken elektroder på skallen. Både kontakten skal vende skallen.
    11. Sette bein stykket tilbake og fikse kontakt og hodet innlegget til skallen med dental akryl på skruene.
    12. Sutur i huden med 6-0 nylon på pannen og bak hodet og ordne huden ved siden av kontakten med huden nedleggelser.
  3. Etter implantasjon prosedyrer
    1. Fjerne dyret fra stereotaxic rammen. Sikre at dyr holdes varm og utstyrt med oksygen under følgende.
    2. Umiddelbart etter kirurgi, injisere dyret med har meloksikam (0,3 mg/kg im) å redusere postoperativ smerte. Administrere en anti-inflammatorisk kortikosteroid (dexamethasone, 2,0 mg/kg im) og underhud infusjon (lactated Ringer i løsningen, 5.0 mL), inkludert famotidine (0,5 mg/kg) som en gastroprotectant.
      Merk: En samtidig bruk av NSAIDs med steroider har et potensial for gastrointestinale bivirkninger.
    3. Etter dyret har gjenopprettet (bekrefte hjertefrekvens og SpO2), fjerne vitale tegn overvåking og overføre dyret i ICU for 2-3 dager.

3. postoperativ behandling

Merk: Vanligvis tar det 5 dager for dyr å komme helt fra kirurgi.

  1. For å hindre hevelse hjernen, administrere anti-inflammatorisk kortikosteroid deksametason (2,0 mg/kg) to ganger om dagen på den første dagen etter operasjonen. Deretter redusere dosen 1.5 mg/kg to ganger om dagen på andre og tredje dager og 1 mg/kg to ganger om dagen på den fjerde dagen.
  2. Administrere smertelindring (har meloksikam, 0,1 mg/kg muntlig, en gang om dagen) og en antihemorrhagic (carbazochrome natrium sulfonate hydrat 0,2 mg/kg im; to ganger om dagen) 5 dager etter operasjonen.
    Merk: I vårt tilfelle ble 1-2 dager etter operasjonen, noen silkeaper (3 til 6) mindre aktive og spydde. Dette kan skyldes økt intrakranielt Trykk på grunn av en blod clot. Når silkeaper presenteres disse symptomene, vi gjenåpnet hodet og fjernet blodpropp under generell anesthesia (alfaxalone). Hvis det var ingen bøying av ECoG array under implantation, var blodpropp sannsynlig i rommet mellom matrisen og hvor bein stykket ble returnert. I dette tilfellet kan blodpropp vaskes bort ved kjører saltvann i plass ved hjelp av et kateter. Denne fremgangsmåten fører vanligvis til utvinning i dyret.
  3. Identifikasjon av elektroden steder
    1. Rundt 1 uke etter operasjonen, utføre tomografi (CT) Datamaskinskanning dyr hodet.
      Merk: Dette er en god mulighet til å kontrollere om signaler kan registreres riktig. Åpne kontakten sak og fjerne alle blodpropp hvis de finnes.
    2. Juster T2-vektet Mr skal stereotaxic koordinatene ved hjelp av AFNI programvare18 (https://afni.nimh.nih.gov) (figur 3A). Justere CT bildet til T2-vektet anatomiske magnetisk resonans bilder med AFNI (figur 3B). Registrere en marmoset hjernen atlas MRI (Figur 3 c) med AFNI og MAUR19.

Representative Results

Hele-kortikale ECoG matrisen kan samtidig ta neuronal aktivitet fra helheten av en halvkule. Figur 4 viser eksempler på auditory evoked potensial (AEPs) fra flere auditiv områder i en våken marmoset. ECoG recordings ble utført i passiv lytting forhold. Hver marmoset var utsatt for auditory stimuli, som besto av randomiserte ren toner med 20 typer frekvens. Så beregnet vi AEPs ved å beregne ECoGs på linje med onsets på tonene. Ulike bølgen skjemaer ble observert fra lavere og høyere auditiv områder, som viser at romlig oppløsning på vår ECoG array kan fange forskjellig informasjon på ulike kortikale områder.

