Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

ניתוח כמותי של הרכב הסלולר בנגעים טרשת עורקים מתקדמת של שריר חלק תא שושלת היוחסין-עקיבה עכברים

Published: February 20, 2019 doi: 10.3791/59139
Automatic Translation
1, 1, 2,3, 1,4
1Heart, Lung, Blood and Vascular Medicine Institute, University of Pittsburgh, 2Robert M. Berne Cardiovascular Research Center, University of Virginia, 3Department of Biochemistry and Molecular Genetics, University of Virginia, 4Division of Cardiology, University of Pittsburgh School of Medicine

Summary

אנו מציעים פרוטוקול מתוקננים כדי לאפיין את ההרכב הסלולר של נגעים טרשת עורקים מאתר בשלב מאוחר, כולל שיטות שיטתית של דיסקציה בעלי חיים, רקמות הטבעה, חלוקתה, מכתים, וניתוח של העורקים brachiocephalic מ atheroprone שריר חלק תא שושלת היוחסין עקיבה עכברים.

Abstract

טרשת עורקים נשאר הגורם המוביל למוות ברחבי העולם, ו, למרות אינספור מחקרים פרה המתאר מטרות טיפולית מבטיחה, התערבויות הרומן נשארו חמקמק. זה כנראה נובע, בין השאר, ההסתמכות על מודלים למניעת פרה חוקרת את ההשפעות של שינויים גנטיים או טיפולי תרופתי על התפתחות טרשת עורקים ולא המחלה הוקמה. בנוסף, תוצאות של מחקרים אלה הן לעתים קרובות מבלבלים עקב השימוש של ניתוחים הנגע שטחית וחוסר אפיון אוכלוסיות תאים הנגע. כדי לסייע להתגבר על מכשולים translational אלה, אנו מציעים של הסתמכות מוגברת על מודלים של התערבות שמעסיקים חקירה של שינויים בהרכב הסלולר ברמה תא בודד על ידי צביעת immunofluorescent קונפוקלית. לשם כך, אנו מתארים פרוטוקול לבדיקה סוכן טיפולית בשם מודל התערבות מאתר כולל בגישה שיטתית לנתיחה בעלי חיים, הטבעה, חלוקתה, מכתים של כימות של העורק brachiocephalic נגעים. בנוסף, בשל המגוון פנוטיפי של תאים בתוך התרדמה בשלב מאוחר, נתאר את החשיבות של שימוש שושלת היוחסין הספציפי תא, inducible עקיבה העכבר מערכות, כיצד זה ניתן למנף מוטים פלואורסנציה אוכלוסיות תאים הנגע טרשת עורקים. יחד, אסטרטגיות אלו עשוי לסייע ביולוגים וסקולרית דגם התערבויות טיפוליות ולנתח באופן מדויק יותר מחלות טרשת עורקים, בתקווה יתרגם לתוך שיעור גבוה יותר של הצלחה בניסויים קליניים.

Introduction

טרשת עורקים הוא הגורם המוביל של התחלואה והתמותה ברחבי העולם הבסיסית הרוב המכריע של מחלת עורקים כללית, מחלות עורקים היקפיים, שבץ מוחי. טרשת עורקים כלילית בשלב מאוחר יכול לגרום סיבוכים חמורים, כולל חשבונאות אוטם שריר הלב כמעט 16% של העולם אוכלוסייה התמותה1,2. בשל ההשפעה ההרסנית שלו על בריאות הציבור, הפך מאמץ ניכר כדי לפענח את מנגנוני נהיגה התקדמות טרשת עורקים, וכן גם לפתח אסטרטגיות טיפוליות מקוריות. ובכל זאת, שיעור הסבירות של האישור (LOA) של ניסויים קליניים למחלות לב וכלי דם הוא בין הנמוכים ביותר בהשוואה לשדות קליניים אחרים (רק 8.7% עבור שלב I)3. זו יכולה להיות מוסברת בחלקה על ידי מחסומים רבים טרשת עורקים הזה מהווה לפיתוח תרופה יעילה כולל את הטבע כמעט בכל מקום, התקדמות קלינית-שקט, והטרוגניות מחלה משמעותית. יתר על כן, העיצוב שיוצרת של מחקרים שנעשו בבעלי חיים פרה יכולה גם להיות אחראים חוסר הצלחה בתרגום רפואי. באופן ספציפי, אנו מאמינים שיש צורך ליישם את מחקרי התערבות במידת האפשר לחקור את היעילות של אסטרטגיות טיפוליות. בנוסף, יש צורך קריטי כדי לבצע הליכים סטנדרטיים עבור ניתוחים הנגע כולל אפיון מתקדמים של הרכב הסלולר הנגע טרשת עורקים בשלב מאוחר על ידי מיפוי גורל ו phenotyping.

הרוב המכריע של טרשת עורקים מחקרים להתמקד מודלים למניעת טרשת עורקים המורכב סמים טיפול או ג'ין מניפולציה (הסתרה או טוק-) בעכברים צעירים בריאים, לפני המחלה החניכה, התקדמות. מחקרים אלה חשפו מספר רב של גנים, מולקולות איתות כי תפקיד בהתפתחות טרשת עורקים. עם זאת, רוב היעדים הללו נכשלה לתרגם טיפולים יעילים-אנוש. אכן, קשה להסיק את האפקט שהתרפיה על עכברים צעירים בריאים לחולים קשישים עם מתקדם התרדמה. ככזה, ביצוע מחקרי התערבות בצבר ניסיוני פרה סביר מספק תיאור מדויק יותר של רלוונטיות ואת היעילות של חדש טיפולית. הרעיון נתמך על ידי ההשפעות השונות של עיכוב של ציטוקינים פרו-דלקתיים אינטרלוקין-1β (IL-1β) בעת העסקת מניעת4,5,6 או התערבות האסטרטגיה7. ההבדלים בין מניעת התערבות מחקרים מראים כי תהליכים תאיים שונים מתרחשים שלבים שונים של התפתחות טרשת עורקים, מדגיש את העובדה כי מחקרים מניעה צפויים מספיקות לדגמן את התרחיש קליני במידה מספקת.

איגוד הלב האמריקני פרסם לאחרונה הצהרה מדעי המפרט המלצות עבור עיצוב ניסיוני נכונה, סטנדרטיזציה פרוצדורלי, ניתוח ודיווח של מחקרים בבעלי חיים טרשת עורקים8. זה מדגיש את יתרונותיה וחסרונותיה של השולט טכניקות בשימוש בתחום. לדוגמה, פנים en סודאן הרביעי מכתים של אבי העורקים מבוצע לעתים קרובות כמו read-out הראשון. למרות פנים en סודאן הרביעי מכתים של השומנים התצהיר היא שיטה מתאימה להערכת מהנטל פלאק גלובלי, הוא לא מסוגל להבחין נגעים פס שומני בשלב מוקדם של נגעים בשלב מאוחר יותר מתקדמים. ככזה, הפרשנות של צביעת פנים en לעתים קרובות מעורפלות ולא שטחית9. ניתוח זהיר של רקמות חתכי רוחב באמצעות גודל הספינה, הנגע ו לומן פרמטרים מורפולוגיות כימות מדדים של הנגע יציבות מספקת הבנה מדויקת יותר של התוצאה של ניסוי.

