Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

세포내 캘리포니아2 + 제자리에서 신호 계량 Spatio 시간적 매핑 및 입자 분석 기법에의 응용

Published: January 7, 2019 doi: 10.3791/58989

Summary

유전자 인코딩된 Ca2 + 지표 (GECIs) 근본적으로 어떻게 현장에서 캘리포니아2 + 이미징 수행 달라졌다. 이러한 녹음에서 데이터 복구를 최대화 하기 위해 캘리포니아2 + 신호의 적절 한 분석이 필요 합니다. 이 종이에 프로토콜 캘리포니아2 + 신호를 원래의 spatiotemporal 매핑 및 입자 기반 분석을 사용 하 여 기록의 정량화를 촉진 한다.

Abstract

캘리포니아2 + 이미징 격리 된 셀 또는 그대로 조직 내의 세포의 특정 종류의 종종 캘리포니아2 + 신호의 복잡 한 패턴을 보여준다. 이 활동에는 신중 하 고 깊이 있는 분석과 정량화 가능한 기본 이벤트에 대 한 많은 정보를 필요 합니다. 공간, 시간 및 강도 매개 변수 캘리포니아2 + 신호 주파수, 기간, 전파, 속도 진폭 등 본질적인 세포내 신호 전달에 필요한 몇 가지 생물 학적 정보를 제공할 수 있습니다. 고해상도 캘리포니아2 + 시간이 걸릴 정량 데이터 이미징 정보 번역의 관점에서 프로세스 및이 프로세스는 큰 데이터 파일의 인수에 결과 일반적으로 이미징 인간의 오류와 편견에 감염 될 수 있습니다. 캘리포니아2 + 세포 제자리에서 신호 분석 일반적으로 시야 (FOV) 내의 관심 (ROI)의 임의로 선택한 영역에서 간단한 강도 측정에 의존합니다. 이 이렇게 많은 FOV에 포함 된 중요 한 신호 정보를 무시 합니다. 따라서, 캘리포니아2 +염료 또는 optogenetic Ca2 + 얻은 같은 고해상도 녹음에서 정보의 복구를 최대화 하기 위해 이미징, 적절 한 공간 및 시간 분석 Ca2 + 신호는 필요 합니다. 이 문서에 설명 된 프로토콜 어떻게 대용량 데이터의 더 완전 한 분석 및 캘리포니아2 + 신호의 조합을 사용 하 여 셀에서 기록의 정량화를 촉진 하기 위하여 캘리포니아2 + 영상 녹음에서 얻어질 수 있다 설명 spatiotemporal 지도 (STM)-분석 및 입자 기반 분석을 기반으로. 프로토콜은 또한의 캘리포니아2 + 인구 현장에서 적절 하 게 분석 될 수 있다 다른 셀에서 관찰 된 신호 어떻게 다른 패턴을 설명 합니다. 이해를 돕기 위해 메서드를 검사 합니다 Ca2 + 중간 셀의 Cajal (ICC), GECIs를 사용 하 여 작은 창 자에 있는 세포의 특수 인구에 신호.

Introduction

캘리포니아2 + 는 다양 한 근육 수축1,2, 신진 대사3, 셀 확산3,4, 등의 세포 프로세스를 제어 하는 유비 쿼터 스 세포내 메신저 5, 신경 터미널6,7, 신경 전달 물질 방출의 자극과 활성화 전사의 핵에 있는 요인. 7 세포내 캘리포니아2 + 신호 종종 cytosolic 캘리포니아2 +, 과도 고도의 형태를 걸릴 및 이러한 자발적인 수 수 또는 셀 유형8따라 주 작동 근 자극에서 발생 한다. 공간, 시간 및 강도 매개 변수 캘리포니아2 + 신호 주파수, 기간, 전파, 속도, 진폭 등 본질적인 세포내 신호5, 에 필요한 생물 정보를 제공할 수 있습니다. 7 , 9. 세포질 캘리포니아2 + 신호는 캘리포니아2 + 릴리스 채널 ryanodine 수용 체 등을 통해 캘리포니아2 + 또는 캘리포니아2 + 릴리스 바인딩과 그물 (응급실)에서 세포 외 공간에서의 유입에서 발생할 수 있습니다 (RyRs)과 이노 시 톨-트라이-인산 염 수용 체 (IP3Rs)10. RyRs 및 IP3Rs 두 캘리포니아2 + 신호 발생에 기여할 수 있으며 다양 한 Ca2 + 유입 메커니즘 결합이 채널의 공동된 여 캘리포니아2 + 신호 패턴의 무수 한 발생할 수 있습니다. 그 숫자에 의해 형성 및 확률 캘리포니아2 + 유입 채널, 캘리포니아2 + 유입 및 릴리스, 그리고 식 채널과 Ca2의 근접에 캘리포니아2 + 릴리스 채널의 식의 프로필을 열고 + 단백질을 재흡수 및 압출. 캘리포니아2 + 신호 형태의 유니폼, 오래 지속, 강도 높은 글로벌 진동 전파 세포내와 세포 Ca2 + 파 세포내 거리 교차 수 있습니다. 몇 초 또는 분, 마지막 수 있습니다. 걸릴 수 있습니다. 100 µ m10,11,12,13,,1415,16또는 캘리포니아 2 +와 같은 더 간단한, 공간적 지역화 된 이벤트 불꽃 및 캘리포니아2 + 퍼프 미만 5 µ m17,18,,1920확산 수십 밀리초 timescales에 발생 하는.

형광 현미경 검사 법은 모니터링할 Ca2 + 신호 분리 및 배양 세포에 그대로 조직에서 널리 사용 되었습니다. 전통적으로,이 실험 형광 캘리포니아2 + 지표, 비율의 사용 및 비 비율 염료 Fura2, Fluo3/4 등 Rhod2, 다른 사람의 사이에서 21,,2223. 이러한 표시기는 세포 막에 융 화 되 고 다음 생 esterases 통해 에스테 르 그룹의 분열에 의해 세포에 갇혀 될 하도록 설계 되었습니다. 캘리포니아2 + 높은 선호도 지표의 바인딩 세포와 조직 적합 한 파장의 빛에 의해 조명 되었다 형광에 변경 발생 합니다. 세포 투과성 캘리포니아2 + 지표를 사용 하 여 크게 캘리포니아2 + 살아있는 세포에서 신호 및 공간 해상도 Ca2 + 신호 시 금에 의해 불가능 했던이 신호의 정량화를 허용의 우리의 이해를 향상 통해 전기 생리학 등 다른 의미 합니다. 그러나, 전통적인 캘리포니아2 + 지표 확장된 녹음 기간24이상 발생 하는 photobleaching 같은 몇 가지 제한 사항이 있습니다. 새로운 Ca2 + 표시기 염료와 같은 Cal520/590는 크게 향상 된 신호 소음 비율 및 로컬 Ca2 + 신호25를 감지 하는 능력을, 하는 동안 photobleaching 문제 일부 조사 에 대 한 우려가 남아 수 있습니다. 26,,2728. 깎아지른 듯한 photobleaching 또한 확대, 이미지 수집, 속도 제한 및 해상도 증가 객관적인 전력 및 이미지 수집의 요구 대로 녹음에 사용할 수 있는 여기 빛의 강도 증가 하는 photobleaching을 증가합니다.

전통적인 캘리포니아2 + 표시기 염료는 캘리포니아2 + 신호 제자리를 기록할 때 더욱 악화의 이러한 제한, 예를 들어 때 녹음 세포내 캘리포니아2 + 신호 그대로 조직에서. 위의 문제로 인해 한 세포 침투성 캘리포니아2 + 지표를 사용 하 여 제자리에 캘리포니아2 + 신호 낮은 전력 확대에 국한 되었으며 이미지 캡처, 기록 조사 관의 능력 제한의 속도 감소 하 고 일시적으로 또는 공간적으로 제한 된 subcellular 캘리포니아2 + 신호 계량. 따라서, 그것은 어려운 캡처, 분석, 및 캘리포니아2 + 신호, 위에서 설명한 대로 원하는 생물학 응답의 생성에 중요 한 될 수 있는 공간 및 시간 복잡 감사 되었습니다. 캘리포니아2 + 세포 제자리에서 신호 분석 일반적으로 관심 (ROI) 한 시야 (FOV) 내의 선택된 영역에서 간단한 강도 측정에 의존합니다. 수, 크기 및 ROIs, 연구원의 변덕에 의존의 위치 임의 선택 결과 편견 심각 수 있습니다. 고유한 바이어스 ROI 분석, 뿐만 아니라이 이렇게 무시 많은 중요 한 신호 정보는 임의로 선택한 내 동적 캘리포니아2 + 이벤트로는 FOV에 포함 된 투자 수익 분석을 위해 선택 됩니다. 또한, 분석 ROIs의 Ca2 + 신호 관찰의 공간적 특성에 대 한 정보를 제공 하기 위해 실패 합니다. 예, 그것은 가능 하지 않을지도 상승 캘리포니아2 + 는 전파 발생 사이 구별 하 캘리포니아2 + 파와는 매우 지역화 된 Ca2 + 릴리스 캘리포니아2 + 신호는 투자 수익의 도표가에서 이벤트.

유전자 인코딩된 Ca2 + 지표 (GECIs)의 출현은 근본적으로 어떻게 캘리포니아2 + 이미징 수행 현장에29,30,,3132,33 수 변경 . 염료에 GECIs를 사용 하 여 여러 가지 이점이 있다. 가장 중요 한는 아마 GECI의 표현 하지 관심의 세포에서 원치 않는 배경 오염 감소 셀 특정 방식으로 수행할 수 있습니다 이다. 전통적인 캘리포니아2 + 지표 GECIs의 또 다른 장점은입니다 그 photobleaching 감소 (형광 및 consequentially photobleaching만 발생 때 세포는 활성), 특히 높은에서 염료 로드 표본에 비해 이미지의 확대 및 높은34캡처. 따라서, 브리핑, 지역화 된 하위 세포질 캘리포니아2 + 제자리에서 신호 GCaMP 시리즈 optogenetic 센서, 월급 조사 기록 하는 기능 같은 GECIs와 이미징 및 조사 캘리포니아2 + 셀 내에서 신호 들 이전 가능한 되지 않은 환경에 대 한 네이티브입니다. 이러한 고해상도 녹음에서 정보의 복구를 최대화 하기 위해 적절 한 공간 및 시간 분석 Ca2 + 신호는 필요 합니다. 그것은 그 GECIs 일부 취소 이점을 제공할 수 있습니다, 하는 동안 최근 연구 계시 했다 캘리포니아2 + 이미징 성공적으로 동시에 사용 하 여 기존의 신경의 다른 neurochemical 클래스의 큰 인구에서 수행할 수 있습니다 주목 해야한다 캘리포니아2 + 지표 유전자 동물35로 인코딩된 하지. 이 이렇게는 동기화 된 버스트, 높은 주파수에서 발생 하는 신경의 여러 다른 클래스 공개 포스트 hoc immunohistochemistry를 사용 하 고 동물에 유전 수정 수 있다 방해 하는 생리 적 잠재력을 피했습니다 행동 조사35,36을 이해 하고자 한다.

