Summary
该协议描述了在尸体解剖时准备高质量冷冻组织样本以评估DNA损伤的几个程序：1） 切碎组织，2） 从胃肠道刮掉上皮细胞，3） 块状组织样品，需要使用组织切碎装置进行均质化。
Abstract
彗星测定越来越受欢迎，作为评估培养细胞和组织DNA损伤的一种手段，特别是在接触化学物质或其他环境压力因素之后。2014年通过了经济合作与发展组织（OECD）测试指南，推动了彗星检测在啮齿动物基因毒性可能性监管测试中的使用。彗星测定幻灯片通常是在尸体解剖时从新鲜组织制备的;然而，冷冻组织样本可以避免与同时制备每只动物和许多动物的幻灯片相关的后勤挑战。冷冻还允许将样品从暴露设施运送到不同的实验室进行分析，而冷冻组织的储存有助于推迟为特定器官生成DNA损伤数据的决定。碱性彗星测定可用于检测与暴露相关的DNA双绞线和单链断裂、碱性拉片病变以及与不完全DNA切除修复相关的绞线断裂。然而，DNA损伤也可能由机械剪切或不当的样品处理程序造成，混淆了测定结果。由于实验室人员在为彗星测定采集组织方面具有不同程度的经验，因此在尸体解剖期间收集和处理组织样本的可重复性可能难以控制。通过进修培训或部署配备经验丰富的实验室人员的机动单位来增强一致性成本高昂，而且可能并不总是可行的。为了优化彗星检测分析的高质量样品的一致生成，评估了一种使用定制组织切碎装置对闪冻结组织块进行均质化的方法。用这种方法为彗星检测准备的样品在质量上与在尸检期间切碎制备的新鲜和冷冻组织样本相比，质量优视。此外，在长期储存后，从冷冻组织立方体的细胞中测量低基线DNA损伤。
Introduction
彗星测定越来越多地被用作评估受培养细胞和组织DNA损伤的手段，这些细胞和组织暴露于化学物质或其他环境压力因素1。该测定可以检测DNA双绞线和单链断裂、碱性病变和与不完全DNA修复相关的单股断裂。国际药物药物技术要求协调委员会（ICH）药物测试指南建议DNA链断裂测定，如彗星测定作为第二次测试，以补充啮齿动物红细胞微核测定，以评估体内基因毒性，并作为后续测试，以评估肿瘤诱导2的目标器官的作用模式。欧洲食品安全局（EFSA）建议体内彗星测定作为一个合适的后续测试，以调查体外基因毒性试验3阳性结果的相关性。2014年，经合组织批准了啮齿动物彗星测定测试指南，从而提高了该测定在基因毒性电位监管测试中的可接受性。该测定基于从裂解细胞的细胞核素迁移的放松DNA回路和片段的电泳分离。基本上，单个细胞嵌入在阿加罗斯中，这种细胞被分层到显微镜幻灯片上。然后，幻灯片浸入滑管中，然后浸入碱性 （pH > 13） 溶液中，使紧密卷曲的核 DNA 放松和放松。然后，幻灯片被放置在电场中，刺激带负电荷的DNA向阳极迁移，产生类似于彗星的图像;彗尾与彗星头的相对DNA量与DNA损伤量成正比;尾部的DNA含量通常使用数字成像软件进行量化。
由于彗星测定检测成碎片DNA，因此，由治疗引起的细胞毒性或应力引起的染色质分裂或凋亡可能混淆暴露引起的DNA损伤。此外，DNA损伤可能由于机械剪切或不当的样品处理4。在幻灯片准备之前保持收获的组织冷藏的重要性，以尽量减少DNA损伤的基线水平，此前已经证明55，6。6许多实验室准备来自新鲜组织的彗星测定幻灯片;然而，在与大量动物的研究中，在准备每只动物的多种组织类型的幻灯片时，这在后勤上可能具有挑战性。此外，当在远程实验室进行幻灯片准备和分析时，这就提出了一个问题，需要装运样品。例如，美国国家毒理学计划将彗星测定作为其遗传毒理学测试计划（https://ntp.niehs.nih.gov/testing/types/genetic/index.html）的组成部分，有时还将该测定纳入28天或90天的重复剂量毒性研究;这需要由生命实验室收集组织，并将样品转移到另一个实验室进行分析。为此，将组织碎片切碎，和/或胃肠道上皮细胞被刮伤，细胞悬浮液被闪入冷冻并储存在冰柜中，供接收实验室随后装运和储存，直到分析7。正确处理样品对于使用冷冻组织获取高质量数据至关重要;然而，在不断变化的人员进行的尸检期间对组织样本的可重复操作是难以控制的，尤其是在不定期为彗星检测采集组织的生命实验室。对尸检人员进行进修培训或使用由经验丰富的实验室人员组成的流动单位收集新鲜或冷冻组织样本往往成本太高、不可行或被简单地低估。
为了更好地确保高质量组织样本的一致生成，以便转移到远程地点进行彗星检测分析，探讨了已公布的从闪冻组织立方体保存组织的方法6的效用。在这种方法中，冷冻的组织立方体被装入不锈钢组织切碎装置（图1），该装置被放入含有冷缓冲液的微离心管中。然后，组织立方体通过设备末端的小仪表网格推。多次通过两个方向的网状筛子反复强迫组织悬浮液，导致相对均匀的单细胞悬浮液。该方法制备的样品在质量上与通过切碎制备的新鲜和冷冻组织样本相比，具有优优。作为一个额外的好处，与切碎的样品不同，组织立方体可以长期冷冻储存，在彗星测定中仍然产生高质量的结果。
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Protocol
根据良好实验室实践条例（21 CFR 第 58 部分）和机构动物批准的动物使用协议，在 NTP 合同实验室进行 AAALAC 认证设施进行研究期间，收获了组织每个实验室的护理和使用委员会（IACUC）。
1. 组织收获和加工
注：准备重复的样品管（如肝脏）或将大约一半的样品转移到另一个储液管（如十二指肠、胃）以进行复分析（如有必要），是很有用的。为了尽量减少肠道组织潜在的样本到样本变异性，建议注意为每个动物的胃样本相同的组织区域，并划分样本以生成重复的样本。建议使用塑料钳来转移粘性组织，如大脑。作为一种选择，可过滤切碎、刮擦或均质组织制剂，使用连接到锥形管的40μm细胞滤网实现均匀的单细胞悬浮液。
- 从感兴趣的器官中取出任何连接组织、器官和碎屑。拆卸后立即在含有+7 mL的冷新鲜制备的切碎溶液（Mg+、Ca+和酚类无红 Hank 的平衡盐溶液、10% v DMSO 和 20 mM EDTA pH 7.5） 的中型称重船上大力旋转器官，以去除残留的血液和碎屑。
- 将每个器官转移到另一艘装有足够（+7 mL）冷切碎液的清洁称重船，以保持组织在冰上浸没，直到进一步加工。
- 取出每个感兴趣的器官的一部分，并将其放入嵌入盒中。根据实验室的标准程序，固定10%中性缓冲形式内，修剪和石蜡嵌入，以便将来可能进行组织病理学评估。
- 对于肝脏，切割左叶的 5 mm 纵向部分，轻轻在 ±7 mL 的冷切碎溶液中轻轻摇动。将组织带放入一个干净的中型称重船中，其中含有+7 mL的冷切碎溶液，并维持在冰上，直到准备进一步加工（步骤1.8或1.11）。
- 对于十二指肠，将十二指的10毫米部分切入胃部。使用 21-25 G 针，冲洗以清除碎屑和细菌。
- 将针头插入十二指的一端，并用 1 mL 的冷切碎溶液冲洗。
- 通过翻转十二指肠，再使用另外 1 mL 的切碎溶液重复，冲洗另一个方向。丢弃针头。
- 将十二指肠切开，用+7 mL的切碎溶液冲洗，然后放入含有+7 mL清洁切碎溶液的中型称重船中;保持在冰上，直到准备进一步处理（步骤1.8或1.11）。
- 对于大脑来说，首先将大脑分成两个半球可能很有用;一个半球可以保存可能组织病理学（见步骤1.2）。
- 分离感兴趣的大脑区域，轻轻在+7 mL的冷切碎溶液中轻柔地摇动。
- 将组织转移到含有+7 mL冷切碎溶液的清洁中型称重船，并在冰上保持，直到准备进一步加工（步骤1.8或1.11;请注意，小脑和海马等小区域可能不需要任何进一步的修剪）。
- 胃
- 取出并丢弃前胃。切开腺体胃，在中型称重船上使用+7 mL的冷切碎缓冲液从食物中洗净。
- 将5毫米的腺体胃皮带近似到十二指肠进行固定，以便进行可能组织病理学评估（参见步骤 1.2）。
- 将剩余的胃放入中型称重船的+7 mL冷切碎缓冲液中，在冰上孵育15~30分钟。
注：此孵育步骤可能没有必要;此步骤已包含在 JaCVAM 验证协议中，但在 OECD 测试指南8、,9中未提及。 - 将胃转移到干净的石蜡片（或培养皿或称重船），并使用手术刀刀片或聚四氟乙烯 （PTFE） 刮擦器轻轻刮两次或两次以上表面上皮，以清除碎屑。用钳子拿起胃黏液，并用1 mL的冷切碎缓冲液用移液器冲洗。将胃组织转移到干净的表面或盘子。
- 小心刮胃上皮4~5次（如有必要），用手术刀刀片或PTFE刮刀背面释放细胞（通常为250μL/鼠标或500-1，000μL/rat）。或者，用大约相等的切碎溶液冲洗组织，以恢复更多的细胞。使用移液收集含有释放的细胞的切碎液，并转移到冰上的微离心管。
- 对于切碎组织样本，切割肝脏或脑组织 3⁄4 mm 部分或 +5 mm 十二指肠，并转移到标有 1.5 或 2.0 mL 的微离心管，其中包含 1 mL 冷切碎溶液。快速切碎（+30秒），用切碎的剪刀，直到细散，同时保持样品的低温。样本应看起来略多云;然而，这是常见的一些件保持，将定居到管的底部。
- 要使用组织新鲜，维护含有碎组织或刮在冰上的上皮细胞的管;使用组织在收获约1小时内准备彗星滑梯（第2节概述）。
- 用于冷冻组织样本，在切碎或收集刮刮的上皮细胞后立即
- 将管盖固定并放入含有液氮的 Dewar 烧瓶中;在尸检期间（±3 h），管可保存在液氮中。
- 使用包取回管子，放在干冰上进行排序。将管子转移到干冰上的冷冻箱，并在 -80°C 冰柜中存放。
- 用于制备冷冻组织块，切割几小块组织（直径+4毫米，长度+6毫米）;图1。
- 单独将它们直接放入中型称重船或其他装有液氮的合适容器中。
- 等待几秒钟，让碎片完全冻结，并将单个冷冻组织立方体转移到在干冰上维护的标有微离心管或冷冻管;在冻结过程中，不要让碎片聚集在一起。
- 将管子转移到干冰上的冷冻箱，并在 -80°C 冰柜中存放。
2. 幻灯片准备
-
用于切碎/刮擦组织
- 在湿冰上维护含有新鲜组织的管子。
- 将冷冻组织管放入室温水浴中，直到样品完全解冻，同时确保它们保持低温。立即将管子转移到冰上。
- 在提取细胞转移到琼脂糖之前（步骤2.3），轻轻混合每个细胞悬浮液;对于未过滤的样品，允许大块沉降到管的底部。保持冰上所有管，直到为所有样品准备滑轨。
-
用于立方组织
- 从 80°C 冰柜中取回包含组织立方体的管，并在干冰上保持，直到幻灯片准备。
- 阿利quot 1 mL 的商人介质 （0.14 M NaCl， 1.47 mM KH2PO4，2.7 mM KCl， 8.1 mM Na2HPO4，10 mM NaEDTA， pH 7.4） 或切碎溶液到标记的 1.7 mL 微离心管为每个样品和维护在冰上.
- 快速工作以避免组织解冻，将一块组织放入室温组织切碎装置的开端（图1）。可以使用多个组织件;如有必要，可以使用冷砂浆和虫子将冷冻组织切割或裂解成更小的碎片，以减少立方体大小以放入设备中。
- 快速将大小匹配的注射器柱塞插入设备，将组织推到网状端，然后放入含有冷切碎溶液的微离心管中;避免迫使液体溢出管子。将设备的网状端浸入冷切碎溶液中约 5-10 秒，使组织完全解冻。
- 完全压下柱塞，直到看到细胞通过网格孔挤出。然后向上拉起柱塞约 2.5 厘米，然后再次完全按下;重复该过程几次，直到切碎溶液浑浊。
- 如有必要，样品可以集中，通过在1100 rpm下冷藏离心5分钟和去除部分上清液来增加细胞密度。
- 使用每个样品的清洁组织切碎装置对所有样品重复此过程。
- 在37°C下将50μL的细胞悬浮液转移到含有450μL0.5%低熔点阿加罗斯的管子上。
注：交易量可以调整，但琼脂的量应为±1%。 - 准备和评分幻灯片，如前面描述的10，11。10,
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Representative Results
学习 1
肝脏是从两组雄性斯普拉格道利大鼠身上收获的，施用玉米油4天，交错一周。幻灯片由新鲜切碎的组织、冷冻切碎组织和冷冻块状组织制备，这些组织使用组织切碎装置在商人的介质或切碎溶液中处理。从第一组动物身上获得的冷冻组织在冷冻储存3.5个月后进行评估。从第二组动物身上获得的冷冻组织在储存6个月后进行评估。表现出特征的"刺猪"形态的彗星，表示严重受损的细胞（不确定的病因，可能包括细胞毒性或机械应力），不包括在%尾部DNA的评分中;仅通过形态视觉检查确定的刺猪百分比，根据经合组织TG 4899单独列出。图2A汇总了两个队列中动物的平均%的尾部DNA结果（基于评分100个细胞/动物）。所有使用冷冻组织的方法产生的值都高于新鲜组织，尽管并不总是在统计学上有所不同。考虑到新鲜大鼠肝脏中%尾部DNA的推荐上限为6%9，这些结果表明，这些方法中的任何一种都能很好地评估冷冻组织。切碎解决方案至少与商家的介质一样执行;由于后者准备起来更费时，因此为后续研究选择了切碎解决方案。与第一组在储存3.5个月后处理后处理的第一批动物组织相比，在加工前冷冻了6个月的第二动物群组织损伤没有统计学上显著的差异。总体而言，百分比刺猪与%的尾部DNA平行，尽管冷冻组织中相对于新鲜组织的刺猪百分比比尾部DNA的百分比更可变（图2B）。新鲜组织中这些端点的值提供了一个基线，可以根据基线对冷冻方法实际引入的DNA损伤进行测量。
研究 2
雌性B6C3F1小鼠在正常盐水中以200毫克/千克/天施用正常盐水或羊肉、乙烷磺酸（EMS），为期三天。组织在最终剂量施用后3小时采集，并在彗星测定中加工新鲜。额外的组织在切碎溶液或作为立方体收集后被闪冻结。在准备彗星幻灯片之前，使用筛分装置对立方样品进行了切碎处理。在显示刺猪形态的细胞代表化学诱导DNA损伤连续体高端的细胞的前提下，成像软件可腐蚀的刺猪被包括在%尾部DNA的自动评分中。在图3中总结了 %尾部DNA结果（基于评分 150 细胞/动物）。肝组织作为立方体冷冻，随后使用组织切碎装置进行处理，结果与新鲜切碎组织的结果非常相似。冷冻碎组织的尾部DNA值略高，但冷冻碎组织基线值低于6%，这是经合组织对彗星测定9的试验指南中建议的新鲜大鼠肝脏。所有三种方法处理的组织样本中测量了EMS引起的DNA损伤在统计学上显著增加。
学习 3
在远程实验室进行的一项试验化学品90天毒性研究中，从雌性B6C3F1小鼠身上收集的部分肝脏组织被切碎或切成立方体，闪光冷冻，并在干冰上通宵运往该实验室进行分析。在冷冻储存2个月后对切碎组织进行了分析（图4）。在目视检查时出现为刺猪但被成像软件腐蚀的细胞包含在%的尾部DNA测量（150个细胞评分/动物）。仅在对总共150个细胞/动物的形态进行目视检查时识别的刺猪数量（无论是可腐蚀的还是不可腐蚀的）分别列出，以提供有关这些高度受损细胞频率的信息。总体而言，冷冻碎组织中的DNA损伤（以%的尾部DNA为单位）在所有剂量组中都很高，动物与动物的变异性都很大，包括在车辆对照组中。与百分比刺猪相关的尾部DNA结果（仅根据形态确定），表明刺猪对这些样本中观察到的高水平DNA损伤有重大贡献。根据在切碎组织中测量的DNA损伤的高背景水平，冷冻立方组织在储存22个月后进行分析（图4）。在与切碎组织样本同时制备的闪速冷冻块状组织中，DNA损伤和百分比刺猪都非常低。因此，在切碎的组织样本中，刺猪形态所反映的严重损伤细胞显然不是生物过程的结果，而很可能是在切碎过程中机械干扰和/或组织加热而引入的，在闪光冷冻之前;这些数据被认为是不可靠的。幸运的是，对冷冻块组织的分析提供了一个明确的结果，即雌性小鼠肝在接触三个月后，在接触试验化学品后缺乏DNA损伤反应。本案例研究提供的结果说明了相对缺乏经验的实验室与准备切碎组织相关的风险，并证明了冷冻立方体组织方法对规避这一问题的效用。
图1：用于从冷冻组织制备单个细胞悬浮液的组织切碎装置和柱塞。原型装置（4.5毫米内径，0.4毫米网尺寸）由Gunnar Brunborg博士（挪威奥斯陆诺吉诺泰克）提供。右侧的面板提供了一个适当大小的组织立方体的示例，供设备使用。请点击此处查看此图形的较大版本。
图2：在新鲜、冷冻的切碎和均质小鼠肝脏样本中测量的DNA损伤的比较。肝脏是从两个交错的队列（n = 5/组/组/组）雄性斯普拉格道利大鼠施用玉米油4天。幻灯片由新鲜切碎的组织、冷冻切碎组织和冷冻块状组织制备，这些组织使用组织切碎装置在商人的介质或切碎溶液中处理。冷冻组织分别被分析在1和2组组尸检后3.5个月和6个月。根据形态分类为刺猪的彗星不包括在%尾部DNA的评分中。（A） Cohort 表示 % 尾部 DNA 结果。（B） Cohort 平均百分比刺猪结果。误差条反映标准差。进行了统计分析，以比较每个队列的冷冻组织与新鲜组织，并比较每个组织制备方法的两个队列之间的结果。*使用学生t测试，与同一队列内新鲜切碎组织的统计不同（p < 0.05）;#statistically使用曼-惠特尼测试对非正常分布数据进行，与同一队列内新鲜切碎组织不同（p < 0.05）;• 使用学生 t 测试的队列之间的统计差异（p < 0.05）。请点击此处查看此图形的较大版本。
图3：不同程序处理的肝组织中EMS引起的DNA损伤比较。女性B6C3F1小鼠施用车辆的平均0%尾部DNA或3天200毫克/千克/天EMS（n = 5/组）。肝脏在最终剂量施用后3小时收获，并在彗星测定中经过新鲜处理。额外的肝脏组织在切碎溶液或作为立方体收集后被闪冻;在准备彗星幻灯片之前，使用组织切碎装置将立方体样本均质化。为了确保在EMS诱导DNA损伤的高端细胞不排除在分析之外，彗星在目视检查后似乎符合刺猪的形态描述，但发现成像软件可以腐蚀。误差条反映标准差。学生t-测试用于比较暴露于EMS的动物的DNA损伤量与车辆控制动物中每种样品制备方法的DNA损伤量。*在p < 0.05 时，统计显著增长。请点击此处查看此图形的较大版本。
图 4.冷冻立方体法的实用性和长时间存储后获得的高质量数据的案例研究。从雌性B6C3F1小鼠身上收集的肝组织部分，暴露于不同浓度的试验化学品，90天（n = 5/组）被切碎或切成立方体，并在生命实验室冷冻，随后运往该实验室进行分析。在储存2个月后对切碎组织进行分析;由于数据质量差，冷冻立方组织在储存22个月后随后进行分析。为了确保在化学诱导DNA损伤的高端细胞不排除在分析之外，包括来自可腐蚀细胞的数据，经目视检查，这些数据似乎是刺猪。（A） 组表示尾部 DNA 结果 % 。与切碎组织相比，即使在长期储存后，也能从冷冻块状组织中获得高质量的结果。（B） 组平均百分比刺猪结果。在碎组织样本中观察到的刺猪彗星具有广泛的非生物DNA损伤，这一点从挖掘技术较差。误差条反映标准差。使用 Dunnett 测试的 ANOVA 用于评估每种样品制备方法对测试化学品的阳性反应。没有为这两种方法检测到具有统计学意义的剂量组（p < 0.05）。请点击此处查看此图形的较大版本。
图5：在冷冻大鼠脑组织中测量的基线DNA损伤。彗星测定结果为代表雄性和雌性斯普拉格道利大鼠大脑中几个不同区域的冷冻碎体或立方体组织提供。数据（由包括可腐蚀的刺猪彗星生成）通过几项研究进行了整理;n = 每个样品制备方法评估的大脑组织总数。误差条反映标准差。请点击此处查看此图形的较大版本。
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Discussion
如前77、12、1312,13所示，妥善处理的闪速冷冻碎组织在彗星测定中提供了良好的效果。事实上，根据经合组织测试指南9建议的新鲜切碎大鼠肝脏样本，我们实验室准备的冷冻碎鼠和小鼠肝脏的基线%尾部DNA值通常为±6%。多个实验室利用各种被切碎和冷冻储存的组织类型取得了良好的结果;同样，从胃肠道器官刮来的闪光冷冻上皮细胞也成功地在彗星测定7、12、13、1412,13,14中使用。7冷冻切碎/刮擦组织似乎相对稳定至少几个月。使用Jackson等人6号最初描述的组织切碎装置对肝脏的闪速冷冻立方体进行均质化的方法，使彗星测定结果至少与冷冻碎肝的DNA损伤相比具有可比性，而且通常更好（即DNA损伤的基线水平较低）。该方法也适用于其他组织类型6;根据我们的经验，类似的结果也得到了类似的使用冷冻立方体二十二指肠（未显示的数据）和脑组织（图5）。但是，筛分装置可能无法对所有组织类型的均质化。在一项试验性研究中，我们发现肌肉心脏组织不能轻易通过筛分装置，导致细胞恢复不良;相反，在解冻后立即切碎组织，产生细胞悬浮液，其基线%尾部DNA值与闪光冷冻前切碎的DNA值相当（未显示数据）。值得注意的是，在尸体解剖过程中处理得当（即保持寒冷和潮湿;闪速冷冻为单个碎片，不允许部分解冻），即使经过大约两年的冷冻储存，闪速冷冻的立方组织也产生了非常低的基线DNA损伤（图4）。
在彗星测定中使用冷冻细胞悬浮液或立方组织比新鲜组织具有几个优点，包括：1） 促进同时收集多种组织类型以进行彗星分析;2） 促进在生命实验室收集组织，并将样品转移到不同的实验室进行分析;3） 方便推迟分析给定组织的决定数月。虽然在幻灯片制备时冷冻组织的均质化比在收获时切碎新鲜组织更麻烦，但使用冷冻立方组织提供了若干额外的好处，包括：1） 不需要接受彗星测定培训的人员（例如，移动单元）或尸体解剖中的专门用品/试剂;（2） 不需要在彗星测定中接受培训的人员（例如，移动单元）或尸体解剖时的专业用品/试剂;2） 在尸检期间出现技术错误的机会较少（例如，样品升温;细胞释放不足;组织样本大小次优）;3） 在样品处理过程中引入机械DNA损伤的机会极少（例如，切碎剪切）;和4）低基线DNA损伤，即使在长期储存后。
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Disclosures
这项工作得到了NIH、国家环境卫生科学研究所（NIEHS）的校内研究计划（NIHHS）根据HHSN27320130009C合同进行的研究;但是，其中包含的陈述、意见或结论不一定代表 NIEHS、NIH 或美国政府的声明、意见或结论。
Acknowledgments
作者感谢林肯·马丁和凯利·欧文斯为准备彗星幻灯片和给彗星幻灯片打分的专家技术援助，感谢卡罗尔·斯瓦茨博士进行统计分析。作者还感谢ILS遗传毒理学、调查毒理学和作物学项目的成员的支持性贡献。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cryovials | Corning Costar | 430488 | |
| Dental Wax Sheets | Electron Microscopy Sciences | 72670 | |
| Dissecting (Mincing) Micro Scissors | Fisher Scientific | 08-953-1B | |
| DMSO | Sigma-Aldrich | D8418 | |
| Hank's Balanced Salt Solution | Gibco | 14175-079 | |
| KCl | Teknova | P0315-10 | |
| KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P9791 | |
| Low Melting Point Agarose | Lonza | 50081 | |
| Microfuge Tubes (1.7 mL) | Corning | 3207 | |
| Na2EDTA | Sigma-Aldrich | E5134 | |
| Na2HPO4 | Sigma-Aldrich | S7907 | |
| NaCl | Sigma-Aldrich | S6191 | |
| Neutral Buffered Formalin | Leica | 600 | |
| Scalpel Blades | Miltex | 4-110 | |
| Syringe Plunger (1 mL) | Fisher Scientific or Vitality Medical | 14-826-88; 8881901014 | Becton Dickinson or Monoject tuberculin syringe |
| Tissue Mincing Device | NorGenoTech (Oslo, Norway) | None | Small variability in diameter observed which can affect snuggness of plunger. |
| Tweezers, plastic | Trade Winds Direct | DF8088N | Reinforced nylon, nonsterile, blunt tip, autoclavable; tradewindsdirect.com |
| Weigh Boats | Krackler Scientific/Heathrow Scientific | 6290-14251B |
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