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Medicine

Grabación simultánea de electrocardiografía y sangre invasiva presión medida en ratas

Published: January 31, 2019 doi: 10.3791/59115

Summary

Aquí, describimos una configuración para el registro simultáneo del electrocardiograma y presión arterial intrarterial (BP) en ratas experimentales, que se pueden hacer con equipo estándar en instalaciones y se pueden aplicar a fisiológico o farmacológico estudios para investigar los mecanismos patogénicos o terapéuticos en medicina cardiovascular.

Abstract

Para estudios relacionados con la fisiología cardiovascular o Fisiopatología, presión arterial (PA) y electrocardiografía son parámetros observacionales básicos. Investigación centrada en modelos de la enfermedad cardiovascular, potenciales dianas terapéuticas cardiovasculares o agentes farmacéuticos requiere una evaluación de cambios ritmo arteriales sistémicas de la presión y el corazón. En situaciones donde los sistemas de telemetría de radio no disponible o asequible, la técnica de canulación de la arteria femoral es una forma alternativa para obtener grabaciones de forma de onda de la presión intraarterial y mediciones sistémicas de BP. Esta técnica es económica y puede realizarse con el equipo estándar en instalaciones. Sin embargo, la grabación de la presión arterial invasiva requiere canulación de arterias pequeñas, que puede ser una desafiante habilidad quirúrgica. Aquí, presentamos paso a paso protocolos para arteria femoral procedimientos de canulación. Procedimientos claves incluyen la calibración del sistema de adquisición de datos, canulación de arteria femoral y disección de tejido y configuración del sistema para la grabación de la presión arterial canulación. También se incluyen procedimientos de registro de electrocardiografía de superficie. También presentamos ejemplos de grabaciones de BP de ratas normotensas e hipertensas. Este protocolo permite grabaciones directas confiables de BP sistémica con electrocardiografía simultánea.

Introduction

La presión arterial (PA) y electrocardiografía (ECG) son los parámetros básicos de medicina y fisiología cardiovascular. Modelos animales experimentales se han aplicado extensamente en la investigación biomédica para diversas enfermedades cardiovasculares como hipertensión insuficiencia cardíaca1 y los procedimientos para la grabación de ECG y medición de BP puede realizarse en ratas experimentales.

Existen tres métodos para la medida de BP en ratas: canulación intraarterial (invasiva)2, cola del pun ¢ o Pletismografía (no invasiva)3y telemetría de radio (invasiva). La fiabilidad de la medida de BP por pletismografía del pun ¢ o de la cola puede ser afectada por el manejo durante la grabación de animales. Por ejemplo, el brazalete de cola subestima los base BP los cambios que ocurren simultáneamente durante la sujeción y medición de fases4. Telemetría de radio se considera la mejor técnica "gold standard" para BP monitoreo y pulso en despierto y moviéndose libremente animales5. Sin embargo, puesto que radio telemetría hardware y software costoso, canulación intraarterial es también ampliamente utilizada como una alternativa económica.

Canulación intraarterial requiere considerable habilidad microquirúrgica pero produce las formas de onda real de la presión arterial. BP se puede registrar a través de un catéter lleno de solución salina, insertado en la arteria braquial o radial, femoral. Este método de medición directa de BP invasiva requiere preparación animal pre-quirúrgico, anestesia, inmovilización de animales de laboratorio, habilidad quirúrgica en la disección del tejido y la canulación arterial y calibración adecuado antes de adquirir la medida .

Roedor ECG de superficie es similar a ECG humano. Una rata ECG tiene secuencias de ondas P, complejos QRS, ondas T y de intervalos QT6. La onda P, intervalo PR, complejo QRS y ondas T reflejan despolarización atrial, conducción de los impulsos de la aurícula al nodo AV, despolarización ventricular y la repolarización, respectivamente. El intervalo QT se define como el período comprendido desde el inicio de la onda Q y el punto final de la onda T, donde vuelve a la base iso-eléctrico1.

El ECG indica la sístole cardíaca y fases de la diástole; por lo tanto, el registro simultáneo del ECG de superficie se correlaciona con la medición invasiva de la BP. Usando una combinación de metodologías, es posible dilucidar cambios fisiopatológicos en un modelo de enfermedad o los efectos farmacológicos de una droga o terapia en medicina cardiovascular.

Una cepa de rata (SHR) hipertensiva espontánea había sido obtenida por endogamia de ratas Wistar con BP alta en Japón. La BP se eleva de 5 a 10 semanas de edad y se convierte en fijo de 30 a 35 semanas de edad7. Ratas de Wistar Kyoto (WKY) tienen BP sistólica 130 mmHg7 y se utilizan comúnmente como normo-tensive control. Utilizamos SHR y WKY para demostrar el resultado de la grabación de BP y ECG de canulación intraarterial.

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Protocol

Todos los experimentos animales descritos fueron aprobados por el cuidado institucional de animales y uso Comité de Kaohsiung Medical University.

1. animal Care

  1. Para evitar la canulación difícil debido al pequeño tamaño arterial, utilizar ratas con sobre 200 g de peso corporal.
  2. Retire chow de la jaula y ratas rápidas durante la noche.
  3. Ofrecer agua ad libidum a menos que haya un diseño experimental especial.

2. experimental Preparación

  1. Obtener los siguientes materiales: pinzas con dientes (figura 1A), tijeras quirúrgicas (figura 1B), pinzas con puntas finas (figura 1, D 1), pinzas con puntas dobladas (Figura 1E), bulldog clamp vascular (Figura 1F ), cadena de seda aproximadamente 20 cm de longitud (figura 1), micro tijeras (figura 1 H), cánula intraarterial, un tubo estéril de polietileno (PE) con un diámetro interno de 0,5 mm y un diámetro exterior de 0,9 mm, 25 – 30 cm de longitud, conectado a una aguja 26 x 1/2 '' (figura 1I), dos llaves de tres vías (Figura 1J) para conectar la cánula intraarterial y las jeringas de presión transductor (figura 1 K) y 1 mL llenan con solución salina heparinizada (100 UI/mL).
  2. Preparación de animales
    1. Anestesiar la rata por la inhalación de isoflurano (colocación de las ratas en una 25 cm x 25 cm x 14 cm inducción cámara saturada con 4% de isoflurano, seguido por el uso de la ojiva con 3% isoflurano).
      Nota: Si el animal no es lo suficientemente anestesiado, subir el caudal del isoflurano.
    2. Prueba de reflejo del dolor por pellizcarse los dedos del pie.
    3. Colocar la rata en una posición supina sobre una corta Junta de espuma de poliestireno (o cartón grueso). Fijar las cuatro patas con bandas de goma para inmovilizar el cuerpo (figura 2A).
      Nota: Para evitar posibles ruidos durante la grabación de ECG, la superficie de colocación no debe ser conductora.
  3. Preparar los instrumentos para la grabación de BP y ECG. Incluyen una unidad de entrada analógica para adquirir señales, un transductor de presión con un hub compatible, tres cables de electrocardiograma con punta de aguja bipolar y un ordenador con el software adecuado.

3. calibración de transductor de presión

  1. Antes de la iniciación de la grabación de BP, calibrar con un esfigmomanómetro de mercurio estándar (figura 1 L).
  2. Saque el manguito del esfigmomanómetro y conectar la llave de tres vías en el tubo de inflación para el transductor de presión (figura 1 K) del sistema de adquisición de datos.
  3. Tornillo de la válvula de aire hacia la derecha. Mantenga ojos en el manómetro y la pera de insuflación de bombeo. Cuando el medidor muestre 100 mmHg, cambiar la llave de tres vías para conectar el transductor de presión. Utilice 100 mmHg presión para la calibración. El factor de conversión para el cálculo de los BP determinarán automáticamente.
  4. Libere la presión, girando la válvula de aire hacia la izquierda hasta que la presión del esfigmomanómetro esté a cero.
  5. Repita el paso 3.2 con 200 mm de Hg.
  6. Desconectar el transductor de presión desde el esfigmomanómetro de mercurio.
  7. Conectar el transductor de presión con la llave de tres vías del catéter PE (figura 1I).