더 완전 한 분석을 촉진 하는이 문서에서 설명 하는 프로토콜 및 캘리포니아2 + 의 정량화 신호 세포 spatiotemporal 지도 (STM)의 조합을 사용 하 여 현장에서 기록-분석 및 입자 기반 분석을 기반으로. 프로토콜은 또한의 캘리포니아2 + 인구 현장에서 적절 하 게 분석 될 수 있다 다른 셀에서 관찰 된 신호 어떻게 다른 패턴을 설명 합니다. 이해를 돕기 위해 메서드를 검사 합니다 Ca2 + 중간 셀 Cajal (ICC)의 작은 창 자에서 셀의 특수 인구에 신호. ICC는 전시 동적 세포내 캘리포니아2 + 신호, GCaMPs38,,3739,40, 표현 하는 마우스를 사용 하 여 시각화 하는 위장 (GI) 지역에 전문된 셀 41,42. 캘리포니아2 + 과도 ICC에 캘리포니아2 +의 활성화로 연결-활성화 Cl- 장 평활 근 세포 (SMCs)43의 흥분을 조절에 중요 한 채널 ( Ano1인코딩) 44,45. 따라서, 캘리포니아2 + ICC에 시그널링의 연구 창 자 운동 성 이해에 기본적 이다. 해부학 분리 되 고 독립적으로 구상 될 수 있다 ICC의 두 클래스는 murine 소장이이 데모에 대 한 훌륭한 예를 제공 합니다: 난) ICC 원형 및 경도 평활 근 사이의 영역에 있는 레이어, myenteric 총을 둘러싼 (ICC 내). 이러한 셀 맥 박 조정기 세포 역할 및 느린 파도46,47,,4849;로 알려진 전기 활동 생성 ii) ICC 모터 신경 (깊은 근육 신경 총, 따라서 ICC DMP)의 터미널에 풍부한 총 들도 있습니다. 이 세포는 장 모터 neurotransmission37,39,,4050응답의 중재자 역할을 합니다. ICC-내 ICC DMP 형태학 상으로 다른, 그리고 그들의 캘리포니아2 + 신호 동작 차이가 근본적으로 그들의 특정 작업을 수행. ICC-내 방사상 모양에서 그리고 간격 접속점51,52를 통해 상호 연결 된 세포의 네트워크를 형성. 캘리포니아2 + ICC 내 매니페스트에 짧고 공간 지역화 된 Ca2 + 출시 이벤트로 FOV (60 X 목적으로 몇 군데)38내 시각으로 ICC 내 네트워크를 통해 비동기적으로 여러 사이트에서 발생 하는 신호. 이러한 비동기 신호는 일시적으로 구성 되며 1 초는 클러스터 때 함께 표로, 금액 순 1 s 세포 증가 캘리포니아2 +. 이러한 신호 ICC 네트워크 내에서 셀을 셀을 전파 하 고 따라서 구성 Ca2 + 신호, 조직 넓은 캘리포니아2 + 파로 하위 휴대 전화 사이트에서 생성 된. 일시적인 클러스터링 및 캘리포니아2 + 의 변론에 신호를 ICC 내 불렸다 Ca2 + 과도 클러스터 (CTCs)38. CTCs 발생 리듬 (예: 매우 비슷한 기간과 유사한 기간 CTCs 사이) 마우스에서 분당 30 회. 반대로, ICC DMP 스핀 들 모양의 세포, 보조 프로세스, SMCs와 정 신경 프로세스 간의 배포 하 고 독립적으로 하지 않는 일부 네트워크51,52형성. 그러나 ICC-DMP와 SMCs, 간격 접속점 형성, 그리고 SIP syncytium53로 알려진이 큰 syncytium 내에서 작동. 캘리포니아2 + 신호 셀의 길이 따라 여러 사이트에서 발생 하지만 이러한 과도 개입 하거나 일시적으로 클러스터, ICC 내37에서 관찰 하지. 캘리포니아2 + 신호 ICC DMP에 변수 강도, 기간 및 공간 특성 확률적 방식으로 발생합니다. 캘리포니아2 + ICC 내에 신호의 예제를 사용 하 여 아래 프로토콜 및 ICC-DMP, 특정 유형의 셀 현장에서 복잡 한 신호를 분석 하는 기법을 설명. 우리는 Cre Recombinase (Cre) ICC 특정 발기인 (키트)에 의해 구동의 활성화를 유도 한 후 ICC에 독점적으로 GCaMP6f을 표현 하는 유도할 수 있는 Cre Lox p 시스템 활용.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

사용 하는 모든 동물 및 본이 연구에서 실시 하는 프로토콜 관리 및 실험 동물의 사용에 대 한 헬스 가이드의 국가 기관에 따라 했다. 모든 절차는 기관 동물 사용 관리 네바다, Reno의 대학에 위원회에 의해 승인 되었다.

1입니다. KitGCaMP6f 마우스의 세대

  1. Ai95 크로스 (RCL-GCaMP6f)-D (GCaMP6f 마우스)와 c-키트+ Cre ERT2 ICC 특정 GCaMP6f 표현 동물 (마우스 키트-Cre-GCaMP6f)을 생성 하 (키트-Cre 쥐).
    참고: GCaMP6f 지역화 보고에 보고 된 효율성 때문에 사용 되었다, 간단한 세포내 캘리포니아2 + 신호 현장에서 그리고 vivo에서54.
  2. 6-8 주 유도 Cre Recombinase 활성화 및 ICC (그림 1)에 후속 GCaMP6f 식의 나가에 tamoxifen과 키트-Cre-GCaMP6f 쥐를 주사.
    1. Tamoxifen 솔루션을 만들려면 분해 Tamoxifen의 80 mg ( 재료의 표참조) 에탄올의 800 μ에 ( 재료의 표참조) 베트에 20 분 동안 소용돌이.
    2. 잇 꽃 기름 20 mg/mL의 솔루션을 만들고 다음 주입 전에 30 분 동안 sonicate (일반)의 3.2 mL를 추가 합니다.
    3. 주사 쥐 (복 주입; IP) 3 일에 대 한 tamoxifen 솔루션 (2 mg tamoxifen)의 0.1 mL와 함께. GCaMP6f 식 유전형에 의해 확인 하 고 마우스를 사용 하 여 첫 번째 주사 후 10 일.
      1. 작은 조각의 각 동물에서 귀를 클리핑 하 여 유전자 형 마우스. 다음, 귀 클립 NaOH의 75 mL에 60 분 동안 95 ° C에서 배양 하 고 다음 Tris 버퍼의 75 mL로 중화 하 여 게놈 DNA 격리에 대 한55 인가요 메서드 사용 합니다. 표준 PCR를 사용 하 여 각 동물, GCaMP6f 특정 뇌관56와 20 mL 반응에서 DNA의 2 mL의 유전자 형을 결정. 야생 타입을 결정 하는 2 %agarose 젤에 PCR 제품의 10 mL를 실행 (297 bp) 및 돌연변이 (~ 450 bp) 밴드.

2. Ca2 + 이미징에 대 한 조직의 준비

  1. Isoflurane와 흡입에 의해 마우스 anaesthetize (4%, 재료의 표참조) 통풍된 후드와 자 궁 경부 전위에 의해 다음 희생.
  2. 날카로운가 위 열기를 사용 하 여 마우스의 복 소장을 제거 하 고 Krebs 벨소리 중 탄산염 솔루션 (기계)에. Mesenteric 국경에 따라서 작은 창 열고 기계와 intraluminal 내용이 씻어. 날카로운 해를 사용 하 여 점 막과 점 막 하위 레이어를 제거 합니다.
    참고: 기계 솔루션에는 다음과 같은 구성 (mM): 118.5 NaCl, KCl 4.7, CaCl2 2.5, MgCl2 1.2, NaHCO3 23.8, KH24 1.2, 우선 당 11.0. 이 솔루션에서 37 ° C 95% O2-5% CO2평형 버블링 때 pH 7.4의 있다.
  3. 작은 핀을 사용 하 여, 핀 위로 향하도록 원형 평활 근 층을 가진 60 m m 직경 Sylgard 코팅 접시 5 mL 볼륨의 기지에 작은 창 자 조직. 재래식 기간 실험 하기 전에 1 시간 동안 37 ° C에서 예 열 기계 솔루션 준비 perfuse
  4. 현장에서 캘리포니아2 + 의 이미징 수행이 평형 기간 뒤 장 ICC 내 및 ICC-DMP confocal 현미경 검사 법 (이 프로토콜에서 이미지 회전 디스크를 장착 하는 confocal 현미경과 인수 했다)를 사용 하 여. 위에서 설명한 GECIs의 혜택 때문에 고해상도 시간 경과 이미지 사용 (> FPS, 초당 30 프레임) 영화 ICC에 동적 캘리포니아2 + 신호를 취득 하 고 전력 목표 (60-100 x)와 함께.
    참고: 조직 움직임을 줄이기 위해, nicardipine 적용 (0.1-1 μ M) 앞에서 설명한37,,3839,,4041녹음 하는 동안.
  5. 구별 ICC 내 및 ICC-DMP 그들의 다른 해 부 위치, 형태 및 기저 Ca2 + 활동 패턴을 사용 하 여 작은 창 자에서.
    1. 찾습니다 작은 창 자의 원형 및 경도 평활 근 층 사이 myenteric 총의 수준에서 ICC 내. 그들은 방사상 모양, 형성 하는 연결 된 네트워크 (그림 3A)입니다. CTCs (위에서 설명한) 분 당 ~ 30 사이클의 정기적으로 발생 된 ICC 나의 네트워크를 통해 전파 합니다.
    2. 반대로, 원형 평활 근 층 및 submucosal 총 사이 깊은 근육 신경 총의 수준에서 단일 면에 ICC-DMP를 찾습니다. ICC-DMP는 네트워크를 형성 하지 않습니다 그리고 일반 전파 이벤트를 전시 하 고 대신 확률론, 지역화 된 세포내 캘리포니아2 + 과도 발사 하는 스핀 들 모양의 셀 (그림 2A).
  6. 수집 소프트웨어 활용에 TIFF 이미지의 스택으로 영화를 저장 합니다.