Figure 1
Figur 1: forberedelse for en ECoG matrise. (A) 32 og 64 ECoG matriser (nederst til venstre og høyre), et koblingen tilfelle (øverst til venstre) og en front-end for opptak systemer (øverst til høyre). "G" og "R" for hver matrise angir grand og referanse elektroder, henholdsvis. (B) samlet ECoG matrise. (C) alle hullene (rød rektangler) skal tettes. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 2
Figur 2: et eksempel på craniotomy. (A) den tynne grå og tykke svart linjer angir omrisset av ECoG array og planlagt på craniotomy, henholdsvis. Kors tilsvarer anker hull. Innringet nummeret indikerer rekkefølgen på boring. (B) et eksempel CT bilde av craniotomy. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 3
Figur 3: lokalisering av hver elektroden. (A) T2-vektet MRI, CT (B) og (C) elektroden steder på atlas. Atlas brukes i dette manuskriptet er Woodward 3D versjon basert på den Hashikawa-atlas20, som er en MRI-cytoarchitectual kart. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 4
Figur 4: eksempler på auditory evoked potensial. (A) Auditory området Monkey J. (B) eksempler av AEPs. Elektrodene i ulike auditiv områder viser ulike bølgen skjemaer. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

kl. Starte forberedelsene
10:00 am Incise hud
Eksponering av skallen (10 min)
Craniotomy (30 minutter)
kl. Begynne å sette inn matrisen
Sett inn matrisen (60 minutter)
12:30 PM Nær huden

Tabell 1: Anbefalt gang løpet av operasjonen.

Discussion

For vellykkede implantasjon, bør dyr være utstyrt med tilstrekkelig ernæring før og etter operasjonen. Kort Driftstid er også viktig å optimalisere dyrets utvinningen. Forberedelser skal være ferdig minst en dag før operasjonen. For å redusere driftstid, anbefales tidligere craniotomy trening med elektroden matrise innsetting i avsluttede dyr for andre eksperimentelle formål. Tabell 1 viser et eksempel på time course for denne protokollen.

Vi endret bedøvelse prosedyre og post-operativ behandling på et sak-til-sak grunnlag. I denne videoen protokollen, dyrene var anesthetized og vedlikeholdt ved hjelp av en blanding av isoflurane og oksygen leveres gjennom tracheal intubasjon. Isoflurane kan erstattes med desflurane, og tracheal intubasjon kan erstattes med en maske. I andre tilfeller anesthetized vi dyr med intramuskulær injeksjon av en blanding av ketamin og medetomidine. I dette tilfellet dyr ble opprinnelig bedøvet med butorphanol (0,2 mg/kg im) og kirurgisk anestesi ble oppnådd med en blanding av ketamin (30 mg/kg im) og medetomidine (0,35 mg/kg im).

Fordi ECoG registrerer direkte endringer i elektrisk felt, begrenses timelige oppløsningen av opptak systemet. Maksimaltiden oppløsningen av våre innspillingssystem er 30 kHz. Vi vanligvis samplet signaler på en 1 kHz samplingsfrekvens og har funnet at dette skal være tilstrekkelig for utvinning av sensoriske/motoriske informasjon.

Romlig oppløsning er avhengig av elektroden design. I denne protokollen, kontaktinformasjon elektrode var 0,8 mm i diameter og hadde en Inter elektrode avstand på 2,5. Vi observerte andre bølgeformer fra tre elektroder plassert i ulike auditiv områder og atskilt med 2,5 (ch18, ch19, ch20 i Figur 4). Dermed er romlig oppløsning på våre elektrodene anslått for å være mindre enn 2,5. I noen tilfeller var elektrode kontakter nærmere til hverandre. I disse tilfellene er romlige finere.

Vi registrert er langsiktige, nevrale signaler med god kvalitet. I ett tilfelle, kontakt og dental akryl ble løsrevet fra skallen og elektroden var brutt 4 måneder etter operasjonen. Dette var forårsaket av vevvekst på grunn av blod som finnes mellom dental akryl og skallen under operasjonen. En annen marmoset ble avsluttet på grunn av en eksperimentell krav 5 måneder etter operasjonen. Fire dyr fortsatt deltar i eksperimenter (1 år, 7 måneder, 4 måneder, og 4 måneder etter operasjonen, henholdsvis).

ECoG matriser er vanligvis implantert i subdural plass i mennesker og aper. Men er mindre invasiv epidural implantations mer egnet til silkeaper, fordi de er delikate dyr. Tynn dura sak silkeaper tillatt oss å overvåke høyfrekvente hjernen signaler, selv om ECoG matrisen ble implantert i dura. En av ulempene med epidural implantasjon er vanskeligheter med tilgang til midtlinjen cortex og noen cortex innenfor en sulcus. Nærmer seg disse halvdelene krever snitt av dura saken. Videre fordi ECoG matriser er overflaten elektroder, er det vanskelig å angi signalkilde i kortikale dybde. For å forstå nøyaktig informasjonsbehandling i cortex, er det nødvendig med andre metoder, for eksempel dybde elektrodene eller optisk tenkelig. Til tross for disse begrensningene, kan vår metode gi ny innsikt i kortikale informasjonsbehandling. For eksempel har sensoriske byrået vært antatt å komme gjennom rask interaksjoner mellom frontpartiet og sensoriske områder; men fortsatt deres mekanismer uklare siden denne raske, store, kortikale informasjonsflyt er vanskelig å overvåke uten metoden presenteres her.

Disclosures

MK er søknad om patent på hele-kortikale ECoG matrise hun har brukt i denne protokollen (nr 2018-210975).

Acknowledgments

Vi takker Yuri Shinomoto for å gi dyr omsorg opplæring og våken innspillinger. ECoG-matriser ble produsert av Cir-Tech (www.cir-tech.co.jp). Videre vil vi gjerne takke Editage (www.editage.jp) for engelsk redigering. Dette arbeidet ble støttet av hjerne kartlegging av integrert Neurotechnologies for sykdom studier (hjernen/sinn), Japan byrået for medisinsk forskning og utvikling (AMED) (JP18dm0207001), hjernen vitenskap prosjektet av Center for roman Science initiativer ( CNSI), de nasjonale instituttene naturvitenskap (NINS) (BS291004, MK), og av Japan Society for fremme av vitenskap (JSPER) KAKENHI (JP17H06034, MK).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Beaker (100 cc) Outocrave
Cotton ball Outocrave
Absorption triangles Fine Science Tools Inc. 18105-03 Outocrave
Cotton swab with fine tip Clean Cross Co., Ltd. HUBY340 BB-013 Outocrave
Gauze Outocrave
Towel forceps Outocrave
Scalpel handle Outocrave
Needle Holder Outocrave
Iris Scissor Outocrave
Micro-Mosquito Forceps Outocrave
Adson, 1x2 teeth Outocrave
Bone Curette Outocrave
Micro spatura Fine Science Tools Inc. 10091-12 Outocrave
Needle Holders, 12.5 cm, Curved, Smooth Jaws World Precision Instruments 14132 Outocrave
Vessel Dilator, 12 cm, 0.1 mm tip Fine Science Tools Inc. 18131-12 Outocrave
Vessel Dilator, 12 cm, 0.2 mm tip Fine Science Tools Inc. 18132-12 Outocrave
Fine-tipped rongeur Fine Science Tools Inc. 16221-14 Outocrave
Manipurator of a stereotaxic frame Gas sterilization
Wrench for the manipurator Gas sterilization
Hand-made fixture for the connector Gas sterilization
Silicon cup for dental acril Gas sterilization
Silicon cup hlder Gas sterilization
Paintbrush Gas sterilization
Pencil Gas sterilization
Micro screw, 1.4 mm x 2.0 mm Nippon Chemical Screw Co., Ltd. PEEK/MPH-M1.4-L2 Gas sterilization
Screw driver for the micro screw Gas sterilization
Micromotor handpiece of a drill Gas sterilization
Stainless steel burr, 1.4 mm Gas sterilization
Stainless steel burr, 1.0 mm Gas sterilization
Drill bit, 1.2 mm Gas sterilization
Rubber air blower Gas sterilization

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Fukushima, M., Chao, Z. C., Fujii, N. Studying brain functions with mesoscopic measurements: Advances in electrocorticography for non-human primates. Current Opinion in Neurobiology. 32, 124-131 (2015).
  2. Nagasaka, Y., Shimoda, K., Fujii, N. Multidimensional recording (MDR) and data sharing: an ecological open research and educational platform for neuroscience. PLoS One. 6, (7), e22561 (2011).
  3. Fukushima, M., et al. An electrocorticographic electrode array for simultaneous recording from medial, lateral, and intrasulcal surface of the cortex in macaque monkeys. Journal of Neuroscience Methods. 233, 155-165 (2014).
  4. Komatsu, M., Sugano, E., Tomita, H., Fujii, N. A Chronically Implantable Bidirectional Neural Interface for Non-human Primates. Frontiers in Neuroscience. 11, 514 (2017).
  5. Komatsu, M., Takaura, K., Fujii, N. Mismatch negativity in common marmosets: Whole-cortical recordings with multi-channel electrocorticograms. Scientific Reports. 5, 15006 (2015).
  6. Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459, (7246), 523-527 (2009).
  7. Okano, H., et al. Brain/MINDS: A Japanese National Brain Project for Marmoset Neuroscience. Neuron. 92, (3), 582-590 (2016).
  8. de la Mothe, L. A., Blumell, S., Kajikawa, Y., Hackett, T. A. Cortical connections of auditory cortex in marmoset monkeys: lateral belt and parabelt regions. Anatomical Record. 295, (5), 800-821 (2012).
  9. Kaas, J. H., Hackett, T. A. Subdivisions of auditory cortex and processing streams in primates. Proceedings of National Academy of Sciences of the United States of America. 97, (22), 11793-11799 (2000).
  10. Ghahremani, M., Hutchison, R. M., Menon, R. S., Everling, S. Frontoparietal Functional Connectivity in the Common Marmoset. Cerebral Cortex. (2016).
  11. Belcher, A. M., et al. Functional Connectivity Hubs and Networks in the Awake Marmoset Brain. Frontiers in Integrative Neuroscience. 10, 9 (2016).
  12. Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
  13. Solomon, S. G., Rosa, M. G. A simpler primate brain: the visual system of the marmoset monkey. Frontiers in Neural Circuits. 8, 96 (2014).
  14. Burman, K. J., Palmer, S. M., Gamberini, M., Rosa, M. G. Cytoarchitectonic subdivisions of the dorsolateral frontal cortex of the marmoset monkey (Callithrix jacchus), and their projections to dorsal visual areas. Journals of Comparative Neurology. 495, (2), 149-172 (2006).
  15. Bakola, S., Burman, K. J., Rosa, M. G. The cortical motor system of the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Neuroscience Research. 93, 72-81 (2015).
  16. Krubitzer, L. A., Kaas, J. H. The organization and connections of somatosensory cortex in marmosets. Journal of Neuroscience. 10, (3), 952-974 (1990).
  17. Miller, C. T., et al. Marmosets: A Neuroscientific Model of Human Social Behavior. Neuron. 90, (2), 219-233 (2016).
  18. Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29, (3), 162-173 (1996).
  19. Avants, B. B., et al. A reproducible evaluation of ANTs similarity metric performance in brain image registration. Neuroimage. 54, (3), 2033-2044 (2011).
  20. Hashikawa, T., Nakatomi, R., Iriki, A. Current models of the marmoset brain. Neuroscience Research. 93, 116-127 (2015).
Kronisk implantering av hele-kortikale Electrocorticographic matrise i den vanlige Marmoset
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Komatsu, M., Kaneko, T., Okano, H., Ichinohe, N. Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset. J. Vis. Exp. (144), e58980, doi:10.3791/58980 (2019).More

Komatsu, M., Kaneko, T., Okano, H., Ichinohe, N. Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset. J. Vis. Exp. (144), e58980, doi:10.3791/58980 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter