Summary
Sistemas de expressão livre de célula são ferramentas poderosas e custo-eficiente para a síntese de alta produtividade e rastreio de proteínas importantes. Aqui, descrevemos a preparação do sistema de expressão de proteínas sem célula usando Vibrio natriegens para a produção de proteína rápida usando DNA Plasmideo DNA linear e do mRNA.
Abstract
A bactéria Marinha Vibrio natriegens tem atraído considerável atenção como um host microbial emergente para biotecnologia devido a sua taxa de crescimento rápido. Um protocolo geral é descrito para a preparação da V. natriegens extratos bruto célula utilizando equipamentos comuns de laboratório. Este protocolo alto rendimento tem sido especificamente otimizado para a acessibilidade dos utilizadores e custo reduzido. Síntese de proteína sem célula (CFPS) pode ser realizado em reações de lote em pequena escala 10 μL em qualquer formato 96 ou 384 poços e reproducibly produz concentrações de > 260 μg/mL super pasta GFP (sfGFP) 3 h. em geral, extrato de célula bruta preparação e CFPS pode ser alcançado em dias completos de 1−2 por um único usuário. Este protocolo pode ser facilmente integrado em gasodutos de síntese de proteína existentes para facilitar os avanços na bio-produção e aplicações da biologia sintética.
Introduction
Síntese proteica celular-livre é um método versátil e econômico para a expressão de proteínas valiosas ou peptídeos1,2,3,4. Historicamente, síntese proteica celular-livre foi realizada utilizando sistemas de expressão de Escherichia coli ; no entanto, tem havido um aumento recente no uso de organismos alternativos, não-modelo com propriedades romance como chassi para celular-livre expressão5,6,7,8,9 , 10 , 11 , 12. organismos com perfis metabólicos únicos são principais candidatos como alternativas para sistemas sem célula de e. coli . Por exemplo, a bactéria Marinha que Vibrio natriegens é o crescimento rápido de todos os organismos conhecidos com um observado tempo de menos de 10 min13de duplicação. Isto tem atraído V. natriegens considerável atenção como um host microbial emergente para pesquisa e biotecnologia14,15,16,17,18. Dado que a taxa de crescimento rápido de V. natriegens tem sido associada a altas taxas de síntese proteica e eficiência metabólica19,20,21, aproveitando sua maquinaria celular para celular-free síntese pode expandir significativamente o kit de ferramentas para a produção de proteína rápida e seleção da elevado-produção.
Recentemente, uma célula livre V. natriegens sistema de expressão tem sido demonstrado que é capaz de produzir super pasta GFP (sfGFP) em concentrações de > 260 μg/mL em 3 h com um promotor de T79. O objectivo geral de desenvolver esse método foi fornecer aos usuários com um sistema de expressão de proteínas altamente acessível, eficiente, Reproduzível e alto rendimento de célula livre que pode ser preparado utilizando equipamentos comuns de laboratório em um curto espaço de tempo. Este protocolo utiliza 1L culturas em frascos de agitar, lise celular por sonication pulso e reações em pequena escala em lote em um formato de 96 ou 384 poços para maximizar a paralelização e taxa de transferência de rastreio. Uma expressão de proteína longa e sustentado é possibilitada pela suplementação de ácido 3-phosphoglyceric (3-PGA) como uma energia fonte8,22,23. Ao completar com sucesso este protocolo, um usuário terá a capacidade de expressar uma proteína desejada ou extrair o conjunto de proteínas em um formato livre de célula usando V. natriegens célula bruta.
A partir de um estoque de glicerol, V. natriegens extratos de células bruto são preparados a partir de células colhidas em uma densidade óptica em 600 nm (OD600) de 1.0. Uma cultura de 1L renderá cerca de 2−3 mL de extracto, que é suficiente para mais de 800 sem célula reações no extrato bruto de célula de 25%. As proteínas podem ser expressas usando o plasmídeo DNA, DNA linear ou do mRNA; no entanto, degradação de modelo de DNA linear por nucleases endógenas permanece uma grande desvantagem ao usar o tipo selvagem V. natriegens célula livre sistema9. A partir de culturas de V. natriegens , proteína utilizável para aplicações a jusante pode ser alcançada por um único usuário em dias completos de 1−2.
Protocol
1. preparação da V. natriegens bruto célula extrai – cultura bacteriana
- Prepare-se V. natriegens crescimento bacteriano mídia LB-V2 conforme tabela 1. Esterilize os meios de comunicação de crescimento por autoclavagem. Permitir que a mídia atingir a temperatura ambiente (RT). Armazenar a mídia em excesso no RT
Atenção: Use equipamento de proteção pessoal adequada (PPE) e consultar as instruções específicas de laboratório quando operando uma autoclave. - Use um estoque de glicerol de tipo selvagem V. natriegens para inocular 3 mL de mídia LB-V2. Cresce durante a noite a 30 ° C e agitando a 225 rpm.
- Lavar 1 mL da cultura durante a noite por centrifugação a 10.600 x g em uma centrífuga de bancada de 1 min. Aspire o sobrenadante sem perturbar o sedimento resultante e ressuspender em 1 mL de fresco LB-V2 de mídia.
- Uma 4L autoclavado perplexo frasco Erlenmeyer com tampa estéril, adicionar 1 L de meio de crescimento fresco LB-V2. Inocule com 1 mL de lavado cultura durante a noite (1:1, 000 de diluição). Cresce a cultura a 30 ° C e agitando a 225 rpm.
Nota: V. natriegens culturas podem ser escaladas acima ou para baixo, mantendo a proporção de diluição de 1:1,000. Por exemplo, adicione 250 μL da cultura durante a noite lavada a 250 mL de mídia de crescimento fresca LB-V2 2 L confundiu o balão de Erlenmeyer com tampa estéril. - Monitore OD600 usando um espectrofotômetro a cultura. Quando a cultura atinge OD600 = 1,0 ± 0,2, cultura de colheita através de centrifugação a 3.500 x g por 20 min a 4 ° C. Coloque a pelota no gelo.
Nota: V. natriegens cresce rapidamente, portanto, um acompanhamento atento da cultura é necessário. Crescimento para OD600 = 1.0 deve tomar aproximadamente 1.5−2 h para a relação de diluição de 1:1,000. - Aspire o sobrenadante e armazenar imediatamente a pelota bacteriana resultante a-80 ° C ou proceder directamente à Lise descrita na secção 2 da pilha.
Nota: Esta etapa é um ponto de parada boa; no entanto, é recomendável que a pelota ser processado imediatamente ou no prazo de 1−2 dias para obter melhores resultados.
2. preparação do V. natriegens bruto célula extrai – lise celular
- Preparar o tampão de Lise S30 conforme tabela 1 na estéril deionizada (DI) e ajustar o pH a 7.7 usando ácido acético glacial.
Atenção: Ácido acético glacial deve ser manipulado com EPI adequado ao ajustar o pH. - Legal S30 lise aproximadamente 4 ° c, no frigorífico ou no gelo antes de iniciar o procedimento de lise celular.
Nota: Para um rápido arrefecimento, lysis buffer pode ser colocado a-20 ° C. Não permita que o buffer congelar. - Lugar de pellets de célula no gelo para min 10−20 ou até completamente derretido. Resuspenda todos os pellets da mesma cultura 1L usando 10 mL de tampão de Lise S30 frio e, em seguida, transfira a suspensão para um tubo de 50 mL. Se pelotas não são congeladas no congelador a-80 ° C no passo 1.6, vá diretamente para a ressuspensão.
Nota: Aumente o volume de tampão de Lise S30 costumava inicialmente Resuspenda pelotas conforme necessário. - Suspensão de centrífuga a 3.500 x g durante 10 minutos a 4 ° C. Aspire o sobrenadante sem perturbar o sedimento. Lave o pellet uma segunda vez usando 10 mL de tampão de Lise S30 frio. Coloque a pelota no gelo.
-
Em uma sala fria, adicione 500 μL de tampão de Lise S30 frio para a pelota no tubo de 50 mL. Usando uma ponta de pipeta de largo diâmetro, resuspenda o pellet e transferir cuidadosamente a suspensão inteira da pelota para um tubo de 2 mL.
Nota: Se uma grande furo pipeta não estiver disponível, use um par de tesouras para cortar a extremidade de uma ponta de pipeta de 1 mL para aumentar o furo para transferência da pelota.- Transferir a pelota tanto quanto possível sem aumentar significativamente o volume; no entanto, a pelota deve ser resuspended no líquido suficiente para ser lisados, como indicado por uma suspensão homogênea no tubo de 2 mL. Não encha o tubo de 2 mL. A suspensão não deve exceder 1,5 mL; dividido em vários tubos, se necessário.
- Manter o centrifugado no gelo e no trabalho em uma sala fria. Encha um copo de 600 mL com gelo e coloque um suporte de tubo 2 mL em cima do gelo.
Nota: É útil colocar o suporte de tubo perto do lado do copo, para a suspensão da pelota será visível no gelo para monitorar o progresso sonication (ver Figura 1). - Vórtice suspenso da pelota no tubo 2 mL brevemente para homogeneizar as células, tubos de filme para remover todas as células na parte inferior da tampa e coloque no suporte do tubo com a tampa aberta. Baixar dica sonicador em suspensão, de modo que é apenas sob a superfície do líquido.
- Prepare o set-up sonication conforme representado na Figura 2 usando um sonicador e sonda com um diâmetro de ponta de ⅛ polegadas. As seguintes configurações para o controle do sonicador de entrada: 20 kHz de frequência e amplitude de 50%, do pulso no tempo: 10 s, tempo OFF do pulso: 60 s.
- Execute o protocolo de sonication de pulso para três ciclos. Se o volume total da suspensão da pelota é > 500 μL, execute o protocolo de sonication pulso seis vezes.
Nota: Geralmente, os pulsos de 3−6 são suficientes para lyse V. natriegens pelotas; pulsos adicionais podem ser necessários dependendo do sonicador. Durante sonication, use a plataforma do botão de ajuste para mover a sonda para cima e para baixo lyse qualquer sedimento que pode se instalaram no fundo do tubo. O tubo pode ser removido do titular e brevemente vortexed para re-homogeneizar a suspensão entre pulsos. Ver discussão abaixo para obter a consistência pretendida de células lisadas.
Atenção: Utilizar protecção auditiva adequada quando sonicador está ativo. - Após sonication, célula bruto centrífuga Extraia a 16.000 x g por 30−45 min a 4 ° C ou até lisado é livre de quaisquer restos celulares, como ilustrado na Figura 3.
-
Em uma sala fria, alíquota 50 μL dos sobrenadantes resultantes para novos tubos de 2 mL, sem perturbar o sedimento.
Nota: qualquer detrito que é transferido acidentalmente para os novos tubos de 2 mL drasticamente irá reduzir a capacidade do extrato para síntese de proteína elevado rendimento.- Opcionalmente, Reserve 10 μL de célula extrair para quantificação de proteína pós-lise em um separado 2 mL do tubo (ver passo 2.13 abaixo).
- Flash congelar cru célula extratos, colocando os tubos em um suporte de tubo com uma corda mergulhando anexada como ilustrado na Figura 4. Mergulhe os tubos um Dewar contendo nitrogênio líquido e imediatamente coloque no congelador a-80 ° C até o uso.
Atenção: Use EPI apropriado para a manipulação de nitrogênio líquido, incluindo o jaleco, óculos de segurança, protetor facial, luvas e avental cryogen. - Opcionalmente, quantificar a proteína total da célula lisada usando 10 μL definido passo 2.11.1 além de diluir a amostra 1: 100 em 1x tampão fosfato salino (PBS) e usando qualquer ensaio de quantificação de proteína total padrão tais como o ensaio de Bradford, ácido bicinchoninic ensaio (BCA), etc.
3. preparação dos componentes de reação de célula livre
-
Componentes da reação geral
- Prepare acções de trabalho de Mg-glutamato e K-glutamato em tubos de 50 mL com água estéril em concentrações de 100 mM e 2000 mM, respectivamente.
- Prepare um estoque de trabalho de 50% (p/v) de polietilenoglicol (PEG)-8000 adicionando-se 100 mL de estéril DI água de um copo de 250 mL. Coloque um pequeno agitador magnético para o copo. Pesar 50 g de PEG-8000 e adicione a 100 ml de água no copo.
- Colocar o copo sobre um conjunto de placa de agitação aquecida a 100 ° C e agitar a 250 rpm até que PEG-8000 em solução. Deixe a mistura líquida de PEG-8000 arrefecer antes de transferir para tubos de 50 mL.
-
Mistura de mestre energia solução
- Prepare uma solução de 5 M de KOH, acrescentando 140g de pelotas KOH a 500 mL de água estéril.
Atenção: Preparar esta solução em um capuz químico e usar EPI ao manusear bases fortes. A solução se tornará quente então a tampa do frasco deve ser solta para evitar a acumulação de pressão. Permitir que a solução KOH alcançar RT antes de usar. - Prepare um tampão HEPES-KOH de 1750 mM, acrescentando 20,85 g de HEPES para um frasco de 100 mL. Lentamente, adicione água DI estéril até que o volume atinge 40 mL. Garrafa de vórtice para dissolver o HEPES. Use a solução KOH de 5 M para ajustar o pH a 8.0 e depois trazer o volume de solução a 50 mL.
Atenção: KOH deve ser manuseado com EPI adequado ao ajustar o pH. - Prepare o restante 10x componentes estoque de energia mestre mistura nas concentrações indicadas na tabela 2 , em água estéril DI e coloque cada estoque no gelo. Descongele os estoques de ATP, GTP, CTP e UTP de 100 mM na RT e lugar no gelo.
Nota: Um thermomixer definido para 37 ° C e 350 rpm pode ser usado para dissolver os reagentes em solução, se necessário. Não superaquecer ou deixar os reagentes sobre o thermomixer por um período prolongado de tempo. - Em um tubo de 15 mL, adicione cada componente de mestre mistura de solução de energia de acordo com a ordem e o volume especificado na tabela 2. A solução depois de cada componente é adicionado de vórtice. Isso fará com 5 mL de mistura mestre de energia solução de 10x.
- Divida a mistura mestre de energia solução de 10x em 200 alíquotas μL em tubos de 2 mL. Flash congelar cada alíquota conforme realizado na etapa 2.12. Imediatamente, coloque-os no congelador a-80 ° C até o uso.
- Prepare uma solução de 5 M de KOH, acrescentando 140g de pelotas KOH a 500 mL de água estéril.
-
Mistura de mestre de aminoácido
- Para preparar o fresco 4 x mestre mistura de aminoácidos, começa por descongelar cada aminoácido circulante no RT e em seguida, colocando cada um no gelo. Use um vórtice e/ou thermomixer definir a 37 ° C e 350 rpm para assegurar todas as existências de aminoácidos são totalmente dissolvido.
Nota: Cisteína não pode dissolver totalmente; Ele pode ser adicionado à mistura mestre aminoácido como uma suspensão. Não superaquecer ou deixar os reagentes sobre o thermomixer por um período prolongado de tempo. - Em um tubo de 15 mL, adicionar os volume adequado de aminoácidos para água DI estéril, para que a concentração final de cada um é de 8 mM na seguinte ordem: ALA, ARG, ASN, ASP, GLN, GLU, GLY, sua, IIE, LYS, MET, PHE, PRO, SER, THR, VAL, TRP, TYR , LEU e CYS. Após a adição de cada aminoácido, vórtice o mestre misturar a solução. Os volumes listados na tabela 2 , perfazem 2,4 mL de mistura de mestre de aminoácido.
- Divida o aminoácido mestre mistura de 4x em 200 alíquotas μL em tubos de 2 mL. Flash congelar cada alíquota conforme realizado na etapa 2.12. Coloca imediatamente em um congelador a-80 ° C até o uso.
- Para preparar o fresco 4 x mestre mistura de aminoácidos, começa por descongelar cada aminoácido circulante no RT e em seguida, colocando cada um no gelo. Use um vórtice e/ou thermomixer definir a 37 ° C e 350 rpm para assegurar todas as existências de aminoácidos são totalmente dissolvido.
-
Produção do modelo de DNA de plasmídeo de reação-pronto
Nota: Expressão de proteínas de célula livre neste sistema foi otimizado usando o vetor de expressão de proteína verde fluorescente (GFP) super pasta T7-pJL1-sfGFP (Tabela de materiais). É recomendável usar este plasmídeo como um controle para eficiência de reação celular-livre e a espinha dorsal de pJL1 para a clonagem e expressão de outras sequências de proteínas. Outros modelos de DNA de plasmídeo podem ser usados; no entanto, é importante notar que a transcrição é controlada por uma sequência de promotor T7 e a presença de T7 RNA polimerase. Um protocolo simples para a produção em larga escala de qualquer modelo de DNA de plasmídeo da transformada e. coli é descrito abaixo.- Purifica o vetor desejado usando um kit de purificação de plasmídeo conforme instruções do fabricante (Tabela de materiais).
Nota: Concentrando-se o modelo de DNA de plasmídeo tanto quanto possível é recomendado para atender as restrições de volume apertado da reação de célula livre. Em geral, aponta para um estoque de trabalho 750−1500 ng/μL.
- Purifica o vetor desejado usando um kit de purificação de plasmídeo conforme instruções do fabricante (Tabela de materiais).
-
Produção de reação pronta do mRNA
Nota: Esta seção é opcional. Expressão da proteína foi testado usando o mRNA gerado a partir da in vitro a transcrição do plasmídeo T7-pJL1-sfGFP pelo listado T7 RNA polimerase (Tabela de materiais).- Prepare-se do mRNA do plasmídeo codificação da proteína de interesse usando os componentes de reação in vitro a transcrição na tabela 3. Incube as reações durante 1 h a 37 ° C em um thermocycler.
Nota: Recomenda-se realizar a 8−10x destas reações em paralelo para gerar material suficiente. - Todas as reações da transcrição da piscina. Purifica usando um kit de purificação e concentrador de mRNA conforme instruções do fabricante (Tabela de materiais). Eluir do mRNA em água estéril. Loja do mRNA a-80 ° C até o uso.
- Prepare-se do mRNA do plasmídeo codificação da proteína de interesse usando os componentes de reação in vitro a transcrição na tabela 3. Incube as reações durante 1 h a 37 ° C em um thermocycler.
4. executar sem célula proteína Eexpression reações usando V. natriegens bruto extrair
-
Expressão de proteínas sem célula usando plasmídeo ou modelo de DNA linear
- Retire 10 x mix de mestre solução energético e 4 x alíquotas de mestre mistura de aminoácidos do freezer-80 ° C, descongelar no RT e colocar no gelo. Retire o T7 RNA polimerase e estoques de inibidor de RNase do freezer-20 ° C e colocar no gelo. Descongele o molde do ADN em RT e lugar no gelo.
- Preparar uma mistura de mestre de reação sem célula conforme tabela 4 , adicionando cada componente na seguinte ordem para um tubo de 2 mL no gelo: mestre mistura de aminoácidos, energia solução mestre mix, Mg-glutamato, K-glutamato, modelo de DNA, PEG-8000, T7 RNA polimerase e RNase inibidor de. Agite suavemente o tubo após cada adição à mistura de mestre.
Nota: Se o modelo linear é para ser usado na expressão de proteínas sem célula, adicione 5−10x rende mais material em comparação com o modelo do plasmídeo obter apreciável de proteína. - Remova V. natriegens bruto lisado celular preparado na etapa 2.12 da freezers-80 ° C e coloque no gelo para min 10−20 até derretido. Adicione o volume apropriado célula bruta extrair para a mistura de reação sem célula mestre conforme tabela 4 e misture suavemente por agredir ou pipetagem para cima e para baixo.
- Expressão de proteínas sem célula de ponto de extremidade usando thermocycler
- Adicionar 10 μL da mistura mestre reação celular livre no fundo de um prato PCR de 96 ou 384 poços. Entre cada transferência para o prato PCR, misture a mistura de mestre por agredir o tubo delicadamente.
Nota: Mistura de mestre reação sem célula deve ser bem misturada em todos os momentos para maximizar a reprodutibilidade de reação e expressão de proteínas de célula livre em todas as amostras.
- Adicionar 10 μL da mistura mestre reação celular livre no fundo de um prato PCR de 96 ou 384 poços. Entre cada transferência para o prato PCR, misture a mistura de mestre por agredir o tubo delicadamente.
- Brevemente, centrifugar a placa a 1.000 x g durante 10 s para qualquer mistura de mestre que pode ficar preso nas laterais dos poços da piscina. Selar os poços com um adesivo da placa para evitar a evaporação e, em seguida, coloque a placa do PCR em um thermocycler definir a 26 ° C com uma tampa aquecida a 105 ° C.
Nota: A distribuição de calor mesmo e tampa aquecida de um thermocycler melhora rendimento de expressão de proteínas. - Incube as reações sem célula por um período mínimo de 3h. Após a incubação, proteínas expressas podem ser purificadas, quantificadas e utilizadas para processos a jusante.
Nota: Proteínas expressas podem ser quantificadas diretamente na reação de célula livre usando um método de escolha do usuário. Por exemplo, proteínas fluorescentes podem ser quantificadas utilizando uma curva padrão externa ou radioactividade pode ser medida se usando um radiolabeled do amino-ácido na reação de célula livre. Espectroscopia UV-visível ou ensaios da proteína total geralmente não são recomendados para medir diretamente a produção de proteína em reações sem célula sem uma purificação inicial. - Alternativamente, monitor de cinética de expressão de proteínas sem célula usando um leitor de placa.
- Adicionar 10 μL da mistura mestre reação celular livre no fundo de uma placa de ensaio de 384-bem preto com fundo de vidro desobstruído. Manter a placa de ensaio no gelo ou trabalhar em uma sala fria ao adicionar a mistura de mestre para garantir que o perfil completo de cinético é obtido. Selar os poços com um adesivo de prato limpo para evitar a evaporação e em seguida coloque a placa de ensaio em um leitor de placa definir a 26 ° C.
- Incube as reações sem célula para 3−6 h enquanto monitora os comprimentos de onda adequados fluorescente de excitação/emissão correspondente à proteína expressa. Por exemplo, monitorar a Ex / Em = 485 nm/528 nm para sfGFP.
-
Expressão de proteínas sem célula usando o mRNA
- Degelo do mRNA preparado na fase 3.5.2 a RT e lugar no gelo.
- Executar etapa 4.1.1 através de passo 4.1.6 como anteriormente especificado para linear ou modelo de DNA do plasmídeo usando tabela 4 para preparar uma mistura de reação alternativa sem célula mestre do mRNA.
5. calibração de reações V. natriegens célula livre com sfGFP
Nota: Esta seção é opcional. A concentração do íon reação sem célula ideal pode variar ligeiramente para cada preparação do extrato bruto com base nas condições utilizadas para lise celular. Considere a execução opcional sem célula reação íon calibração protocolo descrito abaixo, utilizando o sfGFP se o rendimento da reação é significativamente inferior ao esperado (concentrações < 1,0 μg/mL).
- Prepare o Mg2 + e soluções de calibração de íon K+ conforme especificado no quadro 5 em água DI estéril da Mg-glutamato de 100 mM e 2.000 mM K-glutamato estoques preparados na etapa 3.1.1. Coloque gelo até ser necessário soluções de calibração.
-
Seguir o mapa de calibração na tabela 6, pipete 1 μL do glutamato-Mg e 2 μL das soluções de calibração de íon K-glutamato para os poços apropriados em uma placa de 384-PCR.
- A ordem das operações desta etapa é a seguinte: solução de calibração de íon pipeta o Mg-glutamato na parte inferior de cada bem seguido da solução de calibração de íon K-glutamato para o lado do bem sem tocar o líquido já presente nos poços.
- Sele os poços, colocando um adesivo em cima da placa para evitar a evaporação, enquanto se prepara a mistura mestre reação sem célula de calibração. Bata levemente a placa de 384 para misturar as soluções de calibração de K e Mg --glutamato.
Nota: Uma pipeta repetidora é altamente recomendada para concluir esta etapa reproducibly e rapidamente.
- Prepare a mistura de mestre de reação sem célula de calibração conforme especificado na tabela 5 usando o modelo de DNA de plasmídeo T7-pJL1-sfGFP em um tubo de 2 mL. Adicione cada componente na seguinte ordem para a mistura de mestre: mestre mistura de aminoácidos, mistura de mestre solução energia, modelo DNA T7-pJL1-sfGFP, PEG-8000, T7 RNA polimerase e inibidor de RNase. Agite suavemente o tubo para misturar após cada adição do componente.
Nota: Não adicione Mg2 + ou K+ para a calibração de célula livre mistura de mestre. - Remova o adesivo da placa. Cuidadosamente adicionar 7 μL da mistura mestre calibração reação celular-livre para os lados dos poços sem tocar a solução de calibração de íon mista já presente nos poços. Reseal dos poços com o adesivo e bata levemente a placa PCR 384-bem para misturar a mistura sem célula mestre com a solução de calibração de íon.
Nota: Uma pipeta repetidora é altamente recomendada para concluir esta etapa reproducibly e rapidamente. - Brevemente, centrifugar a placa 1.000 x g durante 10 s para piscina qualquer líquido misturado que pode ficar preso nas laterais dos poços. Coloque a placa de 384 em um thermocycler definir a 26 ° C com uma tampa aquecida a 105 ° C.
- Incube as reações sem célula para 3h. Após a incubação, transferir o conteúdo de cada poço a uma placa de ensaio de 384-bem preto com fundo de vidro com uma pipeta multicanal e lê a fluorescência de sfGFP no Ex / Em = 485 nm/528 nm, utilizando um leitor para determinar a combinação de concentração de iões que produz a maior quantidade de proteína.
Representative Results
O protocolo descrito para a produção de proteínas usando V. natriegens sistema de célula livre expressão pode ser executado em dias de 1−2 por um único usuário, a partir da inoculação da cultura para proteína disponível para aplicações a jusante. Preparação de extratos de células bruto e mestre mistura ações compõem uma parcela significativa deste tempo; no entanto, uma vez preparados, em massa a maioria dos reagentes podem ser armazenado a longo prazo (tabela 7) e usado quando necessário, encurtando o tempo necessário para completar o protocolo.
O sistema de expressão descrito é melhor usado com modelo de DNA de plasmídeo ou mRNA gerados por reações in vitro a transcrição. Enquanto o DNA linear também pode ser utilizado como modelo para a produção de proteína, que produz significativamente menor quantidade de proteína. Por exemplo, em condições óptimas reacções a 26 °C, uma reação única 10 μL de célula livre pode produzir 260 > μg/mL de sfGFP em 3 horas usando 0,3 pmol de modelo de DNA de plasmídeo ou um comparável > 125 μg/mL de sfGFP usando 14 pmol de transcrição do mRNA (Figura 5A B). No entanto, 0.3 pmol de DNA linear irá produzir significativamente menos proteína (< 20 μg/mL). Para cada tipo de modelo, a maioria das proteínas será produzida dentro 1−1.5 h; no entanto, é recomendável que a reação é executada por um período mínimo de 3 horas. Concentrações de reação sem célula de sfGFP foram determinadas através de regressão linear usando uma curva padrão de sfGFP purificado, medição de fluorescência no Ex / Em = 485 nm nm/528.
O rendimento da produção de proteínas é significativamente afectado pela concentração de íons de potássio e magnésio (+ de K e Mg2 +, respectivamente). Sob condições otimizadas, verificou-se que o ideal Mg2 + e as concentrações de íons K+ será de 3,5 mM e 80 mM, respectivamente (figura 6A, B). Desvios em relação as concentrações de íon ideal podem resultar em uma diminuição da capacidade para o sistema de célula livre expressão para produzir a proteína com rendimentos apreciáveis. Calibração adicional pode ser necessária se o rendimento da reação é significativamente inferior ao esperado. Um protocolo opcional para a calibração do íon é descrito na seção 5. Isto permite alguma flexibilidade no compensando a variabilidade de extrato bruto de célula decorrentes de condições e equipamentos de lise de célula individual.
Figura 1: uma close-up vista do porta-copo e tubo na plataforma sonication. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: instalação de equipamento Sonication para a preparação da célula bruta extrair. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3: vista para o sedimento após sonication e centrifugação. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4: Flash congelamento dip para armazenamento de extrato. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 5: Resultados da representante por V. natriegens o síntese de proteínas sem célula usando tipos diferentes de modelo. Ensaio de ponto de extremidade (A) de produção de sfGFP usando concentrações equimolar de plasmídeo e modelo linear de DNA (0,3 pmol), bem como concentrações crescentes do mRNA. SfGFP sem célula concentração foi determinada utilizando uma curva padrão de sfGFP purificado mensurada pelo Ex / Em = 485 nm/528 nm após 180 minutos de incubação a 26 ° C, em condições de reação óptima em 10 volumes μL. (B) ensaio cinético de sfGFP produção usando concentrações equimolar de plasmídeo e modelo linear de DNA, bem como concentrações crescentes do mRNA. sfGFP medidas foram feitas a cada 3 minutos em Ex / EM = 485 nm nm/528 mais de 180 minutos de tempo de incubação total em condições de reação óptima em 10 volumes μL. Para o ponto de extremidade e ensaios cinéticos, amostras estavam em branco corrigido utilizando reações sem célula suplementadas com todos os componentes, exceto modelo. A média e desvios-padrão são mostrados (n = 3). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 6: representante resultados para calibração de concentração iónica. (A) V. natriegens sem célula reações foram complementadas com concentrações crescentes de Mg2 + e incubadas a 26 ° C para 180 minutos em 10 reações μL. A concentração total de K+ foi 160 mM para todas as concentrações de Mg2 + . SfGFP sem célula concentração foi determinada utilizando uma curva padrão de sfGFP purificado mensurada pelo Ex / Em = 485 nm nm/528. (B) V. natriegens sem célula reações foram complementadas com concentrações crescentes de K+ e incubadas a 26 ° C para 180 min em 10 reações μL. A concentração total de Mg2 + foi de 3,5 mM para todas as concentrações de K+ . Para ambas as calibrações, amostras estavam em branco corrigido utilizando reações sem célula suplementadas com todos os componentes, exceto modelo. A média e desvios-padrão são mostrados (n = 3). Esta figura foi modificada de Wiegand et al.9. Reimpresso com permissão da Wiegand, D.J., Lee, H.H Ostrov, s., da igreja, G.M., estabelecendo uma célula livre Vibrio natriegens sistema de expressão. Biologia sintética de ACS. 7 (10), 2475−2479 (2018). Copyright 2018 American Chemical Society. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
| Tabela 1 | Preparação de meios de crescimento bacteriano LB-V2 | ||
| Componente de | Quantidade (g) | Concentração final (mM) | Volume final (L) |
| Caldo LB (Miller) | 25 | 1 | |
| NaCl | 11,69 | 200 | |
| MgCl2 | 2.20 | 23.1 | |
| KCl | 0.31 | 4.2 | |
| Tabela 1 | Preparação de S30A lise | ||
| Componente de | Quantidade (g) | Concentração final (mM) | Volume final (L) |
| Solução de tris (pH 8.0) - 1M (mL) * | 25 | 50 | 0,5 |
| Mg-glutamato | 2,72 | 14 | |
| K-glutamato | 6.10 | 60 | |
| Ditiotreitol (DTT) - 1M (mL) * | 1 | 2 | |
Tabela 1: reagentes para a preparação de 1 litro de mídia de crescimento bacteriano LB-V2 e 0,5 L de tampão de lise celular S30A. Clique aqui para baixar este arquivo no Excel.
| Preparação de 10 x energia solução Master Mix | ||||
| Componente de | Concentração de ações (mM) | Concentração final (mM) | Quantidade (µ l) | Volume final (µ l) |
| PH de HEPES-KOH 8 | 1750 | 500 | 1428.57 | 5000 |
| ATP | 100 | 15 | 750,00 | |
| GTP | 100 | 15 | 750,00 | |
| CTP | 100 | 9 | 450.00 | |
| UTP | 100 | 9 | 450.00 | |
| tRNA de Escherichia coli ERM 600 (mg/mL) * | 100 | 2 | 100,00 | |
| Hidrato de coenzima A | 200 | 2.6 | 65,00 | |
| NAD | 200 | 3.3 | 82,50 | |
| Acampamento | 650 | 7.5 | 57.69 | |
| Ácido folínico | 100 | 0.7 | 35,00 | |
| Espermina | 1600 | 10 | 31.25 | |
| 3-PGA | 2000 | 300 | 750,00 | |
| Água desionizada estéril | 49,99 | |||
| Preparação de 4x do aminoácido Master Mix | ||||
| Componente de | Concentração de ações (mM) | Concentração final (mM) | Quantidade (µ l) | Volume final (µ l) |
| ALA | 168 | 8 | 114.3 | 2400 |
| ARG | 168 | 8 | 114.3 | |
| ASN | 168 | 8 | 114.3 | |
| ASP | 168 | 8 | 114.3 | |
| GLN | 168 | 8 | 114.3 | |
| GLU | 168 | 8 | 114.3 | |
| GLY | 168 | 8 | 114.3 | |
| SEU | 168 | 8 | 114.3 | |
| IIE | 168 | 8 | 114.3 | |
| LYS | 168 | 8 | 114.3 | |
| CONHECI | 168 | 8 | 114.3 | |
| PHE | 168 | 8 | 114.3 | |
| PRO | 168 | 8 | 114.3 | |
| SER | 168 | 8 | 114.3 | |
| THR | 168 | 8 | 114.3 | |
| VAL | 168 | 8 | 114.3 | |
| TRP | 168 | 8 | 114.3 | |
| TYR | 168 | 8 | 114.3 | |
| LEU | 140 | 8 | 137,1 | |
| CYS | 168 | 8 | 114.3 | |
| Água desionizada estéril | 91,4 | |||
Tabela 2: Reagentes para a preparação de 5 mL de solução de energia de 10x master mix e 2,4 mL de 4 x mestre mistura ácido aminado. Por favor clique aqui para baixar este arquivo no Excel.
| T7 RNA polimerase em reações de transcrição de Vitro | ||||
| Componente de | Estoque (mM) | Concentração final (mM) | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reações de 50 x quantidade (µ l) |
| 10 x RNAPol reação Buffer | 1.00 | 50 | ||
| ATP | 100 | 0,5 | 0,10 | 5 |
| GTP | 100 | 0,5 | 0,10 | 5 |
| CTP | 100 | 0,5 | 0,10 | 5 |
| UTP | 100 | 0,5 | 0,10 | 5 |
| Molde de ADN (ng / µ l) * | 1000 | 500 | 0,50 | 25 |
| T7 RNA polimerase | 200 | 2.6 | 2,00 | 100 |
| Inibidor de RNase, murino | 200 | 3.3 | 0,50 | 25 |
| Água desionizada estéril | 15.60 | 780 | ||
| Reação Volume (µ l): | 20 | |||
Tabela 3: componentes de transcrição In vitro para a geração de mRNA. Por favor clique aqui para baixar este arquivo no Excel.
| Sem célula reação Master Mix | ||||
| Componente de | Concentração de ações (mM) | Concentração final (mM) | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reações de 50 x quantidade (µ l) |
| Extrato (%) * | 25 | 2,50 | 125,00 | |
| Mg-glutamato | 100 | 3.5 | 0.35 | 17,50 |
| K-glutamato | 2000 | 80 | 0,40 | 20,00 |
| 4 x aminoácido Master Mix | 8.0 | 2 | 2,50 | 125,00 |
| 10 x energia solução Master Mix | 1.00 | 50,00 | ||
| Plasmídeo (ng / µ l) * | 1000 | 500 | 0,50 | 25,00 |
| 50% PEG-8000 (%) * | 50 | 2 | 0,40 | 20,00 |
| T7 RNA polimerase | 1.00 | 50,00 | ||
| Inibidor de RNase, murino | 0,10 | 5,00 | ||
| Água desionizada estéril | 1.25 | 62,50 | ||
| Reação Volume (µ l): | 10 | |||
| Alternativa sem célula reação Master Mix do mRNA | ||||
| Componente de | Concentração de ações (mM) | Concentração final (mM) | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reações de 50 x quantidade (µ l) |
| Extrato (%) * | 25 | 2,50 | 125,00 | |
| Mg-glutamato | 100 | 3.5 | 0.35 | 17,50 |
| K-glutamato | 2000 | 80 | 0,40 | 20,00 |
| 4 x aminoácido Master Mix | 8.0 | 2 | 2,50 | 125,00 |
| 10 x energia solução Master Mix | 1.00 | 50,00 | ||
| do mRNA (ng / µ l) * | 2000 | 4000 | 2,00 | 100,00 |
| 50% PEG-8000 (%) * | 50 | 2 | 0,40 | 20,00 |
| Inibidor de RNase, murino | 0,10 | 5,00 | ||
| Água desionizada estéril | 0.75 | 37.50 | ||
| Reação Volume (µ l): | 10 | |||
Tabela 4: Componentes de otimizado V. natriegens sem célula mestre mistura de reação para o molde do ADN e do mRNA. Por favor clique aqui para baixar este arquivo no Excel.
| Mg 2 + Calibração | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reações de 100 x quantidade (µ l) | Reações de 100 x quantidade (µ l) | |
| Final (mM) | Estoque | 100 mM Mg-Glu | diH 2 0 | 100 mM Mg-Glu | Desionizada H2O |
| 2.5 | 0 | 0,00 | 1.00 | 0 | 100 |
| 3.5 | 1 | 0,10 | 0.90 | 10 | 90 |
| 4.5 | 2 | 0.20 | 0,80 | 20 | 80 |
| 5.5 | 3 | 0,30 | 0.70 | 30 | 70 |
| Reação Volume (µ l): | 10 | ||||
| K + Calibração | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reações de 100 x quantidade (µ l) | Reações de 100 x quantidade (µ l) | |
| Final (mM) | Estoque | 2000 mM K-Glu | diH 2 0 | 2000 mM K-Glu | Desionizada H2O |
| 40 | 30 | 0.15 | 1.85 | 12 | 148 |
| 80 | 70 | 0.35 | 1,65 | 28 | 132 |
| 160 | 150 | 0.75 | 1.25 | 60 | 100 |
| 320 | 310 | 1,55 | 0.45 | 124 | 36 |
| Reação Volume (µ l): | 10 | ||||
| Íon calibração sem célula reação Master Mix | |||||
| Componente de | Concentração de ações (mM) | Concentração final (mM) | Reação de 1 x quantidade (µ l) | Reações de 50 x quantidade (µ l) | |
| Extrato (%) * | 25 | 2,50 | 125,00 | ||
| Mg-glutamato | Variável | Variável | 1.00 | 50,00 | |
| K-glutamato | Variável | Variável | 2,00 | 100,00 | |
| 4 x aminoácido Master Mix | 8.0 | 2 | 2,50 | 125,00 | |
| 10 x energia solução Master Mix | 1.00 | 50,00 | |||
| Plasmídeo (ng / µ l) * | 1000 | 250 | 0.25 | 12,50 | |
| 50% PEG-8000 (%) * | 50 | 2 | 0,40 | 20,00 | |
| T7 RNA polimerase | 1.00 | 50,00 | |||
| Inibidor de RNase, murino | 0,10 | 5,00 | |||
| Água desionizada estéril | 0,00 | 0,00 | |||
| Reação Volume (µ l): | 10 | ||||
Tabela 5: Íon concentração calibração mestre misturas. Por favor clique aqui para baixar este arquivo no Excel.
| Mapa de calibração CF Ion | 40 mM K+ | 80 mM K+ | 160 mM K+ | 320 mM K+ | |||||||||
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | ||
| 2,5 mM Mg2 + | A | ||||||||||||
| 3.5 mM Mg2 + | B | ||||||||||||
| 4.5 mM Mg2 + | C | ||||||||||||
| 5.5 mM Mg2 + | D | ||||||||||||
Tabela 6: Mapa de calibração de Ion. Por favor clique aqui para baixar este arquivo no Excel.
| Condições de armazenamento e vida de prateleira dos componentes CF | ||
| Componente de | Local de armazenamento | Vida de prateleira |
| Mídia de crescimento estéril LB-V2 | 4 ° C | 3-6 meses |
| V. natriegens bruto Cell Extraia | -80 ° C | 1-3 semanas |
| 100 mM Mg-glutamato | Temperatura ambiente | 6 meses |
| 2000 mM K-glutamato | Temperatura ambiente | 6 meses |
| 50% PEG-8000 | Temperatura ambiente | 6 meses |
| 10 x energia solução Master Mix | -80 ° C | 3-6 meses |
| 4 x aminoácido Master Mix | -80 ° C | 3-6 meses |
| Modelo de DNA do plasmídeo/Linear | -20 ° C | 6-12 meses |
| mRNA modelo | -80 ° C | 3-4 semanas |
Tabela 7: Condições de armazenamento sem célula e vida de prateleira. Por favor clique aqui para baixar este arquivo no Excel.
Discussion
Este protocolo foi otimizado para o selvagem-tipo V. natriegens e meios de crescimento bacteriano compostos por LB suplementado com sais V2 (Tabela de materiais). Outras cepas de V. natriegens podem ser cultivadas da mesma forma para gerar extratos bruto célula para célula livre reações; no entanto, seu uso requer otimização adicional do presente protocolo. Além disso, este sistema de expressão de proteínas sem célula foi otimizado usando ácido 3-phosphoglyceric (3-PGA) como fonte de regeneração de energia primária. Outras fontes de regeneração de energia podem ser utilizados; no entanto, a otimização dos reagentes e calibração provavelmente será necessária para obter alto rendimento proteína expressão10,11.
Especial atenção aos vários passos críticos neste protocolo irá garantir produtividade máxima extrato de alto rendimento sem célula de produção de proteína. Primeiro, extrato bruto celular deve ser preparado de V. natriegens célula culturas colhidas numa fase meados-exponencial de crescimento; rendimento de proteína é máximo quando as culturas alcançam uma OD600 = 1,0 ± 0,2. Enquanto a produção de proteína sem célula é possível a partir de células colhidas em uma variedade de densidades ópticas, anteriormente encontramos que as células colhidas em um estado exponencial de crescimento produzem significativamente mais proteína9. Os efeitos observados no desempenho do extrato bruto de célula de densidade óptica são consistentes com aquelas relatadas para outros sistemas de expressão livre de células derivados de células cultivadas em condições de cultura do lote1. Porque V. natriegens cresce a uma taxa rápida, é fundamental acompanhar de perto as densidades ópticas culturas. Em geral, espera-se que V. natriegens culturas reproducibly devem alcançar uma OD600 de 1.0 dentro 1−1.5 h usando este protocolo; no entanto, as condições de crescimento individual como o uso de confundiam versus não-perplexo frascos, que afeta a aeração, ou air contra incubação de água, que afeta a taxa e a estabilidade da temperatura de incubação, podem alterar o tempo de crescimento. Além disso, geralmente recomenda-se cultura de pelo menos 250 mL de V. natriegens num balão de 1L perplexo para garantir um pellet de células grandes na colheita de fácil manipulação e transferência. Isso melhora consideravelmente o sucesso da preparação do extrato bruto de celular, bem como aumenta o volume total do extrato produzido a partir de uma pelota. Ao usar a preparação de escala menor, as condições de cultura e reagentes podem ser ajustados adequadamente. Para a fermentação em larga escala, ainda mais otimização das condições de cultura pode ser necessária. Finalmente, para garantir o rendimento de alta proteína, é fundamental que a célula pelotas são processadas imediatamente após a colheita, ou no prazo de 1−2 dias de armazenamento a-80 ° C.
A Lise adequada do centrifugado pelo sonication pulso é crítico para o sucesso da expressão da proteína sem célula e muitas vezes é o aspecto mais difícil do presente protocolo para novos usuários. Normalmente, uma pelota bem lisada produzirá um volume significativo de extrato líquido livre de detritos. O extrato deve ser ligeiramente viscoso, mas pode facilmente ser pipetado quando alíquotas em armazenamento tubos antes de flash congelamento em nitrogênio líquido. Figura 3 mostra uma representação de um pellet bem lisado (Figura 3A) em comparação com uma pelota mal lisada (Figura 3B) após a etapa de centrifugação de lise de post. Uma indicação importante de lise celular completa é uma célula bruta extrair proteína total concentração > 20 mg / mL, conforme determinado por um ensaio de proteínas totais (etapa 2.13). Sonication excesso ou aquecimento excessivo do extrato bruto de célula irá danificar a maquinaria celular, que não pode ser determinada sem executar uma reação celular livre. Assim, é altamente benéfico testar a eficiência do extrato com uma reação de controle antes de dedicar um tempo significativo e esforço para aplicações de expressão de proteínas a jusante. Enquanto otimização adicional pode ser necessária para equipamentos diferentes sonication, as etapas de pulso sonication descritas foram altamente reprodutíveis em nossas mãos.
O uso do modelo de DNA linear derivado do PCR amplificação, síntese de enzima de restrição ou síntese comercial gene pode aumentar significativamente a capacidade para a produção de proteína de alta produtividade e rápido na célula livre expressão sistemas24. Enquanto a produção de proteína de modelo linear amplificada de PCR tem sido demonstrada, o rendimento destas reações são aproximadamente 13.5-fold inferior em comparação com reações utilizando plasmídeo modelo ADN às relações equimolar9. Isto é principalmente devido à instabilidade do modelo de DNA linear que é provável degradado por nucleases endógenas presentes no V. natriegens extrato bruto de célula. Enquanto do fago lambda que proteína GamS foi anteriormente usado para proteger o DNA Linear modelo de24,25, verificou-se ser incompatível com V. natriegens extrai9. Além disso, enquanto aumentando a concentração de modelo linear de DNA pode permitir um maior rendimento de proteína, sua rápida degradação no extrato bruto celular ainda será um grande problema.
Uma solução para superar a degradação de modelo de DNA linear pode ser suplementar sem célula reações com gerados a partir de in vitro a transcrição de DNA linear do mRNA. Por outro lado, o uso de um inibidor de RNase oferece proteção significativa contra a degradação de transcrição do mRNA e proteína apreciável rendimentos podem ser obtidos no formato sem célula reação 10 μL (Figura 5AB). Clonagem de DNA linear em um modelo circular através da ligadura TA, clonagem de TOPO, montagem de Golden Gate ou outros métodos de recombinação podem ser utilizados para contornar a degradação de modelo. No entanto, novas abordagens para a inibição da atividade da nuclease será necessárias eficiente na expressão de proteínas utilizando modelo linear de DNA.
Até à data, foram propostas várias abordagens diferentes para preparação do extrato bruto de proteína celular livre expressão9,10,11,26. No desenvolvimento deste protocolo, procuramos maximizar a acessibilidade dos utilizadores, reduzir o custo geral e minimizar etapas demoradas. Por exemplo, um rendimento de alta proteína é conseguido usando um processo de centrifugação-sonication duas etapas simples e não requer Homogeneizadores de célula, passos longos diálise ou reação de escoamento. É simples para executar em um curto período de tempo e não exige elevado nível de conhecimentos de laboratório. Assim, pode ajudar a facilitar a célula-livre expressão como um padrão para translação pesquisa acadêmica e projeto de processo industrial.
Este protocolo expande o toolkit, disponível para a investigação e a utilidade do V. natriegens, um organismo não-modelo com propriedades biológicas únicas. Maior rendimento de proteína pode ser conseguido empregando reações sem célula semi ou totalmente-contínua, para permitir a regeneração de energia, segundo de aminoácidos e a remoção de resíduos de produtos3,5,27. Além disso, a engenharia do selvagem-tipo V. natriegens para produzir tensões de DNAse - ou RNAse-deficiente, remoção de vias metabólicas deletérias e concorrentes e expressão de tRNAs adicional podem aumentar consideravelmente a produção de proteínas em Este sistema28,,29. Como podemos desvendar a biologia subjacente a seu rápido crescimento, desenvolvimento de sistemas V. natriegens célula sem acelerar bioproduction recursos e permitir a expressão robusta de peptídeos terapêuticos e pequenas moléculas sintéticas materiais.
Disclosures
DJW, n, e GMC ter arquivado uma patente relacionada com este trabalho.
Acknowledgments
Este trabalho foi financiado pelo Instituto Nacional de ciências médicas da General 1U01GM110714-01 e departamento de energia DE-FG02-02ER63445. Os autores gostaria de agradecer o Dr. Richard Kohman, Dr. Jenny Tam e Dr. Edgar Goluch para conselhos úteis sobre construir a seção de protocolo deste manuscrito.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 15 mL Tubes | Corning | 352196 | |
| 2 mL Tubes | Eppendorf | 22363352 | |
| 384-well Black Assay Plates | Corning | 3544 | |
| 384-well PCR Plates | Eppendorf | 951020702 | |
| 50 mL Tubes | Corning | 352070 | |
| 96-well PCR Plates | Eppendorf | 30129300 | |
| Adenosine 3',5'-cyclic monophosphate sodium salt monohydrate | Sigma | A6885 | |
| Adenosine 5'-triphosphate - 100 mM | NEB | N0450L | |
| Applied Biosystems Veriti 384-well Thermocycler | ThermoFisher | 4388444 | |
| Assay Plate Adhesives | BioRad | MSB1001 | |
| β-Nicotinamide adenine dinucleotide hydrate (NAD) | Sigma/Roche | 10127965001 | |
| Coenzyme A hydrate | Sigma | C4283 | |
| Cytidine 5'-triphosphate - 100 mM | NEB | N0450L | |
| D-(-)-3-Phosphoglyceric acid disodium salt (3-PGA) | Sigma | P8877 | |
| Dewar Flask - 4L | ThermoScientific | 10-194-100C | |
| DL-Dithiothreitol solution - 1 M | Sigma | 42816 | |
| Folinic acid calcium salt hydrate | Sigma | 47612 | |
| Glacial Acetic Acid | Sigma | A6283 | |
| Guanosine 5'-triphosphate - 100 mM | NEB | N0450L | |
| HEPES | Sigma | H3375 | |
| L-Glutamic acid hemimagnesium salt tetrahydrate | Sigma | 49605 | |
| L-Glutamic acid potassium salt monohydrate | Sigma | G1149 | |
| LB Broth (Miller) | Sigma | L3522 | |
| Magnesium chloride (MgCl2) | Sigma | M8266 | |
| Plasmid pJL1-sfGFP | Addgene | 69496 | |
| Plasmid Plus Maxi kit | Qiagen | 12963 | |
| Poly(ethylene glycol) (PEG)-8000 | Sigma | 89510 | |
| Potassium chloride (KCl) | Sigma | P9333 | |
| Potassium hydroxide Pellets | Sigma/Roche | 1050121000 | |
| Q125 Sonicator and CL-18 probe with a ?-inch tip | Qsonica | 4422 | |
| RNA Clean and Concentrator Kit | Zymo | R1013 | |
| RNase Inhibitor, Murine | NEB | M0314 | |
| RTS Amino Acid Sampler | Biotechrabbit | BR1401801 | |
| Sodium chloride (NaCl) | Sigma | S7653 | |
| Spermidine | Sigma | S0266 | |
| T7 RNA Polymerase | NEB | M0251 | |
| Tris Solution (pH 8.0) - 1 M | Invitrogen | AM9856 | |
| tRNA from E. coli MRE 600 | Sigma/Roche | 10109541001 | |
| Uridine 5'-triphosphate - 100 mM | NEB | N0450L | |
| Vibrio natriegens (Wild-type) Lyophilized Stock | ATCC | 14048 |
References
- Kwon, Y. C., Jewett, M. C. High-throughput preparation methods of crude extract for robust cell-free protein synthesis. Scientific Reports. 5, 8663 (2015).
- Schoborg, J. A., et al. A cell-free platform for rapid synthesis and testing of active oligosaccharyltransferases. Biotechnology and Bioengineering. 115 (3), 739-750 (2018).
- Caschera, F., Noireaux, V. Synthesis of 2.3 mg/ml of protein with an all Escherichia coli cell-free transcription-translation system. Biochimie. 99, 162-168 (2014).
- Henrich, E., Hein, C., Dötsch, V., Bernhard, F. Membrane protein production in Escherichia coli cell-free lysates. FEBS Letters. 589 (15), 1713-1722 (2015).
- Li, J., Wang, H., Kwon, Y. C. Establishing a high yielding streptomyces‐based cell‐free protein synthesis system. Biotechnology and Bioengineering. 114 (6), 1343-1353 (2017).
- Moore, S. J., Lai, H. E., Needham, H., Polizzi, K. M., Freemont, P. S. Streptomyces venezuelae TX-TL--a next generation cell-free synthetic biology tool. Biotechnology Journal. 12 (4), 1600678 (2017).
- Wang, H., Li, J., Jewett, M. C. Development of a Pseudomonas putida cell-free protein synthesis platform for rapid screening of gene regulatory elements. Synthetic Biology. 3 (1), ysy003 (2018).
- Kelwick, R., Webb, A. J., MacDonald, J. T., Freemont, P. S. Development of a Bacillus subtilis cell-free transcription-translation system for prototyping regulatory elements. Metabolic Engineering. 38, 370-381 (2016).
- Wiegand, D. J., Lee, H. H., Ostrov, N., Church, G. M. Establishing a Cell-Free Vibrio natriegens Expression System. ACS Synthetic Biology. 7 (10), 2475-2479 (2018).
- Des Soye, B. J., Davidson, S. R., Weinstock, M. T., Gibson, D. G., Jewett, M. C. Establishing a High-Yielding Cell-Free Protein Synthesis Platform Derived from Vibrio natriegens. ACS Synthetic Biology. 7 (9), 2245-2255 (2018).
- Failmezger, J., Scholz, S., Blombach, B., Siemann-Herzberg, M. Cell-Free Protein Synthesis From Fast-Growing Vibrio natriegens. Frontiers in Microbiology. 9, 1146 (2018).
- Moore, S. J., MacDonald, J. T., Wienecke, S. Rapid acquisition and model-based analysis of cell-free transcription-translation reactions from nonmodel bacteria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (19), E4340-E4349 (2018).
- Eagon, R. G. Pseudomonas natriegens, a marine bacterium with a generation time of less than 10 minutes. Journal of Bacteriology. 83, 736-737 (1962).
- Weinstock, M. T., Hesek, E. D., Wilson, C. M., Gibson, D. G. Vibrio natriegens as a fast-growing host for molecular biology. Nature Methods. 13 (10), 849-851 (2016).
- Lee, H. H., et al. Vibrio natriegens, a new genomic powerhouse. bioRxiv. , 058487 (2016).
- Lee, H. H., Ostrov, N., Gold, M. A., Church, G. M. Recombineering in Vibrio natriegens. bioRxiv. , 130088 (2017).
- Schleicher, L., et al. Vibrio natriegens as Host for Expression of Multisubunit Membrane Protein Complexes. Frontiers in Microbiology. 9, 2537 (2018).
- Fernández-Llamosas, H., Castro, L., Blázquez, M. L., Díaz, E., Carmona, M. Speeding up bioproduction of selenium nanoparticles by using Vibrio natriegens as microbial factory. Scientific Reports. 7 (1), 16046 (2017).
- Aiyar, S. E., Gaal, T., Gourse, R. L. rRNA promoter activity in the fast-growing bacterium Vibrio natriegens. Journal of Bacteriology. 184 (5), 1349-1358 (2002).
- Hoffart, E., et al. High substrate uptake rates empower Vibrio natriegens as production host for industrial biotechnology. Applied and Environmental Microbiology. 83, e01614-e01617 (2017).
- Long, C. P., Gonzalez, J. E., Cipolla, R. M., Antoniewicz, M. R. Metabolism of the fast-growing bacterium Vibrio natriegens elucidated by 13C metabolic flux analysis. Metabolic Engineering. 44, 191-197 (2017).
- Shin, J., Noireaux, V. Efficient cell-free expression with the endogenous E. Coli RNA polymerase and sigma factor 70. Journal of Biological Engineering. 4, 8 (2010).
- Sitaraman, K., et al. A novel cell-free protein synthesis system. Journal of Biotechnology. 110 (3), 257-263 (2004).
- Sun, Z. Z., Yeung, E., Hayes, C. A., Noireaux, V., Murray, R. M. Linear DNA for rapid prototyping of synthetic biological circuits in an Escherichia coli based TX-TL cell-free system. ACS Synthetic Biology. 3 (6), 387-397 (2014).
- Seki, E., Matsuda, N., Yokoyama, S., Kigawa, T. Cell-free protein synthesis system from Escherichia coli cells cultured at decreased temperatures improves productivity by decreasing DNA template degradation. Analytical Biochemistry. 377 (2), 156-161 (2008).
- Failmezger, J., Rauter, M., Nitschel, R., Kraml, M., Siemann-Herzberg, M. Cell-free protein synthesis from non-growing, stressed Escherichia coli. Scientific Reports. 7 (1), 16524 (2017).
- Shirokov, V. A., Simonenko, P. N., Biryukov, S. V., Spirin, A. S. Continuous-Flow and Continuous-Exchange Cell-Free Translation Systems and Reactors. Cell-Free Translation Systems. , 91-107 (2002).
- Michel-Reydellet, N., Woodrow, K., Swartz, J. Increasing PCR fragment stability and protein yields in a cell-free system with genetically modified Escherichia coli extracts. Journal of Molecular Microbiology and Biotechnology. 9 (1), 26-34 (2005).
- Swartz, J. R. Expanding biological applications using cell-free metabolic engineering: An overview. Metabolic Engineering. 50, 156-172 (2018).