לבסוף, histopathology האנושי שמחקרים הראו כי הרכב הסלולר הוא מנבא טוב יותר של קרע יותר מגודל הנגע עצמו, עם נגעים המסכן בתאי השריר החלק (SMC) ועשיר מקרופאגים להיות רגישים יותר להיקרע10, 11. תצפיות אלה התבססו על צביעת עבור סמני בסגנון קלאסי המשמש לזיהוי התא (קרי, ACTA2 SMC, LGALS3 או CD68 עבור מקרופאגים). עם זאת, הביטוי של סמנים אלה אינה מוגבלת אך ורק לסוג תא בודד בנגעים טרשת עורקים עקב הפלסטיות של שושלות מרובים כולל SMC, תאי אנדותל, התאים מיאלואידית12. בפרט, זיהוי ברורה וחד משמעית SMC בתוך הנגע טרשת עורקים היה כמעט בלתי אפשרי עד העשור בגלל המאפיין של תאים אלה כדי dedifferentiate וידכא את הגנים שלהם סמן שושלת היוחסין הספציפי (תהליך המכונה בשם מיתוג פנוטיפי) כלי פצוע או חולה13. מגבלה זו בזיהוי SMC יש כבר עקפו על ידי הפיתוח של שושלת היוחסין עקיבה7,14,15,16,17,18, 19 , 20 , 21 , 22 , 23 , 24. הוא מורכב לצמיתות labelling הצאצאים שלהם וסנו לאתר שלהם הגורל וההתפתחות פנוטיפי במהלך התקדמות טרשת עורקים על ידי שימוש בשילוב של הביטוי של recombinase Cre מונע על ידי היזמים SMC ספציפיים (קרי, Myh117,15,17,18,19,20,21,22,23 , 24,25, Acta226 ו, SM22α14,16) והפעלה של כתבים (למשל, חלבונים פלורסנט, β-galactosidase) [הנסקרת ב Bentzon ו Majesky 201827]. אחד המחקרים הראשונים העסקת SMC עקיבה שושלת היוחסין מחוץ להגדרה מופרה, שפר ואח14 סיפק ראיות כי SMC יכול לווסת שלהם פנוטיפ, transdifferentiate לתוך תאים chondrogenic במהלך הסתיידות כלי הדם באמצעות SM22α Cre R26R LacZ שושלת היוחסין עקיבה מודל. למרות מחקרים אלה חלוץ SMC שושלת היוחסין עקיבה, הם היו חלקית משמעיות כי כל נתון שאינו-SMC SM22α לביטוי בסביבה של המחלה תווית על ידי הכתב. מגבלה זו הספינה נעקף על ידי פיתוח ושימוש של טמוקסיפן-inducible Cre ERT/LoxP המתיר פקד הטמפורלי של תיוג תא תא תיוג מתרחשת באופן בלעדי במהלך הלידה טמוקסיפן, יוגבלו לתא לבטא את התא ייחודיים לסוג יזם נהיגה Cre ERT ביטוי בזמנו של חשיפה טמוקסיפן, הימנעות העקיבה של סוגי תאים חלופי הפעלת Cre ב הגדרה של התקדמות המחלה. לצורך מעקב אחר שושלת היוחסין של SMC ב טרשת עורקים, טמוקסיפן-inducible Myh11- Cre/ERT2 transgene הקשורים עם כתבים פלורסנט (eYFP7,15,17,18 , 21, mTmG19,25, קונפטי20,22,23 ללימודי משובט הרחבה) הוכיחה יעילות יוצאת דופן וספציפיות של SMC תיוג ויש לו היו בשימוש לאוכלוסיות SMC מפת גורל בנגעים טרשת עורקים במחקרים אחרונים. חשוב מכך, מחקרים אלה חשפו: 1) 80% SMC בהישג מתקדמת טרשת עורקים לעשות לא לבטא כל קונבנציונאלי SMC סמנים (ACTA2, MYH11) המשמש בניתוח immunohistological, ולכן צריך כבר טעינו בזיהוי ללא מעקב אחר שושלת היוחסין 17; 2) קבוצות משנה של SMC אקספרס סמנים של סוגי תאים חלופי כולל סמני מקרופאג או תאי הגזע mesenchymal סמני16,17,19; ו 3) SMC להשקיע ואכלוס הנגע טרשת עורקים על ידי התרחבות oligoclonal ולשמר SMC שיבוטים פלסטיות למעבר אוכלוסיות שונות phenotypically20,23. לסיכום, ברור כעת כי תאי שריר חלק להציג מגוון פנוטיפי מדהים טרשת עורקים, יכולה להיות מועילה או מזיקה תפקידים על הנגע פתוגנזה בהתאם לאופי מעברים פנוטיפי שלהם. תגליות אלה מייצגים שדרה מדהים טיפולית חדשה עבור מיקוד SMC קידום athero פנוטיפי מעברים בין טרשת עורקים בשלב מאוחר.

במסמך זה, אנו מציעים פרוטוקול סטנדרטיים לניתוח בשלב מאוחר מאתר התרדמה כולל שיטות שיטתית לנתיחה בעלי חיים, הטבעה, חלוקתה, מכתים של כימות של העורק brachiocephalic נגעים. כדי לקבוע את ההשפעה של אינטרלוקין-1β עיכוב על גורל SMC, פנוטיפ, השתמשנו השושלת SMC עקיבה ספקיות- / - עכברים שקיבלו תזונה מערבית 18 שבועות לפני קבלת זריקות שבועיות של נוגדן anti-IL1β או שליטה IgG מתאימים isotype.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

גידול בעלי חיים, טיפול ופרוצדורות אושרו על ידי אוניברסיטת וירג'יניה, טיפול בבעלי חיים מוסדיים אוניברסיטת פיטסבורג ועל שימוש הוועדה.

1. דור של SMC שושלת היוחסין עקיבה עכברים

  1. גזע Myh11זכרים - Cre/ERT228 (מעבדה ג'קסון; #019079) עם הנקבות R26R-EYFP (מעבדה ג'קסון; #006148) כדי לקבל Myh11- Cre/ERT2+ R26R-EYFP+ / + זכרים.
  2. גזע Myh11- Cre/ERT2+ R26R-EYFP+ + זכרים עם ספקיות- / - עכברים הנשי (מעבדה ג'קסון; #002052). הצלב הוא צאצא ובחר מאת genotyping Myh11- Cre/ERT2+ R26R-EYFP+ + ספקיות- / - זכר, R26R-EYFP+ / + ספקיות- / - עכברים נקבה כמו מגדלים הסופי. לקצוץ זנבות ולבצע genotyping על הארנבונים מאותה. כל העכברים זכר צריך להיות Myh11- Cre/ERT2+ R26R-EYFP+ + ספקיות- / - יכול לשמש ניסויי עכברים (איור 1א').
    הערה: פרוטוקולים Genotyping ניתן למצוא באתר האינטרנט של ג'קסון מעבדה. Transgene Cre/ERT2 Myh11 ממוקם על כרומוזום ה-Y, מסלק את השימוש נקבות. מערכות עקיבה אחר שושלת היוחסין יכול לשמש, אך מערכת זו עד היום את האסטרטגיה עקיבה השושלת הכי אמין למפת גורל SMC ב טרשת עורקים.

2. שריר חלק תא שושלת היוחסין-מעקב העכבר תזונה וטיפולים

  1. יש Myh11זכר - Cre/ERT2+ R26R-EYFP+ + עכברים- / - ספקיות מקבלים סדרה של זריקות טמוקסיפן 1 מ ג 6-8 שבועות של גיל לתייג באופן קבוע Myh11+ SMC עם YFP וכדי לעקוב אחר גורלם (איור 1 A).
    1. חום שמן בוטנים-55 מעלות צלזיוס.
    2. הוסף טמוקסיפן בשמן בוטנים מחומם מראש כדי להכין פתרון-10 מ"ג/מ"ל, דגירה ב 55 ° C עד התפרקות מוחלטת של טמוקסיפן.
    3. לבצע זריקה בקרום הבטן עם 0.1 מ"ל של 10 מ"ג/מ"ל טמוקסיפן פתרון עבור סדרה של זריקות עשר יותר משבועיים.
      הערה: טמוקסיפן חומרים מסוכנים, יש לטפל בזהירות.
  2. 5-7 ימים אחרי הזריקה האחרונה עם טמוקסיפן, להחליף צ'או דיאטה עם תזונה עתירת שומן (למשל, הדיאטה המערבית; קק ל-42% שומן; 0.2% הכולסטרול) עבור משך זמן של 18 שבועות כדי לאפשר התפתחות נגעים טרשת עורקים מתקדמת, אשר מפתחת באופן עקבי במיטות כלי דם מרובים כולל את קשת אבי העורקים, שורש אבי העורקים, העורק brachiocephalic, העורק הראשי.
  3. אחרי 18 שבועות של דיאטה עתירת שומן האכלה, להתחיל התערבות טיפולית למשך הרצוי (איור 1B).
    הערה: לדוגמה, ביצענו שבועי בקרום הבטן זריקות עם נוגדן anti-IL1β או פקד IgG isotype-התאמה בין 18 ל 26 שבועות של עשיר בשומן.
  4. הסר מזון מהיר לעכברים 8 עד 16 שעןת לפני הרקמה קציר לבצע קריאות מדויקות עבור פלזמה כולסטרול, טריגליצרידים.

3. קציר של העורק Brachiocephalic (BCA)

  1. המתת חסד בבעלי חיים פעל על פי תקנות ודרישות חיה על עצמך ועל שימוש הוועדה (ACUC). המתת חסד העכברים ניסיוני בעזרת2 CO שנהנתם 5 דקות ולוודא מוות על ידי צביטה הבוהן.
  2. שוקל את העכבר, לאסוף את הדם.
    1. שוקל את העכבר
    2. תרסיס הצד הבטני של העכבר עם 70% אתנול
    3. לבצע ניקוב הלב על ידי החדרת מחט 25 גרם מחובר מזרק 1 מ"ל בחלל מהצד השמאלי של חלל החזה. ניתן לאסוף 0.1 עד 1 מ"ל של דם.
    4. להעביר את הדם שפופרת ריק EDTA על ידי שטיפה המזרק ולמקם את הצינורית על הנדנדה או מסובב למשך 10-15 דקות.
    5. העברת דם צינור 1.5 מ ל ו צנטריפוגה במשך 10 דקות 250 x g ב- 4 מעלות צלזיוס. בזהירות לסגת השלב העליון פלזמה בעזרת פיפטה והעצות נאותה, להעביר צינור חדש. לאחסן ב-20 ° C לפני למדידת כולסטרול וטריגליצרידים.
      הערה: דם יכול לשמש עבור מחקרים נוספים כולל תא ספירת דם ורכיבים אחרים-דם כולל ציטוקינים או פרופיל תא החיסון.
  3. לעשות חתך של שנהנתם 2 ס מ בעור הבטן התיכונה באמצעות מספריים ומשוך את העור כדי לחשוף את חלל הבטן. חותכים את הצפק עד לעצם החזה מבלי לגרום לו נזק לרקמות. לעשות שני חתכים על קו אמצע בבית השחי דרך בית החזה, נזהר שלא יגרמו נזק ללב ולריאות.
  4. הרם את החזה עם פינצטה וחותכים את הסרעפת לחשוף באופן חלקי את הלב. אם הלב אינו נגיש בקלות, לחתוך משם צלעות מספיק כדי להגיע אטריום ימין.
  5. Perfuse את העכבר עם מערכת זלוף הכבידה (איור 2א). התקנת מערכת זלוף המשיכה כך הלחץ של הנוזל זלוף שווה ל לחץ דם מאתר הממוצע (איור 2B). מערכת זו מאפשרת עקביות זלוף ושומר שני כלי השיט ריקונים ומורפולוגיה כדוריות דם אדומות.
    הערה: התייחסות, עכברים C57Bl6 יש לחץ דם הפיזיולוגיות בין 120 מ מ כספית (לחץ דם סיסטולי ממוצע) ו- 70 מ מ כספית (לחץ דם דיאסטולי ממוצע)29,30. לחץ דם סיסטולי, דיאסטולי ממוצע יכול להשתנות עם רקע גנטי העכבר.
    1. לחבר של 23 או 25 גרם פרפר המחט למערכת זלוף הכבידה ולהפעיל מלוחים באגירה פוספט (PBS) דרך המחט לגרש את האוויר מן הצינורות. הכנס את המחט לתוך החדר השמאלי ולאבטח את המחט במקום. באמצעות מספריים איריס, עושים חתך קטן (< 2 מ מ) לתוך אטריום ימין או העורקים.
    2. . Perfuse עם 5 מ"ל ל- PBS, ואז 10 מ"ל של פתרון Paraformaldehyde (PFA) 4%, אז 5 מ של PBS להשתמש בפתרון PFA PBS והן 4% בטמפרטורת החדר.
    3. לאסוף את הרקמות של עניין (למשל, כבד, ריאות, טחול) ולמקם אותם בפתרון PFA 4%.
  6. לחשוף את BCA
    1. לנקות את אזור הצוואר על ידי הסרת את העור ואת בלוטות הרוק.
    2. לבצע ביתור אחד למטה האמצע של עצם החזה דרך מדויקים באמצעות מספריים. תיזהר המספריים. תישארי קרובה האחורי של עצם החזה כדי למנוע נזק להערכת שממוקם מתחת לעצם החזה. משוך בשני הצדדים של קשת הצלעות עם מלקחיים לחלוטין לפתוח את החזה. לעורק הראש צריך להיות גלוי באופן חלקי.
    3. לנקות על ידי משיכת השרירים ורקמות הסרת שומן עם פינצטה בסדר עד בעורק נכון, העורק brachiocephalic ההסתעפות subclavian את קשת אבי העורקים הם ניקו ו מבודדת של סביב רקמת חיבור ושומן (איור 2C).
  7. הסר את BCA
    1. באמצעות מלקחיים, לתפוס בעורק נכון מתחת שלו נגע הסתעפות ולהפוך את החלק הראשוני של מעל המלקחיים (איור 2D).
    2. מחזיק בעורק, לבצע חתך השני דרך העורק בריחי. הסופי שני החתכים דרך הקשת אבי העורקים, משני צדי העורק brachiocephalic (איור 2D).
    3. לאסוף את רקמות אחרות וסקולריים עניין (למשל, העורק הראשי, חלק עליון של הלב המכיל את בסיס אב העורקים).
    4. המקום BCA ורקמות אחרות בפתרון PFA 4% למשך הלילה בטמפרטורת החדר.
      הערה: הזמן קיבוע יש לשמור עקבי לאורך כל תקופת המחקר.

4. ברקמה ואת חלוקתה

  1. להסיר את הרקמה של 4% מחברים, המקום קלטת תוויות רקמות (איור 3א). שימוש קצף דפדפות בקלטת כדי להבטיח את הרקמה שומרים על כיוון שלה, נשאר במגרה לעבור שלב העיבוד (איור 3ב). סגור את הקלטות ולאחר לטבול אתנול 70% עד רקמות עיבוד (24 עד 72 שעות).
    1. תהליך BCA ורקמות אחרות שנאספו היסטולוגית ו immunofluorescent מכתים כדלקמן (דוגמה שגרתית לילה באמצעות מעבד עם חדירה ואקום): 10% נייטרלי buffered פורמלין למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר (2x), 75% אתנול עבור 60 דקות ב 30 ° C (1 x), 90% אתנול עבור 60 דקות ב 30 ° C (1 x), 95% אתנול עבור 60 דקות ב 30 ° C (1 x), 100% אתנול עבור 60 דקות ב 30 ° C (3 x), קסילן עבור 60 דקות ב 30 ° C (3 x), פרפין במשך 80 דקות ב 62 ° C (3 x).
  2. להטביע BCA אנכית, עם קשת אבי העורקים קרוב לפנים בלוק (איור 3ג').
  3. חותכים דרך הרחוב פרפין על מיקרוטום סיבוביים (עובי 10 מיקרומטר) עד שהגיע הרקמה מוטבעים.
  4. לאחר הרקמה הוא גלוי, נבחן מקטע תחת מיקרוסקופ כדי לקבוע עמדה. אם מבחינה עדיין גלוי, להסיר עד 10 10 מיקרומטר מקטעים בכל פעם, בחינת מקטע בכל פרק זמן.
  5. בזמן קשת אבי העורקים יש כבר למחלקה דרך העורק brachiocephalic גלוי, לשנות את הכיוון של הרחוב כדי למקם את הרקמה לחלוטין בניצב הלהב מיקרוטום.
  6. חותכים את BCA-סעיף עובי של 10 מיקרומטר. בנקודה זו, כל המקטעים נאספים באופן סדרתי עם שלושה מקטעים לכל שקופית. לאסוף עד שהגיע ההסתעפות subclavian (איור 3ד').
    הערה: חשוב לחתוך את BCA-סעיף עובי של 10 מיקרומטר עבור ייבוא תמונות קונאפוקלית z עוקבות-מחסנית וספירת תא בודד. עובי זה יאפשר את ההערכה קפדני, הלא-cofounding של האגודה בין גרעין יחיד, cytoplasmic או קרום מכתים בכל העומק של חתך הרוחב.

5. immunofluorescent מכתים

הערה: אפיון מלא של טרשת עורקים כולל הערכה מורפולוגית פרמטרים של מדדי פלאק יציבות או אי יציבות והרכב הסלולר זה לא תהיה המוקד של הפרוטוקול הנוכחי. הנגע מורפולוגיה, קולגן תוכן, דימום intraplaque ניתן לנתח באמצעות7,Movat17, 7,PicroSirius אדום31, Ter119 מכתימים 7,18, בהתאמה. כאן נתאר הפרוטוקול עבור ניתוח ההרכב הסלולר של נגעים.

  1. דגירה השקופיות הפתרונות הבאים בטמפרטורת החדר ברדס כימי: קסילן במשך 5 דקות (2x), 100% אתנול במשך 5 דקות (2x), 95% אתנול במשך 5 דקות (2x), 70% אתנול עבור 5 דקות (2x), ו- H2O יונים (לשכפל2O) במשך 5 דקות (2x).
  2. דגירה שקופיות בפתרון אחזור אנטיגן על פי הוראות היצרן.
    1. עם חומצה ציטרית המבוסס על פתרון גם ההומניסטית והאוטונומית אנטיגן (ראה טבלה של חומרים), לדלל 3 מ"ל של פתרון ב- mL 320 לשכפל2O. המקום בשקופיות מאגר מים ומילוי צביעת הדף עם הפתרון אחזור אנטיגן מוכן.
    2. ממלאים כל משבצות ריקות בארון שקופיות שקופיות ריק כדי להבטיח אפילו חימום. מכסים את המיכל עם מכסה כדי לאפשר את הפתרון אחזור אנטיגן לרתיחה ללא אידוי.
    3. מחממים את השקופיות במיקרוגל במשך 20 דקות בכ-675-700 וואט. בדוק השקופיות באופן קבוע ואת החלף התאדו נוזל עם לשכפל2O כזו סעיפים נותרו שקועים פתרון גם ההומניסטית והאוטונומית בכל עת.
    4. לאפשר שקופיות להתקרר בפתרון לשעה בטמפרטורת החדר.
  3. להמיס 6 גר' ג'לטין עור הדג (FSG) ב 1 ליטר ל- PBS. PBS/FSG משמש שטיפה מאגר. להכין פתרון חסימה של סרום נורמלי 10% ב- PBS/FSG.
    הערה: ג'לטין דגים העור משמש את הכנת המאגר חסימה. FSG אינו מכיל חלבונים סרום יכול cross-react עם נוגדנים יונקים, צמצום רעש רקע. עם זאת, אפשרות חסימת אחרת צריך להיות מועדף עם מערכות זיהוי ביוטין FSG מכיל ביוטין אנדוגני. הסוג של סרום הרגיל המשמש מבוסס על הנוגדן משני בשימוש. כאשר החמור נוגדנים משניים משמשים, כדאי לבחור סוס רגיל סרום דילולים חסימה ו נוגדן.
  4. דגירה שקופיות ב- PBS למשך 5 דקות בטמפרטורת החדר. מעגל מקטעי רקמת עם עט הידרופובי. מכסים את הסעיפים עם המאגר חסימה PBS/FSG/רגיל סרום לשעה בטמפרטורת החדר. הכינו את הפתרון העיקרי נוגדן בנסיוב PBS/FSG/רגיל במהלך שלב זה ואילו הרקמות חוסמים.
  5. דגירה עם נוגדנים העיקרי מדולל ב- PBS/FSG/רגיל סרום לילה ב 4 ° C בתוך תא לחות. צריך להיות מודגרות מקטע אחד לכל שקופית עם שילוב של נוגדנים IgG שליטה על ריכוז זהה כמו נוגדנים ראשי לפקד עבור נוגדן ראשוני ירידה לפרטים.
  6. לשטוף את השקופיות כדלקמן בטמפרטורת החדר: PBS/FSG למשך 5 דקות (3 x), ואז PBS במשך 5 דקות (1 x).
  7. תקופת דגירה עם נוגדנים משניים מצומדת fluorophore (ראה טבלה של חומרים), diamidino-2-phenylindole (דאפי) של גרעין counterstaining מדולל בנסיוב PBS/FSG/רגיל לשעה בטמפרטורת החדר. להגן על שקופיות אור.
  8. לשטוף את השקופיות כפי שמתואר בשלב 5.6.
  9. הר שקופיות באמצעות הרכבה מדיה מתאים קרינה פלואורסצנטית (ראה טבלה של חומרים).

6. מיקרוסקופיה קונפוקלית

הערה: השימוש מיקרוסקופ קונפוקלי ורכישה z-מחסנית הוא קריטי עבור ספירה תא בודד.

  1. הגדרת פרמטרים רכישה כדי לשמש לאורך כל תקופת המחקר: תמונה ברזולוציה (1024 x 1024 או 2048 x 2048 פיקסלים); אופטי ומספר הערוצים, אשר הם פונקציה של השילוב של נוגדנים משניים נבחרת; סריקה מהירות (מומלץ סריקה מהירות: 7-8); וערוץ התערבות דיפרנציאלית ניגודיות (DIC).
  2. באמצעות סעיפים מוכתמים נוגדנים העיקרי ושליטה IgG, להגדיר את גלאי רגישות, עוצמת הלייזר ולאחר קיזוז לכל ערוץ בודדים. הפקד IgG משמש כדי למזער את האות רקע.
  3. להגדיר את המיקומים העליונים והתחתונים עבור רכישת z-מחסנית. Predetermine את עובי ואת מספר המחסניות לרכוש. פרמטרים אלה צריכים להישאר עקבי לאורך כל תקופת המחקר.
    הערה: אנו ממליצים על 8-10 הדמיה, ערימות עובי 1 מיקרומטר. להישאר עקבי מספר המחסניות עם תמונה לאורך כל תקופת המחקר.
  4. מקטעי רקמת תמונה צבעונית עם ראשי נוגדנים IgG שליטה בכל הערוצים כולל DIC.
  5. תווית תמונה אחת לפחות עם בר בקנה מידה לכיול התמונה במהלך ספירת תא בודד.

7. ותא לספור

  1. התקנת ופתח ImageJ. במידת הצורך, להוריד תוספים בסעיף להוריד > קלט/פלט של ImageJ אתר אינטרנט כדי לפתוח את קובץ התמונה שנוצר תלוי של הפורמט של תמונות שנוצרו על-ידי מיקרוסקופ קונפוקלי.
  2. פתח את קובץ התמונה ב- ImageJ.
  3. כיילו את התמונה עם קנה מידה הפניה בר באמצעות הדימוי שנוצר ב- 6.6.
  4. ניסחו את האזור עניין שבו סופר תא בודד, יבוצעו באמצעות הערוץ DIC (איור 4).
    הערה: באפשרותך מאפשרת אזור אחד בכל פעם. בהתאם מהשאלות ניסיוני, תא בודד סופר יכול להתבצע באזור הנגע כולה (ראה 7.3.1) ו/או מיקום של משנה של הנגע. לדוגמה, חקירה של האזור כיפה סיבית (ראה 7.3.2) היא רלוונטית במיוחד מאז את הקומפוזיציה הסלולר שלה הוא מדד חשוב של הנגע הנטייה להיקרע.
    1. ניסחו באזור הנגע על-ידי ביצוע הגבול לומן (איור 4א; החצים הלבנים) לבין פנימי אלסטי הנדן (איור 4א; חיצים צהובים) גלוי על התמונה DIC.
    2. לצורך ניתוח של האזור כיפה סיבית, לקבוע את הגבול הרחוק של 30 מיקרומטר של לומן ולאתר את הגבול ( איור 4B-D).
      הערה: האזור כיפה סיבית בסגנון קלאסי מוגדר כאזור מועשר ACTA2 + תאים, קולגן underlaying לומן (איור 4B). העשרת ACTA2 + תא, הקולגן ממלא תפקיד קריטי ביציבות הנגע. מחקרים קודמים קבעו כי ACTA2 + תא כיפה סיבית עשיר האזור ממוצעים עובי של 30 מיקרומטר של לומן ב- SMC-השושלת עקיבה ספקיות- / - עכברים האכיל דיאטה עתירת שומן 18 עד 26 שבועות (איור 4C). לפיכך, אפיון מדוקדק של ההשפעות של מניפולציה גנטית או טיפול תרופתי על הרכבו הסלולר של אזור כיפה סיבית רלוונטי להפליא.
  5. פתח את החלונית ' כלים ערוצי ' (תמונה > צבע > ערוץ כלים) ואת הדמה צבע השונה מכתים ערוצים (איור 5A; box 1).
  6. למזג ערוצי הצבע (תמונה > צבעים > צבעים למזג) (איור 5A; תיבת 2). כל הערוצים צריך להיות גלוי על התמונה (איור 5B). להפעיל ולכבות ערוצי צבע בודדים באמצעות החלונית ' כלים ערוץ ' (איור 5A; box 1).
  7. להגדיר את הכלי ספירה.
    1. לחץ לחיצה ימנית על הסמל ספירת בסרגל כלי (איור 5C; תיבה 1) ובחר הכלי נקודת מרובה.
    2. לחץ פעמיים על סמל זהה כדי לפתוח את החלונית ' הכלי נקודת ' (איור 5C; תיבת 2).
    3. בחר את סוג וגודל של הפריטים המשמשים לספור תאים.
    4. בדוק הצג הכל.
  8. להפעיל בערוץ דאפי רק בחלונית הכלים ערוץ ולבחור את הערוץ מונה 0 (איור 5C; תיבת 3). לחץ על גרעינים בודדים אשר יהיו מתויגות (למשל, צהוב נקודות באיור 5C-D). גלול z-במחסן כדי לספור את כל הגרעינים צבעונית באזור של ריבית. מספר האירועים מסומן מתחת בערוץ מונה בחלונית הכלי נקודת (איור 5C; תיבת 4).
  9. . תדליקי ערוץ מכתימים אחר (למשל, eYFP מכתים). בחרו מונה בערוץ 1. לחץ על תאים בהם יש colocalization בין דאפי לבין מכתים. עבור צביעת cytoplasmic, בחירת תאים עם צביעת המקיף את הגרעין של עומק כולו של הגרעין (יש לבדוק מספר z-במחסן).
  10. חזור על-ידי שינוי מכתים שילובים ובחירת ערוצים חדשים מונה לספירת האוכלוסיות תא עניין. כל צבע נקודה מייצגת אוכלוסיה תאים שונים (איור 5D). תוצאות ניתן לבטא מספר תאים המספר הכולל של דאפי או מספר תאים אזור לאזור.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Myh11- Cre/ERT2 R26R-עכברים- / - EYFP ספקיות הוזרקו טמוקסיפן בין גיל לפני שמאכילים בשומן של שש ושמונה שבועות. ב- 18 שבועות בשומן האכלה, שתי קבוצות של שמונה עכברים טופלו שבועי עם נוגדן anti-IL-1β monoclonal עכבר או פקד IgG מתאימים-isotype ב- 10 מ"ג/ק"ג במשך 8 שבועות (איור 1)7. עכברים הקריב, perfused עם פתרון מחברים-PBS 4%. העורקים brachiocephalic היו גזור, מעובד, למחלקה כמתואר לעיל (איור 2 , איור 3).

לאחר immunofluorescent מכתים עם נוגדנים מיקוד את כתב היוחסין העקיבה (YFP) וסמנים פנוטיפי (ACTA2, LGALS3, RUNX2), עובי של 8-10 מיקרומטר של BCA חתכי רוחב צולמה באמצעות מיקרוסקופ קונפוקלי. תמונות של כל מכתים בודדים דאפי (צביעת הגרעין), DIC נרכשו. תיחום של אזורים מעניינים עבור תא בודד סופר (הנגע, כיפה סיבית) בוצעה באמצעות תמונות DIC (איור 4). תא בודד סופר כדי לקבוע את השפע של אוכלוסיות שונות הנגזרות SMC בוצעה באמצעות ImageJ (איור 5).

אנו מציגים שני כתמים immunofluorescent נציג וספירת יחיד הערכת ההשפעה של IL-1β עיכוב על קומפוזיציה הסלולר ב התרדמה מתקדם. ראשית, צביעת נעשתה עבור הכתבת מעקב אחר שושלת היוחסין SMC YFP, דה מרקר SMC ACTA2 דה מרקר macrophage LGALS3 בסעיפים בין שני מקומות שונים של BCA (מיקרומטר 480 ו מיקרומטר 780 מ קשת אבי העורקים) (איור 6). ניתוח הספירה תא בודד באזור כיפה סיבית של חתך אלה בוצעו, ואת נמצאו הבדלים יוצא דופן בהרכב הסלולר של האזור כיפה סיבית בין עכברים שטופלו נוגדן anti-IL-1β עכברים שטופלו מתאימים isotype IgG שליטה (איור 6א). עיכוב של IL-1β היה קשור לירידה YFP + SMC ועלייה LGALS3 + תאים (איור 6B). לגבי הפנוטיפים של אוכלוסיות SMC, ירידה במספר YFP + ACTA2 + SMC נצפתה, ואילו המספר היחסי של מקרופאגים נגזר SMC (YFP + LGALS3 +) היה משמעותי מוגברת בשני המקומות BCA (איור 6C).

לבסוף, חקרנו את ההשפעה של IL-1β עיכוב במעבר פנוטיפי SMC לתאים chondrogenic. מעבר פנוטיפי זה הוא התקן חשוב של הסתיידות כלי הדם, המאפיין העיקרי של טרשת עורקים בשלב מאוחר14,32,33. חתכים BCA היו מוכתמים הכתבת מעקב אחר שושלת היוחסין SMC YFP, דה מרקר osteochondrogenic RUNX2 של דה מרקר macrophage LGALS3 (איור 7א). את השפע ואת המקור של התאים chondrogenic RUNX2 + מאופיינים באזור הנגע שלנו בשתי קבוצות הניסוי. מצאנו כי עיכוב של IL-1β לא משפיעים שהמספר הכולל של RUNX2 + תאים בתוך הנגע, וגם היחס נגזר SMC (YFP + RUNX2 +), נגזר מקרופאג (YFP-LGALS3 + RUNX2 +) תאים chondrogenic (איור 7ב').

Figure 1
איור 1 : מחקרים התערבות שריר חלק תא שושלת היוחסין עקיבה עכברים. (א) ייצוג סכמטי של Myh11- Cre/ERT2 R26R-EYFP ספקיות- / - טמוקסיפן-inducible SMC היוחסין הספציפי מעקב העכבר מודל. טיפול עם טמוקסיפן גורם רקומבינציה של R26R-YFP מיקומה ואת הכריתה של STOP codon וביטוי YFP מאת SMC קבוע. (B) תיאור סכמטי של התערבות מחקרים אילו Myh11- Cre/ERT2 R26R-עכברים- / - EYFP ספקיות האכיל דיאטה מערבית עבור 18 שבועות הוזרקו שבועי עם הנוגדן IL-1β או isotype-מתאימים IgG שליטה נוגדן-ריכוז של 10 מ ג / ק ג למשך 8 שבועות. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 2
איור 2 : עורק Brachiocephalic. תיאור סכמטי של שדה כבידה זלוף במערכת המונעת (A). המערכת מוגדרת בגובה מדויק המאפשר זלוף, בלחץ קרוב ממוצע לחץ הדם הסיסטולי בעכברים. הלחץ משתנה מעט עם נפח גובה כמו נוזל משמש במהלך זלוף בין גובה h1 ו- h2. (B) המשוואה לחישוב הלחץ של נוזלים סטטי וקביעת הגובה להגיע בלחץ של זלוף שווה C57Bl6 העכבר ממוצע לחץ הדם הסיסטולי. (ג) תמונות של אבי העורקים הפרוקסימלית ואת העורקים מסתעפים C57Bl6 עכבר האכיל דיאטה צ'או (תמונה משמאל) ועכבר ספקיות- / - נמאס דיאטה שומן גבוהה במשך 26 שבועות (התמונה הזכות). הכוכבית מציינת את הנוכחות של טרשת עורקים. מפרטים טכניים של אבי העורקים הפרוקסימלית ואת מסתעפים עורקים (D). חצים אדומים מייצגים חתכים עבור בידוד של בעורק נכון, עורק brachiocephalic בידוד ומספרים מציין את הסדר של החתכים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 3
איור 3 : עיבוד רקמות, הטמעה ו חלוקתה. (א) תצלום של קלטת ההטבעה ברקמות BCA. BCA ממוקם על משטח קצף. (B) זום-אין של BCA מיקומו על משטח קצף. BCA מכוון עם קשת אבי העורקים קרוב החלק תווית של הקלטת ואת בעורק straightened אנכית. סרגל קנה מידה: 1 ס מ. (ג) תיאור סכמטי של פרפין לחסום לאחר הטבעה של העורק brachiocephalic. (ד) תיאור סכמטי של טורי שקופיות עם 10 מיקרומטר בעובי טורי מקטעים עם אינדיקציה של המרחק בין הקשת אבי העורקים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 4
איור 4 : תיחום של טרשת עורקים הנגע, אזור כיפה סיבית. (A) micrographs ייצוגית של DIC תמונה פגיעה טרשת עורקים בעורק brachiocephalic חתכים של Myh11- Cre/ERT2 R26R-EYFP ספקיות- / -. את luminal, גבולות פנימיים פרופריה אלסטי מותאמים על ידי לבן, צהוב, חיצים, בהתאמה (החלונית הימנית). באזור הנגע תחום בר בקנה מידה קו מקווקו (לוח נכון): 100 מיקרומטר. (B) נציג micrographs של DIC ו ACTA2 מכתים. ראש כפול-חיצים מראים עובי ACTA2 מכתים בתוך אזור underlaying לומן המגדיר את אזור כיפה סיבית. (ג) כימות subluminal ACTA2+ עובי Myh11- Cre/ERT2 R26R-EYFP ספקיות- / - האכלת דיאטה עתירת שומן 18, 21, 26 שבועות. משתמש זה זן של עכברים, כיפה סיבית יש של עובי ממוצע של 25-30 מיקרומטר התרדמה מראש. תוצאות מבוטא זאת אומרת ± ב- SEM. תיחום (D) של אזור קבוע של כיפה סיבית בעובי 30 מיקרומטר לספירת תא בודד. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 5
איור 5 : תא בודד ספירה באמצעות ImageJ. לכידות מסך ולהמחיש השלבים החשובים של תא בודד עם ImageJ סומכים תמונות שרכשה מיקרוסקופיה קונפוקלית. (א) צביעת נפרדים לכל ערוץ ו z בודדים-מחסנית גלויים על-ידי גלילה סורגים כונן c: וכונן z: בחלק התחתון של התמונה. ערוצי Staining הם מדומים צבעוניים באמצעות החלונית ' ערוצים ' (1) ערוצי Staining (YFP, LGALS3, ACTA2, דאפי עבור צביעת גרעינית, DIC) ימוזגו באמצעות החלונית ' מזג ערוצים ' (2). תוצאות (B) של ערוץ מיזוג עבור YFP ', ' LGALS3 ', ' ACTA2 ', דאפי, DIC. גרעין (C) סופר בהתבסס על דאפי מכתים באמצעות ספירת סמל (1) נקודת לוח (2). ערוץ מונה שונים משמש עבור כל אוכלוסיית תאים (3). מספר האירועים נספרים מסומן מתחת לתעלה מונה (4). מלבן לבן: אזור מוגדלת בצד הימין. (D) תמונת הנציגה של תא בודד סופר בתוך אזור כיפה סיבית (קו מקווקו) עבור אוכלוסיות תאים מרובים כולל דאפי (נקודות צהובות), תאים YFP+ (מהאדום), YFP–LGALS3+ תאים (ציאן נקודות), YFP+LGALS3+ תאים (נקודות תפוז), YFP+ACTA2+ (נקודות ירוקות), והתאים YFP–ACTA2+ תאים (נקודות כחול כהה). מלבן לבן: אזור מוגדלת בצד הימין. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 6
איור 6 : אפיון של ההשפעות של IL-1β עיכוב על ההרכב הסלולר של האזור כיפה סיבית BCA בשני מקומות נפרדים של השושלת SMC עקיבה ספקיות-/-עכברים- BCA (A) חתכי מיקרומטר 480 ו 780 µm רוחב מן הקשת אבי העורקים של עכברים שטופלו הנוגדן IL-1β או הפקד IgG כמוצג באיור 1 היו מוכתם YFP, LGALS3, ודאפי (צביעת גרעינית) ובמקטע צולמה על ידי DIC. ערוצי immunofluorescent מוזגו (בתחתית לוחות נכון). קווים מקווקווים ניסחו את האזורים כיפה סיבית. גודל ברים: 100 מיקרומטר. (B) לתא בודד סופר מגלה כי עיכוב של IL-1β קשורה עם ירידה משמעותית בתאים YFP+ ועלייה LGALS3+ תאים בתוך אזור כיפה סיבית. C) בתוך YFP+ תא אוכלוסייה, ירידה YFP+ACTA2+ , עלייה YFP+LGALS3+ אוכלוסיות מובחנות. תוצאות מבוטא זאת אומרת ± Statistical ב- SEM. ניתוח: unpaired-t-test מרובים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 7
איור 7 : ההשפעה של IL-1β עיכוב על המספר של RUNX2 + chondrogenic תאים עם מתקדם התרדמה. A) BCA חתכי רוחב מוכתמים YFP, LGALS3, RUNX2, דאפי (צביעת הגרעין), ואת כל ערוצי מוזגו (בתחתית לוחות). קווים מקווקווים ניסחו באזור הנגע. גודל ברים: 100 מיקרומטר. B) לתא בודד סופר מראה כי עיכוב של IL-1β לא משפיע על המספר הכולל של RUNX2+ תאים בתוך הנגע ולא את הפרופורציה של RUNX2+ תאים ממוצא SMC (YFP+RUNX2+; YFP+LGALS3+RUNX2+) ואת מקורם מיאלואידית (YFP–LGALS3+RUNX2+). תוצאות מבוטא ניתוח ב- SEM Statistical אומר: Unpaired-t-test מרובים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

למרות עשרות שנים של מחקר, ההתקדמות הטכנית בלימוד טרשת עורקים, השדה יש היסטוריה מאכזב של תרגום ממצאים מדעיים כדי טיפולים קליניים34,35. תופעה זו ניתנת להסבר באופן חלקי על ידי סתירות חייתיים, עיצובים מוטוריים, וניתוחים הנגע. במסמך זה, אנו מתארים של צינור ניסיוני שבהן השתמשנו כדי לנתח את ההרכב הסלולר בנגעים טרשת עורקים מתקדמת באמצעות שושלת היוחסין עקיבה עכברים7. שיטה זו מאפשרת חקירה קפדנית של מיפוי גורל תא, phenotyping, אשר הם פרמטרים מרכזיים נשלט על ידי המנגנונים פוטנציאל לשחק התרדמה מתקדם.

המודל עכבר העקיבה SMC-השושלת הוא כלי רב עוצמה לעקוב בצורה מדויקת את גורלם ואת האפנון פנוטיפי של שושלת זו ואת תרומתם כדי פתוגנזה טרשת עורקים. טמוקסיפן-inducible Cre-loxP המערכת מאפשרת תיוג של בוגר SMC כלי דם לבטא MYH11 לפני אתחול של טרשת עורקים. באמצעות מערכת זו ראיות משכנעות הוכיחה כי הפלאק טרשת עורקים הם מאוד פלסטיק ולא SMC כלי הדם ניתן לעבור החלפת פנוטיפי, מאבד שלהם פנוטיפ כויץ וסמנים SMC ספציפיים, מתרבים, הגירה, ואפילו transdifferentiating לתוך מקרופאג כמו תאים17,18. בפרוטוקול הנוכחי, אנו מראים איך שושלת היוחסין-העקבה זיהוי, צביעת immunofluorescent עבור סמני עניין ניתן לשלב כדי לקבוע במדויק מעברים פנוטיפי שנערך על ידי SMC והתדירות היחסי שלהם בקרב אוכלוסיות אחרות-SMC.

מתודולוגיה זו היא משלימה ביותר עם שאר מבחני המבוצעת לעתים קרובות בתחום. ראשית, הערכה מהנטל הנגע טרשת עורקים על ידי פנים en ההכנות אבי העורקים בשילוב עם השומנים מכתים על ידי סודאן הרביעי הוא בשימוש נרחב בשל הנוחות שלה מהירות. עם זאת, זה מדד לקוי של מפתח מורפולוגית פרמטרים כגון גודל הנגע, לומן בגודל הכלי שיפוץ. צביעת הפנים en אבי העורקים הכנה על ידי סודאן הרביעי להמחיש השומנים התצהיר יכול לשמש כדי לכמת את הנגע יחסי שטח בתוך העורקים, אבל זה יכול לספק לא עקבי מכתים הנגעים, כרכיב השומנים ניטרליים בלבד הוא מדמיין בזמן האזורים שנכבשו על ידי אחרים בשילובם, כגון מטריצה חוץ-תאית, בדרך כלל הן מוזנחות8. יתר על כן, צביעת פנים en אין אפשרות להודיע על המורפולוגיה הנגע, מסוגל להבחין בין פסי שומן נגעים מתקדם. מורפולוגיה של הכלי הוא פרמטר חשוב המשמש להערכת הסיכון הבמה ואת הקרע טרשת עורקים, כולל גודל הנגע, קוטר לומן, כלי שיפוץ7,36,37. ניתוחים אלה דורשים השימור של המורפולוגיה קיבול על כימות נאותה. חשוב, פרוטוקולי חקירת מורפולוגית פרמטרים חופפים במידה רבה עם פרוטוקול מפורט כאן. בפרט, הם מסתמכים על השימוש של מערכת מבוססת על כוח המשיכה את כלי הדם זלוף PBS זלוף מקבע לספק עקביות יותר למידת הלחץ המופעל. מערכת הסתננות מונחה הכבידה מבטיח מהירות זרימה מתמדת עם הלחץ בין כל עכבר עצמאית ומונעת העקביות של ידני זלוף מונחה-כוח בין ניסויים עצמאית או חוקרים. יש להגדיר את המערכת זלוף הכבידה לזירוז זלוף, בלחץ ליד הלחץ דם מאתר ממוצע (70-120 מ מ כספית). שנית, סיפקנו שיטה סטנדרטית שיטתית של הטמעה, חלוקתה עבור העורק brachiocephalic. על-ידי הגדרת האתר התחלה של חלוקתה וכימות באזור הנגע במיקומים מרובים לאורך העורק brachiocephalic, אנחנו יכולים לצמצם את וריאציית אקראי שמגיע עם דגימה מוגבלת.

Cytometry זרימה היא טכניקה נוספת משלימה ביותר עם immunofluorescent מכתים בשילוב עם סופר תא בודד שבו נעשה שימוש נרחב ב לכימות תא אוכלוסיות בתוך טרשת עורקים38. זה מורכב העיכול של אבי העורקים העכבר תיוג של התאים שפורסמו עם נוגדנים פלורסנט. Cytometry זרימה מציע ניתוח כמותי של אוכלוסיות הסלולר נוכח באבי העורקים. עם זאת, כמו כל טכנולוגיות, cytometry זרימה יש מגבלות. למרות היתרון ברורים של התאמת מערך גדול של סמנים בו זמנית, יש אובדן מוחלט של רזולוציה מרחבית, זה הופך להיות לא ברור אם אוכלוסיה תא מועשר את כיפה סיבית או נמק הליבה. בנוסף, קיים סיכון של אפקט דילול מאז cytometry זרימה דורש מספר רב של תאים, לעיתים קרובות לא להתמקד רק על אזורי טרשת עורקים. מסיבה זו, immunofluorescence ו- cytometry זרימה יכול לשמש באופן משלים כדי לאפשר יצירת פרופיל תלת-ממדי גבוהה והן הנגע לוקליזציה.

לבסוף, הפרוטוקול מתמקדת כימות של SMC אוכלוסיות של BCA מתקדם הנגע באמצעות מקטעי רקמת paraformaldehyde-קבוע, פרפין-מוטבע. עם זאת, פרוטוקול זה יכול לשמש כדי לחקור במיטות כלי דם כולל את בסיס אב העורקים או העורק הראשי, שתי הטריטוריות כלי הדם על התפתחות טרשת עורקים. חלוקתה של שורש אבי העורקים ועיבוד שיטתי היה טוב כמתואר לעיל8,39. טרשת עורקים מפתחת במקומות שונים, זו מניפולציה גנטית או התערבות טיפולית יכולים להשפיע ללא-למשל אלה אתרים21, חשוב לחקור מיטות כלי דם רבים ככל האפשר כדי להסיק מסקנות מדויקות. צביעת immunofluorescent וסופר תא בודד גם ניתן לבצע באמצעות סעיפים קפוא. ייתכן שיהיה צורך בשל בעיית אי התאימות של נוגדנים עם מקטעים פרפין. למרות זלוף בעלי חיים והטבעה רקמות יהיו שונים של פרוטוקול זה, החוקרים יכול לעקוב אחר את שאר ההליכים ניסיוני המתוארים כאן.

לסיכום, הטכניקות המתוארות כאן חלוקה לרמות בגישה שיטתית כדי ניתוח הנגע תא אוכלוסיות פנוטיפים ב טרשת עורקים מאתר בשלב מאוחר. פרוטוקול זה יכול לשמש כתבנית כדי לחקור אוכלוסיות הנגע על ידי צביעת immunofluorescent בכל סוגי עיצוב ניסיוני כולל טרשת עורקים מוקדם, בשלב מאוחר, כמו גם מחקרים מניעה וטיפול.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgments

אנו מודים למרכז וחיסונים הדמיה (נתמך על-ידי-1S10OD019973-01-NIH) ב אוניברסיטת פיטסבורג לסיוע שלהם. עבודה זו נתמכה על ידי נתמך על ידי מענק פיתוח מדעי 15SDG25860021 של איגוד הלב האמריקני כדי ה2 R.A.B. נתמכה על ידי NIH להעניק F30 HL136188.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
16% Paraformaldehyde aqueous solution Electron Microscopy Sciences RT 15710 Tissue perfusion and fixation
23G butterfly needle Fisher BD367342
25G needle Fisher 14-821-13D 
A1 Confocal microscope Nikon Confocal microscope
ACTA2-FITC antibody (mouse) Sigma Aldrich F3777 Primary Antibody
Alexa-647 anti goat Invitrogen A-21447 Secondary antibody
Antigen Unmasking solution, Citric acid based Vector Labs H-3300 Antigen retrieval solution
Chow Diet Harlan Teklad TD.7012
Coverslip Fisher 12-544-14 Any 50 x 24 mm cover glass
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Invitrogen D1306 Nucleus fluorescent counterstaining
Donkey Alexa-488 anti-rabbit Invitrogen A-21206 Secondary antibody
Donkey Alexa-555 anti-rat Abcam ab150154 Secondary antibody
DPBS 10X without Calcium and Magnesium Gibco 14200166 PBS for solution dilutions and washes. Dilute to 1x in deionized water
Embedding cassette Fisher 15-182-701D
ETDA vacuum tube Fisher 02-685-2B
Ethanol 200 proof Decon 2701
Foam pad Fisher 22-222-012
Gelatin from cold water fish skin Sigma Aldrich G7765
GFP antibody (goat) abcam ab6673 Primary antibody
goat IgG control Vector Labs I-5000 IgG control
High Fat Diet Harlan Teklad TD.88137
ImageJ NIH Computer program https://imagej.nih.gov/ij/ 
LGALS3 antibody (rat) Cedarlane CL8942AP Primary antibody
LSM700 confocal microscope Zeiss Confocal microscope
Microscope Slides, Superfrost Plus Fisher 12-550-15
Microtome blades Fisher 30-538-35
Mouse IgG control Vector Labs I-2000 IgG control
NIS element imaging software Nikon Imaging software for z-stack image acquisition
Normal Horse serum Sigma Aldrich H1270
Pap Pen Fisher 50-550-221
Peanut oil Sigma P2144
Prolong gold Antifade mountant Invitrogen P36930 Mounting medium 
Rabbit IgG control Vector Labs I-1000 IgG control
Rat IgG control Vector Labs I-4000 IgG control
RUNX2 antibody (rabbit) Abcam ab192256 Primary Antibody
Syringe BD 309628 1 ml syringe
Tamoxifen Sigma T5648
Xylene Fisher X55K-4
Zen imaging software Zeiss Imaging software for z-stack image acquisition

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. GBD DALYs and HALE Collaborators. Global, regional, and national disability-adjusted life-years (DALYs) for 315 diseases and injuries and healthy life expectancy (HALE), 1990-2015: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2015. Lancet. 388 (10053), 1603-1658 (2016).
  2. Benjamin, E. J., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2018 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 137 (12), 67-92 (2018).
  3. Hay, M., Thomas, D. W., Craighead, J. L., Economides, C., Rosenthal, J. Clinical development success rates for investigational drugs. Nature Biotechnology. 32 (1), 40-51 (2014).
  4. Bhaskar, V., et al. Monoclonal antibodies targeting IL-1 beta reduce biomarkers of atherosclerosis in vitro and inhibit atherosclerotic plaque formation in Apolipoprotein E-deficient mice. Atherosclerosis. 216 (2), 313-320 (2011).
  5. Isoda, K., et al. Lack of interleukin-1 receptor antagonist modulates plaque composition in apolipoprotein E-deficient mice. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 24 (6), 1068-1073 (2004).
  6. Kirii, H., et al. Lack of interleukin-1beta decreases the severity of atherosclerosis in ApoE-deficient mice. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 23 (4), 656-660 (2003).
  7. Gomez, D., et al. Interleukin-1β has atheroprotective effects in advanced atherosclerotic lesions of mice. Nature Medicine. 24, 1418-1429 (2018).
  8. Daugherty, A., et al. Recommendation on Design, Execution, and Reporting of Animal Atherosclerosis Studies: A Scientific Statement From the American Heart Association. Circulation Research. 121 (6), 53-79 (2017).
  9. Baylis, R. A., Gomez, D., Owens, G. K. Shifting the Focus of Preclinical, Murine Atherosclerosis Studies From Prevention to Late-Stage Intervention. Circulation Research. 120 (5), 775-777 (2017).
  10. Kolodgie, F. D., et al. Pathologic assessment of the vulnerable human coronary plaque. Heart. 90 (12), 1385-1391 (2004).
  11. Virmani, R., Kolodgie, F. D., Burke, A. P., Farb, A., Schwartz, S. M. Lessons from sudden coronary death: a comprehensive morphological classification scheme for atherosclerotic lesions. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 20 (5), 1262-1275 (2000).
  12. Gomez, D., Owens, G. K. Smooth muscle cell phenotypic switching in atherosclerosis. Cardiovascular Research. 95 (2), 156-164 (2012).
  13. Owens, G. K., Kumar, M. S., Wamhoff, B. R. Molecular regulation of vascular smooth muscle cell differentiation in development and disease. Physiological Reviews. 84 (3), 767-801 (2004).
  14. Speer, M. Y., et al. Smooth muscle cells give rise to osteochondrogenic precursors and chondrocytes in calcifying arteries. Circulation Research. 104 (6), 733-741 (2009).
  15. Gomez, D., Shankman, L. S., Nguyen, A. T., Owens, G. K. Detection of histone modifications at specific gene loci in single cells in histological sections. Nature Methods. 10 (2), 171-177 (2013).
  16. Feil, S., et al. Transdifferentiation of vascular smooth muscle cells to macrophage-like cells during atherogenesis. Circulation Research. 115 (7), 662-667 (2014).
  17. Shankman, L. S., et al. KLF4-dependent phenotypic modulation of smooth muscle cells has a key role in atherosclerotic plaque pathogenesis. Nature Medicine. 21, 628 (2015).
  18. Cherepanova, O. A., et al. Activation of the pluripotency factor OCT4 in smooth muscle cells is atheroprotective. Nature Medicine. 22, 657 (2016).
  19. Albarran-Juarez, J., Kaur, H., Grimm, M., Offermanns, S., Wettschureck, N. Lineage tracing of cells involved in atherosclerosis. Atherosclerosis. 251, 445-453 (2016).
  20. Chappell, J., et al. Extensive Proliferation of a Subset of Differentiated, yet Plastic, Medial Vascular Smooth Muscle Cells Contributes to Neointimal Formation in Mouse Injury and Atherosclerosis Models. Circulation Research. 119 (12), 1313-1323 (2016).
  21. Newman, A. A., et al. Irradiation abolishes smooth muscle investment into vascular lesions in specific vascular beds. JCI Insight. 3 (15), (2018).
  22. Dobnikar, L., et al. Disease-relevant transcriptional signatures identified in individual smooth muscle cells from healthy mouse vessels. Nature Communications. 9 (1), 4567 (2018).
  23. Misra, A., et al. Integrin beta3 regulates clonality and fate of smooth muscle-derived atherosclerotic plaque cells. Nature Communications. 9 (1), 2073 (2018).
  24. Majesky, M. W., et al. Differentiated Smooth Muscle Cells Generate a Subpopulation of Resident Vascular Progenitor Cells in the Adventitia Regulated by Klf4. Circulation Research. 120 (2), 296-311 (2017).
  25. Herring, B. P., Hoggatt, A. M., Burlak, C., Offermanns, S. Previously differentiated medial vascular smooth muscle cells contribute to neointima formation following vascular injury. Vascular Cell. 6, 21 (2014).
  26. Sheikh, A. Q., Misra, A., Rosas, I. O., Adams, R. H., Greif, D. M. Smooth muscle cell progenitors are primed to muscularize in pulmonary hypertension. Science Translational Medicine. 7 (308), (2015).
  27. Bentzon, J. F., Majesky, M. W. Lineage tracking of origin and fate of smooth muscle cells in atherosclerosis. Cardiovascular Research. 114 (4), 492-500 (2018).
  28. Wirth, A., et al. G12-G13-LARG-mediated signaling in vascular smooth muscle is required for salt-induced hypertension. Nature Medicine. 14 (1), 64-68 (2008).
  29. Mattson, D. L. Comparison of arterial blood pressure in different strains of mice. American Journal of Hypertension. 14 (5), Pt 1 405-408 (2001).
  30. Whitesall, S. E., Hoff, J. B., Vollmer, A. P., D'Alecy, L. G. Comparison of simultaneous measurement of mouse systolic arterial blood pressure by radiotelemetry and tail-cuff methods. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 286 (6), 2408-2415 (2004).
  31. Durgin, B. G., et al. Smooth muscle cell-specific deletion of Col15a1 unexpectedly leads to impaired development of advanced atherosclerotic lesions. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 312 (5), 943-958 (2017).
  32. Durham, A. L., Speer, M. Y., Scatena, M., Giachelli, C. M., Shanahan, C. M. Role of smooth muscle cells in vascular calcification: implications in atherosclerosis and arterial stiffness. Cardiovascular Research. 114 (4), 590-600 (2018).
  33. Lin, M. E., et al. Runx2 Deletion in Smooth muscle Cells Inhibits Vascular Osteochondrogenesis and Calcification but not Atherosclerotic Lesion Formation. Cardiovascular Research. , (2016).
  34. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving Bioscience Research Reporting: The ARRIVE Guidelines for Reporting Animal Research. PLoS Biology. 8 (6), 1000412 (2010).
  35. Landis, S. C., et al. A call for transparent reporting to optimize the predictive value of preclinical research. Nature. 490 (7419), 187-191 (2012).
  36. Nishioka, T., et al. Contribution of inadequate compensatory enlargement to development of human coronary artery stenosis: An in vivo intravascular ultrasound study. Journal of the American College of Cardiology. 27 (7), 1571-1576 (1996).
  37. Pasterkamp, G., et al. Paradoxical Arterial-Wall Shrinkage May Contribute to Luminal Narrowing of Human Atherosclerotic Femoral Arteries. Circulation. 91 (5), 1444-1449 (1995).
  38. Galkina, E., et al. Lymphocyte recruitment into the aortic wall before and during development of atherosclerosis is partially L-selectin dependent. The Journal of Experimental Medicine. 203 (5), 1273-1282 (2006).
  39. Venegas-Pino, D. E., Banko, N., Khan, M. I., Shi, Y., Werstuck, G. H. Quantitative analysis and characterization of atherosclerotic lesions in the murine aortic sinus. Journal of Visual Experiments. (82), 50933 (2013).

Tags

רפואה גיליון 144 טרשת עורקים טרשת עורקים הנגע העורק brachiocephalic רקמות והכנה חלוקתה אימונוהיסטוכימיה immunofluorescence מיקרוסקופיה קונפוקלית
ניתוח כמותי של הרכב הסלולר בנגעים טרשת עורקים מתקדמת של שריר חלק תא שושלת היוחסין-עקיבה עכברים
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Mahan, S., Liu, M., Baylis, R. A.,… More

Mahan, S., Liu, M., Baylis, R. A., Gomez, D. Quantitative Analysis of Cellular Composition in Advanced Atherosclerotic Lesions of Smooth Muscle Cell Lineage-Tracing Mice. J. Vis. Exp. (144), e59139, doi:10.3791/59139 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter