Summary

מודל הפרה-קליני של השתלת לב אורתוטופית

Published: April 27, 2019
doi:

Summary

כאן, אנו מתארים טרום קלינית בעלי חיים גדולים (porcine) מודל של השתלת לב אורתוגרפית כי כבר הוקמה בחוזקה ומנוצל לחקור אסטרטגיות קרדיוקטיבי הרומן.

Abstract

50 שנים לאחר הדו ח המוצלח הראשון, השתלת לב נשאר הטיפול בתקן זהב עבור חולים זכאים עם אי ספיקת לב מתקדמת. מספר בעלי חיים קטנים מודלים של השתלת לב שימשו כדי ללמוד את ההשפעות חריפה לטווח ארוך של טיפולים חדשניים. עם זאת, מעטים נבדקים והפגינו הצלחה בניסויים קליניים. היא בעלת חשיבות קריטית להערכת טיפולים חדשים במודל בעל-חיים רלוונטי קליני לתרגום יעיל ואמין של ממצאי מחקרים בסיסיים. כאן, אנו מתארים טרום קלינית בעלי חיים גדולים (porcine) מודל של השתלת לב אורתוגרפית כי כבר הוקמה באופן הדוק השתמשו בעבר כדי לחקור אסטרטגיות קרדיוקטיבי הרומן. הליך זה מתמקד בפציעה חריפה של איסכמיה-reperfusion והוא שיטה אמינה לחקור התערבויות הרומן אשר נבדקו ואומתו במודלים ניסיוניים קטנים יותר, כגון מודל murine. אנו מדגימים את התועלת שלו בהערכת ביצועים לב במהלך התקופה שלאחר ההשתלה מוקדם ואפשרויות אפשריות אחרות הזמינות על ידי המודל.

Introduction

50 שנים לאחר הדו ח המוצלח הראשון, השתלת לב נשאר הטיפול בתקן זהב עבור חולים זכאים עם אי ספיקת לב מתקדמת1. למרות שזמני האיסכמי של עד ארבע שעות נסבל כראוי, זמן איסכמי גדול יותר משש שעות קשורה לתוצאות נחות2. תפקוד השתל העיקרי נשאר הגורם העיקרי של תחלואה ותמותה מוקדם אחרי ההשתלה2,3. הסיבות של תפקוד השתל העיקרי הם רב עצרת וכוללים את השימוש באיברים שוליים, הנמען מחלת כלי דם ריאתי, דחייה יתר, ו איסכמיה-reperfusion פציעה מתמשכת בזמן השתלת3.

מחקרים מרובים חקרו שיטות הרומן שימור לב התורם כדי להפחית את השכיחות של תפקוד השתל העיקרי4,5,6,7. זה מנהג נפוץ כדי להעריך טכניקות חדשות וטיפולים מודלים murine של פציעה איסכמיה-reperfusion או הטרופית השתלת לב. בנוסף, מודלים בעלי חיים קטנים מאפשרים מודלים של הישרדות ומעקב ארוך טווח כדי לחקור את ההתפתחות של דחייה האלושתל לב ואסקולוטיה11,12,13. עם זאת, רוב אסטרטגיות אלה להיכשל הראשונית ניסויים קליניים או לעולם לא להגיע לשלב זה. זהו החשיבות העליונה להערכת טיפולים חדשים במודל בעל חיים הרלוונטי קלינית לתרגום יעיל ואמין של ממצאי מחקרים בסיסיים.

לב הפורצין נחשב לעתים קרובות לאופן האנטומית ביותר ללב האדם בעת שימוש במודלים של בעלי חיים גדולים. ככזה, היא פלטפורמה אידיאלית לביצוע מחקר ניתוחי לב. עם זאת, ישנם גורמים חשובים מספר לשקול בעת שימוש במודל חזירי. ראשית, הרקמה מתוארת בדרך כלל שברירי ומלא מסוגל, במיוחד בפרוזדור הימני ובעורק הריאתי, להיות נוטה דמעות14. בנוסף, לב החזיר נחשב רגיש למניפולציות ונוטה לטיפול בפרעות בקצב הלב, ולכן על האדם לנהל באופן שגרתי את האנטי-ארתוטי לכל חיה בתחילת הניסוי. הבדל אנטומי חשוב בין המודל חזירי והשתלת הלב הקליני הוא הווריד hemiazygous שמאל בחזירים אשר מנקז ישירות לתוך הסינוס הכלילי. הדבר חייב להיות מקוטע במהלך הליך הנמען כדי למנוע דימומים מתמשכים. לבסוף, מודל חזירי רגיש מאוד איסכמיה, אבל זה עדיין מתאים למחקרים חריפים השתלת לב15.

כתב היד מתאר מודל טרום קליני בעלי חיים גדול (porcine) של השתלת לב אורתוגרפית כי כבר הוקמה באופן יציב ומנוצל כדי לחקור אסטרטגיות הרומן קרדיוקטיבי5,6,8 ,9.

Protocol

הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים אישרה את כל הפרוטוקולים הניסיוניים ובעלי חיים טופלו בעקבות “מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה” שהוכנו על ידי המכון למשאבי בעלי חיים במעבדה, מועצת המחקר הלאומית, 1996. חזירים גברים (40-50 ק”ג) שימשו לביצוע השתלות לב אורתוטופית (גודל בעלי חיים יכול להשתנות בהתאם לשי…

Representative Results

מודל זה טרום קליני כבר בשימוש בהצלחה מאז 19945,6,8,9. טבלה 1 מדגים את התוצאות הייצוגיות מקשרים עם עוצמת הלחץ ופרמטרים האקו-קרדיוגרפיות שצולמו בתוכנית הבסיסית, ו-3 h לאחר ההשתלה בקבוצה של 5 ניסויים. למרות שאנו רואים יר?…

Discussion

כתב יד זה מתאר מודל הפרה-קליני של בעל חיים גדול של השתלת לב אורתוגרפית. מודלים שונים של בעלי חיים קטנים של השתלת לב הטרולפית השתמשו בהצלחה כדי ללמוד את ההשפעות של טיפולים חדשניים כדי לשפר את שימור האיברים ולהקטין את פציעת איסכמיה-reperfusion11,12, 13<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

. למחברים אין תודות

Materials

Amiodarone Purchased from institutional pharmacy
Angiocath 20G BD 381704
Calcium Chloride 1g/10ml Purchased from institutional pharmacy
Cardioplegia solution This should be chosen at the investigators discretion. 
Cautery Pencil Covidien E2515H
Central Venous Catheter double-lumen Cook Medical C-UDLM-501J-LSC
CPB pack Medtronic Custom-made cardiopulmonary bypass perfusion circuit.
D5W 5% 250ml Baxter JB1064
DLP Aortic Root Cannula/stabber Medtronic 12218
DLP single-lumen venous cannula (24F or 28F) This should be chosen at the investigators discretion. 
Dobutamine Purchased from institutional pharmacy
Electrode Polyhesive Covidien E7507
EOPA arterial cannula (17F or 21F) This should be chosen at the investigators discretion. 
Epinephrine Purchased from institutional pharmacy
Eppendorf Tubes, 1.5 mL Sarstedt  72.690.001
Gloves, nitrile, medium Fischer 27-058-52
Heparin 1000 IU/ml Purchased from institutional pharmacy
Ketalean (Ketamine) inj. 100mg/ml, 50ml/vial Health Canada Requires health canada approval
Lidocaine/Xylocaine 1% Purchased from institutional pharmacy
Magnesium Sulfate 5g/10ml Purchased from institutional pharmacy
Midazolam inj. USP 5mg/ml vial/10ml Health Canada Requires Health canada approval
MPS Quest delivery disposable pack Quest medical 5001102-AS
NACL 0.9% 1L Baxter JB1324
Organ Bag CardioMed 2990
Pipette Tips, 1 mL Fisherbrand 02-707-405
Propofol 1mg/ml Purchased from institutional pharmacy
Rocuronium Purchased from institutional pharmacy
Set Admin Prim NF PB W/Checkvalve Smith Medical 21-0442-25 Intravenous infusion pump line. Researchers should choose infusion lines compatible with the infusion pump available at their facilities
Set Intro Sheath 8.5FRx 10CM Arrow SI-09880
Sofsilk 0 wax coated Covidien S316
Solumedrol 500mg/5ml Purchased from institutional pharmacy
Suction tip Covidien 8888501023
Suction Tubing 1/4" x 120" Med-Rx 70-8120
Suture 5.0 Prolene BB Ethicon 8580H
Suture Prolene Blum 4-0 SH 36 Ethicon 8521H
Sutures 2.0 Prolene Blu M SH Ethicon 8523H
Sutures BB 4.0 Prolene  Ethicon 8881H
Tracheal Tube, 6.5mm Mallinckrodt 86449

References

  1. Lund, L. H., Edwards, L. B., et al. The Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirty-third Adult Heart Transplantation Report-2016; Focus Theme: Primary Diagnostic Indications for Transplant. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 35 (10), 1158-1169 (2016).
  2. Lund, L. H., Edwards, L. B., et al. The Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation_ Thirty-first Official Adult Heart Transplant Report-2014; Focus Theme_ Retransplantation. The. Journal of Heart and Lung Transplantation. 33 (10), 996-1008 (2014).
  3. Cosío Carmena, M. D. G., Gómez Bueno, M., et al. Primary graft failure after heart transplantation: characteristics in a contemporary cohort and performance of the RADIAL risk score. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 32 (12), 1187-1195 (2013).
  4. Fedak, P. W. M., Rao, V., et al. Combined endothelial and myocardial protection by endothelin antagonism enhances transplant allograft preservation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 129 (2), 407-415 (2005).
  5. Ramzy, D., Rao, V., et al. Cardiac allograft preservation using donor-shed blood supplemented with L-arginine. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 24 (10), 1665-1672 (2005).
  6. Rao, V., Feindel, C. M., Weisel, R. D., Boylen, P., Cohen, G. Donor blood perfusion improves myocardial recovery after heart transplantation. Journal of Heart and Lung Transplantation. 16 (6), 667-673 (1997).
  7. Wicomb, W. N., Cooper, D. K., Barnard, C. N. Twenty-four-hour preservation of the pig heart by a portable hypothermic perfusion system. Transplantation. 34 (5), 246-250 (1982).
  8. Badiwala, M. V., Ramzy, D., et al. Donor pretreatment with hypertonic saline attenuates primary allograft dysfunction: a pilot study in a porcine model. Circulation. 120, 206-214 (2009).
  9. Ribeiro, R. V. P., Badiwala, M. V., Ramzy, D., Tumiati, L. C., Rao, V. Recipient Hypertonic Saline Infusion Prevents Cardiac Allograft Dysfunction. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. , (2018).
  10. Townsend, D. Measuring Pressure Volume Loops in the Mouse. Journal of Visualized Experiments. (111), e53810 (2016).
  11. Ratschiller, T., Deutsch, M. -. A., et al. Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice. Journal of Visualized Experiments. (102), e52907 (2015).
  12. Fukunaga, N., Bissoondath, V., Rao, V. Submandibular Gland-preserving Technique for Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice. Transplantation. 1, (2018).
  13. Gong, W. Mouse Heterotopic Abdominal Heart Transplant Model. Rodent Transplant Medicine. , 107-118 (2014).
  14. Robinson, N., Souslian, L., Gallegos, R. P., Rivard, A. L., Dalmasso, A. P., Bianco, R. W. Animal Models for Cardiac Research. Handbook of Cardiac Anatomy, Physiology, and Devices. , 469-491 (2015).
  15. Bianco, R. W., Gallegos, R. P., Rivard, A. L., Voight, J., Dalmasso, A. P. Animal Models for Cardiac Research. Handbook of Cardiac Anatomy, Physiology, and Devices. , 393-410 (2009).

Play Video

Cite This Article
Ribeiro, R. V. P., Alvarez, J. S., Yu, F., Adamson, M. B., Fukunaga, N., Serrick, C., Bissoondath, V., Meineri, M., Badiwala, M. V., Rao, V. A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation. J. Vis. Exp. (146), e59197, doi:10.3791/59197 (2019).

View Video