4. Mini-cirugía para la canulación de la arteria Femoral

  1. Identificación de la superficie de la señal y la supresión de la piel (figura 2)
    1. Identificar la ubicación del pliegue inguinal (sangría en el cruce entre abdomen y muslo) (línea de guiones en la figura 2A).
    2. El sujetador de la capa completa de piel en el centro del pliegue inguinal. El pelaje puede ser raspado o quitado desde el sitio de la incisión con Tijeras eléctricas o una crema depilatoria antes de la incisión.
    3. Levantar la piel y cortarlo con las tijeras quirúrgicas en una orientación aproximadamente paralelo al muslo ipsilateral (figura 2B). El nervio femoral y los vasos están por debajo del tejido subcutáneo expuesto (figura 2).
  2. Disección del tejido para exponer la arteria femoral
    1. Disecar el tejido con unas pinzas con puntas finas, capa por capa. Detener la disección a nivel de los vasos femorales. Asegúrese de que la disección no es lesionar los vasos por debajo.
    2. Cuidadosamente con pinzas (figura 1 o D 1) para eliminar el tejido blando a lo largo de los vasos y del nervio femoral para obtener buena observación. El nervio es fibra-como en textura. La vena es morado oscuro y la arteria es pulsátil (Figura 3A).
    3. Utilizar pinzas con puntas dobladas (Figura 1E) para extender la longitud expuesta de la arteria femoral y la vena (figura 3B).
  3. Canulación de la arteria femoral (figura 3)
    1. Utilice pinzas para separar la vena femoral de la arteria y aplicar una pinza de bulldog en la arteria femoral cranially como sea posible (figura 3).
    2. Hacer un lazo flojo de las dos cuerdas de seda, una justo debajo de la pinza de bulldog y el otro en el polo caudal de la arteria femoral expuesta (figura 3D).
    3. Hacer un pequeño agujero en el lado ventral de la arteria femoral (figura 3E) con las tijeras micro (figura 1 H).
    4. Inserte la punta del catéter PE a través del orificio pequeño y haga avanzar el catéter cranially.
      Nota: No aplicar torsión mientras avanza el catéter PE. La fuerza de torsión puede torcer la arteria femoral y provocar estenosis luminal.
    5. Retire la pinza bulldog después de que el catéter PE se avanza firmemente en el lumen de la arteria femoral.
      Nota: Mantenga la vista en el catéter PE mientras se retira la pinza de bulldog de la arteria femoral. La observación de una masa de sangre en el catéter de PE asociado con la observación de pulso confirma su colocación en la luz arterial.
    6. Apriete la cuerda de seda superior para fijar la posición de la sonda de PE.
      Nota: Cualquier tirón accidental o dislocación de la sonda de PE puede resultar en hemorragia grave.
    7. Apriete la cuerda de seda inferior para prevenir el sangrado de la parte caudal de la arteria femoral.
  4. Confirmación del éxito de la canulación de la arteria femoral
    1. Use una jeringa de 1 mL para inyectar 0,1 – 0,2 mL de solución salina heparinizada en la arteria femoral. La resistencia a la inyección debe ser trivial. Si se nota cualquier resistencia evidente tras la inyección, Compruebe la canulación todo otra vez.
      Nota: Asegúrese de que las llaves de paso de tres vías se conectan adecuadamente antes de aplicar cualquier presión negativa o la inyección de solución salina en la cánula de la arteria femoral. En este momento, cualquier inyección en el transductor de presión será necesario una recalibración.
    2. Compruebe si hay cualquier secreción alrededor del sitio de canulación. Si no es así, cubrir el sitio quirúrgico con una bola de algodón mojado.