3. ICC-DMP Spatio 시간적 매핑 (STM)을 사용 하 여에서 확률적 캘리포니아2 + 신호 분석

  1. ICC-DMP ImageJ 소프트웨어 (NIH, 미국, 무료 http://imagej.nih.jov/ij에서 다운로드) 및 사용자 정의 만든된 소프트웨어 (Volumetry, 버전 G8d, GWH, 맥 OS에서 작동 문의 그랜트 Hennig grant.hennig@의 조합으로 spatio 시간적 매핑을 사용 하 여 분석 med.uvm.edu에 대해 Volumetry 액세스 및 사용 문의)
    참고: ImageJ 혼자 spatio 시간적이 지도 완전히 분석 하는 양자 택일 접근 나중 섹션 (단계 3.9에서 시작)에 제공 됩니다.
  2. Volumetry를 열고 오른쪽 마우스 클릭을 사용 하 여 영화 파일이 들어 있는 폴더를 엽니다. 영화 파일 (압축 되지 않은 TIFF 형식 이어야) Volumetry에서 열 분석을 클릭 왼쪽. 일단, 영화 창 내에서 파란색 경계 (영화 창) 오른쪽 화면의 큰 부분을 포함 것 포함 될 것입니다. 스크린의 왼쪽 (상단 4/5ths) 플롯 창 및 추적 창 (더 낮은 1/5) 포함 됩니다.
  3. Shift 키를 누른 동시에 마우스 가운데 버튼 (휠, 크기 감소)와 스크롤 또는 스크롤 휠 (크기를 증가)와 동영상의 크기를 조정 합니다. 시작 또는 'A';를 눌러 재생을 중지 누르면 위쪽 및 아래쪽 화살표 키 재생의 속도 조정할 수 있습니다.
  4. Volumetry를 사용 하 여 STM을 만들려면 클릭 하 고 마우스 왼쪽된 버튼 드래그 하는 동안 SHIFT를 눌러 전체 셀을 통해 ROI을 그립니다. 와 함께 투자 수익의 코너에서 휠 스크롤 하 여 투자 수익의 방향을 조정 합니다. 때 투자 수익 분석 셀 위에 자리에는 (그림 2A), 사용 액세스 하려면 동영상 창에서 클릭 하 고 마우스 오른쪽 ' ROI STMs-STMyAvg > xRow' 그림 창에서 세포 활동의 STM을 만들려고 왼쪽 클릭 (선택 하는 옵션이 있다 ' STMxAvg > yRo w ', 셀의 방향을 더 x와 부합 여부에 따라 달라 집니다 어떤 하나를 선택 하거나 셀 강조 그림 2A 예 y 축, y 축에 더 지향 은').
  5. 왼쪽 그림 창에서 STM을 'P'를 눌러 평균 배경 잡음을 빼기 고 'H'는 STM의 명암을 증가를 누르십시오. 마우스 오른쪽을 클릭 하 고 액세스 하는 ' STM 부하 저장-저장 STM.tif로 ' 그것에 왼쪽 TIFF로 저장 하 여는 STM를 저장 합니다.
  6. ICC-DMP의 분석의 나머지 ImageJ에서 수행 될 것 이다. ImageJ는 두 가지 주요 구성 요소, 모니터 및 모바일 사용자 인터페이스 상단 고정 위치 도구 모음으로 구성 됩니다. ImageJ를 사용 하 여 ICC DMP 캘리포니아2 + 활동 (이미지 J 도구 모음에서 파일 오픈)의 STM TIFF 파일을 엽니다.
  7. 열기는 Volumetry 시간을 수직으로 지향 STM 만들었습니다. ImageJ는 RGB 또는 16 비트 이미지를 TIFF 파일 자동으로 열립니다. 이미지 품질 향상, ImageJ 도구 모음에서 '이미지'를 클릭 왼쪽. 첫 번째 옵션에 스크롤 ' '다양 한 이미지 포맷의 메뉴 드롭 다운을, 위로 스크롤 ' 32 비트', 입력 하 고 변경을 클릭 왼쪽.
  8. STM를 오른쪽에서 왼쪽으로 읽을 수 있도록, 다음 경로에 ImageJ 도구 모음에서 클릭 왼쪽: ' 이미지 변환 회전 90도 왼쪽 '. 그것은 또한 원래의 장소에 캘리포니아2 + Volumetry와이 없이 혼자 ImageJ로 linescans를 사용 하 여 활동은 아래 상세의 STMs 만들 수 있습니다.
    참고: 된 STMs 만들어지면 그들은 관계 없이 소프트웨어 그들을 생성 하는 사용 되었다 같은 방식으로 분석 된다. 이 대체 만드는 방법에 대해 STMs에 ImageJ를 건너뛰려면 3.19 단계로 건너뜁니다.
  9. ImageJ로 STMs를 만들려면, ICC DMP 캘리포니아2 + 활동 (ImageJ 도구 모음에서 파일-열기) 기록 구성 하는 TIFF 파일의 스택을 엽니다. ImageJ는 RGB 또는 16 비트 이미지를 TIFF 파일 자동으로 열립니다. 이미지 품질 향상, ImageJ 도구 모음에서 '이미지'를 클릭 왼쪽. 첫 번째 옵션에 스크롤 ' '다양 한 이미지 포맷의 메뉴 드롭 다운을, 위로 스크롤 ' 32 비트', 입력 하 고 변경을 클릭 왼쪽.
  10. 배경 잡음 (자동 형광 또는 카메라 소음에서 발생) 이제 영화에서 공제 한다. ImageJ 인터페이스에 ' 사각형 선택 ' 기능을 마우스 왼쪽 버튼으로 클릭 하 고 영화의 배경 형광에 (왼쪽 클릭 하 여 원하는 크기와 모양으로) ROI를 그립니다.
  11. 투자 수익을 선택한 후 ImageJ 도구 모음에서 '분석'에 클릭 왼쪽 하 고 나타나는 드롭다운 메뉴에서 '히스토그램' 클릭 왼쪽. 팝업 상자 계산; 픽셀 범위 값에 대 한 미심쩍은 나타납니다. ImageJ는 'OK' ROI 미리 그래서 왼쪽된 클릭의 가치 있다.
  12. '확인'을 클릭 하면, 새로운 팝업 상자는 히스토그램을 포함 하는 투자 수익 내 배경의 픽셀 소음에 대 한 값의 분포를 보여 주는 표시 됩니다. 평균 값은 막대 그래프 아래에 나열 된의 한 다음 팝업 상자를 닫습니다.
  13. 32-비트 영화를 다시 클릭 하 고 전체 FOV 왼쪽 클릭 하 여 선택 ImageJ 도구 모음, 스크롤을 '선택', 그리고 ' 모두 선택 ' 클릭 왼쪽에 있는 ' 수정' 밝혀 드롭 다운 메뉴에서.
  14. ImageJ 도구 모음에서 '과정'을 클릭 왼쪽 '수학'으로 스크롤한 왼쪽 밝혀 드롭다운 메뉴에서 '빼기'를 클릭 합니다.
  15. 팝업 상자가 FOV에서 뺄 값을 삽입할 수 있습니다 표시 됩니다. 3.12 위의 단계에서 히스토그램에서 획득 한 평균 값을 입력 하 고 '확인'을 클릭 합니다. ImageJ TIFF 스택의 모든 프레임을 처리 하는 데 다음 묻습니다 (그리고 아니라 단일 프레임 영화 현재에). '예'를 클릭 합니다.
  16. '예'를 클릭 하면, 영화는 검은 돌 것 이다. 이 해결 하기 위해 왼쪽 클릭 '이미지'에 ImageJ 도구 모음과 스크롤 '조정'을 통해. 왼쪽 ' 밝기/대비 ' (B & C)에 대 한 밝혀 첫 번째 옵션을 클릭 합니다. 이 상자를 밝기 및 대비의 다양 한 측면을 수정할 수 있는 팝업을 키울 것 이다. 한 번 영화에서 증가 품질을 '자동' 옵션을 클릭 왼쪽. 열어두고이 B & C 팝업 상자를 차후 사용을 위해.
  17. 한 라인을 만들려면, 먼저 마우스 오른쪽 클릭 다른 라인;에 대 한 옵션을 ImageJ 인터페이스에서 라인 선택 도구 왼쪽 선에' 세그먼트' 목록에서 선택을 클릭 합니다. ' 세그먼트 라인 ' 도구가 선택 된 사용 단일 개별 ICC DMP의 중앙 축 선을 그리려면 클릭 왼쪽. 각 단일 왼쪽된 클릭 그 특정 시점에서 라인을 고정 시킬 것 이다 고 선 다음 이동 될 수 있다 자유롭게 원하는 각도에서 더. 라인 완료 되 면 두 자리에 라인을 해결 하기 위해 클릭 왼쪽.
  18. '스택'에 ImageJ 도구 모음 및 스크롤에 '이미지'를 클릭 왼쪽 하 고 왼쪽 '업그레이드용' 옵션을 클릭. 팝업 상자가 나타납니다. 왼쪽 '회전 90도 ' 옵션을 클릭, 보정 하 고 공간을 y 축에는 x 축에 시간에 대 한 읽을 수 있도록이 오른쪽에서 왼쪽 라인을 찾으시는 것입니다. 만들는 STM을 ' 확인'을 클릭 합니다.
  19. STM의 강도 강도 높은 캘리포니아2 + 신호 그들의 강도 따라 흰색 또는 밝은 회색에서 흰색의 다양 한도로 표시는 스케일에 만들어질 것입니다. 일반적으로, 만든된 라인의 대비는 개선 필요 합니다. B & C 팝에 ' 자동' 상자를 클릭 하 여 이렇게 합니다.
  20. 라인의 형광의 강도 임의의 픽셀 값에 STM에 제공 됩니다. Ca의 진폭을 정확 하 게 측정 하기 위하여2 + 신호 STM, 형광 값의 STM (F) 지금에서 정규화 될 필요가 있다. ImageJ 인터페이스에 ' 사각형 선택 ' 기능을 사용 하 여, 가장 균일 하 고 가장 강렬한 형광 (F0)의 영역을 표시 하는 STM의 영역에 ROI를 그립니다.
  21. 선택한 투자 수익 내 강도의 평균 값 (F0) 3.11-3.12에서 찍은 단계를 반복 하 고 왼쪽 클릭 하 여 ' 편집-선택-선택 모든 ' ImageJ 도구 모음에서 전체 STM을 선택 합니다.
  22. ImageJ 도구 모음 및 스크롤 '수학'; '프로세스'를 클릭 왼쪽 왼쪽 클릭 '분할' 밝혀 옵션에서. 다음 팝업 상자에서 단계 3.21에서에서 얻은 평균 값 (F0)을 입력 합니다. (F0)에 나누어 전체 STM에는 STM 검은; 바뀝니다. B & C 팝업 상자에 '자동'을 클릭 하 여이 수정 합니다. 라인 지금 F/F0으로 표현 하는 형광의 강도 가진 진폭에 대 한 보정 됩니다.
  23. x 축에 TIFF 스택 프레임 수와 y 축에 셀의 길이 나타내는 픽셀의 수에 현재는 STM 표시 됩니다. 캘리포니아2 + 신호에서 시간적, 공간적 정보를 계량 하기 위해 시간과 공간에 대 한 STM 보정. ImageJ 도구 모음에서 '이미지'를 클릭 왼쪽 하 고 '속성'을 클릭 왼쪽. 팝업 상자가 나타납니다. 이 창에서 완벽 하 게 보정 된 STM을 적절 한 값을 입력 합니다.
  24. ' 픽셀 폭 '에 대 한 초에 단일 프레임을 캡처하는 데 걸리는 시간 길이 입력 합니다. 예를 들어, 5 fps 50 FPS 입력 값이 0.02, 33 FPS 0.033 등의 값을 입력에 대 한 0.2, 값을 입력 합니다. ' 픽셀 높이 ' (사용 목적과 취득에 사용 하는 카메라에 따라 것입니다) 각 픽셀 나타냅니다 몇 미크론을 입력 합니다. ' 복 깊이 ' '확인'을 클릭 하기 전에 1에 남아 있습니다. 다른 매개 변수는 창 내에서 조정 될 필요가 있다.
    참고: '확인'을 클릭 하면,는 STM은 진폭, 공간 및 시간에 대 한 완벽 하 게 측정 될 것 이다. F/F0, 시간을 x 축에 초에 표현 될 것 이다 하 고 y 축에 공간 μ m (그림 2B)에 표현 될 것 이다 진폭은 STM에 표현 될 것 이다. 캘리포니아2 + 이벤트는 STM에 이제 준비가 측정, 보정된 STM 또한 나중에 분석 하는 단일 TIFF 이미지로 저장할 수 있습니다.
  25. ImageJ는 컬러 코드는 STM 하는 데 사용할 수 있습니다 색상 코딩 룩 업 테이블 (Lut)에 내장 된의 수가 있다. LUT에 내장 왼쪽 경로 ' 이미지 조회 테이블 '에 ImageJ 도구 모음에서 클릭 하 여 적용 하 고 적용 하는 LUT를 선택. 사용자 정의 만든 Lut 왼쪽 경로 ' 파일-가져오기-LUT'에 ImageJ 도구 모음에서 클릭 하 여 가져올 LUT는 STM에 가져올 수 있습니다. 예를 들어 그림 2C 에 표시 된 STM 강렬한 캘리포니아2 + 형광 및 낮은 Ca2 +의 영역으로 차가운 색상 (블랙, 블루)의 영역으로 사용자 지정 LUT 'QUBPallete' (퀸 즈 대학교 벨파스트, 영국), 코드 따뜻한 색상 (레드, 오렌지)을 적용 했다 형광.
  26. ImageJ 도구 모음에서 '분석'을 클릭 왼쪽을 다양 한 색상으로 표현 하는 진폭의 범위를 나타내는 진폭 보정 막대를 삽입 하려면 '도구', 스크롤한 밝혀 메뉴에서 ' 교정 바 '를 선택 합니다. 옵션은 주어진 크기, 확대/축소, 범위 및 교정 바;에 대 한 STM에 위치 이러한 설정을 원하는 대로 조정 하 고 '확인'을 클릭 합니다. 교정 바 넣으면 ImageJ 만듭니다 교정 바 없이 원래 버전 그대로 별도 떠나, 포함 된 새로운 STM note.
    참고: '오버레이' 상자 보정 막대를 삽입할 때 받게 됩니다, 새로운 STM 생성 되지 것입니다.
  27. 개별 Ca2 + 이벤트를 분석 하려면 왼쪽 ImageJ 인터페이스에서 ' 직선 ' 선택기를 클릭 합니다. 처음 왼쪽을 클릭 하 여는 STM에, 똑 바른 가로 선을 그립니다 Ca2 + 이벤트의 센터를 통해 (시간)에 대 한 x 축에 평행 하 게. 왼쪽 두 번째 시간 (그림 2D)를 클릭 하 여 라인을 완료 합니다.
  28. ImageJ 도구 모음에서 '분석'을 클릭 하 고 왼쪽 ' 플롯 프로필 '을 클릭. 새로운 상자는 캘리포니아2 + 이벤트 (그림 2E)의 작 프로 파일 표시 됩니다.
    참고: 이 상자 안에 '목록' 옵션 원할 경우 추적을 만들 수 있는 스프레드시트 프로그램에 복사 될 수 있습니다 생성 된 플롯의 XY 값의 목록이 생성 됩니다.
  29. 캘리포니아2 + 이벤트 플롯 프로필에 표시의 진폭을 측정, 왼쪽 클릭 ImageJ 인터페이스에서 ' 직선 ' 선택. 그런 다음 Ca2 + 이벤트;의 피크를 플롯 프로필의 기준선에서 수직선을 인출 (ImageJ 인터페이스에 표시) 선의 길이 δ/F0 (그림 2E)으로 표시 하는 이벤트의 진폭을 나타냅니다.
  30. 인수 진폭 값을 사용 하 여 Ca2 + 이벤트의 기간 측정 될 수 있다 50% 최대 진폭 (전체 기간 절반 최대 진폭, FDHM)에서 이벤트의 너비에 걸쳐 직선을 그려서 또는 이벤트의 전체 지속 시간 (그림 2E) 원하는 경우 측정 될 수 있습니다.
    참고: 경험 디자인 임계 처리 유효한 Ca2 + 이벤트가이 음반에 대 한 특정 기준 해야 합니다. 우리의 실험에 캘리포니아2 + 이벤트 경우 그 진폭은 분석을 위해 유효한 것으로 지정 되었다 > 녹음의 제어 섹션에서 최대 진폭 이벤트의 15%. 그러나, 이러한 임계값 특정 조직에 따라 달라 집니다 그리고 아래 셀 연구 조직 및 세포의 모든 유형에 대 한 특정 최적화를 필요로 하는 임의의 지침.
  31. 업 스트로크 또는 캘리포니아2 + 이벤트 작 프로 파일의 종류에 따라 선을 그려, 상승 또는을의 속도 따라 계산할 수 있습니다. 라인을 그린 후 마우스 커서 선 시작 되 고 끝나는 지점으로 이동할 수 있습니다. 위에 있을 때 커서 고정이 포인트, x,이 위치에 대 한 y 좌표 ImageJ 인터페이스의 왼쪽 아래에 표시 됩니다. 따라서, 획득 하 여 x, y 값이 줄의 시작 위치에 대 한 (x1, y1) 종료 (x2, y2), 상승 또는을 (δ/s)의 속도 경사 라인, y2 -y1 /2 -1 (그림 2Fx x로 계산할 수 있다 ).
  32. 전파 또는 캘리포니아2 + 이벤트의 공간적 확산을 계산 하려면 ImageJ 인터페이스에서 ' 직선 ' 선택기에 클릭 왼쪽. 다음, y 축 따라 Ca2 + 이벤트의 길이 따라 직선 세로 선을 그립니다. (ImageJ 인터페이스에 표시) 선의 길이 μ (그림 2G)으로 표시 하는 이벤트의 공간적 확산을 나타냅니다.
  33. 이벤트의 전파 앞을 따라 선을 그려 하는 선의 기울기를 계산 하 여 전파 캘리포니아2 + 이벤트의 속도 결정 합니다. 이 x, y 값이 줄의 시작 위치에 대 한 결정에 의해 3.32, 단계에서 설명한 비슷한 방식으로 수동으로 수행할 수 있습니다 (x1, y1) 종료 (x2, y2); 마우스 커서는 STM에 위치 하는 경우 이러한 값 ImageJ 인터페이스의 왼쪽 아래에 표시 됩니다.
  34. 정량화 Ca2 + 이벤트에 대 한 원하는 매개 변수 수집, 수영장이 값 평균 당 셀 기준; 각 매개 변수에 대 한 평균 값을 생성 또는, 그들의 범위 (그림 2 H) 보여 배포 히스토그램에 원시 값의 모든 장소.

4. ICC 내를 사용 하 여 입자에 CTCs의 정량화 분석을 기반으로

  1. PTCLs와 Volumetry에서 영화를 분석 하기 전에 영화의 공간과 일시적인 교정 파일 이름으로 삽입 해야 합니다. 대괄호에 넣어진 값 단일 대시에 제목 내에서 각 프레임 이며 또한 각 픽셀 = 미크론의 수를 구분 하는 초 수를 포함 하는 Volumetry에 분석할 모든 파일을 편집 합니다. 예를 들어 60 x 목표 (512 x 512) 33 FPS에서 획득 한 영화 [0.22-0.033] 있어야 파일 이름에 삽입.
  2. Volumetry를 열고 오른쪽 마우스 클릭을 사용 하 여 영화 파일이 들어 있는 폴더를 엽니다. 영화 파일 (그림 3A, 압축 되지 않은 TIFF 형식에 있어야 합니다) Volumetry에서 그것을 여 분석을 클릭 왼쪽.
  3. 전체 FOV에서 캘리포니아2 + 신호를 정확 하 게 계산 하기 위해 영화에 차별화 및 배경 간섭 (카메라 노이즈, 자동 형광 등)을 제거 하 고 신호 대 잡음 비 증가를 부드럽게 먼저 받게 된다. 영화 창의 오른쪽 클릭 메뉴가 ' STK 필터-차별화 ', 오른쪽 클릭 액세스를 사용 하 여 마우스 오른쪽을 클릭 하 여 다시 구분, 값을 입력 하 고 ENTER 키를 왼쪽 클릭 적용 (영화 33 FPS에서 인수 2의 값에 대 한 (∆t = ± 66-70 밀리초) 작용, 값은 증가 이미지 캡처 증가의 비율으로).
    참고: 이런이 맥락에서 차별화의 분야의 강도 줄일 것입니다 녹음 (픽셀)을 지정 된 프레임의 수 없는 동적 활동을 보여. 따라서, 기록의 모든 프레임에 각 픽셀 분석 '2'의 값을 삽입 하는 경우 하 고는 기록에서 그 픽셀 내에서 강도 뺄 경우 그 내 전에 픽셀 형광 1 프레임에 1 프레임 후 동적 변화. 따라서, 비-동적 잡음 제거 되 고 소음에 신호 증가.
  4. 가우스 필터를 적용 하 여 차별화 된 영화를 부드럽게. 영화 창에 메뉴를 마우스 오른쪽 단추로 클릭 하 고 값을 삽입할 다시 클릭 마우스 오른쪽 오른쪽 클릭 액세스 ' STK 필터 가우스 KRNL'를 사용 하 여, (항상 홀수 번호를 사용 하 여, 영화 33 프레임에서 인수에 대 한 5 값 잘 작동, 1.5 x 1.5 µ m StdDev 1.0) 값을 입력 하 고 enter (그림 3B) 적용을 눌러 왼쪽.
  5. 첫 번째 기간 후 CTC는 CTC 고 또한 20-40 프레임 찾습니다 무부하 기간 (20-40 프레임)를 포함 하는 영화를 선택 하 여 PTCLs를 생성 하기 시작 합니다. 이렇게 하려면 노란색 바에 오른쪽 왼쪽 스크롤에서 휠 사용 하 여 영화를 통해 스크롤하십시오.
  6. 만든 선택과 사용 마우스 오른쪽 ' STK 작전-램프 DS PTCLinfo'를 액세스 하 여 적용을 클릭 왼쪽 영화 창에서 클릭 합니다. 이 함수는 점차적으로 최소 강도 최대 강도에서 임계값을 경사로 PTCL 분석 루틴을 실행 합니다. 이 표시 됩니다 그래픽으로 잡음의 플롯으로 작 창에서 및 또한 3 색된 흔적으로 추적 창에서 빨간색 추적 평균 PTCL 크기를 보여주는 PTCLs, 수를 보여주는 녹색 추적와 절대 강도 보여주는 블루 추적 임계값입니다.
    참고: 각 임계값에 PTCLs의 숫자와 평균 크기에 자동으로 계산 되 고 다음 반 수동 임계값을 강도 사용 하 여 적용 되는 PTCLs의 평균 크기 시작 감소에 빨간 추적의 굴절 지점에서 발생 하에서 추적 창 (그림 3D, 즉 공간적 제한 잡음 PTCLs PTCLs의 평균 크기의 큰 숫자로 인해).
  7. 작 창 내에서 'H'를 눌러 히스토그램 균형 플롯 PTCL 잡음의 표시. 색 구성표를 눌러 순환 ' [' 배경 흰색 위에 색된 추적으로 될 때까지.
  8. 컬러 플롯 오른쪽에 이동 교차로에서 플롯에 왼쪽 클릭을 측정 도구를가지고 ' F'를 누릅니다. 이 단일 세로 선 아래 추적 창의 스크롤 막대에 표시 됩니다.
  9. 추적 창에서 스크롤 휠 왼쪽 오른쪽 빨간 추적의 굴절 지점에서 표시 된 흰색 세로줄 단계 4.10에서에서 만든 t에 나타납니다 'yAVG'에서 읽고 블루 추적, 그것에 오른쪽 버튼을 클릭 하 여 선택 되어 있는지 확인 하 고 때까지 그는 낮은 추적 창의 왼쪽. 한 번 추적 창에 휠을 눌러 선택을 취소 합니다.
  10. 영화 창에서 'C'는 색상환을 누른 다음 누릅니다 것 ' 임계값을 조정. 영화 창 (그림 3C)와 같이 포화에 빨간색 흰색으로 유효한 PTCLs에 이제 표시 됩니다. 마우스 왼쪽된 버튼으로 스크롤하여 흰색 영역을 제거 합니다.
  11. 색상 바퀴에서 노란색 숫자 값 조정, 단계 4.11에서에서 촬영 하는 yAVG 값에이 값을 조정 휠와 위로 또는 아래로 스크롤하십시오. 이 모든 것으로는 활성 Ca2 + 빨간색을 할당할 것 이다 과도 PTCL 결정된 임계값 지점에서. 좌표 기반된 입자 파일로이 저장, 액세스 사용 오른쪽 클릭 ' STK 3D 저장 PTCLS 0'와 다음 왼쪽을 클릭 저장 파일.
  12. Volumetry를 종료 하 고 다시 엽니다. 4.13 단계에서 만든 PTCL 파일 (.gpf 파일)을 엽니다. 이 파일 형식에서 모든 활성 Ca2 + 과도 유니폼 블루 PTCL (그림 3E)로 저장 됩니다. 각 PTCL은 자체 ID, 지역 및 경계 좌표, 상태 플래그 (아래 참조) 및 결과 배열 개별 엔터티, PTCLs, 또는 PTCLs 사이 spatio 시간적 특성의 분석은 간소화 됩니다.
  13. PTCLs 분석을 시작 하려면 액세스 영화 창에서 오른쪽 클릭을 사용 하 여 모든 나머지 PTCL 잡음 (.gpf 파일 생성 될 때 만들어진 작은 잘못 된 PTCLs) 제거 ' PTCL STKOPS 플래그 ptcls > 분 = 70' 하 고 적용을 클릭 왼쪽. 이 이렇게 6 µ m2 보다 큰 PTCLs 플래그는 (~ 지름 > 2µm)와 Volumetry ' 플래그 1' 선택에 그들을 할당 하는 것입니다. 이 완료 되 면이 임계값 (플래그 1) 이상 PTCLs 임계값 아래 어떤 PTCLs에는 그들의 기본 파란색 (그림 3 층) 남아 있을 것 이다 반면 영화 창에서 밝은 보라색 색상으로 표시 됩니다.
  14. 액세스 하려면 동영상 창에서 오른쪽 클릭을 사용 하 여 열 지도 표현 PTCL 활동 만들기 ' PTCL STKops StatMap 플래그 ='. 마우스 오른쪽 클릭 하 여이 최종 경로, 분석에 플래그 할당을 입력할 수 있습니다. 따라서, 플래그 1에 할당 된 PTCLs 척도를 희망 하는 경우 '1'을 입력 하면 enter을 왼쪽 클릭 하 여 적용. 녹음을 통해 발생 (%)를 대표 하는 다른 색상으로 기록의 전체 길이 대 한 총 PTCLs를 보여주는 열 지도 생성 됩니다 (그림 3G을 따뜻한 색상 표시 해당 위치에 증가 한 발생).
  15. 마우스 오른쪽을 클릭 하 고 ' STM 부하 저장-저장 STM.tif로 '에 액세스 하는 그들에 왼쪽 TIFF로 저장 하 여 열 지도 저장 합니다.
  16. PTCL 활동 액세스 영화 창에서 오른쪽 클릭을 사용 하 여 계량 ' PTCL 측정 PTCLStats STK =', 마우스 오른쪽 클릭 하 여이 최종 경로, 분석에 플래그 할당을 입력할 수 있습니다. 따라서, 플래그 1에 할당 된 PTCLs 척도를 희망 하는 경우 '1'을 입력 하면 enter을 왼쪽 클릭 하 여 적용. 추적 창에서 추적의 시리즈를 생성 됩니다.
  17. Volumetry는 기본적으로 입력 해 서로 4.17 단계에서 생성 된 PTCL 흔적. 분리 적용을 눌러 왼쪽에 ' 맞춤-별도 추적 ' 액세스 하 추적 창에서 오른쪽 클릭을 사용 하 여. 이 4 개의 다른 PTCL 자취 Ca2 + PTCL 활동 PTCL 영역 (녹색), 보여주는 PTCL 수 (빨강), PTCL 크기 (녹청), PTCL 크기 표준 편차 (파란색) 영화에서 플롯 시간 (그림 3 H)에 대 한 계량을 발표할 예정 이다.
  18. 이러한 추적 추가 분석을 위해 스프레드시트 프로그램으로 가져올 수 있는 텍스트 파일로 저장할 수 있습니다. 추적을 저장 하 고, shift 하 고 사용을 마우스 오른쪽 ' 텍스트로 Assorted 덤프 투자 수익 '을 액세스 하 여 파일을 저장할 클릭 왼쪽 추적 창에서를 클릭 합니다. 이 정보 수집 그리고 히스토그램 또는 다른 적절 한 그래픽 표현 (그림 3 H)에.
  19. PTCLs (즉, 사이트를 해 봐)의 초기 발생을 보면, 하기 위해서는 이러한 초기 PTCLs 다른 플래그 할당을 받는다. 사이트를 발사 하는 더 나은 분리를 입자 다음 70 ms에서 이전 프레임 하지만 중복에 어떤 입자와 중첩 되지 않았다 PTCLs만 네트워크 내에서 발생으로 간주 됩니다 사이트를 발사.
  20. 이 임계값을 적용 하려면 사용 액세스 하려면 동영상 창에서 오른쪽 클릭 ' PTCL 행동-F1 InitSites > F = 3'와 왼쪽 적용을 클릭 합니다. 이것은 PTCLs '플래그 3', 시작 고 PTCLs이이 조건을 만족 하는 영화 (그림 4A)에서 라임 그린 색상으로 표시 됩니다.
  21. Volumetry는 또한 능력을을 계량 하 고 플롯에 주어진된 FOV는 CTC 동안 발사의 그들의 확률 플롯 PTCL 발사 사이트의 수를 준다. 이러한 매개 변수를 분석 하려면 PTCLs (3 기)을 시작 하는 단계 4.16 (그림 4B)에서 설명한 대로 열 지도를 만듭니다.
  22. 그림 창에서 마우스 왼쪽 버튼을 클릭 하 고 컬러 휠 및 보도를 눌러 'C'는 다음 ' 임계값. 시작 하는 PTCLs 것입니다 다음 차례 회색과 흰색의 열 지도. 제거 스크롤 왼쪽된 마우스 단추와 임계값 열 지도에 PTCLs만 유효한 PTCLs 회색에 적용 되는 모든 백색 (는 휠와 아래로 스크롤 하 여 임계값을 조정).
  23. 사용은 마우스 오른쪽 열 지도 플롯 ' STM 찾기 PTCLs PTCLs 70'을 액세스 하 고 적용을 클릭 왼쪽 창에서 클릭 합니다. 이 70 픽셀2 PTCL 또는 PTCL 발사 사이트 (그림 4C) 별도 색상 코드 개시로 할당 된 크기에서 보다 큰 지도에서 모든 회색 PTCLs를 할당 합니다.
  24. 적용 지도 'STM PTCLs 만들기 PTCL rois' 액세스 및 눌러서 PTCL를 클릭 하 여 각 시간에 대 한 이러한 발사 사이트의 활동을 플롯 합니다. 이 발사 주위 ROI와 함께 표시 되는 사이트 모두 별도 컬러 PTCL 영화 창에 새로운 이미지를 생성 합니다.
  25. 영화 창 액세스에 사용 하 여 오른쪽 클릭 ' PTCL 측정-PTCLpixROIBM > = 1' 및 적용을 클릭 왼쪽. 이 영화 창에서 하나 이상의 PTCL를 포함 하 고 추적 창에서 이러한 ROIs 내에서 활동의 모든 플롯 모든 ROIs를 식별 합니다. 기본적으로 이러한 추적은 서로에 겹쳐 것입니다. 그들, 별도로 사용 마우스 오른쪽 ' 맞춤-별도 추적 ' 액세스 하 여 적용을 클릭 왼쪽 추적 창에서 클릭 합니다. 추적을 저장 하 고, shift 하 고 사용을 마우스 오른쪽 ' 텍스트로 Assorted 덤프 투자 수익 '을 액세스 하 여 파일을 저장할 클릭 왼쪽 추적 창에서를 클릭 합니다.
  26. 각 발사 사이트의 활동으로 발생 지도 그릴 수 있습니다. 이렇게 하려면 사용 하 여 액세스 하려면 동영상 창에서 오른쪽 클릭 ' PTCL 측정 ROI Pianola = 10' 하 고 적용을 클릭 왼쪽. 시간에 대 한 모든 발사 사이트의 작 창에 생성 됩니다. 각 발사 사이트 자체 '레인'에서 각각 별도로 색 엔터티로 표시 되 고 오른쪽 액세스 하기 위해 그들을 클릭 하 여 이러한 발생 지도 저장 Ca2 + PTCLs CTCs (그림 4DE) 중 시작에 해당 하는이 플롯 ' STM 부하 저장-저장 STM.tif로 ' 고 TIFF로 저장을 클릭 왼쪽.
  27. CTC 동안 각 발사 사이트에 발사의 확률, 계량에 사용 액세스 하려면 동영상 창에서 오른쪽 클릭 ' PTCL 행동-마크는 = 1' 및 적용을 클릭 왼쪽. 이 임계값 위의 PTCLs를 포함 하는 영화에서 모든 프레임 식별 하 고이 파란색 세로선으로 영화 창의 맨 아래에 표시 됩니다.
  28. CTCs 각 CTC 주기 사이 ~ 1의 간격으로 FOV 내에서 여러 개의 발사 사이트에서 비동기 발사의 빠른 클러스터링으로 명단. 이 규칙과 CTCs 사이 아무 active PTCLs의 긴 간격 추가 분석에 대 한 CTC를 정의 하는 데 사용 됩니다.
  29. 영화 창 액세스에 사용 하 여 오른쪽 클릭 ' PTCL 행동-블록은 갭 < =', 마지막 지점에 마우스 오른쪽 클릭을 사용 하 여 숫자를 입력 하 고. 이 명령은 활성 PTCL 프레임 블록으로 4.28 단계에서 식별 된 그룹화 하 고 활성 PTCLs를 별도 프레임 수를 기반으로하는 블록. 33 FPS의 녹음에 대 한 예를 들어 10의 값 잘 작동합니다. 경우 활성 PTCLS 떨어져 10 프레임 (330 ms) 그들은 (블록 다음 표시 됩니다 분홍색 사각형으로 영화 창의 맨 아래에 세로 블루 라인을 통해 이제는 CTC를 나타내는 각 분홍색 사각형으로) 분석에 대 한 단일 블록으로 그룹화 됩니다.
  30. 사용은 마우스 오른쪽 ' PTCL 측정 PTCL 이벤트 문제 '는 영화 창에서 클릭 합니다. 이 스프레드시트 프로그램으로 가져올 수 있는 텍스트 파일을 생성 합니다. 이 텍스트 파일 CTCs에 단계 4.16-4.23 및 그들의 기여에서 정의 된 개시 사이트의 성격에 광대 한 양의 데이터를 제공할 것입니다.
    참고: 텍스트 파일은 개시 ('도메인' 이라고 함), 사이트의 수를 표시 픽셀과 μ m2, 가능성 중 하나 한 번 발사 각 개시 위치의 또는 여러 번 각 CTC (%로 주어진), 동안에 사이트의 크기는 평균 기간 및 크기 그 개시 사이트에서 발생 하는 PTCLs, (단계로 정의에서 4.23) CTC 사이클의 수는 각 CTC 동안 발생 하는 발사 사이트의 비율 주기. 이 정보 수집 이며 히스토그램 또는 다른 적절 한 그래픽 표현 (그림 4 층)에서.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

키트-Cre-GCaMP6F 마우스 (그림 1), 동적 캘리포니아2 + 위장에 ICC의 행동 현장에서 몇 군데 수 신호를 사용 하 여. Confocal 현미경 검사 법, ICC의 특정 인구의 고해상도 이미지는 같은 조직 내의 하지만 초점 (그림 2A)37 의 해부학 다른 비행기에 ICC의 다른 인구에서 신호를 오염 없이 취득 될 수 있다 , 39 , 40 , 41. 수-간략 한 기록 (< 100 ms), 지역화 Ca2 + 이벤트 막 투과성 캘리포니아2 + 표시기로 불가능 했다. Volumetry 또는 ImageJ 소프트웨어 Spatio 시간적 매핑 STMs 원래의 셀 내의 모든 Ca2 + 이벤트의 생성을 사용할 수 있습니다. 이 방법을 사용 하 여, 캘리포니아2 + 이벤트 전체 FOV에 구상 될 수 있다 하 고 (그림 2BC), 그냥 단일 투자 수익의 제한 된 활동을 기록 하는 대신 매핑된. 이러한 메서드는 주어진된 FOV 내에서 각 셀을 확장할 수 있습니다, 그리고 모든 보장 대표적인 데이터 수집 세포 (그림 2E 등 상대 진폭, 과도 기간, 상승의 속도 및 과도의을 대 한 정량적 인 정보를 제공 하 , F). STM 분석, 투자 수익 기반 강도 플롯, 반대로 또한 모니터의 캘리포니아2 + 공간 확산, 전파 속도 등 그림 2G와 같이 신호 공간 특성을 기록 하는 기능을 제공 합니다. 이 정보의 캘리포니아2 + (그림 2 H) 그들의 네이티브 환경에서 셀에 동작 신호 오히려 완전 한 뷰를 제공 축적 될 수 있습니다.

PTCL 분석 척도 더 복잡 한 Ca2 + 상호 셀룰러 네트워크에서 발생 하는 그와 같은 신호를 사용할 수 있습니다. 이 응용 프로그램의 예로 ICC 내 (그림 3A)에 수행 하는 분석에 의해 제공 됩니다. 일반적으로 이러한 복잡 한 준비 배경 잡음 및 소음에 신호 수 문제. 그러나, Volumetry 소프트웨어를 사용 하 여 Ca2 + 활동의 영화에 차동 및 스무 딩 필터를 적용 하 고 잡음 (그림 3B-D) 배경 잡음을 걸러 노이즈 임계값 프로토콜 적용에서 제거할 수 있습니다. 동적 활동의 기록입니다. 그림 3E-G, 캘리포니아2 + 에 대 한 정량적 인 정보에에서 표시 된 같은 PTCL 분석을 사용 하 여 신호 산출 될 수 있다 측정 PTCL 영역, PTCL 백작과 PTCL 크기 캘리포니아2 + 의 활성화의 공간 범위를 표시 하 여 FOV에 신호입니다. 이러한 데이터 그림 3 H와 같이 컴파일 하 고 분석 통계, 적절 한 수 있습니다. 그림 4 PTCL 분석의 하위 세포질 캘리포니아2 + 신호는 위치를 검사 하 고 캘리포니아2 + 사이트 발사의 가능성을 발사 하 여 깊이 정량화에 있도록 하는 방법을 보여 줍니다. 그들의 임시 특성에 따라 다른 플래그에 PTCLs를 할당 하 여 PTCLs 시작 매핑될 수 있습니다 정확 하 게와 같이 그림 4C-E 및 다양 한 시작 사이트의 수에 인수 데이터 (라고 합니다 ' 도메인), 픽셀과 µ m2, 각 개시의 확률에 사이트의 크기 사이트 발사 중 한 번 또는 여러 번 각 CTC (%로 주어진), 동안 평균 기간 및 개시 사이트에서 발생 하는 PTCLs의 크기는 CTC의 주기 수 ( 4.23 단계에서 정의 된)는 각 CTC 주기 동안 발생 하는 발사 위치의 %. 이 기술을 데이터 마이닝의 높은 수준과 현장에서 Ca2 + 신호는 그대로 셀룰러 네트워크 내에서 발생 하는 ROI 기반 분석 불가능의 정량화를 허용 합니다.

Figure 1
그림 1: KitGCaMP6f 쥐의 세대. 방법의 회로도 Ai95 (RCL-GCaMP6f)-D (GCaMP6f 쥐) c-키트 교차 했다+ / Cre-ERT2 (키트-Cre 쥐) 키트-Cre-GCaMP6f 쥐 생성 하. 이 마우스는 6-8 주 유도 Cre Recombinase 및 ICC에서 독점적으로 후속 GCaMP6f 식의 나가에 tamoxifen으로 주입 됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2: 확률적 캘리포니아2 + 의 분석 신호 spatio 시간적 매핑 (STM)을 사용 하 여 ICC DMP에. (A) 원래의 키트-Cre-GCaMP6F 마우스의 작은 창 자에서 여러 가지 ICC-DMP의 대표 이미지. 녹색 투자 수익 크기와 Volumetry에는 STM를 만들려고 FOV 내에서 단일 ICC DMP 주위 그릴 ROI의 방향을 나타냅니다. (B) 캘리포니아2 + 의 STM ICC-DMP 진폭, 공간 및 시간에 대 한 제대로 보정 된 후 패널 A에에서 강조에 활동. (C) 후 패널 B 에서처럼 동일한 STM 조회 테이블 (QUBPallete)와 함께 색상 되었습니다. (D) ICC DMP 캘리포니아2 + 과도 한 색상에 표시의 확장 된 이미지 코딩 STM, ImageJ에 그것의 활동의 음모 프로 파일을 만들 그것의 시간 (x) 축을 Ca2 + 이벤트를 통해 라인을 그릴 위치를 나타내는. 캘리포니아2 + 이벤트의 프로필에 강조 (E) 플롯 패널 D, 줄 수를 나타내는 진폭 및 이벤트의 기간을 정확 하 게 측정 그려. 캘리포니아2 + 이벤트의 프로필에서 강조 하는 (F) 플롯 패널 D, 줄 수를 나타내는 상승의 속도 이벤트의가 속도 측정 정확 하 게 그려. (G) ICC DMP 캘리포니아2 + 과도 한 색상에 표시의 확장 된 이미지 코딩 STM, 정확 하 게 측정의 공간 확산 하는 공간 (y) 축을 Ca2 + 이벤트를 통해 라인을 그릴 위치를 나타내는. (H) 대표 히스토그램 ICC DMP에서 풀링된 데이터의 진폭, 기간 및 위의 단계에서 획득 한 공간 확산 값을 그래픽으로 표시 하는 방법을 보여주는. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 3
그림 3: 사용 하 여 ICC 내 CTCs의 정량화 입자 기반 분석. (A) 원래의 키트-Cre-GCaMP6F 마우스의 작은 창 자에서 ICC 내 네트워크의 대표 이미지. (B) 이미지 패널 A에에서 표시 된 기록에서 가져온 후에 δ t의 차동 필터를 겪고 있다 = ±66-70 ms 및 1.5 µ m, StdDev 1.0 x 1.5 가우스 필터. (C) 이미지 임계 처리 후 b에서 비디오에서 빨간색으로 표시 된 임계값 이상 PTCLs로 완료 되었다. (D) 추적의 PTCL 계산 및 패널 B. PTCLs에에서 표시 하는 영화에서 소음을 제거 하는 임계 처리 프로토콜에 PTCL 크기 임계값, Ca 농도 했다 모든 인접 픽셀의 구조를 표시 하는 홍수 채우기 알고리즘을 사용 하 여 만들어진 의미 2 + 과도 PTCLs 잡음 PTCLs 보다 더 큰 했다. 많은 수의 작은 크기의 잡음 PTCLs 등장 PTCLs의 평균 크기를 줄이기 시작 하는 임계값 모든 기록에 대 한 일반적인 임계값으로 사용할 수 있습니다. C. (F) 대표 이미지의 심사 기준 후 전자의 PTCL 파일에서 가져온 thresholded 기록에서 만든 좌표 기반 Ca2 + PTCL 파일에서 (E) 대표 이미지 > 6 µ m2 (직경 ~ 2 µ m 또는 더 작은) 적용 했다; PTCLs 위의이 보라색 빛 입자 (플래그 1) 표시와 대표 색상으로 summated 총 PTCLs와 F, 패널에 표시 하는 비디오의 전체 기록에 대 한 총 PTCLs (플래그 1)를 보여주는 유효한 PTCLs. (G) 열 지도 고려 녹음을 통해 발생 (따뜻한 색상 표시 해당 위치에 증가 한 발생). PTCL 영역 (파란색)과 PTCL 카운트 (빨간색) 패널 A g.에서에서 만든 PTCL 파일에서 파생 된의 (H) 대표적인 흔적 여러 실험에서 풀링된 데이터의 대표적인 히스토그램 추적 다음과 같습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 4
그림 4: 분석의 캘리포니아2 + ICC 내를 사용 하 여 사이트를 발사 입자 기반 분석. (A) 대표 이미지 그림 3E 의 PTCL 파일에서 가져온 후 플래그 1 PTCLS 플래그 3, 캘리포니아2 + 발사 사이트에 대 한 플래그 상태에 더 세련 된다. 플래그 3 (단 입자 다음 70 ms에서 이전 프레임 하지만 중복에 어떤 입자와 중첩 되지 않았다 그 PTCLs 발사 사이트 여겨졌다) PTCLs 라임 그린으로 표시 됩니다. (B) 열 패널 A에에서 총 PTCLs 녹음을 통해 발생을 나타내는 색상으로 표현 하는 표시 하는 비디오의 전체 기록에 대 한 총 PTCLs (3 기)를 보여주는 지도 (따뜻한 색상 표시 해당 위치에 증가 한 발생). (C)의 캘리포니아2 + B, 각 다른 발사 사이트 할당 다른 식별 색 패널에 표시 된 사이트를 발사 대표 지도. PTCL 영역 (파란색)과 PTCL의 (D) 대표적인 흔적 계산 (빨간색) 그림 3A-G에서 만든 PTCL 파일에서 파생 된. (개별 발사 사이트의 활동의 E)는 발생 지도. 각 발사 사이트 FOV 내에서 시간에 대 한 자신의 '레인' 컬러 블록으로 표시 됩니다. 캘리포니아2 + 사이트 발사 확률을 발사에 대 한 누적 값을 보여주는 몇 가지 실험에서 풀링된 데이터 (F) 대표 히스토그램 표시 / CTC 및 캘리포니아2 + 의 수 해는 FOV에 사이트. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

캘리포니아2 + 영상 그대로 조직 또는 세포의 네트워크에서 셀의 특정 종류의 종종 캘리포니아2 + 과도의 복잡 한 패턴을 보여준다. 이 활동에는 신중 하 고 깊이 있는 분석과 정량화 가능한 기본 이벤트와 이러한 이벤트의 활동에 대 한 많은 정보를 필요 합니다. STM과 PTCL 분석 이런이 종류의 녹음에서 나왔고 양적 데이터의 양을 최대화 하는 기회를 제공 합니다.

좁은, ICC DMP의 스핀 들 모양 형태 있도록 위에서 설명한 STMs에서 파생 된 STM 분석에 적합. 그러나,이 분석은 적합에 ICC 내는 방사상 모양 및 (그림 3A)는 네트워크에 연결 합니다. 또한, Ca2 + 신호 패턴 ICC 내에 더 복잡 하 고, CTCs 기원 ICC 내 네트워크를 통해 여러 사이트에서 전파로 명시 합니다. 따라서,는 FOV 내에서 전체 ICC 내 네트워크에서 발생 하는 활동을 계량 하려면 입자 (PTCL) 분석 구현 된 사용자 정의 만든된 소프트웨어 (Volumetry, G8d, GWH, 맥 OS에서 작동 문의 그랜트 Hennig grant.hennig@med.uvm.edu 버전을 사용 하 여 에 대하여 Volumetry 액세스 및 사용 문의).

STM 분석 단일 세포 내 및 모든 공간 및 시간 매개 변수의 범위에 걸쳐 비판적으로 분석할 FOV에 셀 내 모든 Ca2 + 이벤트를 수 있습니다. 프로토콜 설명 어떻게 이러한 기술은 마우스 소장의 ICC-DMP에 적용할 수 있습니다 보여 줍니다. 의해 완전히 측정 캘리포니아2 + 그림 2B-G, 캘리포니아2 + 패턴 세부37에서 특징 되는 신호 에서처럼 ICC-DMP에 신호. ICC-DMP 차단 또는 캘리포니아2 + 릴리스 자극의 효과 정밀 하 게 계량 하는 개입을 받아야 하는 녹음에 적용 된 이러한 분석 / 캘리포니아2 + 유입 / neurotransmission 경로37,39 , 40 , 41. 이러한 기술은 다른 그대로 조직 준비에 쉽게 적용할 수 있습니다. 예를 들어 여기에 설명 된 대로 STM 분석은 세포내 캘리포니아2 + 파도 라57에서 요도 평활 근에 기록의 생성에 관련 된 새로운 기계 경로 식별 하 이용 되어.

STMs Volumetry에서의 준비는 STM 그려진된 ROI (그림 2A)에서 만드는 Volumetry에서 함수는 강도의 평균 값으로 몇 가지 주의 필요 합니다. 따라서, 캘리포니아2 + 신호 진폭 넓은 또는 캘리포니아2 + 이벤트 또는 관심의 셀 보다 더 투자 수익 그려진 경우 희석 잠재적으로 수 있습니다. 따라서, 사용자는 ROIs를 단단히 피팅 가능한 Ca2 + 신호 또는 그들은이 문제를 완화 하기 위해 분석 하는 특정 셀을 그리는 데 주의 해야 한다. 마찬가지로, STMS ImageJ의 단일 픽셀 linescans를 사용 하 여 만드는 캘리포니아2 + 이벤트 매핑 정확 하 게는 그려진된 라인에 Ca2 + 신호의 근접은 의미 합니다. 그러나 이러한 우려는 ICC DMP와 같은 셀 모양의 얇은 스핀 들에 작은, 다른 셀 형식 더 방사상 또는 둥근 형태를 만들 수 있습니다 분석의이 유형을 모든 Ca2 + 신호를 정확 하 게 지도에 부적 절 한. STMs 그들이 ImageJ linescans, 또는 Volumetry에서 만든 여부에 관계 없이 분석을 위해 준비할 때 몇 가지 지역 문제 해결을 위해 강조 표시 됩니다 있다. 그것은 이렇게 STMs. 실패에 어떤 보정을 수행 하거나 이렇게 걸쳐 일관성 측정으로 이어질 수 있는 F/F0 에 대 한 보정 후 실험 하기 전에 32 비트 이미지 품질을 변경 해야 합니다. ImageJ로 열었을 때 자체 STM의 흰색 테두리의 상단 영역에는 명시 된 STM의 이미지 품질을 항상 확인 하십시오. 불일치의 또 다른 잠재적인 위치는 진폭에 대 한 보정 때 F0 값 선택. 그것은 중요 한 F0에 대 한 영역을 선택, 그것이 균일 셀 및 초점에서 영역을 다룹니다. 이러한 이유로, 그 불안정 한 기저 형광 또는 그 운동 또는 다른 인공 물 변경 셀의 영역 이상적인 고 엄격한 동작 안정화 프로토콜 이러한 경우에 사용 한다.

현장에서 또는 교양 준비에서 포함 된 계량 복잡 한, subcellular Ca2 + 이벤트는 네트워크에서 발생 하는 효율적인된 기법을 제공 하는 ICC-내 작은 내장, PTCL 분석에서와 같은 셀룰러 네트워크 상호. 또한, 네트워크 분석, 주어진된 FOV 내에서 모든 Ca2 + 이벤트 허용 한다 보다는 임의 ROIs를 사용 하 여 제공 하는 정보 투자 수익 내 강도와 주파수에. 여기에 설명 된 PTCL 분석의 장점은 그 적용 하 여 차동 및 가우시안 스무 딩 필터를 녹음, 잡음의 다량에서에서 제거할 수 있습니다 셀 비 동적 또는 하지의 관심에서에서 오염 빛을 포함할 수 있는 영화 밝은 반점 또는 포함입니다. 그것은 녹음에 적용 하는 차별화의 금액 크게는 실험에 사용 되는 수집 속도에 따라 달라 집니다 점에 유의 해야 합니다. 영화는 프로토콜에 설명 된 대로 차별화 녹음에서 고주파 잡음을 제거 하 영화에 필터를 적용 한 방법을 제공 합니다. (해당 되는 경우 값이 너무 낮은, 소음 선택 됩니다 하지만 소음에 신호 값이 너무 높은 경우 손상 될 것 이다) 소음에 좋은 신호를 유지 하면서 배경 잡음을 제거 하기 위하여 잘 작동 33 FPS에서 인수 하면 '2'의 차별화 가치를 적용 합니다. 적용 차별화 값 100 FPS에서 예를 들어 빠른 수집 속도로 증가 한다, '7'의 차별화 가치 대략 동일한 신호 잡음 비율을 33 FPS 녹음을 '2'의 값으로. 경험 이러한 설정을 최적화 필요 합니다 그러므로 그들의 준비 및 녹음 조건에 대 한.

그림 3D 에 설명 된 임계 처리 프로토콜 다른 수집 소프트웨어를 다른 시스템에서 만든 다른 레코딩에 적용 될 일관 된 임계 처리 프로시저를 수 있습니다. 이러한 유연성은 동일한 데이터 집합으로 자신의 음반을 컴파일하려면 다른 시스템에서 작업 하는 여러 조사에서 데이터를 허용 합니다. 를 사용 하 여 플래그 시스템 Volumetry에 PTCL 분석 시각화 및 정량화의 개별 Ca2 + 자세히 네트워크 내의 사이트 발사 수 있습니다. 픽셀 및 µ m2, 사이트의 크기 및 해당 사이트에서 발생 하는 PTCLs의 평균 기간 개시 사이트의 수에 정보를 수집할 수 있습니다. 이 PTCL 분석 하위 세포 수준에서 소장에서 CTC 활동의 첫 번째 특성을 허용 하 고, Volumetry 소프트웨어, 둘 다 PTCLs에에서 다른 플래그를 사용 하 여 네트워크 및 개별 발사 사이트 수준 그대로 조직에 계량 했다 키트-Cre-GCaMP3 쥐38에서 준비. 이러한 초기의 관측에서이 분석은 추가 이용 되어 소설 캘리포니아2 + 유입 경로 기 같은 저장소-운영-캘리포니아2 +ICC 내에 공부-항목42 와 미토 콘 드리 아 캘리포니아2 + 기 pacemaking에 신호의 역할 41. 훨씬 STM 분석 위에서 설명한, 같은 PTCL 분석이이 프로토콜에서 설명 하는 이외의 다른 그대로 준비에 쉽게 적용할 수 있습니다. 예를 들어 최근 연구 PTCL 분석을 사용 하는 공부 소설 리듬 캘리포니아2 + 이벤트 쥐 오 줌 방광58,59 의 lamina propria 그대로 셀룰러 네트워크에서 발생 하 고 따라서 쉽게에 적용할 수 있습니다. 다른 복잡 하 고, 그대로 셀룰러 시스템 신경 시스템 등. 이 종이에 집중 동안 캘리포니아2 + GECIs 그대로 조직에 이미징, 고립 된 세포와 조직 전통적인 캘리포니아2 + 표시기 염료와 로드에 이러한 분석 기법을 실행할 수도 있습니다. STM 기반 분석 지역화 된 Ca2 + 신호 및 캘리포니아2 + 파 중간 세포와 다양 한 준비11,60 에서 부드러운 근육 세포를 형성 하는 스핀 들에서 성공적으로 계량 하는 데 사용 되었습니다. , 61 , 62 , 63. 또한, 여기에 설명 된 PTCL 분석 루틴 또한 칼 52058,59와 시각 현장에서 네트워크 준비에 적용 되었습니다. 그러나, 이러한 연구는 또한 모호한 셀 식별 및 소음에 신호 문제 등의 프로토콜을 로드 같은 염료의 단점을 유지 합니다.

위의 예제 STM과 PTCL 분석 척도 복잡 한 Ca2 + 그대로 조직 준비의 다양 한 범위에서 신호를 사용할 수 있는 매우 전성 기법은 것을 보여줍니다. 접근 제공 전통적인 투자 수익 이상의 많은 장점을 기반으로 일상적으로 사용 이전에 캘리포니아2 + 신호 보다 이전 달성 될 수 있는 더 귀중 한 양적 정보 조사 제공 해야 강도 플롯.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

저자는 공개 없다.

Acknowledgments

자금 P01 DK41315 통해 NIDDK에 의해 제공 했다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
ImageJ software NIH 1.5a ImageJ software
Volumetry GWH Volumetry 8Gd Custom made analysis software
Isoflurane Baxter, Deerfield, IL, USA NDC 10019-360-60
Tamoxifen Sigma T5648
GCaMP6F mice Jackson Laboratory Ai95 (RCL-GCaMP6f)-D
Kit-Cre mice Gifted From Dr. Dieter Saur c-Kit+/Cre-ERT2
Ethanol Pharmco-Aaper SDA 2B-6

