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Medicine

Ultrasonografía del tracto urinario masculino adulto para pruebas funcionales urinarias

Published: August 14, 2019 doi: 10.3791/59802
* These authors contributed equally

Summary

Describimos el uso de ultrasonidos de alta frecuencia con imágenes de contraste como un método para medir el volumen de la vejiga, el grosor de la pared de la vejiga, la velocidad de la orina, el volumen del vacío, la duración del vacío y el diámetro uretral. Esta estrategia se puede utilizar para evaluar la disfunción de la anulación y la eficacia del tratamiento en varios modelos de ratón de disfunción del tracto urinario inferior (LUTD).

Abstract

La incidencia de hiperplasia prostática benigna clínica (HBP) y síntomas del tracto urinario inferior (LUTS) está aumentando debido al envejecimiento de la población, lo que resulta en una carga económica y de calidad de vida significativa. Se han desarrollado modelos transgénicos y otros modelos de ratón para recrear diversos aspectos de esta enfermedad multifactorial; sin embargo, faltan métodos para cuantificar con precisión la disfunción urinaria y la eficacia de nuevas opciones terapéuticas. Aquí, describimos un método que se puede utilizar para medir el volumen de la vejiga y el espesor de la pared del detrusor, la velocidad urinaria, el volumen del vacío y la duración del vacío, y el diámetro uretral. Esto permitiría evaluar la progresión de la enfermedad y la eficacia del tratamiento a lo largo del tiempo. Los ratones fueron anestesiados con isoflurano, y la vejiga fue visualizada por ultrasonido. Para las imágenes sin contraste, se tomó una imagen 3D de la vejiga para calcular el volumen y evaluar la forma; el espesor de la pared de la vejiga se midió a partir de esta imagen. Para obtener imágenes mejoradas por contraste, se colocó un catéter a través de la cúpula de la vejiga utilizando una aguja de calibre 27 conectada a una jeringa mediante un tubo PE50. Se infunde un bolo de 0,5 ml de contraste en la vejiga hasta que se produjo un evento de micción. El diámetro uretral se determinó en el punto de la ventana de muestra de velocidad Doppler durante el primer evento de anulación. La velocidad se midió para cada evento posterior, lo que produjo un caudal. En conclusión, el ultrasonido de alta frecuencia demostró ser un método eficaz para evaluar las mediciones de vejiga y uretración durante la función urinaria en ratones. Esta técnica puede ser útil en la evaluación de nuevas terapias para la HPB/LUTS en un entorno experimental.

Introduction

La hiperplasia prostática benigna (HBP) es una enfermedad que se desarrolla en los hombres a medida que envejecen y afecta a casi el 90% de los hombres mayores de 80 años de edad1,2. Aunque el desarrollo de la HPB se asocia generalmente con el envejecimiento, otros factores como la obesidad y el síndrome metabólico pueden conducir a la HPB en hombres relativamente más jóvenes3,4. Muchos hombres con HPB desarrollan síntomas del tracto urinario inferior (LUTS, por sus dados) que disminuyen significativamente su calidad de vida, y algunos experimentan complicaciones que pueden incluir sangrado, infección, obstrucción de la salida de la vejiga (BOO), cálculos en la vejiga e insuficiencia renal. El costo del tratamiento para la HPB supera los $4 mil millones anuales5,6,7. El diagnóstico de LUTS causado por la HPB generalmente se basa en el uso de la puntuación delíndice de síntomas de la AUA (AUASI), la uroflujometría y la evaluación del tamaño de la próstata 8. La etiología de la HPB/LUTS es compleja y multifactorial, y el desarrollo y progresión de la enfermedad se ha asociado con hiperplasia prostática (proliferación de próstata), contractilidad muscular lisa y fibrosis. Los tratamientos actuales incluyen el uso de bloqueadores adrenérgicos para regular el tono muscular liso dentro de la vejiga y la próstata para aliviar los inhibidores de LUTS y/o 5o-reductasa para disminuir el metabolismo de los andrógenos y disminuir el tamaño de la próstata. Mejores modelos de enfermedad, murinos y otros, para permitir el estudio preciso de los efectos de factores causales y terapéuticos variados en este proceso de enfermedad con el tiempo es altamente deseable9.

Los modelos de roedores se han utilizado ampliamente para estudiar urodinámica; sin embargo, la mayoría de los estudios se centran en la micción femenina y la enfermedad10. Con el fin de examinar completamente todos los aspectos del LUTS masculino, los modelos de roedores se han desarrollado y utilizado para estudiar diferentes aspectos de la HPB, incluyendo cambios en la proliferación celular, función muscular lisa, deposición de colágeno, y la inflamación11, 12 , 13 , 14. Sin embargo, la anatomía de roedores y próstata humana difiere. Mientras que la próstata humana es compacta y encerrada por una capa fibromuscular condensada, la próstata del roedor es lobular; y estas diferencias complican las comparaciones directas de la progresión de la enfermedad y la eficacia del tratamiento. Además, LUTS son difíciles de evaluar en ratones, ya que no es posible medir directamente las molestias. En su lugar, los métodos actuales para estudiar la enfermedad correlacionan las características histológicas con las características fisiológicas (es decir, el volumen de la vejiga y el grosor de la pared con uroflujometría, ensayos de manchas vacías y datos de punto final de cistometría) que comparan el nivel de disfunción entre el modelo de HPB y los animales de control12,15,16,17,18. Las características fisiológicas se evalúan con frecuencia como puntos finales de necropsia post mortem, y hay una incapacidad dentro del mismo animal para observar BOO a lo largo del tiempo. Recientemente, hemos identificado una subdivisión de la uretra pélvica (la uretra prostática) donde los implantes hormonales exógenos causan un estrechamiento basado en las evaluaciones de la necropsia post mortem12. Los métodos actuales no permiten la evaluación directa e in vivo del estrechamiento uretral durante el vaciado.

El ultrasonido es una técnica de diagnóstico y evaluación no invasiva que se ha utilizado con éxito en otros modelos de enfermedades. Se utiliza para cuantificar el volumen de órganos y evaluar el flujo vascular19,20,21. El ultrasonido también se utiliza para visualizar y guiar las microinyecciones, lo que permite inyecciones dirigidas de células madre u otros medicamentos, y para evaluar la función cardíaca sistólica y diastólica.

Este protocolo describe el uso de ultrasonidos de alta frecuencia para evaluar la anatomía del tracto urinario inferior y evaluar la fisiología urinaria en ratones anestesiados. Describimos el uso de ultrasonido para medir el volumen de la vejiga y el grosor de la pared. También describimos el uso de ultrasonidos mejorados por contraste para medir la velocidad de la orina, el volumen de orina, la duración del vacío y el diámetro de la uretra. El uso de ultrasonido proporciona una comprensión más completa del tracto urinario inferior in vivo, determina cómo la enfermedad altera la función de vaciado normal, y nos da las herramientas para evaluar mejor la eficacia de las nuevas opciones terapéuticas. Actualmente, el protocolo de imágenes sin contraste no es terminal, mientras que el protocolo de imagen con contraste mejorado actual es un procedimiento terminal.

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Protocol

Los procedimientos relacionados con sujetos de animales han sido aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de Wisconsin – Madison.

1. Preparación animal

  1. Coloque un ratón macho C57Bl6/J de 24 meses en una cámara precargada con isoflurano del 3-5% hasta que se pierda el reflejo de retorce y la frecuencia respiratoria disminuya.
  2. Si es necesario, use cortadores para afeitar el vello abdominal del animal para cirugía y/o imágenes. Retira todo el cabello restante con una crema depilatoria.
  3. Coloque el ratón en posición supina en un cono nasal con 2% de isoflurano sobre una plataforma calentada para mantener la anestesia. Confirmar la profundidad de la anestesia por la pérdida de movimiento del animal en respuesta a un reflejo de retirada del pedal (Figura1B).

2. Configuración por ultrasonido

  1. Conecte una sonda MV707 con frecuencia central de 30 MHz al puerto activo, con el ajuste preestablecido de la aplicación a "imágenes abdominales" (Figura1A).
  2. Coloque la sonda de ultrasonido paralela al eje largo de la vejiga (Figura1C).
  3. Las imágenes de ejes largos y cortos de la vejiga, la próstata y la uretra se hacen en modo B (Figura1D).
  4. Utilice los micromanipuladores "xy" para mover el ratón.

3. Protocolo de imagen sin contraste

  1. Mida el espesor de la pared de la vejiga utilizando la herramienta de medición de distancia lineal y trazando el borde exterior hasta el borde interior de la pared de la vejiga en modo b después de la adquisición.
  2. Mida el volumen 3D de la vejiga con la herramienta volumétrica en la adquisición del modo 3D trazando el interior de las paredes de la vejiga para crear un contorno. A continuación, se generan varios contornos a través del grosor de la vejiga para calcular el volumen.

4. Resuspensión/activación de contraste de microburbuja

  1. Active el agente de contraste (por ejemplo, DEFINITY) agitando en el mezclador de vórtice durante 45 s para encapsular las microburbujas en solución. Este paso es fundamental para una mejora óptima del contraste.

5. Inserción del catéter

  1. Con el ratón anestesiado y pegado a la plataforma calentada, exponga la vejiga con una incisión de línea media usando tijeras rectas afiladas/contundentes a través de la piel y la pared abdominal.
  2. Inserte una aguja de calibre 27 conectada a una jeringa mediante tubos flexibles de polietileno (PE 50) en la vejiga. Rellene previamente el tubo con salina para asegurarse de que no se inyectan burbujas de aire en la vejiga.

6. Protocolo de imagen con contraste mejorado

  1. Para confirmar la colocación de la aguja, inculque 10 ml de salina en la vejiga mientras se observa mediante ultrasonido.
  2. Sustituya la jeringa salina por una jeringa que contenga contraste para mejorar la visualización de las paredes uretrales y los eventos de anulación, ya que la uretra normalmente está colapsada. Una vez que se obtenga una vista completa del eje largo de la uretra y se guarde una imagen, gire la sonda 90o para obtener una vista de eje corto y una imagen en modo M.
  3. Infundir un bolo de microburbujas a 0,5 ml por 3 s en la vejiga hasta que se produzca un evento de micción.
  4. Durante el primer evento de vaciado, mida el diámetro uretral en el punto de la ventana de muestra de velocidad Doppler utilizando la herramienta de distancia lineal y midiendo de extremo a borde.
  5. Con la uretra correctamente ubicada, angulo la sonda en relación con la uretra para volverse más paralela al flujo de orina.
  6. Infundir un segundo bolo de microburbujas en la vejiga, y medir la velocidad del evento utilizando la herramienta integral de tiempo de velocidad (VTI).
  7. Después de la recopilación de datos, eutanasia el ratón con luxación cervical.

7. Cálculo y análisis de datos

  1. Seleccione la herramienta VTI para medir la velocidad trazando las imágenes grabadas.
  2. Mida el diámetro de la uretra desde la imagen en modo B o M utilizando el borde delantero hasta la convención del borde de ataque.
  3. Calcule el área transversal (CSA) utilizando la siguiente fórmula (CSA) utilizando las mediciones de imagen obtenidas anteriormente.
  4. Calcular el volumen vacío utilizando el CSA de la uretra y multiplicarlo por el área bajo el trazado Doppler (tiempo de velocidad integral)(CSA x VTI - volumen).
  5. Calcule el volumen real de orina anulada asumiendo una densidad de gramo por centímetro cúbico.

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Representative Results

El ultrasonido se puede utilizar con o sin mejora de contraste dependiendo del diseño experimental y la medición de punto final. Los ratones son anestesiados con isoflurano y afeitados y todos los restos de pelo eliminados con una crema depilatoria. Los animales anestesiados se colocan en una plataforma calentada con la sonda de ultrasonido colocada a lo largo del eje largo de la vejiga (Figura1).

La Figura 2 muestra imágenes de ultrasonido representativas de una vejiga de ratón adquirida sin agente de contraste. La pared de la vejiga es hiperecoica (blanca), y el espesor de la pared de la vejiga se mide utilizando un paquete de medición de software. Se puede renderizar una proyección de superficie de la vejiga para determinar el volumen de la vejiga, el grosor de la pared y el volumen de la pared (Tabla1).

Para obtener imágenes mejoradas de la vejiga y del tracto urinario inferior, se debe insertar un catéter en la vejiga y se deben inyectar microburbujas. Es importante activar las microburbujas según el protocolo del fabricante para obtener imágenes óptimas. La Figura 3 muestra una imagen representativa de una vejiga llena de microburbujas. La vejiga es hiperecoica (aparece blanca en la imagen). Una ráfaga ultrasónica de baja frecuencia destruye las burbujas y la vejiga se vuelve transitoriamente hipoecoica (aparece negra), antes de que las burbujas se reformen, confirmando esta estructura como la vejiga. Durante el pulso de destrucción, la potencia de transmisión va al 100% y la frecuencia de transmisión cae a 10 MHz. Un bolo de microburbujas (0,5 ml por 3 s) desencadena un evento de anulación y permite visualizar la uretra. La uretra se confirma mediante la aplicación de una ráfaga ultrasónica de baja frecuencia durante el evento de micción y la observación de la destrucción y reforma de microburbujas. Se pueden realizar varias mediciones durante el evento de micción. El diámetro del lumen uretral se puede adquirir antes y después de la micción junto con la velocidad de flujo de la orina que pasa a través de esa región de la uretra y el flujo total (Figura4). Utilizando imágenes de contraste, las mediciones se realizaron a lo largo de toda la longitud de la uretra (Tabla 2). A partir de estas mediciones, se realizan más cálculos para examinar el flujo urinario y el cumplimiento de la vejiga (Tabla 3).

Figure 1
Figura 1 . Configuración por ultrasonido. (A) Configuración general de imágenes. (B) Colocación del ratón en la plataforma. (C) La vejiga se expone y se cateteriza con la sonda de ultrasonido alineada para la toma de imágenes de la vejiga del eje largo. (D) Gel de ultrasonido y sonda colocados en vejiga expuesta y catecada para ejes largos y cortos para la toma de imágenes. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 2
Figura 2 . Imágenes sin contraste de la vejiga del ratón. (A) Imagen de la vejiga del ratón sin microburbujas. (B) Medidas del espesor de la pared de la vejiga a partir de la imagen de la vejiga en modo b. (C) Reconstrucción 3D de la vejiga del ratón. (D) Superficie y forma extrapoladas de la imagen 3D para su posterior análisis. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 3
Figura 3 . Imágenes mejoradas en contraste de la vejiga del ratón y la uretra. (A) Vejiga llena con microburbujas. (B) Vejiga llena con microburbujas después del evento de destrucción. (C) Uretra de ratón con microburbujas. (D) Uretra de ratón con microburbujas después del evento de destrucción. Urethra delineada en rojo. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 4
Figura 4 . Mediciones tomadas de la uretra del ratón. (A) Diámetros de lumen uretral medidos durante un evento urinario. (B) Velocidad de flujo urinario a través de la uretra del pene durante el vaciado. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Juicio Volumen de la vejiga (mm3) Espesor de la pared de la vejiga (mm) Volumen de la pared de la vejiga (mm3)
164 47.44 0.82 12.14
166 87.54 0.83 29.84
167 100.94 0.58 51.53
163 152.12 0.7 74.61
165 116.39 0.61 59.28

Tabla 1. Mediciones ecografiantes no invasivas de la vejiga. Volumen de la vejiga y espesor de la pared de la vejiga medido por ultrasonido.

Tipo de medición Imagen requerida Ubicación Medición
Volumen de la vejiga (mm3) Modo vejiga 3D Vejiga 335
Espesor de la pared de la vejiga (mm) Modo B de la vejiga De distal al cuello de la vejiga
Proximal al cuello de la vejiga
0.25
0.23
Diámetro de la uretra (mm)* Modo B de Urethra Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
0.83
0.33
0.5
0.25
Tiempo del evento urinario (ms)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
3960
3740
3530
4490
Tiempo de aceleración (ms)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
580
440
240
180
Aceleración (mm/s2)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
1218.08
3685.76
3054.79
11031.4
Tiempo de velocidad integral (cm)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
184.2
490.48
157.55
676.93
Velocidad media (mm/s)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
494.09
1256.82
467.04
1565
Velocidad máxima (mm/s)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
780.74
1655.85
820.97
2190.94
Pendiente media (mmHg)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
0.98
6.32
0.87
9.8
Pendiente de pico (mmHg)* Modo Urethra PW Cuello de la vejiga
Uretra prostática
Uretra membranosa
Uretra del pene
2.44
10.97
2.7
19.2
* Medidas capturadas durante eventos urinarios

Cuadro 2. Mediciones por ultrasonido de la vejiga y la uretra. Mediciones de la vejiga y la uretra realizadas por ultrasonido durante los vacíos urinarios.

Tipo de cálculo Fórmula
Zona transversal (mm2) CSA á r2
Caudal (mm3/s) Caudal de caudal: CSA x Velocidad media
Volumen vacío estimado (ml) V (velocidad de flujo/1000) x (tiempo de evento en segundos)
Estiramiento volumétrico Estiramiento (Vdespuésde -Vantes)/Vantes de

Cuadro 3. Cálculos mediante mediciones de ultrasonido. Cálculos y fórmulas aplicables a las mediciones de ultrasonido para evaluar la función de la vejiga y el flujo urinario.

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Discussion

Las técnicas actuales para evaluar el tracto urinario inferior de los roedores están limitadas por su capacidad de correlacionar directamente los cambios en la fisiología de anulación con los cambios en la histología prostática consecuente a la progresión de la enfermedad. Los ensayos de punto vacío y la uroflujometría se pueden utilizar para evaluar eventos espontáneos de micción en roedores, y estas técnicas se pueden utilizar para evaluar los cambios durante un período de tiempo15,16,17. Sin embargo, para ambas técnicas, la plenitud de la vejiga no se puede evaluar antes del inicio de la prueba. Además, los cambios en la micción pueden ocurrir debido al comportamiento en lugar de un resultado directo de la progresión de la enfermedad, lo que dificulta determinar el impacto de la enfermedad en la micción. La cistometría, otra técnica para evaluar la disfunción vesical en roedores, puede proporcionar una evaluación in vivo de la función de la vejiga16. Sin embargo, el efecto dinámico de la próstata del roedor en la función de anulación no está claro. Estudios anteriores han documentado cambios histológicos uretrales de ratón en ratones asociados con la función de vaciado alterado12. Sin embargo, estos estudios sólo pueden mirar un punto de tiempo discreto, y la vejiga, la próstata y la anatomía uretral no se evalúan al mismo tiempo que las pruebas funcionales. Otros métodos de evaluación de los cambios dentro de la vejiga (es decir, masa, volumen) ocurren en el momento de la eutanasia11,12, lo que hace imposible la evolución de un proceso de enfermedad con el tiempo. Debido a que existe el riesgo de orinar en el momento del sacrificio, así como la incapacidad de regular la ingesta de agua antes del sacrificio, la variabilidad del volumen de vejiga medido aumenta incluso dentro de los grupos de tratamiento. Este artículo describe el uso de ultrasonido para tomar imágenes del tracto urinario inferior de los ratones con o sin un agente de contraste. Esta tecnología permite la visualización de los cambios en el tamaño de la vejiga en un animal intacto, así como la evaluación de los cambios funcionales del volumen de la vejiga, el grosor de la pared de la vejiga, el diámetro del lumen uretral y la velocidad del contraste que pasa a través de la uretra. Específicamente, el ultrasonido mejorado por contraste permite la visualización del lumen uretral, específicamente en la región prostática, durante el vaciado de una manera que identifica una región de disfunción potencial.

Para asegurar la recopilación de datos de ultrasonido consistentes y precisos, es crucial que un solo ecografista capacitado recopile y lea ultrasonidos a lo largo del estudio. Para imágenes mejoradas de contraste, es importante activar las microburbujas comerciales de acuerdo con el protocolo del fabricante. Las microburbujas activadas deben diluirse con una solución salina al 0,9%. Las microburbujas sin diluir están tan concentradas que previenen la penetración de ondas de ultrasonido y ensombrecerán las estructuras que se encuentran debajo de ellas. La dilución de microburbujas también reduce los costos experimentales. Las diluciones de microburbujas pueden variar sin efectos experimentales negativos según sea necesario por el usuario.

La evaluación del volumen de la vejiga y el espesor de la pared de la vejiga en un animal intacto permite examinar la progresión de la enfermedad y evaluar la eficacia del tratamiento a lo largo del tiempo. Actualmente, los tratamientos para la HPB se administran en modelos de roedores, ya sea ya sea ya sea ya sea en el momento en que se induce la enfermedad o en un momento previamente determinado para dar lugar a una progresión significativa de la enfermedad11,22,23. La eficacia del tratamiento se determina típicamente después de un único período de tiempo discreto, a pesar del hecho de que la variabilidad biológica puede afectar el tiempo requerido para responder al tratamiento. Utilizando esta novedosa técnica, un modelo de roedor para la HPB se puede evaluar desde la inducción del fenotipo de la enfermedad a través de todo el protocolo de tratamiento.

Un agente de contraste permite visualizar el tracto urinario inferior antes, durante y después de un evento de micción. Hemos examinado previamente la histología uretral en un modelo de ratón de HPB. Localizamos la uretra prostática como la región putativa que da lugar a la disfunción urinaria. Esta región contiene más conductos prostáticos, colágeno más denso y un lumen más pequeño que en ratones de control12. Además, los ratones sensibles a la HPB demuestran disfunción de vacío medida por uroflujometría y ensayos de punto vacío. Usando ultrasonido con microburbujas, podemos evaluar directamente la región de la uretra prostática para medir la velocidad del flujo, la duración y el diámetro luminal (Figura3 y4). Mediante la identificación de la región donde se impide el flujo mediante ultrasonido, esa región específica puede evaluarse histológicamente para determinar el componente principal de la disfunción.

Esta técnica es reproducible a través de las cepas del ratón y a través de una gama de edades de ratón y condiciones de tratamiento. Además de los ratones machos envejecidos, esta técnica se puede utilizar para evaluar ratones más jóvenes con anomalías metabólicas que podrían conducir a la HPB/LUTD. La técnica también se puede utilizar para evaluar el vaciado del ratón femenino y la función del tracto urinario inferior. Aunque el protocolo de ultrasonido con contraste descrito aquí es un procedimiento terminal, podemos realizar una cistostomía suprapúbica, creando el potencial de imágenes de contraste no terminales del tracto urinario inferior24. Los experimentos futuros optimizarán la visualización de las funciones del tracto urinario para permitir medidas repetidas. Dependiendo de las preguntas experimentales, las técnicas descritas aquí se pueden combinar con otras técnicas de pruebas urinarias funcionales para obtener más información sobre la progresión de la enfermedad y la eficacia del tratamiento.

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Disclosures

Los autores no tienen nada que revelar

Acknowledgments

Nos gustaría agradecer a Emily Ricke, Kristen Uchtmann y el laboratorio de Ricke por su ayuda con la cría de animales y comentarios sobre este manuscrito. Nos gustaría agradecer a los NIDDK y NIEHS por su apoyo financiero para estos estudios: U54 DK104310 (WAR, JAM, PCM, CMV, DEB), R01 ES001332 (WAR, CMV), K12 DK100022 (TTL, AR-A, DH). El contenido es responsabilidad exclusiva de los autores y no representa las opiniones oficiales de los NIH.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
21mm Clear Tubing Supera Anesthesia Innov 301-150
27 gauge needle BD Z192376
4 port Manifold Supera Anesthesia Innov RES536
DEFINITY Lantheus Medical Imaging DE4
F/AIR Canister Supera Anesthesia Innov 80120
Graefe forceps (Serrated, Straight) F.S.T. 11050-10
Inlet/Outlet Fittings Supera Anesthesia Innov VAP203/4
Isoflurane Midwest Vet Supply 193.33161.3
Isoflurane Vaporizer Supera Anesthesia Innov VAP3000
MV707 probe Fujifilm VisualSonics Inc
Oxygen Flowmeter Supera Anesthesia Innov OXY660
Polyethylene 50 tubing BD 427516
Pressure Reg/Gauge Supera Anesthesia Innov OXY508
Rebreathing Circuits Supera Anesthesia Innov CIR529
Small Mice Nose Cone Supera Anesthesia Inov ACC526
Sterile saline Midwest Vet Supply 193.74504.3 NaCl 0.9%, Injectable
Straight Sharp/Blunt Scissors Fine Scientific Tools (F.S.T) 14054-13
Syringe BD 309646 5mL
Vevo 770 Fujifilm VisualSonics Inc
VIALMIX Lantheus Medical Imaging VMIX

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kirby, R. S. The natural history of benign prostatic hyperplasia: what have we learned in the last decade. Urology. 5, Suppl 1 3-6 (2000).
  2. Berry, S. J., Coffey, D. S., Walsh, P. C., Ewing, L. L. The development of human benign prostatic hyperplasia with age. Journal of Urology. 132 (3), 474-479 (1984).
  3. Lotti, F., et al. Elevated body mass index correlates with higher seminal plasma interleukin 8 levels and ultrasonographic abnormalities of the prostate in men attending an andrology clinic for infertility. Journal of Endocrinological Investigation. 34 (10), 336-342 (2011).
  4. Lotti, F., et al. Metabolic syndrome and prostate abnormalities in male subjects of infertile couples. Asian Journal of Andrology. 16 (2), 295-304 (2014).
  5. Chute, C. G., et al. The prevalence of prostatism: a population-based survey of urinary symptoms. Journal of Urology. 150 (1), 85-89 (1993).
  6. Isaacs, J. T., Coffey, D. S. Etiology and disease process of benign prostatic hyperplasia. Prostate Supplemental. 2, 33-50 (1989).
  7. Kortt, M. A., Bootman, J. L. The economics of benign prostatic hyperplasia treatment: a literature review. Clinical Therapeutics. 18 (6), 1227-1241 (1996).
  8. Abrams, P., et al. Evaluation and treatment of lower urinary tract symptoms in older men. Journal of Urology. 181 (4), 1779-1787 (2009).
  9. Roehrborn, C. G. Benign prostatic hyperplasia: an overview. Reviews Urology. 7, Suppl 9 3-14 (2005).
  10. Andersson, K. E., Soler, R., Fullhase, C. Rodent models for urodynamic investigation. Neurourology and Urodynamics. 30 (5), 636-646 (2011).
  11. Nicholson, T. M., et al. Estrogen receptor-alpha is a key mediator and therapeutic target for bladder complications of benign prostatic hyperplasia. Journal of Urology. 193 (2), 722-729 (2015).
  12. Nicholson, T. M., et al. Testosterone and 17beta-estradiol induce glandular prostatic growth, bladder outlet obstruction, and voiding dysfunction in male mice. Endocrinology. 153 (11), 5556-5565 (2012).
  13. Ricke, W. A., et al. In Utero and Lactational TCDD Exposure Increases Susceptibility to Lower Urinary Tract Dysfunction in Adulthood. Toxicological Sciences. 150 (2), 429-440 (2016).
  14. Bell-Cohn, A., Mazur, D. J., Hall, C. C., Schaeffer, A. J., Thumbikat, P. Uropathogenic Escherichia coli-Induced Fibrosis, leading to Lower Urinary Tract Symptoms, is associated with Type-2 cytokine signaling. American Journal of Physiology Renal Physiology. , (2019).
  15. Wegner, K. A., et al. Void spot assay procedural optimization and software for rapid and objective quantification of rodent voiding function, including overlapping urine spots. American Journal of Physiology Renal Physiology. , (2018).
  16. Bjorling, D. E., et al. Evaluation of voiding assays in mice: impact of genetic strains and sex. American Journal of Physiology Renal Physiology. 308 (12), 1369-1378 (2015).
  17. Leung, Y. Y., Schwarz, E. M., Silvers, C. R., Messing, E. M., Wood, R. W. Uroflow in murine urethritis. Urology. 64 (2), 378-382 (2004).
  18. Fry, C. H., et al. Animal models and their use in understanding lower urinary tract dysfunction. Neurourology and Urodynamics. 29 (4), 603-608 (2010).
  19. Khoo, S. W., Han, D. C. The use of ultrasound in vascular procedures. Surgical Clinics of North America. 91 (1), 173-184 (2011).
  20. Hunter, L. E., Simpson, J. M. Prenatal screening for structural congenital heart disease. Nature Reviews Cardiology. 11 (6), 323-334 (2014).
  21. Hammoud, G. M., Ibdah, J. A. Utility of endoscopic ultrasound in patients with portal hypertension. World Journal of Gastroenterology. 20 (39), 14230-14236 (2014).
  22. Sikes, R. A., Thomsen, S., Petrow, V., Neubauer, B. L., Chung, L. W. Inhibition of experimentally induced mouse prostatic hyperplasia by castration or steroid antagonist administration. Biology of Reproduction. 43 (2), 353-362 (1990).
  23. Mizoguchi, S., et al. Effects of Estrogen Receptor beta Stimulation in a Rat Model of Non-Bacterial Prostatic Inflammation. Prostate. 77 (7), 803-811 (2017).
  24. Pandita, R. K., Fujiwara, M., Alm, P., Andersson, K. E. Cystometric evaluation of bladder function in non-anesthetized mice with and without bladder outlet obstruction. Journal of Urology. 164 (4), 1385-1389 (2000).

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Medicina Problema 150 Ultrasonido hiperplasia prostática benigna modelos de ratón flujo urinario envejecimiento disfunción del tracto urinario inferior
Ultrasonografía del tracto urinario masculino adulto para pruebas funcionales urinarias
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Liu, T. T., Rodgers, A. C.,More

Liu, T. T., Rodgers, A. C., Nicholson, T. M., Macoska, J. A., Marker, P. C., Vezina, C. M., Bjorling, D. E., Roldan-Alzate, A., Hernando, D., Lloyd, G. L., Hacker, T. A., Ricke, W. A. Ultrasonography of the Adult Male Urinary Tract for Urinary Functional Testing. J. Vis. Exp. (150), e59802, doi:10.3791/59802 (2019).

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