5. registro de presión arterial

  1. Después de un color liso para el catéter PE, fije la llave de tres vías del catéter de PE a uno en el transductor de presión (figura 4).
  2. Asegúrese de que no hay ninguna burbuja de aire en el sistema de canulación. También Compruebe a las uniones de conexión de la llave de tres vías.
  3. Iniciar los datos de sistema de adquisición con frecuencia de muestreo de 1000 Hz para grabar las ondas de Presión Arterial BP será demostrado (figura 6).
  4. Permiten la instalación todo se estabilice por lo menos 3-5 minutos. En casos con señales inestables, tiempo de estabilización puede ampliarse a 15 min.
  5. Consulte el sitio de canulación periódicamente para asegurarse de que no hay ningún sangrado.
    Nota: Al adquirir datos desde un transductor de presión, es importante colocar el transductor a nivel del corazón del animal.

6. superficie ECG

  1. Revise los tres plomos de lo ECG bipolar para asegurarse de que el positivo, negativo, y los electrodos de referencia de platino están intactos.
  2. Conecte los cables por vía subcutánea en la pata delantera izquierda, pata derecha y hindleg derecha (figura 5).
  3. Coloque los cubos de electrodo a un amplificador de ECG a la medida con frecuencia de muestreo de 1000 Hz y el filtro de frecuencia de 3 a 500 Hz. Mantenga ECG conduce estable durante la grabación. Movimiento de los cables de ECG puede producir artefactos y líneas de base inestables.

7. animal eutanasia después de completar el experimento

  1. Después de completar de la BP y la grabación de ECG, detener el sistema de adquisición. Retire los electrodos. Ligar la arteria femoral apretando la cuerda de seda previamente colocada justo después de retirar el catéter de PE.
  2. Lugar a que las ratas individualmente en la cámara de eutanasia visible conectadas comprimido cilindros de gas de dióxido de carbono (CO2). Sellar la tapa firmemente.
  3. Introducir 100% CO2 , con una tasa de llenado de 10% a 30% del volumen de la cámara por minuto.
  4. Mantenga sus ojos en la rata; falta de respiración y color de los ojos se desvaneció debería aparecer dentro de 2−3 min.
    Nota: Si no se produce la cesación del movimiento respiratorio después de 3 minutos, el sistema debe examinarse la tasa de utilización de la cámara, fuente de CO2 o fugas.
  5. Deja de flujo de mantenimiento CO2 a la cámara por 1 minuto más después de la respiración.
  6. Determinar arresto cardiaco y respiratorio y observe las pupilas fijas y dilatadas para confirmar la muerte.
    Nota: Si la rata no está muerta sino en CO2 narcosis, use un método secundario de la eutanasia como la toracotomía bilateral.

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Representative Results

Compramos SHR y normotensas ratas Wistar-Kyoto WKY del Centro Nacional de animales de laboratorio (Taipei, Taiwan). Todos los animales fueron alojados en un centro de control de temperatura (20−22 º C) con acceso libre al agua y chow estándar en un ciclo de 12 h luz/oscuridad.

Se utilizaron seis ratas de 47 semanas de edad y se pesaron antes de la medición BP y ECG. Los trazos representativos de grabación simultánea de ECG y BP en SHR y WKY se muestran en la figura 6. La tabla 1 muestra los parámetros para BP y el ritmo cardíaco. Pruebas estadísticas (t) revelaron BP sistólica significativamente mayor y media BP en SHR (124,5 mmHg ± 15.1 mmHg y 84.3 mmHg ± 5.0 mmHg) que en WKY (90,0 mmHg ± 7.5 mmHg y 67,5 mmHg ± 5.0 mmHg) (P < 0.05) (tabla 1).

Los parámetros de la onda P, intervalos PR, QRS ancho e intervalos QT pueden medirse desde las grabaciones de ECG (tabla 2). Opción de derecha vs izquierda canulación femoral en relación con la colocación del electrodo del ECG (en las extremidades derecha) no afectó a las señales de BP o ECG.

Figure 1
Figura 1: materiales. (A) fórceps con dientes, tijeras quirúrgicas (B), (C) tejido pinzas, (D) tejido pinzas con puntas finas, pinzas de punta de ángulo (E), (F) bulldog pinza vascular, cadena seda (G), micro (H) tijeras, () catéter de polietileno conectando con una 26 x 1/2 '' aguja y una llave de tres vías (J), (K) presión transductor con una llave de tres vías, esfigmomanómetro de mercurio (L) con una llave de paso ( flecha verde) y el bulbo de la inflación con una válvula de escape de aire (flecha blanca). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 2
Figura 2: señal superficial para la disección de la arteria femoral. (A) rata supina con pliegue inguinal izquierda con una línea discontinua. (B) recogida por fórceps con dientes de ser cortado por tijeras quirúrgicas de la piel de la ingle. (C) la zona quirúrgica para la disección de la arteria femoral. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 3
Figura 3: disección del tejido y la canulación de la arteria femoral. (A) expone el nervio femoral (flecha), vena femoral (flecha azul) y la arteria femoral (flecha roja) después de la disección del tejido. (B) la vena Femoral y la arteria después de la interrupción del nervio. (C) aplicación de una bulldog pinza vascular en el polo craneal de la disecada la arteria femoral. (D) la arteria Femoral con una pinza de bulldog y dos cuerdas de seda con lazos sueltos. (E) A orificio pequeño en el lado ventral de la arteria femoral, creado usando las tijeras micro. (F) la inserción del catéter de polietileno en la arteria femoral. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 4
Figura 4: la canulación de la arteria Femoral para la grabación de presión. La cánula intraarterial (resaltada por una línea verde discontinua) está conectada con dos llaves de tres vías (flechas azules) con jeringa llenado con solución salina heparinizada. El transductor de presión (flecha roja) está vinculado a la canalización a través de las llaves de paso de tres vías. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 5
Figura 5: la configuración del conjunto experimental invasiva presión arterial femoral y electrocardiografía. Tres electrocardiográficos lleva (flechas rojas) con electrodos de aguja platino insertados por vía subcutánea sobre fore bilateral las piernas y la pierna derecha (flechas amarillas). La expuesta arteria femoral derecha con canulación (flecha azul). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 6
Figura 6: trazos representativos. Grabaciones simultáneas de ECG y BP (izquierda) WKY y SHR (derecha) de la ECG (arriba) y ondas de la presión arterial (abajo). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

WKY SHR Valor de P
(n = 3) (n = 3)
Peso, g 407.7 ± 6.4 353.7 ± 10.3 < 0,01
Frecuencia cardiaca, / min. 241.3 ± 15.0 262.0 ± 15,7 0.18
BP sistólica, mmHg 90,0 ± 7.5 124.5 ± 15.1 < 0.05
Diastólica, mmHg 56,3 ± 4.0 64.2 ± 0.6 0.08
Significa BP, mmHg 67.5 ± 5.0 84.3 ± 5.0 < 0.05
MmHg, presión 33,6 ± 4.4 60,4 ± 15.1 0.08

Tabla 1: niveles de presión arterial medición por la canulación de la arteria femoral invasor. Los datos se presentan como media ± desviación estándar; SHR = espontáneamente ratas hipertensas; WKY = ratas Wistar-Kyoto; PB = presión de la sangre.

WKY SHR Valor de P
(n = 3) (n = 3)
Frecuencia cardiaca, / min. 241.3 ± 15.0 262.0 ± 15,7 0.18
Onda P, MS 38,7 ± 9.3 43.0 ± 4.6 0,52
Intervalo PR, MS 59.0 ± 7.8 61,3 ± 4.7 0.69
Anchura del QRS, MS 43.0 ± 11.3 50.0 ± 2.6 0.4
Intervalo QT, MS 112.0 ± 12,8 116.7 ± 9,5 0.15

Tabla 2: mediciones de los parámetros electrocardiográficos. Los datos se presentan como media ± desviación estándar; SHR = espontáneamente ratas hipertensas; WKY = ratas Wistar-Kyoto.

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Discussion

Canulación arterial invasiva permite una medición muy precisa de BP. Se puede hacer con un tubo de PE sin necesidad de un catéter de caro. Medición invasiva BP puede ser realizada simultáneamente con la grabación del ECG de superficie.

La curva de aprendizaje importante para este método es la habilidad experimental necesaria para canule pequeños vasos sanguíneos. En manos experimentadas, la tasa de éxito para la canulación de la arteria femoral puede acercarse al 100%. Práctica se recomienda antes de realizar experimentos reales. Algunos puntos destacables durante el procedimiento: (1) hacer que animales son completamente anestesiados antes de comenzar la cirugía; (2) Utilice una pinza de bulldog en la posición alta de la arteria expuesta antes de cortar la pared arterial para prevenir el sangrado extenso; (3) hacer la incisión sólo sobre la pared ventral de la arteria y evitar dañar la pared dorsal; y (4) colocación constante del sistema de canulación y electrocardiográfico lleva ayuda a evitar artefactos de movimiento durante la grabación.

Las posibles complicaciones con este procedimiento incluyen hemorragia de la disección quirúrgica. La hemorragia en una éxito y lisa la canulación de una arteria es muy trivial. Hemorragia importante puede ser causada por daños accidentales a la arteria femoral, vena o las ramas principales durante la disección del tejido. Puede detener la hemorragia por compresión focal con una bola de algodón claro. Otra causa de hemorragia mayor es la dislocación de la canulación femoral. En este caso, la pérdida de sangre es generalmente bastante grande resulta en una reducción significativa de BP sistémica. En este punto, grabación de BP puede ser terminado temprano.

Implantación de telémetro también es una técnica establecida para invasiva BP grabación8. La ventaja de la telemetría es la capacidad para obtener un registro continuo de la alta fidelidad durante relativamente largos períodos de tiempo en consciente, libremente mover animales sin las limitaciones de la sujeción o anestesia. Grabaciones de BP directas pueden realizarse con éxito de la implantación subcutánea de transmisores de radio y de la canulación de la arteria carótida9. Sin embargo, puede ser un desafío para implantar con éxito el telémetro y el hardware y software para telemetría de radio son costosos.

Hay algunas limitaciones para su medición invasiva BP por la canulación de la arteria femoral. En primer lugar, no se puede realizar en ratas libre y conscientes. En segundo lugar, BP en la arteria femoral puede ser superior o inferior de BP en la aorta central. En tercer lugar, arterial canulación puede ser difícil para pequeños roedores, donde las arterias femorales puede ser demasiado pequeñas para introducir el tubo de PE. En cuarto lugar, debe ser ligarse la arteria canulada después de completar el registro de BP y la ligadura de la arteria femoral se traducirá en la isquemia de la pierna trasera. Debido a esta limitación, los animales son sacrificados normalmente tras grabación de BP invasivo.

La canulación de la arteria femoral invasor requiere de restricción y anestesiar a los animales, que potencialmente presenta estrés influencias y BP y electrocardiografía datos10. El estrés puede ser aliviado por anestesia apropiada. La anestesia incluye protocolos de inyección o inhalación. En nuestra experiencia pasada, BP alta elevada en I.P. anestesiados WKY ratas sugiere que los animales estaban aún bajo estrés o dolor. BP normal en ratas WKY conscientes es de 130/80 mmHg; Esto bajó a por debajo de 100 mmHg en nuestras ratas WKY anestesiados por inhalación (tabla 1). Anestesia por inhalación (isoflurano) tiene varias ventajas sobre agentes inyectables: Inicio rápido, mínimo manejo de animales, facilidad de control, no hay medicamentos controlados y una recuperación rápida. Las desventajas son el costo del equipo, el peligro de la exposición humana en caso de fuga de gas importante en el ambiente de trabajo, y un importante efecto supresor sobre reducción de BP BP isoflurano-inducida se debe considerar al elegir el régimen de anestesia.

Otras aplicaciones son posibles para medición invasiva de la BP. Según los principios de dinámica de fluidos para la velocidad de la onda de pulso (PWV), la arteria más rígida propaga la onda de pulso más rápido11. Aplicación de cánulas dobles sobre la arteria carótida y arteria femoral, se puede determinar la VOP aórtica. La longitud de propagación del pulso aórtico puede medirse como la distancia entre las puntas de la cánula en la carótida (proximal) y arterias distales (femorales). La VOP es la relación entre la longitud de la aorta y la diferencia entre el tiempo en los valores mínimos de los pulsos arteriales proximales y distal12.

La configuración descrita para electrocardiografía simultánea y grabación de BP intrarterial en ratas experimentales es una técnica barata y muy accesible para estudios fisiológicos o farmacológicos investigación de patógenos o terapéutico mecanismos en medicina cardiovascular.

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Disclosures

Los autores no tienen nada que revelar.

Acknowledgments

Este estudio fue apoyado por Taiwán Ministerio de ciencia y tecnología otorga más 104-2314-B-037-080-MY3 y más 107-2314-B-037-110 a HCL e institutos de investigación de salud nacional de Taiwán otorga INDH-EX107-10724SC.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Polyethylene tube BECTON DICKINSON 427401 internal diameter of 0.5 mm, outer diameter of 0.9 mm
26 G x 1/2"" needle TERUMO 160426D
Adson Forceps TOP Line 12-540 12 cm (4.75") Long, Straight, 1 x 2 Teeth
Bulldog vascular clamp Teleflex 357581 8 mm
Computer  AUSUS X453M
Exernal analog signal recording device iWorx T5141538 This allows the recording of up to three channels of ECG, EMG or EEG as well as GSR (skin conductance) from a single iWire input on the recording Module.
Graefe Forceps AESCULAP Surgical Instruments BD312R MICRO DRESSING FORCEPS, CURVED, SERRATED, 105 mm, 4 1/8 
Mecury sphygmomanometer Spirit CK-101
Pressure transducer iWorx IworxBP100
Semken Forceps MEDE TECHNIK 10-104 100 mm
Software LabScribe3
Surgical scissors HEBU 1714 14.5 cm long
Syringe (1 mL) TERUMO 160426D
Three-way stopcocks Cole-Parmer EW-30600-23
Tipped forceps World Precision Instruments 504506 11 cm long, 0.1 x 0.06 mm Tips
Vannas Scissors World Precision Instruments 500086 8.5 cm long, Straight, 0.025 x 0.015 mm Tips, 7mm super fine Blades

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References

  1. Shiou, Y. -L., Huang, I. C., Lin, H. -T., Lee, H. -C. High fat diet aggravates atrial and ventricular remodeling of hypertensive heart disease in aging rats. Journal of the Formosan Medical Association. , (2017).
  2. Parasuraman, S., Raveendran, R. Measurement of invasive blood pressure in rats. Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 3 (2), 172-177 (2012).
  3. Fink, G. D. Does Tail-Cuff Plethysmography Provide a Reliable Estimate of Central Blood Pressure in Mice? Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), e006554 (2017).
  4. Wilde, E., et al. Tail-Cuff Technique and Its Influence on Central Blood Pressure in the Mouse. Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), (2017).
  5. Braga, V. A., Prabhakar, N. R. Refinement of Telemetry for Measuring Blood Pressure in Conscious Rats. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. 48 (3), 268-271 (2009).
  6. Kaese, S., Verheule, S. Cardiac electrophysiology in mice: a matter of size. Frontiers in Physiology. 3 (345), (2012).
  7. Okamoto, K., Aoki, K. Development of a strain of spontaneously hypertensive rats. Japanese Circulation Journal. 27, 282-293 (1963).
  8. Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Antic, V., Schnyder-Candrian, S., Montani, J. P. Direct and indirect methods used to study arterial blood pressure. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 44 (2), 361-373 (2000).
  9. Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry. Journal of Visualized Experiments. (111), e53991 (2016).
  10. Irvine, R. J., White, J., Chan, R. The influence of restraint on blood pressure in the rat. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 38 (3), 157-162 (1997).
  11. Nvd Vosse, F., Stergiopulos, N. Pulse Wave Propagation in the Arterial Tree. Annual Review of Fluid Mechanics. 43 (1), 467-499 (2011).
  12. Cosson, E., et al. Aortic stiffness and pulse pressure amplification in Wistar-Kyoto and spontaneously hypertensive rats. The American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 292 (5), H2506-H2512 (2007).

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