Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Genetics

يصف هستون تعديل بوستترانسلاشونال التعديلات في نماذج بروتينوباثي الأعصاب الخميرة

Published: March 24, 2019 doi: 10.3791/59104

Summary

هذا البروتوكول يحدد الإجراءات التجريبية لوصف التغييرات على نطاق الجينوم في مستويات هيستون تعديلات بوستترانسلاشونال (PTM) التي تحدث بصدد overexpression البروتينات المرتبطة بالمرض ومرض باركنسون في نماذج saccharomyces cerevisiae . بعد الانفصال الحزب الديمقراطي الصربي صفحة، وقد تم اكتشاف مستويات PTM هيستون الفردية مع الأجسام المضادة الخاصة بالتعديل عن طريق النشاف الغربية.

Abstract

أمراض الأعصاب مثل التصلب العضلي الجانبي (المرض) ومرض باركنسون (PD)، يؤدي ذلك إلى فقدان مئات الآلاف من الأرواح كل عام. لا توجد خيارات العلاج فعالة قادرة على وقف تطور المرض. على الرغم من جهود تسلسل واسعة في إعداد كبيرة من السكان المريض، تظل معظم حالات المرض والمشتريات غير المبررة بالطفرات الوراثية وحدها. قد تكون ضالعة في مسببات أمراض الأعصاب وتطور آليات التخلق، مثل تعديل بوستترانسلاشونال من البروتينات هستون، وتؤدي إلى أهدافا جديدة للتدخل الصيدلانية. نماذج في المختبر والمجراه في الثدييات من المرض و PD مكلفة وغالباً ما تتطلب البروتوكولات التجريبية طويلة وشاقة. هنا، فإننا مخطط اتباع نهج عملي وسريع وفعال من حيث التكلفة لتحديد التعديلات على نطاق الجينوم هستون تعديل مستويات استخدام Saccharomyces cerevisiae كنظام نموذجي. يسمح هذا البروتوكول لإجراء تحقيقات شاملة في تغييرات جينية متصلاً بروتينوباثيس الأعصاب التي تؤكد النتائج السابقة في نظم نموذجية مختلفة أثناء توسيع معرفتنا بدرجة كبيرة ابيجينومي أمراض الأعصاب.

Introduction

أمراض الأعصاب أمراض مدمرة مع قليل من لا خيارات العلاج المتاحة. ومن بين هذه، التصلب العضلي الجانبي (المرض) ومرض باركنسون (PD) مروعة خاصة. وتعتبر حوالي 90% حالات المرض و PD المتفرقة، التي تحدث دون تاريخ عائلي للمرض، في حين أن الحالات المتبقية تشغيل في الأسر وترتبط عموما بتحور جينات محددة1،2. من المثير للاهتمام، كل هذه الأمراض المرتبطة بالبروتين ميسلوكاليزيشن وتجميع3،4،،من56. على سبيل المثال، تنصهر في ساركومه (فوس) و "القطران الحمض النووي" ملزم بروتين 43 (ماساتشوستس-43) هي بروتينات ملزمة الجيش الملكي النيبالي أن ميسلوكاليزي إلى السيتوبلازم وتجميعها في المرض7،،من89،10، 11،12، بينما α-سينوكلين هو المبدأ المكون من المجاميع البروتينية ووصف الهيئات ليوى في PD5،13،،من1415.

على الرغم من جهود مكثفة على نطاق الجينوم الرابطة في إعداد كبيرة من السكان المريض، تظل الغالبية العظمى من حالات المرض والمشتريات غير المبررة وراثيا. يمكن التخلق تلعب دوراً في أمراض الأعصاب؟ التخلق يشمل تغييرات في الجينات التي تحدث دون تغيير تسلسل الحمض النووي الأساسية16. إليه جينية رئيسية تنطوي على التعديلات متعدية وظيفة (بتمس) من البروتينات هستون16. في الخلايا حقيقية النواة، يتم تغليف المواد الجينية محكم في الكروماتين. وحدة قاعدة من الكروماتين نوكليوسومي، يتألف من 146 أزواج قاعدة الحمض النووي الملتفة حول أوكتامير هستون، يتألف من أربعة أزواج من histones (نسختين كل من histones H2A، H2B و H3 و H4)17. وقد كل هستون ذيل الطرفي ن أن يبرز من أصل نوكليوسومي ويمكن تعديله بإضافة مويتيس الكيميائية المختلفة، عادة على بقايا يسين وارجينين18. هذه بتمس بالدينامية، مما يعني أنها يمكن بسهولة إضافة وإزالة، وتشمل مجموعات مثل acetylation ومثلايشن الفسفرة. بتمس التحكم في إمكانية الحصول على الحمض النووي لآلية النسخي، ومن ثم تساعد مراقبة الجينات التعبير18. على سبيل المثال، acetylation هيستون يقلل من قوة التفاعل الكهربائي بين هيستون الأساسية عالية البروتين والحمض النووي مشحونة سلبا على العمود الفقري، السماح للجينات وجبات من هيستونيس أسيتيلاتيد لتكون في متناول أكثر وبالتالي درجة عالية وأعرب19. في الآونة الأخيرة، أدى خصوصية بيولوجية ملحوظة بتمس هيستون خاصة وتشكيلاتها إلى هستون رمز الفرضية20،21 في البروتينات التي أن كتابة ومسح وقراءة هيستون بتمس جميعا أن نعمل يدا واحدة تعدل التعبير الجيني.

الخميرة نموذج مفيد جداً لدراسة نيوروديجينيريشن. الأهم من ذلك، يتم المحافظة عليها العديد من مسارات الخلايا العصبية من الخميرة للبشر22،،من2324. تلخيص الخميرة تعمل سيتوتوكسيسيتي وتضمينات البروتين عند overexpression فوس، ماساتشوستس-43، أو α-سينوكلين22،،من2324،،من2526. وفي الواقع، قد استخدمت نماذج Saccharomyces cerevisiae المرض لتحديد عوامل الخطر الجينية في البشر27. وعلاوة على ذلك، الخميرة overexpressing البشري α-سينوكلين يسمح لتوصيف الشبكة Rsp5 كهدف دروجابل للتخفيف من سمية α-سينوكلين في الخلايا العصبية،من2829.

هنا، يمكننا وصف بروتوكول استغلال Saccharomyces cerevisiae للكشف عن التغييرات PTM هيستون الجينوم المنظومة المرتبطة بالاعصاب بروتينوباثيس (الشكل 1). استخدام S. cerevisiae جذابة للغاية بسبب سهولة الاستخدام، منخفضة التكلفة، والسرعة مقارنة بنماذج أخرى في المختبر والحيوان من نيوروديجينيريشن. تسخير سابقا وضع المرض و PD نماذج22،23،،من2526، وإننا قد overexpressed البشرية فوس، ماساتشوستس-43 و α-سينوكلين في الخميرة وكشفت هيستون متميزة PTM التغيرات التي تحدث في اتصال مع كل بروتينوباثي30. يمكن إكمال البروتوكول الذي يصف لنا هنا في أقل من أسبوعين من التحول إلى تحليل البيانات.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1-تحويل S. cerevisiae مع ثوابت البروتينات المرتبطة بروتينوباثي الأعصاب

  1. تنمو الخميرة البرية نوع (WT) 303 في الخميرة استخراج ببتون مرق سكر العنب (YPD) بين عشية وضحاها بالهز (200 لفة في الدقيقة) في 30 درجة مئوية.
  2. بعد 12−16 ح من النمو، يؤدي إلى تمييع الخميرة إلى بكثافة بصرية في 600 نانومتر (OD600) من 0.25 مع YPD. كما ستكون هناك حاجة 10 مل من الخميرة السائلة الثقافة لكل تحويل، إعداد 50 مل من الخميرة السائلة الثقافة للتحولات الخمس المقابلة فوس، ماساتشوستس-43، سينوكلين، وناقلات بنيات فقط (ككدب)، فضلا عن تحويل السيطرة السلبية دون الحمض النووي.
  3. تنمو الخميرة مع الانفعالات عند 30 درجة مئوية حتى يتم التوصل إلى OD600 بين 0.60 و 0.80. ويأخذ هذا عموما ح 4−6.
  4. لينيريزي ثلاثين دقيقة قبل اكتمال نمو الخميرة، ثوابت بلازميد.
    ملاحظة: يجب أن تدمج بنيات بلازميد المستخدمة هنا مباشرة في الجينوم، ومن ثم استخطاط مطلوب قبل التحول.
    1. حساب حجم المخزون بلازميد تلك المبالغ إلى 1 ميكروغرام. استقطاع هذا الحجم من 44 ميليلتر حساب مقدار nuclease مجاناً ح2س اللازمة.
    2. إضافة نوكلاس مجاناً ح2س 5 ميليلتر من المخزن المؤقت إنزيم التقييد x 10 (جدول المواد)، 1 ميليلتر من إنزيم التقييد ني (جدول المواد) والمقدار المناسب من بلازميد (المحسوبة في الخطوة 1.4.1) إلى أنبوب ميكروسينتريفوجي. مزيج دقيق من بيبيتينج صعودا وهبوطاً، واحتضان في 37 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة. بلازميد الآن خطية وجاهزة للتحول.
  5. بعد الخميرة تصل الثقافة OD600 من 0.6-0.8، خلايا الحصاد في أنبوب 50 مل المخروطية وتدور إلى أسفل في 850 x ز عند 4 درجة مئوية للحد الأدنى 3 تجاهل المادة طافية.
  6. أغسل بيليه الخلية في 10 مل ح2س العقيمة وأجهزة الطرد المركزي في 850 x ز عند 4 درجة مئوية للحد الأدنى 3 تجاهل المادة طافية. كرر 3 x لإجمالي يغسل الأربعة.
  7. في بداية الغسيل الثالث، ذوبان الجليد ويغلي 10 ميليلتر الحيوانات المنوية السلمون الحمض النووي كل رد فعل التحول لمدة 5 دقائق على كتلة تدفئة.
  8. ريسوسبيند بيليه الخلية في 100 ميليلتر dH2س في التحول وتقسيمها إلى عدد مناسب من أنابيب ميكروسينتريفوجي. التحولات الخمسة، ريسوسبيند بيليه إلى 500 ميليلتر من dH2س وتقسيم بالتساوي إلى خمسة أنابيب ميكروسينتريفوجي منفصلة.
  9. الطرد المركزي لمدة 5 دقائق في 850 x ز في درجة حرارة الغرفة (RT) وإزالة جميع المياه المتبقية.
  10. إضافة، بالترتيب التالي، 50 ميكروليتر معقمة ح2س، ميليلتر 240 من 50% البولي إثيلين غليكول (شماعة)، ميليلتر 36 م 1 ليك، 10 ميليلتر من سمك السلمون الحيوانات المنوية الحمض النووي، 20 ميليلتر من خطية بلازميد الحمض النووي (أو نوكلاس المياه مجاناً لأي تحويل مراقبة الحمض النووي). المزيج جيدا بعد كل إضافة ودوامه بإيجاز بعد أن تم إضافة كافة مكونات التحول.
  11. احتضان ردود فعل التحول في 42 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة.
    ملاحظة: إجراء هذه الحضانة في حمام مائي للتحكم في درجة الحرارة أكثر اتساقا.
  12. الطرد المركزي في 470 x ز على RT للحد الأدنى 5 تجاهل المادة طافية وريسوسبيند كل خلية بيليه في 200 ميكروليتر معقمة H2o.
  13. لوحة تعليق الخميرة في لوحات الإعلام الانتقائي وتنتشر مع الخرز المتداول أو الناشرة. احتضان لوحات لأيام 2−3 في 30 درجة مئوية.
    ملاحظة: تعريف الاصطناعية (SD)-وتستخدم لوحات له والبلازميدات الموصوفة هنا.

2-مسح قمع نمو مستعمرة والتخزين في مخزونات والغليسيرول

  1. تطعيم المستعمرات واحدة من لوحات التحويل في 5 مل من وسائل الإعلام الانتقائي وتستكمل مع رافينوسي 2%. تنمو على شاكر عند 30 درجة مئوية بين عشية وضحاها. حدد المستعمرات على الأقل 12 كل التحول.
    ملاحظة: من المتوقع لا مستعمرات في لوحة التحكم التحول "لا الحمض النووي".
  2. تعقيم دبوس-frogger مع الإيثانول، تليها المشتعلة.
  3. لكل ثقافة، اليكووت ميليلتر 100 تعليق خلية المشبعة في الصف الأول من لوحة 96-جيدا. إضافة 200 ميكروليتر معقمة ح2س في جميع الآبار المجاورة الأعمدة جيدا. لتخفيف المسلسل 1:5، إضافة 50 ميليلتر من العمود الأول إلى العمود المجاور خلف مع بيبيت الأقنية. مزيج دقيق من بيبيتينج. ثم إضافة 50 ميليلتر من العمود الثاني إلى العمود الثالث ومزيج من بيبيتينج. كرر هذه العملية لبقية اللوحة.
  4. لوحة الخميرة بوضع frogger في صفيحة 96-جيدا وثم ختم بالضغط بلطف وبشكل متساو أسفل لوحات الإعلام الانتقائي مع أو بدون اللبن. احتضان عند 30 درجة مئوية لمدة أيام 2−3.
    ملاحظة: تستخدم ألواح SD-صاحب وصاحب سجال والبلازميدات الموصوفة هنا.
  5. فوس، ماساتشوستس-43، والتحولات في سينوكلين، تحديد مستعمرة عرض قمع نمو معظم حضور اللبن. حدد هذه المستعمرة من لوحة SD-صاحب وتطعيم في 10 مل من وسائل الإعلام الانتقائي وتستكمل مع رافينوسي 2% للنمو بين عشية وضحاها. لمكافحة ناقلات الأمراض، واختيار مستعمرة عرض لا قمع النمو حضور اللبن.
  6. إعداد الأرصدة والغليسيرول، الجمع بين 0.5 مل ثقافة مشبعة السائل مع 0.5 مل والغليسيرول 50%. مزيج من بيبيتينج صعودا وهبوطاً، وتجميد في-80 درجة مئوية.
    ملاحظة: يمكن تخزين مخزونات والغليسيرول لتصل إلى سنة في-80 درجة مئوية.

3-أوفيريكسبريشن بروتينوباثي الأعصاب المرتبطة البروتينات في سيريفيسيا س.

  1. من الأرصدة المجمدة والغليسيرول، الخميرة إعادة متتالية على الحامض الأميني، 2% جلوكوز أجار وسائط انتقائية لوحات واحتضان عند 30 درجة مئوية لمدة أيام 2−3.
  2. تطعيم المستعمرات واحدة لكل من نماذج أوفيريكسبريشن والتحكم في 5 مل من الحامض الأميني وسائل الإعلام السائلة انتقائية وتستكمل مع رافينوسي 2%. تنمو مع الهز (200 لفة في الدقيقة) عند 30 درجة مئوية بين عشية وضحاها.
  3. تنمو 100 مل من سائل الثقافة لكل من أوفيريكسبريشن النماذج وعناصر التحكم (فوس، ماساتشوستس-43 وناقل التحكم؛ التحكم سينوكلين ومتجه).
    1. تحضير 100 مل ثقافة في وسائل الإعلام الانتقائي وتستكمل مع اللبن 2%.
    2. قياس القطر الخارجي600 الثقافات بين عشية وضحاها وحساب كمية بين عشية وضحاها الثقافة المطلوبة لتقديم ثقافات overexpression OD انطلاق600 0.3. عادة، سوف تصل إلى الثقافات بين عشية وضحاها OD600 من 0.9−10، التي تتطلب حوالي 5 مل ثقافة بين عشية وضحاها بدء 100 مل ثقافة جديدة.
    3. حمل overexpression البروتين بنمو الخميرة في اللبن وسائط الإعلام (راجع الخطوة 3.3.1) ح 5 (فوس و، ماساتشوستس-43) أو ح 8 (-سينوكلين) مع تهتز عند 30 درجة مئوية.
  4. قياس القطر الخارجي600 كل ثقافة في نهاية فترة التعريفي. توحيد جميع التهم الخلية إلى أدنى قيمة600 OD. حصاد الثقافة في أنابيب 50 مل من سينتريفوجينج في 850 x ز لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية. تجاهل المادة طافية.
    ملاحظة: إذا كانت OD600 القيم المقاسة في نهاية التعريف 0.654 و 0.984، على التوالي، 100 مل سينوكلين الثقافة و 100 مل من ثقافة الرقابة، حصاد مل 95 للثقافة في سينوكلين ومل 67.1 ثقافة السيطرة.
  5. ريسوسبيند بيليه في 1 مل من العقيمة dH2س لكل 10 مل من الثقافة نمت. تقسيم بيليه بالتساوي بواسطة اليقوتينج 1 مل تعليق خلية في أنابيب ميكروسينتريفوجي. على سبيل المثال، إذا بدأت مع 100 مل ثقافة، ريسوسبيند بيليه في 10 مل من العقيمة dH2س وتقسم إلى 10 ميكروسينتريفوجي الأنابيب.
  6. الطرد المركزي في 850 x ز لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية، ثم إزالة المادة طافية. الأداة الإضافية تجميد الخلايا الكريات في النتروجين السائل ومخزن في-80 درجة مئوية.
    ملاحظة: يمكن تخزين خلايا الكريات في-80 درجة مئوية لمدة تصل إلى سنة واحدة.

4-خلية تفسخ والنشاف الغربية للكشف عن التعديلات هيستون بوستترانسلاشونال

  1. تحلل الخلية
    1. ذوبان الجليد الكريات خلايا الخميرة على الجليد وريسوسبيند الكريات الخلية في 100 ميليلتر من dH2o.
    2. لاستثارة الخلية، إضافة 300 ميليلتر من 0.2 M هيدروكسيد الصوديوم و 20 ميليلتر من 2-mercaptoethanol. ريسوسبيند من بيبيتينج صعودا وهبوطاً.
    3. احتضان خلايا على الجليد لمدة 10 دقائق وثم الطرد المركزي في 3,200 س ز على أجهزة الطرد مركزي منضدية لمدة 30 ثانية في تجاهل الرايت المادة طافية.
    4. ريسوسبيند بيليه الخلية في 100 ميليلتر من 1 × تحميل صبغ ويغلي لمدة 10 دقائق على كتلة تدفئة.
      ملاحظة: يمكن الاطلاع على وصفه ل 6 × تحميل صبغ في الجدول للمواد.
  2. نقل الصوديوم دوديسيل كبريتات polyacrylamide هلام التفريد والغشاء
    1. تحضير هلام الدائرة بوضع اثنين من المواد الهلامية في جل حامل والتعبئة داخلية دائرة إلى الأعلى مع تشغيل المخزن المؤقت وملء إلى خارج الدائرة علامة الخط الثاني-جل.
    2. تحميل 15 ميكروليتر من عينة من الخطوة 4.1.4 كل بئر في جل polyacrylamide 12% 10-جيدا. للين سلم البروتين، تحميل 5 ميليلتر.
    3. تشغيل جل لحوالي 45 دقيقة في 150 الخامس، أو حتى تحميل الجبهة صبغ تصل إلى الجزء السفلي من الجل.
    4. بينما يتم تشغيل الهلام، التحضير لنقل الغشاء مغطس وسادات الألياف (اثنان لكل جيل) في نقل المخزن المؤقت (جدول المواد) وامتصاص الغشاء الفلوريد (PVDF) الفينيليدن في الميثانول. شطف الغشاء في نقل المخزن المؤقت قبل النقل.
      ملاحظة: ينبغي خفض حجم الهلام الغشاء PVDF واستخدم الغشاء PVDF واحدة لكل جل نقله.
    5. تجميع، في خلية جهاز نقل شبه الجاف، نقل 'ساندويتش': من القطب السفلي، ضع لوحة الألياف (1) بريسواكيد (2) بريسواكيد ومشطوف الغشاء PVDF، (3) جل من خطوة 4.2.3 و (4) لوحة ألياف بريسواكيد ثانية.
      ملاحظة: تأكد من لتجنب فقاعات الهواء في نقل 'ساندويتش.' لفة بلطف 'ساندويتش' مع بيبيت المصلية لإجبار بها فقاعات. متى تم وضع الجل على رأس الغشاء بدفف، تأكد من لا لنقله.
    6. القيام بنقل البروتين بإعداد حزمة الطاقة إلى 150 mA ح 1 (لأحد 'ساندويتش').
  3. كشف هيستون بتمس مع الأجسام المضادة المحددة للتعديل
    1. إزالة الغشاء من نقل الجهاز. شطف بإيجاز مع dH2o.
      1. بشكل اختياري، تحقق نقل البروتينات مع وصمة عار بونسو-S بصب وصمة بونسو-S ما يكفي لتغطية غشاء في علبة بلاستيكية صغيرة وتفرخ في الرايت مع الهز لطيف ل 30−60 s. S بونسو إزالة وصمة عار وشطف مع dH2س حتى الخلفية وصمة عار يختفي ونطاقات البروتين مرئية بالعين المجردة. تواصل شطف مع dH2س حتى تتم إزالة وصمة عار كل من الغشاء.
    2. كتلة الأغشية التي تفرخ وصمة عار ح 1 في الرايت مع هزاز لطيف مع تريس مخزنة المالحة (تبس) حظر المخزن المؤقت (جدول المواد) في مربع المصبوغة صغير. استخدام المخزن المؤقت حظر ما يكفي لتغطية وصمة عار.
      ملاحظة: كن حذراً مكان غشاء تستقيم في مربع المصبوغة حتى لا تواجه الجانب الغشاء الذي تكمن البروتينات إلى أسفل.
    3. احتضان وصمة عار في المربع المصبوغة بين عشية وضحاها مع جسم خاصة بتعديل هيستون رد الفعل تجاه الخميرة في 4 درجات مئوية. تضعف الجسم في المخزن المؤقت حظر تبس وفقا لمواصفات الشركة المصنعة. وتشمل أيضا عنصر تحكم تحميل النووي سليم، مثل H3 مجموع المضادة المثارة في مضيف مختلف أنواع من الأجسام المضادة الخاصة بالتعديل. على سبيل المثال، إذا كان التدقيق في H3S10ph مع جسم H3S10ph المضادة المثارة في أرنب، استخدام جسم H3 مجموع المضادة المثارة في الماوس كعنصر تحكم تحميل. كرر هذه العملية لكل اسطوانة حسب الضرورة.
      ملاحظة: يمكن إعادة استخدام تخفيف جسم لما مجموعة ثلاث مرات في غضون شهر. تخزينها في 4 درجات مئوية.
    4. يغسل الغشاء 4 x في البيت-أدلى تبس + 0.1% بوليسوربيت 20 (تبسة) لمدة 5 دقائق مع هزاز في الرايت
    5. احتضان وصمة عار مع الأجسام المضادة الثانوية الفلورسنت في تخفيف المحددة من قبل الشركة المصنعة (حمار المضادة أرنب 680 ودونكي المضادة الماوس) ح 1 في الرايت
      ملاحظة: يجب حماية الأجسام المضادة الثانوية الفلورسنت من الضوء أثناء التخزين والاستخدام. القيام بالحضانة في صناديق بلاستيكية داكن أو تغطي برقائق الألومنيوم.
    6. يغسل الغشاء 4 x مع تبسة لمدة 5 دقائق ويغسل مع TBS لمدة 5 دقائق في حين تعصف في الرايت
    7. تصور وصمة عار على وصمة عار غربية فلورسنت نظام للحد الأدنى 2 تصوير تصور الأرنب المضادة 680 والأجسام المضادة الماوس 800 الثانوي 800 نانومتر و 700 نانومتر القنوات، على التوالي.
      ملاحظة: تجري Replicates بشكل مستقل ابتداء من الباب 1. من الضروري للتحقق من أن الاستجابة إشارة جسم ضمن النطاق أكثر مما استجابة إشارة خطية لتفسير البيانات المناسبة في هذه التجارب.

5-بيانات التحليل والإحصاءات

  1. فتح الصورة من وصمة عار في برامج تصوير (جدول المواد). اكتساب كثافة الخام من العينات الخاصة بالتعديل العصابات في ناقلات التحكم، ماساتشوستس-43، وفوس (أو مكافحة ناقلات الأمراض وسينوكلين)، عن طريق رسم مستطيل بإطارات الفرقة في تحليل الوضع.
  2. كرر الخطوة 5، 1 لتحميل مكافحة العصابات.
    ملاحظة: سوف يكون هناك تحميل التحكم الفرقة وفرقة الخاصة بالتعديل في كل عينة.
  3. حساب الكثافة النسبية للنطاقات الخاصة بالتعديل بتقسيم كل فرقة بكثافة الفرقة المقابلة في نموذج عنصر تحكم ناقل. وهذا طبيعتها البيانات لمكافحة ناقلات الأمراض.
  4. حساب الكثافة النسبية للتحميل شريط التحكم بتقسيم كل فرقة بالكثافة لتحميل المقابلة الفرقة عنصر تحكم في نموذج عنصر تحكم ناقل.
  5. حساب الكثافة النسبية المعدلة لكل الفرقة بتقسيم الكثافة النسبية للفرقة الخاصة بالتعديل على مدى الكثافة النسبية للتحميل شريط التحكم لكل عينة. الآن، يمكن تصور البيانات في نموذج الرسم البياني.
    ملاحظة: لسهولة التجهيز، يمكن أن يتم الخطوات 5.3 – 5.5 في جدول بيانات (ملف إضافي).
  6. بعد replicates مستقلة متعددة، تي-الاختبارات تشغيل ولش بين عينات مراقبة اثنين وبروتينوباثي المناسبة نموذج (التحكم مقابل فوس، السيطرة مقابل 43، ماساتشوستس، والسيطرة مقابل سينوكلين) مع p = 0.05 كقطع للأهمية .

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

لتوضيح هذا الأسلوب، سوف نستفيد من النتائج المنشورة مؤخرا30. كانت overexpressed WT البشرية فوس و، ماساتشوستس-43 ح 5، بينما كان overexpressed WT α-سينوكلين ح 8. بنية ككدب كعنصر تحكم ناقل سلبية. ويبين الشكل 2 قمع النمو في الثقافات الصلبة والسائلة. وكان حصاد الخميرة كما هو موضح والنشاف الغربية مع الأجسام المضادة الخاصة بتعديل أجرى. H3 مجموع المضادة استخدمت كعنصر تحكم تحميل. انخفاضا كبيرا في مستويات H3S10ph و H3K14ac واضح في نموذج overexpression فوس (الشكل 3 أ، ب). وهناك زيادات كبيرة في مستويات أسيتيليشن في H4K12 و H4K16 في نموذج أوفيريكسبريشن، ماساتشوستس-43 التي لا تراعي في أما في فوس أو α-سينوكلين overexpression النموذجي (الشكل 3 جيم، دال). وهناك أيضا انخفاض كبير في مستويات H3K36me2 و H2BT129ph في نموذج overexpression α-سينوكلين (الرقم 3e، و).

لإظهار أن التغيير في هيستون بتمس تتلازم مع كمية التعبير عن البروتين بروتينوباثي الأعصاب، يمكن ضبطها على التعبير عن فوس بتحريض التعبير البروتين بدرجات متفاوتة من اللبن (الشكل 4 أ). يتم خلط اللبن مع السكروز في تغيير نسب التركيز الكلي للسكر ثابتاً عند 2 في المائة، ولكن يتم تعديل كمية اللبن الناتج في طائفة من مستويات التعبير البروتين. في S. cerevisiae، يتم ببطء استقلاب السكروز إلى جلوكوز، مما يمنع اللبن التعريفي31. ومن ثم، السكروز لا ينشط ولا يمنع التعريفي اللبن. انخفاض كمية اللبن المستخدمة لحمل overexpression فوس، لوحظ أقل سمية في ثقافة كل الصلبة والسائلة (الشكل 4 باء، جيم). الأهم من ذلك، انخفاض مستوى overexpression فوس، وأصغر حجم الانخفاض في مستويات H3S10ph (الشكل 4 د-f).

Figure 1
رقم 1: ميثودوفيرفيو لوصف التغييرات في التعديلات هيستون بوستترانسلاشونال متصل بالاعصاب مرض بروتينوباثيس في نماذج الخميرة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 2
رقم 2: السمية المرتبطة overexpression بروتينات ذات الصلة بروتينوباثي الأعصاب في نماذج الخميرة. وتظهر فحوصات اكتشاف جدوى خلية للخميرة overexpressing مكافحة ناقلات الأمراض، ماساتشوستس-43، فوس، أو α-سينوكلين بحضور الجلوكوز () أو (ب) اللبن. (ج) النمو منحنى تصور بقاء الخلية في ثقافة السائل تحت التعريفي اللبن. أشرطة الخطأ تشير إلى ± الانحراف المعياري. n = 3 لكل سلالة. Replicates نتيجة لتجارب مستقلة تماما. البيانات التي تم تكييفها مع إذن من تشن، ك. et al. "الأعصاب مرض بروتينوباثيس ترتبط هيستون بوستترانسلاشونال متميزة التعديل" المناظر الطبيعية. الكيميائية ACS علم الأعصاب- 9 (4)، 838-848 (2018). حقوق الطبع والنشر عام 2018 الجمعية الأمريكية الكيميائية. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 3
الشكل 3: التغييرات في هيستون بوستترانسلاشونال التعديلات المرتبطة ب overexpression بروتينات ذات الصلة بروتينوباثي الأعصاب في نماذج الخميرة. نموذج بروتينوباثي فوس يظهر انخفاض مستويات () H3S10ph، n = 6، و (ب) H3K14ac، n = 3. على العكس من ذلك، يظهر نموذج بروتينوباثي، ماساتشوستس-43 زيادة مستويات (ج) H4K12ac، n = 3، و (د) H4K16ac، n = 6، بينما يظهر نموذج α-سينوكلين انخفاض مستويات (e) H3K36me2، ن = 3، و (و) H2BT129ph، n = 7. عرض أشرطة الخطأ + الانحراف المعياري. *، ف < 0.05، * * *، ف < 0.001. Replicates نتيجة لتجارب مستقلة تماما. البيانات التي تم تكييفها مع إذن من تشن، ك. et al. "الأعصاب مرض بروتينوباثيس ترتبط هيستون بوستترانسلاشونال متميزة التعديل" المناظر الطبيعية. الكيميائية ACS علم الأعصاب- 9 (4)، 838-848 (2018). حقوق الطبع والنشر عام 2018 الجمعية الأمريكية الكيميائية. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 4
الشكل 4: مدى الانخفاض في مستويات H3S10ph مرتبط بمستوى فوس أوفيريكسبريسيون. () رسوم متحركة رسم توضيحي لاستخدام المعدلات السكروز واللبن لضبط مقدار overexpression فوس. (ب) اكتشاف فحوصات تبين بقاء الخلية وجود مستويات متفاوتة من اللبن. (ج) النمو منحنى في ثقافة السائل عرض خلية جدوى وجود مستويات متفاوتة من اللبن. أشرطة الخطأ تشير إلى ± الانحراف المعياري. (د) ممثل إيمونوبلوتس تبين أن مستويات البروتين فوس الارتفاع كما تتعرض الخلايا لزيادة نسب اللبن. فوسفوجليسيراتي كيناز (PGK) كعنصر تحكم تحميل. () إيمونوبلوتس الممثل إظهار المقابلة حدوث انخفاض في مستويات H3S10ph مع زيادة نسب اللبن. الرسم البياني (f) كوانتيتاتيون (e). n = 3 لكل شرط. أشرطة الخطأ تشير إلى + الانحراف المعياري للتخطيط الكمي. Replicates نتيجة لتجارب مستقلة تماما. البيانات التي تم تكييفها مع إذن من تشن، ك. et al. "الأعصاب مرض بروتينوباثيس ترتبط هيستون بوستترانسلاشونال متميزة التعديل" المناظر الطبيعية. الكيميائية ACS علم الأعصاب- 9 (4)، 838-848 (2018). حقوق الطبع والنشر عام 2018 الجمعية الأمريكية الكيميائية. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

ينص البروتوكول على وصف هنا بطريقة مباشرة ومناسبة وفعالة من حيث التكلفة لتصنيف التغيرات PTM هيستون على نطاق الجينوم يرتبط مع بروتينوباثيس الأعصاب. بينما هناك نماذج أخرى من المرض، وشعبة المشتريات، مثل في المختبر خطوط الخلايا البشرية والفاري نماذج32, S. cerevisiae تظل جذابة بسبب سهولة استخدامه. على سبيل المثال، نماذج الخميرة لا تتطلب استخدام غطاء عقيمة، كما أنها تتطلب كثافة التدريب الذي يسير جنبا إلى جنب خلية ثقافة العمل. وعلاوة على ذلك، الكواشف لاستزراع الخميرة أيضا أكثر بكثير بأسعار معقولة من لوازم الثقافة خلايا الثدييات. نماذج الخميرة قد استغلت لتكشف عن العوامل التي تحدد المجال للبروتين التجميع22،،من2324،،من2526، بل أدت أيضا إلى الكشف عن المخاطر الوراثية العوامل في ALS27، فضلا عن معدلات البروتين تجميع سمية22. وعلاوة على ذلك، تم العثور على حذف Set3، عضو deacetylase هيستون المعقدة، لتقليل سمية ماساتشوستس-43 في الخميرة33. من المثير للاهتمام، النتائج التي توصلنا إليها في الخميرة باﻻتفاق مع التقارير الأخيرة بشأن التعديلات التعديل هستون في كل طراز ماوس فوس وبشرية "فوس" SH-SY5Y أوفيريكسبريشن نموذجي34،35. وعلاوة على ذلك، اكتشف مؤخرا تغييرات في أنماط الحمض النووي مثلايشن حول الجينات PD الرئيسية، مثل سنكا و PARK2، ودعم دور التخلق في PD36،37.

وهنا نعرض أن هذه النماذج الخميرة يمكن أيضا استخدامها لاكتشاف كيفية تفاعل الأعصاب بروتينوباثيس مع ابيجينومي30. ونجد أن تغييرات متميزة في هيستون التعديلات المرتبطة بكل نموذج بروتينوباثي. البروتوكول الواردة هنا يسمح لنا للتأكد من صحة النتائج السابقة في نظم نموذجية أخرى. آخر ملحوظ، هذا الأسلوب قد زاد فهمنا للبانوراما ابيجينوميك من مرض الأعصاب. مجموعة موسعة من التعديلات المقدمة هنا يمكن الكشف عن أهداف هيستون رواية الكاتب وممحاة للتدخل الدوائي. هذه النتائج الضوء على مساهمة ممكنة من histones بتمس والتخلق في علم الأمراض من المرض، والمشتريات وغيرها من الأمراض الأعصاب وقد توفر سبلاً جديدة لعلاج هذه الأمراض.

عناية خاصة يجب أن يؤخذ في خطوات 1.9 و 1.10 عند تحويل الخميرة أوفيريكسبريس بروتينوباثيس الأعصاب. على وجه التحديد، مضيفاً الكواشف بالترتيب الصحيح أثناء الخطوة 1.10 ضروري لضمان كفاءة تحويل عالية. وعلاوة على ذلك، من المهم جداً لاختيار مستعمرة عرض قمع معظم النمو في اللبن. وينبغي أيضا توخي الحذر عند تجميع ساندويتش الغربية. عرضي إضافة فقاعات بين جل والغشاء سيتم حظر نقل البروتين وتقديم البقع كتلة عن وصمة عار يمكن أن تعوق تحليل البيانات.

واحد الحد من هذا البروتوكول أن الأجسام المضادة تقتصر على الملزمة والكشف عن التعديلات هيستون واحدة أو اثنتين في وقت واحد فقط. من المهم أيضا لتوحيد العينات بشكل صحيح بعد overexpression البروتين (3.4−3.6 خطوات). إزالة تماما النمو جميع وسائل الإعلام سيضمن أن كل خلية بيليه رياح تصل حراكه في نفس وحدة التخزين. وبالمثل، من المهم أن الكوة بعناية على نفس القدر من تعليق خلية في أنابيب ميكروسينتريفوجي (الخطوة 3، 4). إذا كان لا يتم موحدة العينات بشكل صحيح، من الصعب استخلاص أي استنتاجات من أي تغييرات في مستويات PTM هيستون. وستصبح هذه مشكلة الظاهر في التباينات في مستويات مراقبة تحميل لطخة غربية (الجزء 4-2). لتصحيح هذا الوضع، يمكن جل الحزب الديمقراطي الصربي صفحة محملة بعينات ذات الصلة أخذ الملون، مما يسمح للبروتين الفرقة التحديد الكمي لهذه العينات (القسم 5) واللاحقة إعادة توحيد عينات استناداً إلى الكمية من هذا البروتين في كل عينة.

وفي الختام، يتيح هذا البروتوكول لتحليل التغيرات PTM هيستون المرتبطة overexpression البروتينات المتصلة بالاعصاب بروتينوباثيس في أقل من أسبوعين، من التحول إلى التحليل الإحصائي. وبصرف النظر عن تمكن دراسة بروتينوباثيس المرتبطة بأمراض الأعصاب، يمكن استخدام هذا البروتوكول العام لدراسة التعديلات PTM هستون في أي نموذج overexpression الخميرة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgments

ونحن نشكر رينا طناز وهدى يوسف تاسين صديقى للحصول على مساعدة تقنية. ونحن ممتنون جداً للبروفيسور جيمس أقصر لتوفير الكواشف والفكرية المساعدة في تصميم تجارب ضبط السكروز سخية. والبلازميدات الخميرة كانت هدية سخية من البروفيسور آرون جيتلير (بما في ذلك غال 303-فوس؛ بلازميد # 29614 من أدجيني). كلية بروكلين ومتقدمة علوم بحوث مركز (CUNY)، فضلا عن المعاهد الوطنية للصحة NINDS المتقدمة بعد الدكتوراه مرحلة انتقالية جائزة (K22NS09131401) تدعم M.P.T.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
-His DO Supplement Clontech 630415
10x Running Buffer Mix: 141.65 g glycine (ThermoFisher BP381-1), 30.3 g Tizma base (Sigma-Aldrich T6066), 10 g sodium dodecyl sulfate (Sigma-Aldrich L3771), and 1 L deionized water, pH 8.8.
12% Polyacrylamide Gels BIO-RAD 456-1041
2-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Anti-acetyl-Histone H3 (Lys14) Primary Antibody MilliporeSigma 07-353 (Lot No. 2762291) Dilution: 1/1000
Anti-acetyl-Histone H4 (Lys 16) Primary Antibody Abcam ab109463 (Lot No. GR187780) Dilution: 1/2000
Anti-acetyl-Histone H4 (Lys12) Primary Antibody Abcam ab46983 (Lot No. GR71882) Dilution: 1/5000
Anti-dimethyl-Histone H3 (Lys36) Primary Antibody Abcam ab9049 (Lot No. GR266894, GR3236147) Dilution: 1/1000
Anti-Histone H3 Primary Antibody Abcam ab24834 (Lot No. GR236539, GR174196, GR3194335) Nuclear Loading Control; Dilution: 1/2000
Anti-phospho-Histone H2B (Thr129) Primary Antibody Abcam ab188292 (Lot No. GR211874) Dilution: 1/1000
Anti-phospho-Histone H3 (Ser10) Primary Antibody Abcam ab5176 (Lot No. GR264582, GR192662, GR3217296) Dilution: 1/1000
BioPhotometer D30 Eppendorf 6133000010
Cell Culture Dish (100 x 20 mm) Eppendorf 30702118
Cell Culture Plate, 96 well Eppendorf 30730011
Centrifuge 5804/5804 R/5810/5810 R Eppendorf 22625501
Donkey Anti-Mouse IRDye 800 CW LI-COR 926-32212 (Lot No. C60301-05, C61116-02, C80108-05) Dilution: 1/5000
Donkey Anti-Rabbit IRDye 860 RD LI-COR 926-68073 (Lot No. C60217-06, C70323-06, C70601-05, C80116-07) Dilution: 1/2500
Ethanol Sigma-Aldrich E7023
Extra thick blot paper (filter paper) BIO-RAD 1703968
Galactose Sigma-Aldrich G0750 Prepare 20% w/v stock solution.
Glucose Sigma-Aldrich G8270 Prepare 20% w/v stock solution.
Glycerol Sigma-Aldrich G5516 Prepare 50 % w/v solution.
Immobilon-FL Transfer Membranes MilliporeSigma IPFL00010
Lithium acetate dihydrate (LiAc) Sigma-Aldrich L4158 Prepare a 1 M solution.
Loading Dye Mix: 1.2 g sodium dodecyl sulfate, 6 mg bromophenol blue (Sigma-Aldrich B8026), 4.7 mL glycerol, 1.2 mL 0.5M Trizma base pH 6.8, 0.93 g DL-Dithiothreitol (Sigma-Aldrich D0632), and 2.1 mL deionized water.
Methanol ThermoFisher A412-4
Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophoeresis Cell BIO-RAD 1658004
Multichannel pipet Eppendorf 2231300045
NEB Restriction Enzyme Buffer 2.1, 10x New England Bio Labs 102855-152
Nhe I Restriction Enzyme New England Bio Labs 101228-710
Nuclease Free Water Qiagen 129114
Odyssey Fc Imaging System LI-COR Biosciences 2800-03
OmniTray Cell Culture Treated w/Lid Sterile, PS (86 x 128 mm) ThermoFisher 165218
pAG303GAL-a-synuclein-GFP Gift from A. Gitler
pAG303GAL-ccdB Addgene 14133
pAG303Gal-FUS Addgene 29614
pAG303GAL-TDP-43 Gift from A. Gitler
Poly(ethylene glycol) (PEG) Sigma-Aldrich P4338 Prepare a 50% w/v solution.
Ponceau S Stain Sigma-Aldrich P3504 Mix: 0.5 g 0.1% w/w Ponceau S dye, 5 mL 1% v/v acetic acid (Sigma-Aldrich 320099), and 500 mL deionized water.
PowerPac Basic Power Supply BIO-RAD 164-5050
Raffinose pentahydrate Sigma-Aldrich R7630 Prepare 10% w/v stock solution.
Salmon Sperm DNA Agilent Tech 201190
SD-His plates Mix: 20 g Agar (Sigma-Aldrich A1296), 0.77 g -His DO supplement, 6.7 g yeast Nitrogen Base w/o amino acids (ThermoFisher 291920), and 900 mL deionized water.
SGal-His plates Mix: 20 g Agar, 0.77 g -His DO supplement, 6.7 g yeast Nitrogen Base w/o amino acids, 100 mL galactose solution, and 900 mL deionized water.
Sodium dodecyl sulfate Loading Buffer Store at -20 oC. 6X, Mix: 1.2 g sodium dodecyl sulfate, 6 mg bromophenol blue, 0.93 g DL-Dithiothreitol, 2.1 mL deionized water, 4.7 mL glycerol, and 1.2 mL 0.5 M Trizma base, pH 6.8.
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 221465 Prepare 0.2 M solution.
Sucrose Sigma-Aldrich 84097 Prepare 20% w/v stock solution.
TBS + 0.1% Tween 20 (TBST) Mix: 100 mL 10X TBS, 1 mL Tween 20 (Sigma-Aldrich P7949), and 900 mL deionized water.
TBS Blocking Buffer LI-COR 927-5000
Trans-Blot SD Semi-Dry Electrophoretic Transfer Cell BIO-RAD 170-3940
Transfer Buffer Mix: 22.5 g glycine, 4.84 g Tizma base, 400 mL methanol, 1 g sodium dodecyl sulfate, and 1.6 L deionized water.
Tris-Buffered Saline (TBS) 10X, 7.6 pH, Solution: Mix 24 g Trizma base, and 88 g sodium chloride (Sigma-Aldrich S7653). Fill to 1 L with deionized water.
WT 303 S. cerevisiae yeast Gift from J. Shorter
Yeast Extract Peptone Dextrose (YPD) Sigma-Aldrich Y1375

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Landgrave-Gómez, J., Mercado-Gómez, O., Guevara-Guzmán, R. Epigenetic mechanisms in neurological and neurodegenerative diseases. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, 58 (2015).
  2. Paez-Colasante, X., Figueroa-Romero, C., Sakowski, S. A., Goutman, S. A., Feldman, E. L. Amyotrophic lateral sclerosis: mechanisms and therapeutics in the epigenomic era. Nature Reviews Neurology. 11 (5), 266-279 (2015).
  3. Beitz, J. M. Parkinson's Disease: a Review. Frontiers in Bioscience. 6, 65-74 (2014).
  4. Kim, H. J., et al. Mutations in prion-like domains in hnRNPA2B1 and hnRNPA1 cause multisystem proteinopathy and ALS. Nature. 495 (7442), 467-473 (2013).
  5. Poewe, W., et al. Parkinson disease. Nature Reviews Disease Primers. 3, https://www.nature.com/articles/nrdp201713 - supplementary-information 17013 (2017).
  6. Robberecht, W., Philips, T. The changing scene of amyotrophic lateral sclerosis. Nature Reviews Neuroscience. 14 (4), https://www.nature.com/articles/nrn3430 - supplementary-information 248-264 (2013).
  7. Chen-Plotkin, A. S., Lee, V. M. Y., Trojanowski, J. Q. TAR DNA-binding protein 43 in neurodegenerative disease. Nature Reviews Neurology. 6 (4), 211-220 (2010).
  8. Couthouis, J., et al. A yeast functional screen predicts new candidate ALS disease genes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (52), 20881-20890 (2011).
  9. Da Cruz, S., Cleveland, D. W. Understanding the role of TDP-43 and FUS/TLS in ALS and beyond. Current Opinion in Neurobiology. 21 (6), 904-919 (2011).
  10. King, O. D., Gitler, A. D., Shorter, J. The tip of the iceberg: RNA-binding proteins with prion-like domains in neurodegenerative disease. Brain Research. 1462, 61-80 (2012).
  11. Neumann, M., et al. FET proteins TAF15 and EWS are selective markers that distinguish FTLD with FUS pathology from amyotrophic lateral sclerosis with FUS mutations. Brain. 134 (9), 2595-2609 (2011).
  12. Neumann, M., et al. Ubiquitinated TDP-43 in Frontotemporal Lobar Degeneration and Amyotrophic Lateral Sclerosis. Science. 314 (5796), 130-133 (2006).
  13. Baba, M., et al. Aggregation of alpha-synuclein in Lewy bodies of sporadic Parkinson's disease and dementia with Lewy bodies. The American Journal of Pathology. 152 (4), 879-884 (1998).
  14. Lotharius, J., Brundin, P. Pathogenesis of parkinson's disease: dopamine, vesicles and α-synuclein. Nature Reviews Neuroscience. 3 (12), 932-942 (2002).
  15. Spillantini, M. G., et al. α-Synuclein in Lewy bodies. Nature. 388 (6645), 839-840 (1997).
  16. Probst, A. V., Dunleavy, E., Almouzni, G. Epigenetic inheritance during the cell cycle. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (3), 192-206 (2009).
  17. Luger, K., Mäder, A. W., Richmond, R. K., Sargent, D. F., Richmond, T. J. Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 Å resolution. Nature. 389 (6648), 251-260 (1997).
  18. Mazzio, E. A., Soliman, K. F. A. Basic concepts of epigenetics. Epigenetics. 7 (2), 119-130 (2012).
  19. Struhl, K. Histone acetylation and transcriptional regulatory. Genes & Development. 12 (5), 599-606 (1998).
  20. Garcia, B. A., Shabanowitz, J., Hunt, D. F. Characterization of histones and their post-translational modifications by mass spectrometry. Current Opinion in Chemical Biology. 11 (1), 66-73 (2007).
  21. Strahl, B. D., Allis, C. D. The language of covalent histone modifications. Nature. 403 (6765), 41-45 (2000).
  22. Jovicic, A., et al. Modifiers of C9orf72 dipeptide repeat toxicity connect nucleocytoplasmic transport defects to FTD/ALS. Nature Neuroscience. 18 (9), 1226-1229 (2015).
  23. Sanchez, Y., Lindquist, S. L. HSP104 required for induced thermotolerance. Science. 248 (4959), 1112 (1990).
  24. Outeiro, T. F., Lindquist, S. Yeast Cells Provide Insight into Alpha-Synuclein Biology and Pathobiology. Science. 302 (5651), 1772 (2003).
  25. Johnson, B. S., et al. TDP-43 Is Intrinsically Aggregation-prone, and Amyotrophic Lateral Sclerosis-linked Mutations Accelerate Aggregation and Increase Toxicity. Journal of Biological Chemistry. 284 (30), 20329 (2009).
  26. Sun, Z., et al. Molecular Determinants and Genetic Modifiers of Aggregation and Toxicity for the ALS Disease Protein FUS/TLS. PLOS Biology. 9 (4), e1000614 (2011).
  27. Elden, A. C., et al. Ataxin-2 intermediate-length polyglutamine expansions are associated with increased risk for ALS. Nature. 466 (7310), https://www.nature.com/articles/nature09320 - supplementary-information 1069-1075 (2010).
  28. Wijayanti, I., Watanabe, D., Oshiro, S., Takagi, H. Isolation and functional analysis of yeast ubiquitin ligase Rsp5 variants that alleviate the toxicity of human α-synuclein. The Journal of Biochemistry. 157 (4), 251-260 (2015).
  29. Tardiff, D. F., et al. Yeast Reveal a “Druggable” Rsp5/Nedd4 Network that Ameliorates α-Synuclein Toxicity in Neurons. Science. 342 (6161), 979 (2013).
  30. Chen, K., et al. Neurodegenerative Disease Proteinopathies Are Connected to Distinct Histone Post-translational Modification Landscapes. ACS Chemical Neuroscience. 9 (4), 838-848 (2018).
  31. Flick, J. S., Johnston, M. Two systems of glucose repression of the GAL1 promoter in Saccharomyces cerevisiae. Molecular and Cellular Biology. 10 (9), 4757 (1990).
  32. Fernandez-Santiago, R., Ezquerra, M. Epigenetic Research of Neurodegenerative Disorders Using Patient iPSC-Based Models. Stem Cells International. 2016, 9464591 (2016).
  33. Armakola, M., et al. Inhibition of RNA lariat debranching enzyme suppresses TDP-43 toxicity in ALS disease models. Nature Genetics. 44 (12), 1302-1309 (2012).
  34. Tibshirani, M., et al. Cytoplasmic sequestration of FUS/TLS associated with ALS alters histone marks through loss of nuclear protein arginine methyltransferase 1. Human Molecular Genetics. 24 (3), 773-786 (2015).
  35. Masala, A., et al. Epigenetic Changes Associated with the Expression of Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS) Causing Genes. Neuroscience. 390, 1-11 (2018).
  36. Eryilmaz, I. E., et al. Epigenetic approach to early-onset Parkinson’s disease: low methylation status of SNCA and PARK2 promoter regions. Neurological Research. 39 (11), 965-972 (2017).
  37. Daniele, S., et al. Epigenetic Modifications of the α-Synuclein Gene and Relative Protein Content Are Affected by Ageing and Physical Exercise in Blood from Healthy Subjects. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2018, 3740345 (2018).

Tags

علم الوراثة، 145 قضية، نيوروديجينيريشن، والتصلب العضلي الجانبي، ومرض باركنسون، α-سينوكلين، تنصهر في التخلق، التعديلات هيستون بوستترانسلاشونال كابوزي، "القطران الحمض النووي" ملزم بروتين 43
يصف هستون تعديل بوستترانسلاشونال التعديلات في نماذج بروتينوباثي الأعصاب الخميرة
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Bennett, S. A., Cobos, S. N.,More

Bennett, S. A., Cobos, S. N., Meykler, M., Fallah, M., Rana, N., Chen, K., Torrente, M. P. Characterizing Histone Post-translational Modification Alterations in Yeast Neurodegenerative Proteinopathy Models. J. Vis. Exp. (145), e59104, doi:10.3791/59104 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter