Summary
Мы описываем использование высокочастотного ультразвука с контрастной визуализацией как метод измерения объема мочевого пузыря, толщины стенмочного пузыря, скорости мочи, объема пустоты, длительности пустоты и диаметра уретры. Эта стратегия может быть использована для оценки аннулирования дисфункции и эффективности лечения в различных моделях мыши нижней дисфункции мочевыводящих путей (LUTD).
Abstract
Заболеваемость клинической доброкачественной гиперплазией предстательной железы (BPH) и более низкими симптомами мочевыводящих путей (LUTS) растет из-за старения населения, что приводит к значительному экономическому и качественному жизненному бремени. Трансгенные и другие модели мыши были разработаны для воссоздания различных аспектов этого многофакторного заболевания; однако, методы для точной количественной дисфункции мочевыводящих путей и эффективности новых терапевтических вариантов отсутствуют. Здесь мы описываем метод, который может быть использован для измерения объема мочевого пузыря и толщины стенок детрузора, скорости мочевыводящих путей, объема пустоты и длительности пустоты, а также диаметра мочеиспускания. Это позволит оценить прогрессирование заболевания и эффективность лечения с течением времени. Мыши были обезожжены изофлюраном, а мочевой пузырь был визуализирован с помощью ультразвука. Для неконтрастной визуализации было сделано 3D-изображение мочевого пузыря для расчета объема и оценки формы; толщина стенки мочевого пузыря была измерена из этого изображения. Для контрастно-улучшенной визуализации катетер был помещен через купол мочевого пузыря с помощью 27-калиберной иглы, соединенной со шприцем трубами PE50. Болус 0,5 мл контраста был влил в мочевой пузырь, пока не произошло мочеиспускание. Диаметр уретрала был определен в точке окна образца скорости Доплера во время первого события аннулирования. Скорость измерялась для каждого последующего события, приносящего скорость потока. В заключение, высокочастотный ультразвук оказался эффективным методом оценки мочевого пузыря и мочеиспускательных измерений во время работы мочевыводящих путей у мышей. Этот метод может быть полезен при оценке новых методов лечения BPH/LUTS в экспериментальной обстановке.
Introduction
Доброкачественная гиперплазия предстательной железы (BPH) является заболеванием, которое развивается у мужчин, как они стареют и затрагивает почти 90% мужчин старше 80 лет1,2. Хотя развитие BPH, как правило, связано со старением, другие факторы, включая ожирение и метаболический синдром может привести к BPH у относительно молодых мужчин3,4. Многие мужчины с BPH развивать более низкие симптомы мочевыводящих путей (LUTS), которые значительно снижают качество их жизни, и некоторые осложнения опыт, которые могут включать кровотечение, инфекции, мочевого пузыря выход обструкции (BOO), камни мочевого пузыря, и почечной недостаточности. Стоимость лечения BPH превышает $4 млрд в год5,6,7. Диагностика LUTS, вызванная BPH обычно опирается на использование индекса симптомов АУА (AUASI) оценка, uroflowmetry, и оценка размера простаты8. Этиология BPH/LUTS является сложной и многофакторной, а развитие и прогрессирование заболеваний связано с гиперплазией предстательной железы (пролатшность простаты), гладкой мышечной контрактуальностью и фиброзом. Текущие методы лечения включают в себя использование адренергических блокаторов для регулирования гладкого мышечного тонуса в мочевом пузыре и предстательной железе, чтобы облегчить LUTS и / или 5-редуктазы ингибиторы для уменьшения метаболизма андрогенов и уменьшить размер простаты. Лучше модели заболеваний, мурин и другие, чтобы позволить точное изучение последствий различных причинно-следственных и терапевтических факторов в этом процессе заболевания с течением времени весьма желательно9.
Модели грызунов широко используются для изучения уродинамики; однако, большинство исследований сосредоточены на женский micturition и болезни10. Для того, чтобы полностью изучить все аспекты мужской LUTS, модели грызунов были разработаны и используются для изучения различных аспектов BPH, включая изменения в клеточной пролиферации, гладкой мышечной функции, осаждение коллагена, и воспаление11, 12 Лет , 13 Год , 14. Однако, грызунов и анатомии простаты человека отличаются. В то время как простата человека компактна и заключена сгущенным фибромышечным слоем, простата грызунов лобкулярна; и эти различия усложняют прямое сравнение прогрессирования заболевания и эффективности лечения. Кроме того, LUTS трудно оценить у мышей, так как это не возможно непосредственно измерить беспокоить. Вместо этого, современные методы изучения болезни коррелируют гистологические особенности с физиологическими особенностями (т.е. объем мочевого пузыря и толщина стенок с uroflowmetry, анализы пустоты пятна, и данные конечной точки цистометрии), которые сравнивают уровень мочевых дисфункция между моделью BPH и контроль животных12,15,16,17,18. Физиологические особенности часто оцениваются как посмертные конечные точки некропсии, и есть неспособность в течение одного животного наблюдать BOO во времени. Недавно мы определили подразделение тазовой уретры (простатической уретры), где экзогенные имплантаты гормона вызывают сужение на основе посмертной оценки некропсии12. Современные методы не позволяют проводить прямую, in vivo оценку сужения уретры во время опорожнения.
Ультразвук является неинвазивной диагностики и оценки метод, который успешно используется в других моделях болезни. Используется для количественной оценки объема органов и оценки сосудистого потока19,20,21. Ультразвук также используется для визуализации и руководства микроинъекций, что позволяет для целевых инъекций стволовых клеток или других препаратов, а также для оценки систолической и диастолической сердечной функции.
Этот протокол описывает использование высокочастотного ультразвука для оценки анатомии нижних мочевыводящих путей и оценки физиологии мочевыводящих путей у анестезируетизированных мышей. Мы описываем использование ультразвука для измерения объема мочевого пузыря и толщины стенок. Мы также описываем использование контрастно-увеличенного ультразвука для измерения скорости мочи, объема мочи, длительности пустоты и диаметра уретры. Использование ультразвука обеспечивает более полное понимание нижних мочевыводящих путей in vivo, определяет, как болезнь изменяет нормальную функцию аннулирования, и дает нам инструменты для лучшей оценки эффективности новых терапевтических вариантов. В настоящее время протокол неконтрастной визуализации не является терминальным, в то время как текущий протокол контрастно-увеличенного изображения является терминальной процедурой.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Процедуры, касающиеся животных, были одобрены Институциональным комитетом по уходу за животными и использованию (IACUC) в Университете Висконсина - Мэдисон.
1. Подготовка животных
- Поместите 24-месячного, C57Bl6/J мужской мыши в предварительно заряженной камере с 3-5% изофлуран до тех пор, пока выправляющийся рефлекс не будет потерян и скорость дыхания замедляется.
- При необходимости используйте ножницы для бритья брюшных волос у животного для операции и/или визуализации. Удалите все оставшиеся волосы с помощью крема для депилатория.
- Поместите мышь в положение на спине в конус носа с 2% изофруран на нагретой платформе для поддержания анестезии. Подтвердите глубину анестезии потерей движения от животного в ответ на рефлектор альпедион-вывод(рисунок 1B).
2. Ультразвуковая настройка
- Подключите зонд MV707 с центральной частотой 30 МГц к активному порту, с предустановленным приложением к "абдоминальной визуализации"(рисунок 1A).
- Расположите ультразвуковой зонд параллельно длинной оси мочевого пузыря(рисунок 1С).
- Длинные и короткие изображения оси мочевого пузыря, простаты и уретры сделаны в B-Mode(рисунок 1D).
- Используйте микро-манипуляторы "xy" для перемещения мыши.
3. Протокол неконтрастной визуализации
- Измерьте толщину стенки пузыря используя линейный инструмент измерения расстояния и трассировка внешний край к внутреннему краю стенки пузыря b-режим приобретение.
- Измерьте объем мочевого пузыря 3D с объемным инструментом на приобретении 3D-режима путем отслеживания внутренней части стенок мочевого пузыря, чтобы создать контур. Несколько контуров затем генерируются через толщину мочевого пузыря для расчета объема.
4. Реsuspension/активация контраста Microbubble
- Активируйте контрастный агент (например, DEFINITY), встряхивая в вихревом миксере 45 с, чтобы инкапсулировать микропузыри в растворе. Этот шаг имеет решающее значение для оптимального повышения контрастности.
5. Вставка катетера
- С помощью мыши под анатесценции и лентой на подогревом платформы, подвергать мочевого пузыря с разрезом средней линии с помощью прямых острых / тупые ножницы через кожу и брюшной стенки.
- Вставьте 27-калиберную иглу, подключенную к шприцу, гибкими полиэтиленовыми трубками (PE 50) в мочевой пузырь. Заполните трубки сольным раствором, чтобы обеспечить отсутствие пузырьков воздуха вводятся в мочевой пузырь.
6. Контрастно-улучшенный протокол визуализации
- Чтобы подтвердить размещение иглы, привить 10 л сольявого раствора в мочевой пузырь во время наблюдения с помощью ультразвука.
- Замените солей шприц шприцем, содержащим контраст, для улучшения визуализации уретральных стенок и аннулирования событий, потому что уретра обычно разрушается. После получения полного длинного вида оси уретры и сохранения изображения, поверните зонд на 90 градусов, чтобы получить короткий вид оси и изображение M-Mode.
- Привить болюс микропузырьков на 0,5 мл на 3 с в мочевой пузырь, пока не произойдет мочеиспускание.
- Во время первого события аннулирования измерьте диаметр уретрала в точке окна образца скорости Доплера с помощью линейного инструмента расстояния и измерения от края до края.
- С urethra правильно расположен, угол зонда по отношению к уретру, чтобы стать более параллельным поток мочи.
- Привить второй болюс микропузырей в мочевой пузырь, и измерить скорость события с помощью скорости времени интеграла (VTI) инструмент.
- После сбора данных, эвтаназии мыши с вывихом шейки матки.
7. Расчет и анализ данных
- Выберите инструмент VTI для измерения скорости путем отслеживания записанных изображений.
- Измерьте диаметр уретры из B-режима или M-режима изображения, используя передний край к передним краю конвенции.
- Рассчитайте поперечную область (CSA) с помощью следующей формулы (CSA) с помощью измерений изображений, полученных выше.
- Рассчитайте объем пустоты с помощью CSA уретры и умножение, что на область под след доплера (скорость времени интегральной) (CSA x VTI - объем).
- Рассчитайте фактический объем недействительной мочи, предполагая плотность одного грамма на кубический сантиметр.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Ультразвук можно использовать с или без повышения контраста в зависимости от экспериментального проектирования и измерения конечных точек. Мыши обезвлеживаются с изофлюран и побрился, и все следы волос удалены с кремом для депилаториев. Обезболили животных помещают на нагретую платформу с ультразвуковым зондом, расположенным вдоль длинной оси мочевого пузыря(рисунок1).
На рисунке 2 показаны репрезентативные ультразвуковые изображения мышиного пузыря, приобретенные без контрастного агента. Стенка мочевого пузыря гиперехотическая (белая), а толщина стенки мочевого пузыря измеряется с помощью пакета программных измерений. Проекция поверхности мочевого пузыря может быть оказана для определения объема мочевого пузыря, толщины стенок и объема стенок(таблица1).
Для контраста усиленный мочевой пузырь и нижней визуализации мочевыводящих путей, катетер должен быть вставлен в мочевой пузырь и микропузырьки вводят. Важно активировать микропузыри в протоколе производителя для оптимальной визуализации. На рисунке 3 показано репрезентативное изображение заполненного микропузырьком мочевого пузыря. Мочевой пузырь гиперэхотический (появляется белый на изображении). Низкочастотный ультразвуковой всплеск разрушает пузырьки и мочевой пузырь становится преходящим гипоэхохотическим (появляется черный), прежде чем пузырьки реформы, подтверждающие эту структуру, как мочевой пузырь. Во время разрушения импульса, мощность передачи идет на 100% и частота передачпадает падает до 10 МГц. Болус микропузырей (0,5 мл на 3 с) вызывает событие опорожнения и позволяет визуализировать уретру. Уретра подтверждается применением низкочастотного ультразвукового всплеска во время мочеиспускания и наблюдения за разрушением и реформированием микропузырьков. Несколько измерений могут быть сделаны во время мочеиспускания события. Диаметр уретрального проема может быть приобретен до и после мочеиспускания вместе со скоростью потока мочи, проходящей через эту область уретры и общего оттока (Рисунок 4). С помощью контрастной визуализации, измерения были сделаны по всей длине уретры(таблица 2). Из этих измерений, дальнейшие расчеты сделаны для изучения мочевого потока и соответствия мочевого пузыря(таблица 3).
Рисунок 1 . Ультразвуковая установка. (A) Общая настройка изображения. (B) Позиционирование мыши на платформе. (C) Мочевой пузырь подвергается и катетеризации с ультразвуковым зондом выстроились для длинной оси мочевого пузыря изображения. (D) Ультразвуковой гель и зонд, размещенный на открытых, катетеризированный мочевой пузырь для длинной и короткой оси для визуализации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 2 . Неконтрастная визуализация мыжекарского пузыря. (A) Изображение мышиного пузыря без микропузырей. (B) Измерения толщины стенки мочевого пузыря от b-режима изображения мочевого пузыря. (C) 3D реконструкция мышиного пузыря. (D) Площадь поверхности и форма экстраполирована из 3D-изображения для дальнейшего анализа. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 3 . Контрастно-улучшенная визуализация мыжекарского пузыря и уретры. (A) Полный мочевой пузырь с микропузырьками. (B) Полный мочевой пузырь с микропузырьками после уничтожения события. (C) Уретра мыши с микропузырьками. (D) Мышь уретры с микропузырьками после уничтожения события. Уретра, очерченная красным цветом. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 4 . Измерения, взятые из мочеиспускательного средства мыши. (A) Диаметры уретрала, измеренные во время мочевого события. (B) Скорость потока мочи через уретру полового члена во время аннулирования. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
| Суда | Объем мочевого пузыря (мм3) | Толщина стенки мочевого пузыря (мм) | Объем стенки мочевого пузыря (мм3) |
| 164 | 47.44 | 0.82 | 12.14 |
| 166 | 87.54 | 0.83 | 29.84 |
| 167 | 100.94 | 0.58 | 51.53 |
| 163 | 152.12 | 0.7 | 74.61 |
| 165 | 116.39 | 0.61 | 59.28 |
Таблица 1. Неинвазивные ультразвуковые измерения мочевого пузыря. Объем мочевого пузыря и толщина стенки мочевого пузыря измеряются ультразвуком.
| Тип измерения | Требуется изображение | Расположение | Измерения |
| Объем мочевого пузыря (мм3) | Режим пузыря 3D | Мочевого пузыря | 335 |
| Толщина стенки мочевого пузыря (мм) | Мочевой пузырь B-режим | Дисталь наячкая к шее мочевого пузыря Проксимальная к шее мочевого пузыря |
0.25 0.23 |
| Диаметр уретры (мм) | Уретра B-Mode | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
0.83 0.33 0.5 0.25 |
| Время мочевых событий (мс) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
3960 3740 3530 4490 |
| Время ускорения (мс) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
580 440 240 180 |
| Ускорение (мм/с2) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
1218.08 3685.76 3054.79 11031.4 |
| Время скорости интеграл (см) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
184.2 490.48 157.55 676.93 |
| Средняя скорость (мм/с) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
494.09 1256.82 467.04 1565 |
| Пиковая скорость (мм/с) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
780.74 1655.85 820.97 2190.94 |
| Средний градиент (ммГг) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
0.98 6.32 0.87 9.8 |
| Пиковый градиент (ммГг) | Режим Urethra PW | Шея мочевого пузыря Простатическая уретра Мембрана уретры Пенис уретры |
2.44 10.97 2.7 19.2 |
| Измерения, полученные во время мочеиспускания |
Таблица 2. Ультразвуковые измерения мочевого пузыря и уретры. Измерение мочевого пузыря и уретры, проводимое ультразвуком во время пустот мочевыводящих путей.
| Тип расчета | Формула |
| Поперечная область (мм2) | CSA No2 |
| Скорость потока (мм3/с) | Скорость потока - CSA x Средняя скорость |
| Предполагаемый объем пустоты (мЛ) | V ( Скорость потока/1000) x (Время событий в секундах) |
| Объемная растяжка | Растянуть (Vпосле-Vдо)/Vдо |
Таблица 3. Расчеты с использованием ультразвуковых измерений. Расчеты и формулы, применимые к ультразвуковым измерениям для оценки функции мочевого пузыря и мочевого потока.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Современные методы оценки нижних мочевыводящих путей грызунов ограничены их способностью непосредственно соотносить изменения в физиологии опустошительной с изменениями в статической гистологии, вытекающими из прогрессирования заболевания. Пустота пятно анализы и uroflowmetry могут быть использованы для оценки спонтанного мочеиспускания событий у грызунов, и эти методы могут быть использованы для оценки изменений в течение периода времени15,16,17. Однако, для обоих методов, полнота мочевого пузыря не может быть оценена до начала теста. Кроме того, изменения в мочеиспускании могут произойти из-за поведения, а не прямой результат прогрессирования заболевания, что затрудняет определение влияния болезни на мочеиспускание. Цистометрия, еще один метод для оценки дисфункции мочевого пузыря у грызунов, может обеспечить in vivo оценки функции мочевого пузыря16. Однако динамическое влияние простаты грызунов на функцию аннулирования не ясна. Предыдущие исследования документально мыши уретрала гистологических изменений у мышей, связанных с измененной функции опорожнения12. Тем не менее, эти исследования могут смотреть только на одну дискретную точку времени, и мочевого пузыря, простаты и уретральной анатомии не оцениваются в то же время, как функциональное тестирование. Другие методы оценки изменений в мочевом пузыре (т.е. масса, объем) происходят во время эвтаназии11,12, что делает невозможным наблюдать эволюцию процесса заболевания с течением времени. Поскольку существует риск мочеиспускания во время жертвоприношения, а также неспособность регулировать потребление воды до жертвоприношения, изменчивость измеренного объема мочевого пузыря увеличивается даже в лечебных группах. В настоящем документе описывается использование ультразвука для изображения нижних мочевыводящих путей мышей с или без контрастного агента. Эта технология позволяет визуализировать изменения размера мочевого пузыря у неповрежденного животного, а также оценить функциональные изменения объема мочевого пузыря, толщины стенок мочевого пузыря, диаметр уретрального проема и скорости контраста, проходящего через уретру. В частности, контрастно-усиленное ультразвук позволяет визуализировать уретраальный просвет, в частности, в области простаты, во время аннулирования таким образом, что выявляет область потенциальной дисфункции.
Для обеспечения сбора последовательных и точных ультразвуковых данных крайне важно, чтобы один обученный звукооператор собирал и считывали УЗИ в ходе исследования. Для контрастной улучшенной визуализации важно активировать коммерческие микропузырьки в соответствии с протоколом производителя. Активированные микропузырьки следует разбавлять сольным раствором 0,9%. Неразбавленные микропузырьки настолько концентрированы, что предотвращают проникновение ультразвуковой волны и будут теневые структуры, лежащие под ними. Разбавление микропузыря также снижает эксплуатационные расходы. Разбавления microbubble могут быть изменены без отрицательных экспериментальных эффектов по мере необходимости пользователем.
Оценка объема мочевого пузыря и толщины стенки мочевого пузыря у нетронутого животного позволяет изучить прогрессирование заболевания и оценить эффективность лечения с течением времени. В настоящее время, лечение BPH вводят в моделях грызунов либо как болезнь индуцируется или в то время, ранее определяется привести к значительной прогрессии заболевания11,22,23. Эффективность лечения, как правило, определяется после одного, дискретного периода времени, несмотря на тот факт, что биологическая изменчивость может повлиять на время, необходимое для реагирования на лечение. Используя этот новый метод, модель грызунов для BPH может быть оценена от индукции фенотипа заболевания через весь протокол лечения.
Контрастное вещество позволяет визуализировать нижние мочевыводящие пути до, во время и после мочеиспускания. Ранее мы исследовали уретралальную гистологию в мышиной модели BPH. Мы локализовали уретру простаты как прогнозную область, порождающую дисфункцию мочевыводящих путей. Этот регион содержит больше простаты протоков, плотный коллаген, и меньше просвет, чем в контроль мышей12. Кроме того, BPH-чувствительных мышей продемонстрировать аннулирования дисфункции, как измеряется uroflowmetry и пустоты пятно анализы. Используя ультразвук с микропузырьками, мы можем непосредственно оценить область простатической уретры для измерения скорости потока, продолжительности и диаметра светила(рисунок 3 и 4). Путем определять область где поток затруднен обезврежено используя ультразвук, тот специфический регион можно затем более добавочно быть оценен гистологически для того чтобы обусловить главным образом компонент дисфункции.
Этот метод воспроизводим между штаммами мыши и в различных возрастов мыши и условий лечения. В дополнение к в возрасте, мышей мужского пола, этот метод может быть использован для оценки молодых мышей с метаболическими нарушениями, которые могут привести к BPH / LUTD. Техника также может быть использована для оценки женской мыши аннулирования и нижней функции мочевыводящих путей. Хотя ультразвуковой протокол с контрастом, описанным здесь, является терминальной процедурой, мы можем выполнить супрапубическую цистостомию, создавая потенциал для нетерминальной контрастной визуализации нижних мочевыводящих путей24. Будущие эксперименты оптимизируют визуализацию функций мочевыводящих путей, чтобы позволить повторные меры. В зависимости от экспериментальных вопросов, методы, описанные здесь могут быть объединены с другими функциональными методами мочевыводящих методов тестирования, чтобы получить более глубокое представление о прогрессировании заболевания и эффективности лечения.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторам нечего раскрывать
Acknowledgments
Мы хотели бы поблагодарить Эмили Рик, Кристен Uchtmann, и Рик лаборатории за их помощь с животноводством и обратной связи на эту рукопись. Мы хотели бы поблагодарить NIDDK и NIEHS за их финансовую поддержку для этих исследований: U54 DK104310 (WAR, JAM, PCM, CMV, DEB), R01 ES001332 (WAR, CMV), K12 DK100022 (TTL, AR-A, DH). Содержание является исключительной ответственностью авторов и не отражает официальных взглядов NIH.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 21mm Clear Tubing | Supera Anesthesia Innov | 301-150 | |
| 27 gauge needle | BD | Z192376 | |
| 4 port Manifold | Supera Anesthesia Innov | RES536 | |
| DEFINITY | Lantheus Medical Imaging | DE4 | |
| F/AIR Canister | Supera Anesthesia Innov | 80120 | |
| Graefe forceps (Serrated, Straight) | F.S.T. | 11050-10 | |
| Inlet/Outlet Fittings | Supera Anesthesia Innov | VAP203/4 | |
| Isoflurane | Midwest Vet Supply | 193.33161.3 | |
| Isoflurane Vaporizer | Supera Anesthesia Innov | VAP3000 | |
| MV707 probe | Fujifilm VisualSonics Inc | ||
| Oxygen Flowmeter | Supera Anesthesia Innov | OXY660 | |
| Polyethylene 50 tubing | BD | 427516 | |
| Pressure Reg/Gauge | Supera Anesthesia Innov | OXY508 | |
| Rebreathing Circuits | Supera Anesthesia Innov | CIR529 | |
| Small Mice Nose Cone | Supera Anesthesia Inov | ACC526 | |
| Sterile saline | Midwest Vet Supply | 193.74504.3 | NaCl 0.9%, Injectable |
| Straight Sharp/Blunt Scissors | Fine Scientific Tools (F.S.T) | 14054-13 | |
| Syringe | BD | 309646 | 5mL |
| Vevo 770 | Fujifilm VisualSonics Inc | ||
| VIALMIX | Lantheus Medical Imaging | VMIX |
References
- Kirby, R. S. The natural history of benign prostatic hyperplasia: what have we learned in the last decade. Urology. 5, Suppl 1 3-6 (2000).
- Berry, S. J., Coffey, D. S., Walsh, P. C., Ewing, L. L. The development of human benign prostatic hyperplasia with age. Journal of Urology. 132 (3), 474-479 (1984).
- Lotti, F., et al. Elevated body mass index correlates with higher seminal plasma interleukin 8 levels and ultrasonographic abnormalities of the prostate in men attending an andrology clinic for infertility. Journal of Endocrinological Investigation. 34 (10), 336-342 (2011).
- Lotti, F., et al. Metabolic syndrome and prostate abnormalities in male subjects of infertile couples. Asian Journal of Andrology. 16 (2), 295-304 (2014).
- Chute, C. G., et al. The prevalence of prostatism: a population-based survey of urinary symptoms. Journal of Urology. 150 (1), 85-89 (1993).
- Isaacs, J. T., Coffey, D. S. Etiology and disease process of benign prostatic hyperplasia. Prostate Supplemental. 2, 33-50 (1989).
- Kortt, M. A., Bootman, J. L. The economics of benign prostatic hyperplasia treatment: a literature review. Clinical Therapeutics. 18 (6), 1227-1241 (1996).
- Abrams, P., et al. Evaluation and treatment of lower urinary tract symptoms in older men. Journal of Urology. 181 (4), 1779-1787 (2009).
- Roehrborn, C. G. Benign prostatic hyperplasia: an overview. Reviews Urology. 7, Suppl 9 3-14 (2005).
- Andersson, K. E., Soler, R., Fullhase, C. Rodent models for urodynamic investigation. Neurourology and Urodynamics. 30 (5), 636-646 (2011).
- Nicholson, T. M., et al. Estrogen receptor-alpha is a key mediator and therapeutic target for bladder complications of benign prostatic hyperplasia. Journal of Urology. 193 (2), 722-729 (2015).
- Nicholson, T. M., et al. Testosterone and 17beta-estradiol induce glandular prostatic growth, bladder outlet obstruction, and voiding dysfunction in male mice. Endocrinology. 153 (11), 5556-5565 (2012).
- Ricke, W. A., et al. In Utero and Lactational TCDD Exposure Increases Susceptibility to Lower Urinary Tract Dysfunction in Adulthood. Toxicological Sciences. 150 (2), 429-440 (2016).
- Bell-Cohn, A., Mazur, D. J., Hall, C. C., Schaeffer, A. J., Thumbikat, P. Uropathogenic Escherichia coli-Induced Fibrosis, leading to Lower Urinary Tract Symptoms, is associated with Type-2 cytokine signaling. American Journal of Physiology Renal Physiology. , (2019).
- Wegner, K. A., et al. Void spot assay procedural optimization and software for rapid and objective quantification of rodent voiding function, including overlapping urine spots. American Journal of Physiology Renal Physiology. , (2018).
- Bjorling, D. E., et al. Evaluation of voiding assays in mice: impact of genetic strains and sex. American Journal of Physiology Renal Physiology. 308 (12), 1369-1378 (2015).
- Leung, Y. Y., Schwarz, E. M., Silvers, C. R., Messing, E. M., Wood, R. W. Uroflow in murine urethritis. Urology. 64 (2), 378-382 (2004).
- Fry, C. H., et al. Animal models and their use in understanding lower urinary tract dysfunction. Neurourology and Urodynamics. 29 (4), 603-608 (2010).
- Khoo, S. W., Han, D. C. The use of ultrasound in vascular procedures. Surgical Clinics of North America. 91 (1), 173-184 (2011).
- Hunter, L. E., Simpson, J. M. Prenatal screening for structural congenital heart disease. Nature Reviews Cardiology. 11 (6), 323-334 (2014).
- Hammoud, G. M., Ibdah, J. A. Utility of endoscopic ultrasound in patients with portal hypertension. World Journal of Gastroenterology. 20 (39), 14230-14236 (2014).
- Sikes, R. A., Thomsen, S., Petrow, V., Neubauer, B. L., Chung, L. W. Inhibition of experimentally induced mouse prostatic hyperplasia by castration or steroid antagonist administration. Biology of Reproduction. 43 (2), 353-362 (1990).
- Mizoguchi, S., et al. Effects of Estrogen Receptor beta Stimulation in a Rat Model of Non-Bacterial Prostatic Inflammation. Prostate. 77 (7), 803-811 (2017).
- Pandita, R. K., Fujiwara, M., Alm, P., Andersson, K. E. Cystometric evaluation of bladder function in non-anesthetized mice with and without bladder outlet obstruction. Journal of Urology. 164 (4), 1385-1389 (2000).