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wellman, G. C., Nelson, M. T. Signaling between SR and plasmalemma in smooth muscle: Sparks and the activation of Ca2+-sensitive ion channels. Cell Calcium. 34 (3), 211-229 (2003).
  2. Mironneau, J., Arnaudeau, S., Macrez-Lepretre, N., Boittin, F. X. Ca2+sparks and Ca2+waves activate different Ca2+-dependent ion channels in single myocytes from rat portal vein. Cell Calcium. 20 (2), 153-160 (1996).
  3. Berridge, M. J. Inositol trisphosphate and calcium signalling mechanisms. Biochimica et Biophysica Acta - Molecular Cell Research. 1793 (6), 933-940 (2009).
  4. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. Calcium signalling. Current biology. 9 (5), R157-R159 (1999).
  5. Bootman, M. D., et al. Calcium signalling—an overview. Seminars in Cell & Developmental Biology. 12 (1), 3-10 (2001).
  6. Brain, K. L., Bennett, M. R. Calcium in sympathetic varicosities of mouse vas deferens during facilitation, augmentation and autoinhibition. The Journal of Physiology. 502 (3), 521-536 (1997).
  7. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. D. The versatility and universality of calcium signalling. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 1 (1), 11-21 (2000).
  8. Dupont, G., Goldbeter, A. Problems and paradigms: Oscillations and waves of cytosolic calcium: Insights from theoretical models. BioEssays. 14 (7), 485-493 (1992).
  9. Bootman, M. D., Berridge, M. J. The elemental principles of calcium signaling. Cell. 83 (5), 675-678 (1995).
  10. Berridge, M. J., Dupont, G. Spatial and temporal signalling by calcium. Current Opinion in Cell Biology. 6 (2), 267-274 (1994).
  11. Drumm, B. T., et al. The role of Ca 2+ influx in spontaneous Ca 2+ wave propagation in interstitial cells of Cajal from the rabbit urethra. The Journal of Physiology. 593 (15), 3333-3350 (2015).
  12. Bayguinov, P. O., Hennig, G. W., Smith, T. K. Ca 2+ imaging of activity in ICC-MY during local mucosal reflexes and the colonic migrating motor complex in the murine large intestine. The Journal of Physiology. 588 (22), 4453-4474 (2010).
  13. Drumm, B. T., Sergeant, G. P., Hollywood, M. A., Thornbury, K. D., McHale, N. G., Harvey, B. J. The role of cAMP dependent protein kinase in modulating spontaneous intracellular Ca2+ waves in interstitial cells of Cajal from the rabbit urethra. Cell Calcium. 56 (3), 181-187 (2014).
  14. Nathanson, M. H., Padfield, P. J., O’Sullivan, A. J., Burgstahler, A. D., Jamieson, J. D. Mechanism of Ca2+ wave propagation in pancreatic acinar cells. Journal of Biological Chemistry. 267 (25), 18118-18121 (1992).
  15. Straub, S. V., Giovannucci, D. R., Yule, D. I. Calcium wave propagation in pancreatic acinar cells: functional interaction of inositol 1,4,5-trisphosphate receptors, ryanodine receptors, and mitochondria. The Journal of General Physiology. 116 (4), 547-560 (2000).
  16. Sneyd, J., Tsaneva-Atanasova, K., Bruce, J. I. E., Straub, S. V., Giovannucci, D. R., Yule, D. I. A model of calcium waves in pancreatic and parotid acinar cells. Biophysical Journal. 85 (3), 1392-1405 (2003).
  17. Jaggar, J. H., Porter, V. A., Lederer, W. J., Nelson, M. T. Calcium sparks in smooth muscle. American Journal of Physiology. Cell. 278 (2), C235-C256 (2000).
  18. Nelson, M. T., et al. Relaxation of arterial smooth muscle by calcium sparks. Science. 270 (5236), 633-637 (1995).
  19. Cheng, H., Lederer, W. J., Cannell, M. B. Calcium sparks: Elementary events underlying excitation-contraction coupling in heart muscle. Science. 262 (5134), 740-744 (1993).
  20. Parker, I., Choi, J., Yao, Y. Elementary events of InsP3-induced Ca2+ liberation in Xenopus oocytes: Hot spots, puffs and blips. Cell Calcium. 20 (2), 105-121 (1996).
  21. Diliberto, P. a, Wang, X. F., Herman, B. Confocal imaging of Ca2+ in cells. Methods in Cell Biology. 40, 243-262 (1994).
  22. Martínez-Zaguilán, R., Parnami, G., Lynch, R. M. Selection of fluorescent ion indicators for simultaneous measurements of pH and Ca2+. Cell Calcium. 19 (4), 337-349 (1996).
  23. Hayashi, H., Miyata, H. Fluorescence imaging of intracellular Ca2. The Journal of Pharmacology & Toxicology Methods. 31 (1), 1-10 (1994).
  24. Thomas, D., Tovey, S. C., Collins, T. J., Bootman, M. D., Berridge, M. J., Lipp, P. A comparison of fluorescent Ca2+indicator properties and their use in measuring elementary and global Ca2+signals. Cell Calcium. 28 (4), 213-223 (2000).
  25. Lock, J. T., Parker, I., Smith, I. F. A comparison of fluorescent Ca2+indicators for imaging local Ca2+signals in cultured cells. Cell Calcium. 58 (6), 638-648 (2015).
  26. Flagmeier, P., et al. Ultrasensitive Measurement of Ca 2+ Influx into Lipid Vesicles Induced by Protein Aggregates. Angewandte Chemie International Edition. 56 (27), 7750-7754 (2017).
  27. Tsutsumi, S., et al. Structure-Function Relationships between Aldolase C/Zebrin II Expression and Complex Spike Synchrony in the Cerebellum. Journal of Neuroscience. 35 (2), 843-852 (2015).
  28. Rietdorf, K., Chehab, T., Allman, S., Bootman, M. D. Novel improved Ca indicator dyes on the market - a comparative study of novel Ca indicators with Fluo-4. Calcium Signalling: The Next Generation. , 590 (2014).
  29. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP Calcium Indicator for Neural Activity Imaging. Journal of Neuroscience. 32 (40), 13819-13840 (2012).
  30. Seidemann, E., et al. Calcium imaging with genetically encoded indicators in behaving primates. eLife. 5 (2016JULY), (2016).
  31. Su, S., et al. Genetically encoded calcium indicator illuminates calcium dynamics in primary cilia. Nature Methods. 10 (11), 1105-1109 (2013).
  32. Kaestner, L., et al. Genetically encoded Ca2+ indicators in cardiac myocytes. Circulation Research. 114 (10), 1623-1639 (2014).
  33. Tang, S., Reddish, F., Zhuo, Y., Yang, J. J. Fast kinetics of calcium signaling and sensor design. Current Opinion in Chemical Biology. 27, 90-97 (2015).
  34. Barnett, L. M., Hughes, T. E., Drobizhev, M. Deciphering the molecular mechanism responsible for GCaMP6m’s Ca2+-dependent change in fluorescence. PLoS ONE. 12 (2), 1-24 (2017).
  35. Spencer, N. J., et al. Identification of a rhythmic firing pattern in the enteric nervous system that generates rhythmic electrical activity in smooth muscle. The Journal of Neuroscience. , 3489 (2018).
  36. Hibberd, T. J., et al. Synaptic Activation of Putative Sensory Neurons By Hexamethonium-Sensitive Nerve Pathways in Mouse Colon. American Journal of Physiology - Gastrointestinal and Liver Physiology. (861), (2017).
  37. Baker, S. A., Drumm, B. T., Saur, D., Hennig, G. W., Ward, S. M., Sanders, K. M. Spontaneous Ca(2+) transients in interstitial cells of Cajal located within the deep muscular plexus of the murine small intestine. The Journal of Physiology. 594 (12), 3317-3338 (2016).
  38. Drumm, B. T., et al. Clustering of Ca2+ transients in interstitial cells of Cajal defines slow wave duration. The Journal of General Physiology. 149 (7), 703-725 (2017).
  39. Baker, S. A., Drumm, B. T., Cobine, C. A., Keef, K. D., Sanders, K. M. Inhibitory Neural Regulation of the Ca2+ Transients in Intramuscular Interstitial Cells of Cajal in the Small Intestine. Frontiers in Physiology. 9 (April), 1-24 (2018).
  40. Baker, S. A., et al. Excitatory Neuronal Responses of Ca 2+ Transients in Interstitial Cells of Cajal in the Small Intestine. eNeuro. 5 (2), (2018).
  41. Drumm, B. T., Sung, T. S., Zheng, H., Baker, S. A., Koh, S. D., Sanders, K. M. The effects of mitochondrial inhibitors on Ca2+signalling and electrical conductances required for pacemaking in interstitial cells of Cajal in the mouse small intestine. Cell Calcium. 72, 1-17 (2018).
  42. Zheng, H., Drumm, B. T., Earley, S., Sung, T. S., Koh, S. D., Sanders, K. M. SOCE mediated by STIM and Orai is essential for pacemaker activity in the interstitial cells of Cajal in the gastrointestinal tract. Science Signaling. 11 (June), (2018).
  43. Zhu, M. H., et al. A Ca(2+)-activated Cl(-) conductance in interstitial cells of Cajal linked to slow wave currents and pacemaker activity. The Journal of Physiology. 587 (20), 4905-4918 (2009).
  44. Zhu, M. H., Sung, T. S., O’Driscoll, K., Koh, S. D., Sanders, K. M. Intracellular Ca(2+) release from endoplasmic reticulum regulates slow wave currents and pacemaker activity of interstitial cells of Cajal. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 308 (8), C608-C620 (2015).
  45. Zhu, M. H., et al. Muscarinic activation of Ca2+-activated Cl- current in interstitial cells of Cajal. The Journal of Physiology. 589 (Pt 18), 4565-4582 (2011).
  46. Ward, S. M., Burns, A. J., Torihashi, S., Sanders, K. M. Mutation of the proto-oncogene c-kit blocks development of interstitial cells and electrical rhythmicity in murine intestine. The Journal of Physiology. 480 (Pt 1), 91-97 (1994).
  47. Huizinga, J. D., Thuneberg, L., Klüppel, M., Malysz, J., Mikkelsen, H. B., Bernstein, A. W/kit gene required for interstitial cells of cajal and for intestinal pacemaker activity. Nature. 373 (6512), 347-349 (1995).
  48. Ordog, T., Ward, S. M., Sanders, K. M. Interstitial cells of Cajal generate electricial slow waves in the murine stomach. The Journal of Physiology. 518 (1), 257-269 (1999).
  49. Sanders, K. M., Ward, S. M., Koh, S. D. Interstitial cells: regulators of smooth muscle function. Physiological Reviews. 94 (3), 859-907 (2014).
  50. Ward, S. M., McLaren, G. J., Sanders, K. M. Interstitial cells of Cajal in the deep muscular plexus mediate enteric motor neurotransmission in the mouse small intestine. The Journal of Physiology. 573 (1), 147-159 (2006).
  51. Komuro, T. Structure and organization of interstitial cells of Cajal in the gastrointestinal tract. The Journal of Physiology. 576 (3), 653-658 (2006).
  52. Komuro, T. Comparative morphology of interstitial cells of Cajal: ultrastructural characterization. Microscopy Research and Technique. 47 (4), 267-285 (1999).
  53. Sanders, K. M., Ward, S. M., Koh, S. D. Interstitial Cells: Regulators of Smooth Muscle Function. Physiological Reviews. 94 (3), 859-907 (2014).
  54. Ye, L., Haroon, M. A., Salinas, A., Paukert, M. Comparison of GCaMP3 and GCaMP6f for studying astrocyte Ca2+dynamics in the awake mouse brain. PLoS ONE. 12 (7), e0181113 (2017).
  55. Truett, G. E., Heeger, P., Mynatt, R., Truett, A. A., Walker, J. A., Warman, M. L. Preparation of PCR quality mouse genomic DNA with hot sodium hydroxide and Tris (HotSHOT). BioTechniques. 29 (52), 54 (2000).
  56. The Jackson Laboratory. , Available from: https://www2.jax.org/protocolsdb/f?p=116:5:0::NO:5:P5_MASTER_PROTOCOL_ID,P5_JRS_CODE:27076,028865 (2017).
  57. Drumm, B. T., et al. Ca 2+ signalling in mouse urethral smooth muscle in situ role of Ca 2+ stores and Ca 2+ influx mechanisms. The Journal of Physiology. 596 (8), 1433-1466 (2018).
  58. Heppner, T. J., Hennig, G. W., Nelson, M. T., Vizzard, M. A. Rhythmic Calcium Events in the Lamina Propria Network of the Urinary Bladder of Rat Pups. Frontiers in Systems Neuroscience. 11 (December), 1-16 (2017).
  59. Heppner, T. J., Hennig, G. W., Nelson, M. T., May, V., Vizzard, M. A. PACAP38-Mediated Bladder Afferent Nerve Activity Hyperexcitability and Ca 2 + Activity in Urothelial Cells from Mice. Journal of Molecular Neuroscience. 1, (2018).
  60. Griffin, C. S., et al. Muscarinic Receptor Induced Contractions of the Detrusor are Mediated by Activation of TRPC4 Channels. Journal of Urology. 196 (6), 1796-1808 (2016).
  61. Sergeant, G. P., Craven, M., Hollywood, M. A., Mchale, N. G., Thornbury, K. D. Spontaneous Ca2+waves in rabbit corpus cavernosum: Modulation by nitric oxide and cGMP. Journal of Sexual Medicine. 6 (4), 958-966 (2009).
  62. Bradley, E., et al. Novel Excitatory Effects of Adenosine Triphosphate on Contractile and Pacemaker Activity in Rabbit Urethral Smooth Muscle. Journal of Urology. 183 (2), 801-811 (2010).
  63. Drumm, B. T., et al. The effect of high [K + ] o on spontaneous Ca 2+ waves in freshly isolated interstitial cells of Cajal from the rabbit urethra. Physiological Reports. 2 (1), e00203 (2014).

Tags

생물학 문제점 143 캘리포니아2 + 이미징 ImageJ Cajal confocal 현미경 검사 법 Ano1의 중간 셀 위장 운동 성 작은 창 자 GCaMP 캘리포니아2 + 캘리포니아2 + 릴리스 spatio 시간적 지도 입자 분석
세포내 캘리포니아<sup>2 +</sup> 제자리에서 신호 계량 Spatio 시간적 매핑 및 입자 분석 기법에의 응용
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Drumm, B. T., Hennig, G. W., Baker,More

Drumm, B. T., Hennig, G. W., Baker, S. A., Sanders, K. M. Applications of Spatio-temporal Mapping and Particle Analysis Techniques to Quantify Intracellular Ca2+ Signaling In Situ. J. Vis. Exp. (143), e58989, doi:10.3791/58989 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter