Summary
Nós descrevemos o uso do ultra-som de alta freqüência com imagem latente do contraste como um método para medir o volume da bexiga, a espessura de parede da bexiga, a velocidade da urina, o volume vago, a duração do vácuo, e o diâmetro uretral. Esta estratégia pode ser usada para avaliar a Disfunção miccional e a eficácia do tratamento em vários modelos de camundongo de disfunção do trato urinário inferior (LUTD).
Abstract
A incidência da hiperplasia prostática benigna clínica (BPH) e de uns mais baixos sintomas do aparelho urinário (LUTS) está aumentando devido à população do envelhecimento, tendo por resultado uma carga econômica e da qualidade de vida significativa. Modelos transgênicos e outros mouse foram desenvolvidos para recriar vários aspectos dessa doença multifatorial; Entretanto, os métodos para quantificar exatamente a deficiência orgânica urinária e a eficácia de opções terapêuticas novas faltam. Aqui, nós descrevemos um método que possa ser usado para medir o volume da bexiga e a espessura de parede do detrusor, a velocidade urinária, o volume vago e a duração do vácuo, e o diâmetro uretral. Isso permitiria a avaliação da progressão da doença e a eficácia do tratamento ao longo do tempo. Os camundongos foram anestesiados com isoflurano, e a bexiga foi visualizada por ultrassonografia. Para imagens sem contraste, uma imagem 3D foi tomada da bexiga para calcular o volume e avaliar a forma; a espessura da parede da bexiga foi medida a partir desta imagem. Para a imagem latente contraste-realçada, um cateter foi coloc através da abóbada da bexiga usando uma agulha de 27 medidores conectada a uma seringa pela tubulação PE50. Um bolus de 0,5 ml do contraste foi infundido na bexiga até que um evento do micção ocorresse. O diâmetro uretral foi determinado no ponto da janela de amostra da velocidade de Doppler durante o primeiro evento miccional. A velocidade foi medida para cada evento subsequente produzindo uma vazão. Em conclusão, o ultra-som de alta freqüência provou ser um método eficaz para avaliar a bexiga e as medidas uretral durante a função urinária nos ratos. Esta técnica pode ser útil na avaliação de novas terapias para BPH/LUTS em um ambiente experimental.
Introduction
A hiperplasia prostática benigna (BPH) é uma doença que se desenvolve em homens à medida que envelhecem e afeta quase 90% dos homens com mais de 80 anos de idade1,2. Embora o desenvolvimento de BPH esteja geralmente associado ao envelhecimento, outros fatores, incluindo obesidade e síndrome metabólica, podem levar à BPH em homens relativamente mais jovens3,4. Muitos homens com BPH desenvolvem sintomas do trato urinário inferiores (LUTS) que diminuem significativamente sua qualidade de vida, e algumas complicações de experiência que podem incluir sangramento, infecção, obstrução da saída da bexiga (BOO), pedras na bexiga e insuficiência renal. O custo do tratamento para BPH excede $4000000000 anualmente5,6,7. O diagnóstico de LUTS causada pela BPH geralmente depende do uso do escore do índice de sintomas da AUA (AUASI), da urofluxometria e da avaliação do tamanho da próstata8. A etiologia da BPH/LUTS é complexa e multifatorial, e o desenvolvimento e progressão da doença tem sido associado à hiperplasia prostática (proliferação da próstata), contratilidade do músculo liso e fibrose. Os tratamentos atuais incluem o uso de bloqueadores α-adrenérgicos para regular o tônus muscular liso dentro da bexiga e da próstata para aliviar os inibidores de LUTS e/ou 5α-redutase para diminuir o metabolismo androgênico e diminuir o tamanho da próstata. Melhores modelos de doença, murino e outros, para permitir o estudo exato dos efeitos de fatores causais e terapêuticos variados neste processo de doença ao longo do tempo é altamente desejável9.
Os modelos de roedores têm sido amplamente utilizados para estudar Urodinâmica; no entanto, a maioria dos estudos está focada na micção feminina e na doença10. A fim examinar inteiramente todos os aspectos do LUTS masculino, os modelos do roedor foram desenvolvidos e usados para estudar aspectos diferentes de BPH que incluem mudanças na proliferação celular, na função do músculo liso, no depósito do colagénio, e na inflamação11, 12 anos de , 13 anos de , 14. Entretanto, o roedor e a anatomia humana da próstata diferem. Quando a próstata humana for compacta e encerrada por uma camada fibromuscular condensada, a próstata do roedor é lobular; e estas diferenças complicam comparações diretas da progressão da doença e da eficácia do tratamento. Além disso, os LUTS são difíceis de avaliar em camundongos, uma vez que não é possível medir diretamente o incômodo. Em vez disso, os métodos atuais para estudar a doença correlacionam características histológicas com características fisiológicas (i.e., volume da bexiga e espessura da parede com uroflowmetry, ensaios de spot void, e dados de ponto final da cistometria) que comparam o nível de urina disfunção entre o modelo de BPH e os animais de controle12, 15,16,17,18. As características fisiológicas são freqüentemente avaliadas como desfechos de necropsia pós-morte, e há uma incapacidade dentro do mesmo animal para observar a BOO ao longo do tempo. Recentemente, nós identificamos uma subdivisão da uretra pélvica (a uretra prostática) onde os implantes de hormônio exógeno causam um estreitamento baseado em avaliações de necropsia pós-morte12. Os métodos atuais não permitem a avaliação direta, in vivo, do estreitamento uretral durante a micção.
A ultrassonografia é uma técnica de diagnóstico e avaliação não invasiva que tem sido usada com sucesso em outros modelos de doenças. É utilizado para quantificar o volume de órgãos e avaliar o fluxo vascular19,20,21. O ultrassom também é usado para visualizar e orientar as microinjeções, permitindo injeções direcionadas de células-tronco ou outras drogas, e avaliar a função cardíaca sistólica e diastólica.
Este protocolo descreve o uso do ultra-som de alta freqüência para avaliar a mais baixa anatomia do aparelho urinário e para avaliar a fisiologia urinária em ratos anestesiados. Nós descrevemos o uso do ultra-som para medir o volume da bexiga e a espessura de parede. Nós igualmente descrevemos o uso do ultra-som contrastar-realçado para medir a velocidade da urina, o volume da urina, a duração do vácuo, e o diâmetro da uretra. O uso do ultra-som fornece uma compreensão mais detalhada do aparelho urinário mais baixo in vivo, determina como a doença altera a função de anulação normal, e dá-nos as ferramentas para avaliar melhor a eficácia de novas opções terapêuticas. Atualmente, o protocolo de imagens sem contraste é não-terminal, enquanto o protocolo de imagem com contraste atual é um procedimento terminal.
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Protocol
Os procedimentos envolvendo os sujeitos animais foram aprovados pelo Comitê institucional de cuidados e uso de animais (IACUC) da Universidade de Wisconsin – Madison.
1. preparação animal
- Coloque um mouse masculino de 24 meses, C57Bl6/J em uma câmara pré-carregada com 3-5% de isoflurano até que o reflexo de endireitando seja perdido e a taxa de respiração diminua.
- Se necessário, use tosquiadeiras para raspar o cabelo abdominal do animal para a cirurgia e/ou a imagem latente. Retire todo o cabelo restante usando um creme depilatório.
- Coloque o mouse em uma posição supina em um cone de nariz com isoflurano 2% em uma plataforma aquecida para manter a anestesia. Confirme a profundidade da anestesia por perda de movimento do animal em resposta a um reflexo do pedal-retirada (Figura 1B).
2. ultrassom set-up
- Conecte uma sonda MV707 com frequência central de 30 MHz à porta ativa, com a predefinição de aplicação em "imagem abdominal" (Figura 1a).
- Posicione a sonda de ultrassom paralela ao eixo longo da bexiga (Figura 1C).
- Imagens de eixo longo e curto da bexiga, da próstata e da uretra são feitas em modo B (Figura 1D).
- Use o "XY" micro-manipulators para mover o mouse.
3. protocolo de imagem sem contraste
- Meça a espessura da parede da bexiga usando a ferramenta linear da medida da distância e traçando a borda exterior à borda interna da aquisição do borne da b-modalidade da parede da bexiga.
- Meça o volume da bexiga 3D com a ferramenta volumétrica na aquisição do modo 3D traçando o interior das paredes da bexiga para criar um contorno. Vários contornos são então gerados através da espessura da bexiga para calcular o volume.
4. ressuspensão/ativação do contraste do microbubble
- Ative o agente de contraste (por exemplo, DEFINITY) agitando no misturador do Vortex para 45 s para encapsular as microbolhas na solução. Esta etapa é crítica para o realce de contraste ideal.
5. inserção do cateter
- Com o rato anestesiado e gravado na plataforma aquecida, exponha a bexiga com uma incisão na linha média usando uma tesoura reta afiada/sem corte através da pele e da parede abdominal.
- Insira uma agulha de calibre 27 conectada a uma seringa por tubos flexíveis de polietileno (PE 50) na bexiga. Pré-encha a tubagem com soro fisiológico para garantir que não sejam injetadas bolhas de ar na bexiga.
6. contraste-Enhanced Imaging Protocol
- Para confirmar a colocação da agulha, incutir 10 μl do soro fisiológico na bexiga ao ser observado através do ultra-som.
- Substitua a seringa salina por uma seringa que contenha contraste para melhorar a visualização das paredes uretral e os acontecimentos MICCIONAIS, porque a uretra é normalmente recolhida. Uma vez que uma visão completa do eixo longo da uretra é obtida e uma imagem salva, gire a sonda 90 ° para obter uma visão de eixo curto e uma imagem de modo M.
- Incuficar um bolus de microbolhas em 0,5 mL por 3 s na bexiga até que ocorra um evento de micção.
- Durante o primeiro evento de anulação, meça o diâmetro uretral no ponto da janela da amostra da velocidade de Doppler usando a ferramenta linear da distância e medindo a borda à borda.
- Com a uretra corretamente localizada, o ângulo da sonda em relação à uretra para se tornar mais paralela ao fluxo de urina.
- Incuser um segundo bolus de microbolhas na bexiga, e medir a velocidade do evento usando a ferramenta integral de tempo de velocidade (VTI).
- Após a coleta de dados, eutanizar o mouse com luxação cervical.
7. cálculo e análise de dados
- Selecione a ferramenta VTI para medir a velocidade traçando as imagens gravadas.
- Meça o diâmetro da uretra do modo B ou da imagem do modo M usando a borda principal à Convenção da borda principal.
- Calcule a área de seção transversal (CSA) usando a seguinte fórmula (CSA) usando as medições de imagem obtidas acima.
- Calcule o volume vazio usando o CSA da uretra e multiplicando-o pela área o traço Doppler (tempo de velocidade integral) (CSA x VTI = volume).
- Calcule o volume de urina anulado real assumindo um grama por centímetro cúbico densidade.
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Representative Results
O ultra-som pode ser usado com ou sem realce do contraste dependendo do projeto experimental e da medida do valor-limite. Camundongos são anestesiados com isoflurano e raspado e todos os vestígios de pêlos removidos com um creme depilatório. Os animais anestesiados são colocados em uma plataforma aquecida com a sonda de ultrassom posicionada ao longo do longo eixo da bexiga (Figura 1).
A Figura 2 mostra imagens de ultrassonografia representativas de uma bexiga de camundongo adquirida sem agente de contraste. A parede da bexiga é hyperechoic (branco), e a espessura de parede da bexiga é medida usando um pacote da medida do software. Uma projeção superficial da bexiga pode ser processada para determinar o volume da bexiga, a espessura da parede e o volume da parede (tabela 1).
Para a bexiga aumentada contraste e a mais baixa imagem latente do aparelho urinário, um cateter deve ser introduzido na bexiga e nas microbolhas injetadas. É importante ativar as microbolhas por protocolo do fabricante para imagens ideais. A Figura 3 mostra uma imagem representativa de uma bexiga cheia de microbolhas. A bexiga é hiperecoica (aparece branca na imagem). Um estouro ultra-sônico da baixa freqüência destrói as bolhas e a bexiga torna-se transientemente hypoechoic (aparece preto), antes da reforma das bolhas, confirmando esta estrutura como a bexiga. Durante o pulso da destruição, a potência de transmissão vai a 100% e a freqüência de transmissão cai a 10 megahertz. Um bolus de microbolhas (0,5 mL por 3 s) desencadeia um evento miccional e torna possível visualizar a uretra. A uretra é confirmada pela aplicação de um estouro ultra-sônico de baixa frequência durante o evento de micção e observando a destruição e a reformação de microbolhas. Várias medições podem ser feitas durante o evento de micção. O diâmetro do lúmen uretral pode ser adquirido pré e pós-micção, juntamente com a velocidade de fluxo da urina passando por aquela região da uretra e vazão total (Figura 4). Usando a imagem latente do contraste, as medidas foram feitas através do comprimento inteiro da uretra (tabela 2). A partir dessas medições, são feitos novos cálculos para examinar o fluxo urinário e a complacência vesical (tabela 3).
Figura 1 . Configuração de ultrassom. (A) configuração geral de imagem. (B) posicionamento do mouse na plataforma. (C) a bexiga é expor e cateterizada com a ponta de prova do ultra-som alinhada para a imagem latente da bexiga da linha central longa. (D) o gel e a ponta de prova do ultra-som coloc na bexiga exposta, cateterizada para a linha central longa e curta para a imagem latente. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2 . Imagem latente do não-contraste da bexiga do rato. (A) imagem da bexiga do rato sem microbolhas. (B) medidas da espessura da parede da bexiga da imagem da bexiga do modo B. (C) reconstrução 3D da bexiga do rato. (D) área de superfície e forma extrapoladas a partir da imagem 3D para posterior análise. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3 . Imagem latente contrastar-aumentada da bexiga e da uretra do rato. (A) bexiga cheia com microbolhas. (B) bexiga cheia com microbolhas após o evento da destruição. (C) uretra do rato com microbolhas. (D) uretra do rato com microbolhas após o evento da destruição. Uretra descrita em vermelho. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4 . Medidas tomadas da uretra do rato. (A) diâmetros do lúmen uretral medidos durante um evento urinário. (B) velocidade de fluxo urinário através da uretra peniana durante a micção. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
| Julgamento | Volume da bexiga (mm3) | Espessura da parede da bexiga (milímetro) | Volume da parede da bexiga (milímetro3) |
| 164 | 47,44 | 0,82 | 12,14 |
| 166 | 87,54 | 0,83 | 29,84 |
| 167 | 100,94 | 0,58 | 51,53 |
| 163 | 152,12 | 0,7 | 74,61 |
| 165 | 116,39 | 0,61 | 59,28 |
Tabela 1. Medidas não invasoras do ultra-som da bexiga. Volume da bexiga e espessura da parede da bexiga medidos pelo ultra-som.
| Tipo de medição | Imagem necessária | Localização | Medição |
| Volume da bexiga (mm3) | Modo 3D da bexiga | Bexiga | 335 |
| Espessura da parede da bexiga (milímetro) | Modo B da bexiga | Distal ao pescoço da bexiga Proximal ao pescoço da bexiga |
0,25 0,23 |
| Diâmetro da uretra (milímetro) * | Uretra B-Mode | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
0,83 0,33 0,5 0,25 |
| Tempo de evento urinário (MS) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
3960 3740 3530 4490 |
| Tempo de aceleração (MS) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
580 440 240 180 |
| Aceleração (mm/s2) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
1218, 8 3685,76 3054,79 11031,4 |
| Tempo de velocidade integral (cm) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
184,2 490,48 157,55 676,93 |
| Velocidade média (mm/s) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
494, 9 1256,82 467, 4 1565 |
| Velocidade de pico (mm/s) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
780,74 1655,85 820,97 2190,94 |
| Gradiente médio (mmHg) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
0,98 6,32 0,87 9,8 |
| Gradiente de pico (mmHg) * | Modalidade de urethra picowatt | Pescoço da bexiga Uretra prostática Uretra membranosa Uretra peniana |
2,44 10,97 2,7 19,2 |
| * Medições capturadas durante o evento urinário |
Tabela 2. Medidas do ultra-som da bexiga e da uretra. Medidas da bexiga e da uretra feitas pelo ultra-som durante os vazios urinários.
| Tipo de cálculo | Fórmula |
| Área de secção transversal (mm2) | CSA = πr2 |
| Vazão (mm3/s) | Vazão = CSA x velocidade média |
| Volume de vácuo estimado (mL) | V = (taxa de fluxo/1000) x (tempo do evento em segundos) |
| Estiramento volumétrico | Stretch = (Vapós-vantes)/vantes |
Tabela 3. Cálculos usando medições de ultra-som. Cálculos e fórmulas aplicáveis às medições ultrassonográficas para avaliar a função vesical e o fluxo urinário.
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Discussion
As técnicas atuais para avaliar o trato urinário inferior dos roedores são limitadas pela sua capacidade de correlacionar diretamente as alterações na fisiologia miccional com alterações na histologia prostática conseqüente à progressão da doença. Ensaios de spot void e urofluxometria podem ser usados para avaliar eventos de micção espontânea em roedores, e essas técnicas podem ser utilizadas para avaliar mudanças ao longo de um período de15,16,17. No entanto, para ambas as técnicas, a plenitude da bexiga não pode ser avaliada antes do início do teste. Adicionalmente, alterações na micção podem ocorrer devido ao comportamento em vez de um resultado direto da progressão da doença, dificultando a determinação do impacto da doença na micção. A cistometria, outra técnica de avaliação da disfunção vesical em roedores, pode proporcionar uma avaliação in vivo da função vesical16. No entanto, o efeito dinâmico da próstata roedor sobre a função miccional não é claro. Estudos prévios documentaram alterações histológicas uretral do camundongo em camundongos associados à função miccional alterada12. No entanto, esses estudos só podem olhar para um ponto de tempo discreto, e a bexiga, a próstata e a anatomia uretral não são avaliadas ao mesmo tempo que os testes funcionais. Outros métodos de avaliação de alterações dentro da bexiga (ou seja, massa, volume) ocorrem no momento da eutanásia11,12, tornando-se impossível observar a evolução de um processo de doença ao longo do tempo. Porque há o risco de micção no momento do sacrifício, bem como a incapacidade de regular a ingestão de água antes do sacrifício, a variabilidade do volume medido da bexiga aumenta mesmo dentro de grupos de tratamento. Este papel descreve o uso do ultra-som à imagem o intervalo urinário mais baixo dos ratos com ou sem um agente do contraste. Esta tecnologia permite a visualização de alterações no tamanho da bexiga em um animal intacto, bem como a avaliação das alterações funcionais do volume da bexiga, espessura da parede da bexiga, diâmetro do lúmen uretral e velocidade de contraste passando pela uretra. Especificamente, o ultra-som contrastado permite a visualização do lúmen uretral, especificamente na região prostática, durante a micção de uma forma que aponta uma região de disfunção potencial.
Para garantir a coleta de dados de ultrassom consistentes e precisos, é crucial que um único sonografista treinado colete e leia ultrassons ao longo do curso do estudo. Para a imagem latente realçada contraste, é importante ativar as microbolhas comerciais de acordo com o protocolo do fabricante. As microbolhas ativadas devem ser diluídas com solução salina a 0,9%. As microbolhas não diluídas são tão concentradas que impedem a penetração da onda do ultra-som e as estruturas da sombra que encontram-se abaixo delas. A diluição de microbolhas também reduz os custos experimentais. As diluições de microbolhas podem ser variadas sem efeitos experimentais negativos, conforme necessário pelo usuário.
A avaliação do volume da bexiga e da espessura da parede da bexiga em um animal intacto permite o exame da progressão da doença e a avaliação da eficácia do tratamento ao longo do tempo. Atualmente, os tratamentos para o BPH são administrados em modelos de roedores, quer como a doença é induzida ou em um momento determinado anteriormente para resultar em progressão significativa da doença11,22,23. A eficácia do tratamento é determinada tipicamente após um único, período de tempo discreto, apesar do fato de que a variabilidade biológica pode afetar o tempo exigido para responder ao tratamento. Usando esta técnica nova, um modelo do roedor para BPH pode ser avaliado da indução do phenotype da doença através do protocolo inteiro do tratamento.
Um agente de contraste permite que o trato urinário inferior seja visualizado antes, durante e após um evento de micção. Nós examinamos previamente a histologia uretral em um modelo do rato de BPH. Nós localizamos a uretra prostática como a região putativa que dá a ascensão à deficiência orgânica urinária. Esta região contem mais dutos prostáticos, colagénio mais denso, e um lúmen menor do que em ratos do controle12. Adicionalmente, os ratos BPH-suscetíveis demonstram a Disfunção miccional medida por urofluxometria e por ensaios vazios do ponto. Usando ultra-som com microbolhas, podemos avaliar diretamente a região da uretra prostática para medir a velocidade de fluxo, duração e diâmetro Luminal (Figura 3 e 4). Identificando a região onde o fluxo é impedido usando o ultra-som, essa região específica pode então ser avaliada mais histològica para determinar o componente principal da deficiência orgânica.
Esta técnica é reprodutível entre as estirpes do rato e através de uma gama de idades do rato e condições de tratamento. Além do que os ratos envelhecidos, masculinos, esta técnica pode ser usada para avaliar ratos mais novos com anomalias metabólicas que poderiam conduzir a BPH/LUTD. A técnica também pode ser usada para avaliar a micção do rato fêmea e a função do trato urinário inferior. Embora o protocolo do ultra-som com contraste descrito aqui seja um procedimento terminal, nós podemos executar um cystostomy suprapúbica, criando o potencial para a imagem latente não-terminal do contraste do aparelho urinário mais baixo24. Experimentos futuros otimizarão a visualização das funções do trato urinário para permitir medidas repetidas. Dependendo das perguntas experimentais, as técnicas descritas aqui podem ser combinadas com outras técnicas de testes urinários funcionais para obter mais informações sobre a progressão da doença e a eficácia do tratamento.
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Disclosures
Os autores não têm nada a divulgar
Acknowledgments
Gostaríamos de agradecer a Emily Ricke, Kristen Uchtmann, e o laboratório de Ricke por sua assistência com a pecuária e feedback sobre este manuscrito. Gostaríamos de agradecer à NIDDK e à NIEHS pelo seu apoio financeiro para estes estudos: U54 DK104310 (WAR, JAM, PCM, CMV, DEB), R01 ES001332 (WAR, CMV), K12 DK100022 (TTL, AR-A, DH). O conteúdo é da exclusiva responsabilidade dos autores e não representa os pontos de vista oficiais da NIH.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 21mm Clear Tubing | Supera Anesthesia Innov | 301-150 | |
| 27 gauge needle | BD | Z192376 | |
| 4 port Manifold | Supera Anesthesia Innov | RES536 | |
| DEFINITY | Lantheus Medical Imaging | DE4 | |
| F/AIR Canister | Supera Anesthesia Innov | 80120 | |
| Graefe forceps (Serrated, Straight) | F.S.T. | 11050-10 | |
| Inlet/Outlet Fittings | Supera Anesthesia Innov | VAP203/4 | |
| Isoflurane | Midwest Vet Supply | 193.33161.3 | |
| Isoflurane Vaporizer | Supera Anesthesia Innov | VAP3000 | |
| MV707 probe | Fujifilm VisualSonics Inc | ||
| Oxygen Flowmeter | Supera Anesthesia Innov | OXY660 | |
| Polyethylene 50 tubing | BD | 427516 | |
| Pressure Reg/Gauge | Supera Anesthesia Innov | OXY508 | |
| Rebreathing Circuits | Supera Anesthesia Innov | CIR529 | |
| Small Mice Nose Cone | Supera Anesthesia Inov | ACC526 | |
| Sterile saline | Midwest Vet Supply | 193.74504.3 | NaCl 0.9%, Injectable |
| Straight Sharp/Blunt Scissors | Fine Scientific Tools (F.S.T) | 14054-13 | |
| Syringe | BD | 309646 | 5mL |
| Vevo 770 | Fujifilm VisualSonics Inc | ||
| VIALMIX | Lantheus Medical Imaging | VMIX |
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