Summary
このプロトコルは、彼らの生活の異なる段階の間にスラットフローリングに収容されている豚のための実用的な有意義な環境濃縮を提供する方法、および測定のための非侵襲的な方法で唾液サンプルを収集する方法を示しています。コルチゾール濃度は、急性ストレスのバイオマーカーとして。
Abstract
豚肉は世界で最も消費される肉であり、豚産業における動物の福祉はますます大きな公共の関心事となり、顧客、議員、その他の利害関係者から大きな圧力を受け、管理を変更する必要があります。これらの動物の幸福を改善する。いくつかの研究は、豚に環境豊かさを提供することで、彼らが根絶や探検などの自然な行動を表現することができ、遠回しの前に巣作りを行うことを可能にし、ストレスの軽減と生産の改善に関連していることを実証しています。そして福祉。しかし、床、排水および下水システムの種類、生活の豚の段階、材料、ならびにその吊り下げ方法、高さとペン内の位置など、環境の豊かさを提供する際には、多くの考慮事項を考慮する必要があります。本論文の目的は、(1)生活のさまざまな段階でスラット床に収容されている豚に対して、比較的シンプルで実用的な有意義な環境濃縮を提供する方法に関する方法論的情報を提供する、(2)。急性ストレスのバイオマーカーとして、コルチゾール濃度の測定のための唾液サンプルを収集する方法を示す。プロトコルには、ジュート、綿ロープ、ラック内のわら、および遠回りと授乳、ウィーナー、フィニッシャーのペンの環境濃縮として噛みやすいシリコーンスティックデバイスの使用に関する情報が含まれています。さらに、コルチゾール濃度分析のための非侵襲的唾液サンプル採取のための綿ロープの使用が詳細である。提供されるプロトコルは、研究と産業豚の養殖の両方で、動物の福祉を改善し、監視することを目指す専門家に関連しています。
Introduction
豚肉は世界で最も消費される肉で、毎年13億匹以上の豚が飼育され、殺処分されています。近年、豚産業における動物の福祉は、顧客、議員、その他の利害関係者から大きな圧力を受け、その福祉を改善するための管理変更を行う大きな公共の関心事となっています。これらの動物。いくつかの研究は、豚に環境を豊かにすることは、ストレスの軽減と生産と福祉の改善に関連していることを実証しました。ファローイング3,4,5,6,7.
豚は知的な動物であると考えられており、非常に好奇心旺盛な性質を持っています。したがって、適切な環境が提供されない場合、豚は、ステレオタイピック行動を示し、ペンメイトに向かって直接的な操作的な社会的行動を示す可能性が高く、これは尾噛み、ならびに他の傷害およびストレス8、9につながる可能性がある。したがって、有意義な環境エンリッチメントを提供することは専門家によって助言され、一部の国では、欧州連合理事会指令2008/120/EC5などの規制や法律によって課されます。
有意義な環境エンリッチメントを提供することは困難な場合があります。それは彼らの生活の各段階で豚の自然な行動のニーズを満たすだけでなく、実用的かつ技術的な制限を考慮する必要があります。ファローイングの前に、ネスト材料を提供することは、遠行中および授乳期間中の新生児の子豚の生存率の短さと同様に、より高い生存率に関連している。さらに、環境濃縮を伴うフリーペンでは、母体の行動が改善され、子豚3、10、11、12、13の認知能力および体重増加が改善される。離離し後、異なるゴミやペンからブタ(離れた、成長またはフィニッシャー)をグループ化すると、ストレスが多く、他のペンメイトに対して攻撃性を引き起こし、怪我を引き起こす可能性があります14、15。したがって、不慣れな豚を混合する場合、有意義な環境エンリッチメントを提供すると、フラストレーションや攻撃性、または根付き行動のリダイレクトに起因する望ましくない行動の発生を減らすことができる可能性があります。
欧州連合理事会指令2008/120/EC(2001/93/ECに制定)によれば、豚は、わら、干し草、木材などの適切な調査と操作活動を可能にするために、十分な量の材料に永久的にアクセスすることが必要です。おがくず、キノコ堆肥、泥炭またはこれらの5、6の混合物。しかし、これらの材料の使用は、排水や下水システムの閉塞を引き起こす可能性があるため、多くの農場で管理できない場合があります。それでも、EU理事会指令によれば、豚が適切な調査と操作活動を行うことができる限り、農家は代替濃縮材料を提供することができます。
環境濃縮の欠如は、潜在的にフラストレーションやストレス3につながる可能性があり、視床下部下垂体副腎(HPA)軸を活性化する可能性があります。ブタでは、ヒトおよび他の動物と同様に、ストレスは通常下垂体から副腎皮質対外性ホルモン(ACTH)の分泌につながる。ACTHは副腎皮質上の受容体に結合し、ストレスの主要なバイオマーカーと考えられ、血液、尿、唾液および髪で測定することができるグルココルチコイドコルチゾールの副腎放出を刺激する。唾液コルチゾールは、血液4中の生物学的に活性な濃度を反映するので、急性ストレスのマーカーである。それは、非侵襲的なサンプルコレクションの利点を有し、動物の取り扱いなしで、環境濃縮16、17として提供される綿ロープによって提供される。コルチゾールは時間の経過とともに髪に蓄積し、抽出および測定することができるので、慢性ストレスのマーカーとして使用されています18,19;しかし、それは動物の処理を必要とし、繰り返しサンプリングの数は髪の成長速度によって制限され、それは長い抽出プロセスを必要とするように分析はより面倒です。それでも、唾液と毛髪コルチゾールの両方が動物の福祉を損なう補完的な情報を提供する可能性があります。
本論文の目的は、(1)生活のさまざまな段階でスラット床に収容されている豚に対して、比較的シンプルで実用的な有意義な環境濃縮を提供する方法に関する方法論的情報を提供することです(遠回しと授乳、ウィーナーをフィニッシャーにし、(2)急性ストレスのバイオマーカーとして、コルチゾール濃度の測定のために唾液サンプルを非侵襲的に収集する方法を実証する。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
研究プロトコルは、ヘブライ大学の機関動物ケアおよび使用委員会(MD-16-14754-2)によって倫理的に承認されました。この研究は、2017年にラハフ動物研究所とイスラエルのエルサレムのヘブライ大学で実施されました。
1. 遠回りおよび授乳期間中の環境濃縮プロトコル
注:この研究では、雌豚は、予想される遠行日の3〜5日前から、および最大10日間の遠行後の10日間、限られた時間の拘束下で、ファローイング/授乳ペンに収容されました。その後、閉じ込めバーを除去し、種まきとその子豚との自由な移動および相互作用を可能にした(図1Aに示す)。しかしながら、以下のプロトコルは、播種が授乳期間全体を通じて拘束される従来のファローククレートにも適している。
- 雌豚が移動する前に、豊かな材料(ジュートと綿のロープ)を引き、雌豚の巣のような振る舞いを遠回しの前にできるようにします。
- 各ファローペン/クレートに、ジュート2枚(幅20cm、長さ1メートル)と、100%天然の無色の綿ロープ(直径2〜3センチメートル)の2枚をそれぞれ約1メートルの長さに用意します。
- 図 1に示すように、ジュートロープと綿ロープ (二重オーバーハンド ノット) をペン/クレートのバーに結び付け、中央から各ピースの 2 つのフリー エンドを床に向かって吊り下げます。ジュートと綿のロープの結び目の高さは雌豚の肩よりも低く、フリーエンドは床のすぐ上にあります(図1B-C)。
- 雌豚は、通常、ジュートと綿のロープに興味があります。彼らはしばしばそれを引っ張って噛みます。したがって、汚れたり完成した場合は、材料を交換または補充してください。
注:この研究では、材料を4〜5日ごとに検査し、必要に応じて交換または補充しました。 - 子豚が生まれた後、ジュートと綿のロープを掛けて、豚とその子豚の両方に安全な場所に到達できるようにします。通常、材料が両方に到達可能な場合、子豚は非常に早い時代からダムを模倣します。
注:さらに、細断された紙は、スラット床上の、遠く離れた雌豚や子豚のための環境濃縮として提供することもできます。しかし、排水と下水システムの互換性は、特定の農場で批判的に検討されるべきです。
2. ウィーナーのための環境濃縮プロトコル(わらが提供できない場合)
注:この研究では、引き取った後、各2つのごみを1本のウィーナーのペンにグループ化した。最適には、階層に関連する闘争や怪我を避けるために、新しいペンメイトをペンに混ぜたり導入したりすることなく、虐殺までグループは静的なままにする必要があります。ペンのスペース許容量は、欧州理事会指令2008/120/ECおよびイスラエルの法律に従って、グループあたり約20匹の豚と、豚1匹あたりの遮るもののない床面積の0.3 m2でした。技術的な理由から、わらは、ラック内でさえも、ウィーナーのために提供することができませんでした。ストローを提供できる場合は、プロトコルセクション3で詳述されているように、離離れから虐殺にフィニッシャーのプロトコルを使用してください。
- 各ペンのために、100%天然、無色の綿のロープ、直径2〜3センチメートルの1メートルの長さの部分を準備します。10匹の豚に対して少なくとも1個。図 2Bに示すように、綿ロープを天井から吊り下げたチェーンまたは吊り下げポール (壁から離す) に結び付けます。
- ロープをペンの「アクティブ」領域の中心に置き、フィーダーと飲み物に近づけ、ペンの壁から遠く離れた場所(図2Aに示すように)を配置し、360°アクセスを可能にし、これに起因する攻撃的な行動を防ぐことが期待される。競争。
- 豚が簡単に口でそれに到達することを可能にする高さでロープをハングアップ。通常、結び目は豚の肩よりも低く、ロープの自由な端は床のすぐ上にあり、触れることなく必要です(図2)。
- 汚れたり終わったりしたら、ロープを交換または補充してください。
注:この研究資料では、4〜5日ごとに検査し、必要に応じて交換または補充した。 - 綿のロープに加えて、噛むことができるシリコーンスティックまたは同様の噛み付き可能な装置を提供する(図2)。使用される装置(材料の表を参照)は少なくとも4匹の豚が同時に装置と相互作用することを可能にする4つの噛み付く棒を含んでいる。10~15匹の豚ごとに1つのデバイスを提供します。
- デバイスのスイングの動きを可能にするために、天井(キットに含まれる)からチェーンで噛むことができるデバイスをハングアップ。これは、豚への活動と挑戦を増加させ、また、より多くの豚が一度に参加することができます。
- ペンの壁から遠く離れたペンのアクティブ領域の中央にデバイスを配置し、360°アクセスを可能にし、競争による攻撃的な行動を防ぐことが期待されます。シリコーンスティックの端は、床の上に10〜20センチメートルの高さでなければなりません。
- シリコーンスティックを交換し、完了したとき、または汚れた場合。
注:この研究では、シリコーンスティックは、離者のペンからフィニッシャーのペンに移動した場合にのみ変更する必要があります。
3. フィニッシャーのための環境エンリッチメントプロトコル
注:ストローが全体の期間中に提供できる場合は、フィニッシャーのペンのみではなく、離離れから虐殺まで、このプロトコルの使用を開始してください。
- 図 2Cに示すように、各ペンに、ラック、吊り下げネット、またはタワーに配置されたわらを各ペンに提供します。このようなデバイスで提供される場合、一度に豚のために利用可能なわらの少量だけであり、そのほとんどは噛まれています。したがって、ストローを寝具として提供できない場合、この濃縮はスラットフロアで使用することができます。
注:本研究では、わらを商用ラックに設けました(図2C)。 - ストローラックを、通常は肩のレベルのすぐ下にあるすべての豚に到達可能な高さに吊り下げます。可能な限り多くの豚のための最も簡単なアクセスで壁にそれらを取り付けます, 好ましくは「アクティブエリア」内.装置の破損や怪我を避けるため、ラックが適切かつ安全に壁に固定されていることを確認します。
- ラックが最初にわらで完全に満たされていることを確認します。新鮮なわらの少量を追加すると、1〜3日ごとに追加することができます。または、ラックが空の場合は補充を行い、通常は 7 ~ 10 日ごとに補充します。
注:長いわらは、グループ内の攻撃性を減らし、20を根絶し、探索するための豚の行動のニーズを満たすために、刻んだわらよりも優れています。 - 該当する場合は、床がスラットされたときに、ストローが散乱し、排水および下水システムを遮断することを避けるために、ラックの下に収集トレイまたはマットを配置することを検討してください(図2C)。豚に対して主に根付きと探索的な行動を果たすためにわらが設けられているため、マットは地上レベルで無料のストローの存在を可能にします。
- ストローに加えて、セクション2で詳述されているように、噛み付くデバイスを提供します。
- 綿ロープを唾液の採取に使用する場合は、次のセクションで詳述するように、追加の濃縮として、唾液のコレクションの後にペンにロープを残します。セクション2で詳しく説明されているように、他の綿ロープも提供することができます。
4. コルチゾール濃度分析のための唾液サンプルコレクション
注:このセクションでは、急性ストレスのバイオマーカーとして、コルチゾール濃度分析のために非侵襲的に唾液を収集する方法について説明します。しかし、唾液サンプルは、他のバイオマーカーの分析や潜在的な病原体のスクリーニングにも使用できます。さらに、ヘアコルチゾールは、該当する場合に測定する必要があります。
- 一日の同じ時間に唾液サンプリングを計画し、バイアスを避けるために、コルチゾール分泌が生理学的概日リズムに起因して一日に沿って変化するため、または摂食21に起因する。サンプリングは、典型的には、摂食前に、好ましくは、その日の第2の給餌の前に、より容易である。
- 無色の綿ロープ(直径2~3cm)を使用してください。通常、12~15匹の豚につき1本のロープが必要です。
注:この研究では、唾液サンプルの収集にキットを使用する市販のキットを使用しました。 - ペンの壁から遠く離れたペンの中央にロープを結び付けます。(綿ロープと棒の間)吊り下げに使用されるコードが豚に噛み付くため到達できない、および衛生上の理由から、綿ロープの自由な端が床に触れていないことを確認してください(図3A)。
- ロープの自由な端を解明し、利用可能な噛みごたえの表面を増やします(図3B)。
- ロープを15〜30分間ぶら下げておくと、通常、豚は新たに提供されたロープに興味があり、この時間の間にそれをかむだろう。通常、豚の大半はロープに近づきるでしょう。
- ロープから唾液を取り出すには、ロープの自由な部分を滅菌ビニール袋(図3Dに示すように)に入れ、袋の外側から上から下に、十分な液体まで圧力をかけてロープを絞ります(で示唆される)少なくとも2 mL)は袋の底部(図3E)に蓄積し、袋からロープを取り除きます。
注:この研究では、キットに30 cm x 40 cmバッグが含まれていました。可能であれば、この手順は、吊りコードを切断せずにペンで実行する必要があります。このように、唾液の抽出は通常容易であり、ロープは濃縮としてペンに残すことができる。十分な唾液がない場合は、絞り器を使用することができます(この研究では必須ではありませんでした)。 - 袋から生殖不能の管に唾液を移すには、ロープを引き出し、50 mLの滅菌プラスチックチューブの上の袋の底角を慎重に切ります(通常、重複した分析ごとに400 μLしか必要ありませんが、コレクティオには少なくとも2mlが推奨されます)n;図 3F)チューブをシールし、永久マーカーまたは事前に準備されたステッカー(動物/ペン、日付、時間、農場など)でマークします。
- 研究室に届けられるまで、氷パックで断熱容器に唾液サンプルを保管してください。
- 研究室では、汚れが分離されるまで遠心分離唾液サンプルを分離することができます(3000 x gで8分間)。きれいな唾液は、便宜上、より小さな容積の事前にマークされた滅菌チューブ(例えば、2 mLスクリューキャップ冷凍チューブ)にきれいな使い捨てパスツールピペットで転送する必要があります。サンプルは直ちに分析することも、分析まで-20°C以下の温度で凍結保存することも可能です。
- コルチゾール濃度分析の前に、関連するサンプルの同一性を確認し、凍結した場合は室温でサンプルを解凍する必要があります。各サンプルを穏やかに混合し、分析の前にもう一度遠心分離し、アッセイを妨げる可能性のある残りの汚れを除去します(3000 x gで8分)。
- 特定のキットプロトコルに従って、検証済みアッセイでコルチゾール濃度分析を実行します。
注:本研究では、唾液コルチゾールサンプルを、製造元ガイドラインに従って酵素結合免疫吸着アッセイにより複製して測定した。以前は濃縮物としてロープを提供されていた豚の場合、豚がロープに高い関心を示すので、唾液を集めることは非常に簡単です。しかし、ロープに慣れていない豚の場合は、トレーニングに時間がかかる場合があります。したがって、十分な唾液を最初から採取することは不可能な場合があります。必要に応じて、トレーニングのためにロープをリンゴジュースに浸すことができます(明らかに、そのような場合、唾液は分析に使用することはできません)。個別に飼育された豚から唾液サンプルが必要な場合、コレクションはグループよりも困難な場合があり、通常はリンゴジュース浸漬ロープを使用したトレーニングセッションが必要です。回収ロープの噛み付きは、模倣のために隣り合う個人をサンプリングすることによっても奨励されるかもしれません。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
現在の研究では、16リットル(170匹の子豚)が2つの治療群にランダムに割り当てられました。1つのグループでは、環境濃縮は8リットル(「濃縮グループ」、プロトコルセクション1-3に記載されているように)に提供され、他の8つのリットル(「非濃縮グループ」)には提供されなかった。引き取った後、各2つのごみを約20匹の豚の1つのグループにグループ化した。唾液サンプルを収集し、各ペンで2週間ごとにコルチゾール濃度について分析し、プロトコルセクション4に記載されている。
本研究では、適切に提供された場合、雌豚、子豚およびブタは、すべての濃縮装置に関心を示した。雌豚は、提供される場合、遠回りする前にジュートと綿のロープを使用しました。授乳期間中、ジュートロープと綿ロープがダムと子豚の両方に到達可能だったとき、子豚は2-3日齢の年齢からダムを模倣しました。しかし、材料が種まきに到達できなかった場合、子豚は、通常、1週間以上後に材料を使用し始めました。授乳と離乳のペンでは、ジュートと綿のロープは通常4〜5日ごとに交換または補充され、噛むことができるシリコーンスティックは1回だけ交換され、豚は70日で離乳ペンからフィニッシャーのペンに移動しました。フィニッシャーのペンには、排水や下水の閉塞は記録されませんでした。
殺戮までの全期間の間に死亡する確率は、濃縮群(OR = 3.38、95%CI = 1.05-10.83)と比較して、非濃縮群の子豚/豚の間で有意に高かった。P = 0.004)。唾液コルチゾールサンプルは、その日の2回目の摂食の直前に、2週間ごとに試験中に正常に採取された。濃縮されたグループの豚は、最初から綿のロープを収集する唾液に高い関心を示しました。しかし、初期コレクションの非濃縮群唾液量は、通常低い(2〜10 mL)が、2番目または3番目の収集セッションからグループ間で類似していた。典型的には、30〜40mLを超える体積を各ロープから容易に抽出した。試料を分析するまで凍結(-80°C)保存した。ELISAによって測定されたコルチゾール濃度は、非濃縮豚と比較して、濃縮ブタにおいて全体的に有意に低かった(P = 0.0044;図 4)。
図1:遠行および授乳期間中の環境濃縮(A)ニワウを拘束する場合(ステージR)または監禁バーを取り外した後(ステージF)、種まきと彼女の間の自由な動きと相互作用を可能にするために、閉じ込めバーの2つの段階を示す設計された遠いペンのイラスト豚。遠行の前後にジュートと綿のロープの推奨場所は、それぞれ緑と青でマークされています。(B)ニキと子豚の画像は、綿ロープ(CR)とジュート(J)と相互作用し、遠く離れた授乳ペンで環境を豊かにします。この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図2:ウィーナーとフィニッシャーの環境濃縮(A)「アクティブエリア」(青X)に環境材料を吊るすための推奨場所を示すペンの模式図。(B-C)豚の画像は、示唆されているように濃縮。(B)ウィーナーズペンでは、環境濃縮として提供される綿ロープ(CR)、または天井から吊り下げられた唾液サンプルコレクションまたはポール(P)からペンの壁から離れ、天井からチェーンで吊り下げられた噛み付きシリコーンスティックデバイス(BR)(HC)。(C) フィニッシャーのペンでは、ストローはラック(SR)、わら塔(ST)またはストローバスケット(SB)に設けられます。マット(M)は、これらのわらデバイスの下のスラット床をカバーすることができます。この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図3:綿ロープを用いて唾液サンプリング処理を行う。(A-F)唾液サンプリングの6つの主要な段階は、ロープをぶら下げ、ロープの自由な端を解明し、豚がそれを噛むことを可能にし、ロープからプラスチック袋に唾液を抽出し、プラスチックチューブに移す)を示しています。この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図4:濃縮および非濃縮豚における唾液コルチゾール濃度。唾液サンプルは、綿のロープを使用して2週間ごとに採取し、ペンのレベルで、離離れから屠殺まで、濃縮された豚と非濃縮豚から採取した。コルチゾール濃度をELISAにより測定した。この分析では、サンプリング日付を考慮せずに、すべてのサンプルをグループごとにまとめてまとめました。コルチゾール濃度は、非濃縮群(マンホイットニー試験;)P = 0.0044)。結果は平均±SEMとして表示されます。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
ここでは、人生のさまざまな段階でスラット床に収容されている豚にシンプルで実用的な環境濃縮を提供する方法と、コルチゾールの測定のために唾液サンプルを非侵襲的に収集する方法について詳述するプロトコルについて説明します。急性ストレスのバイオマーカーとして濃度。寝具としてのわらは、豚に最適な環境濃縮の一つと考えられていますが、スラット床では実用的ではないかもしれません。しかし、ジュート、綿ロープ、ラック内のわら、および噛み付き可能なデバイスなどの比較的安価な代替手段は、実用的かつ安全に適用することができます。
本研究における唾液コルチゾール濃度の範囲は、以前の出版物17、22、23と同等である。濃縮動物と非濃縮動物の間の唾液コルチゾール濃度の有意な違いは、環境濃縮がポイントサンプルにおけるブタの急性ストレスを減少させるかもしれないという仮説に従っている。少なくとも一定の年齢まで、概日リズムが長期の慢性ストレス24、25によって損傷されない限り。前述のように、コルチゾールは、急性ストレスのマーカーとして血液、尿、唾液、および慢性ストレスのマーカーとして毛髪で測定することができる。毛髪コルチゾールを測定するためのプロトコルは、以前にMeyersらによって説明され、動物福祉19を評価する際に関連する可能性があります。しかし、急性ストレスのマーカーを探す場合、任意のサンプリング自体が、手順16、26の間に引き起こされる動物の取り扱いまたは痛みによるコルチゾール放出を増加させる可能性があることを考慮すべきである。したがって、非侵襲的唾液サンプリングは、現在の研究で示唆されているように、コルチゾール分析、ならびに他のバイオマーカーの分析、さらには潜在的な病原体27のスクリーニングに使用することができる関連する方法である。
このプロトコルに従って唾液を採取する際の主な課題は、ロープに慣れていない豚から採取する場合です。トレーニングは、リンゴジュースに浸したロープを使用して行うことができます(そのような場合、これらの唾液サンプルは分析に使用することはできません)。個別に飼育された豚から唾液サンプルが必要な場合、コレクションはグループよりもさらに困難であり、通常はリンゴジュース浸漬ロープを使用したトレーニングセッションが必要です。ロープを噛むことも模倣のために隣同士の個人をサンプリングすることによって奨励されるかもしれません。若い子豚の訓練のために、ロープは、学習と早期の咀嚼を奨励するために母親が到達できるように吊るされるべきです。濃縮や唾液のコレクションのために綿のロープを使用する場合のもう一つの可能な障害は、それが特定のブランドの耳のタグでキャッチする可能性があることです。発生した場合は、イヤータグまたはエンリッチメント方法を交換する必要があります。
綿のロープを使用すると、グループレベルで唾液コルチゾール濃度を測定することができ、このホルモンに適用可能なスクリーニングを提供します。この収集方法の考えられる欠点は、個々のブタからロープに吸収される唾液の量の影響を受けるので、グループ内のすべての個体の代表的な測定ではない可能性があることです。この欠点を最小限に抑えるために、十分な数のロープを提供し、十分な収集時間を可能にするだけでなく、複数の繰り返しコレクションを実行することをお勧めします。個別にサンプリングする既存の方法と比較して、コレクション自体は、ブタの取り扱いなしで、環境濃縮として与えられるので、豚にとってストレスではありません。
要約すると、豚はジュート、綿のロープ、ラックのわら、および噛むことができる装置を使用して、スラット床でも、すべてのライフステージで環境的に豊かにすることができます。濃縮の種類、吊り下げ方法、ペン内の高さと位置は、その有効性のために重要です。綿棒による唾液採取に関しては、サンプリングを成功させるためにはタイミングと吊り下げの推奨事項が重要です。これらのプロトコルは、研究と産業豚の養殖の両方で、動物の福祉を改善し、監視することを目指す専門家に関連しています。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
著者は何も開示していない。
Acknowledgments
私たちは、彼らの農場で研究を行い、研究を通じて貴重な技術的な助けを提供するための農場のチームにLahav CROに感謝します。この研究は、農業・農村開発省のイスラエルのチーフ・サイエンティストによって資金提供された。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Bite-Rite | Ikadan System USA Inc. | Consider ordering additional replaceable silicone sticks | |
| ELISA; Saliva Cortisol Kit | DRG International Inc. NJ, USA | Slv2930 | |
| HALM 60/80 CM | W. Domino A/S, DK | 49084/ 85 | |
| TEGO Swine Oral Fluids Kit | ITL BioMedical, USA | A100930 | Including everything needed for the saliva sampling protcol |
References
- McGlone, J. J. The Future of Pork Production in the World: Towards Sustainable, Welfare-Positive Systems. Animals (Basel. 3, 401-415 (2013).
- Kuberka, L., Cozzens, T., Mezoughem, C. Livestock and Poultry: World Markets and Trade. Available at: https://apps.fas.usda.gov/psdonline/circulars/livestock_poultry.pdf [accessed). USDA-FAS, Office of Global Analysis, Global Commodity Analysis Division. , Washington, DC, USA. (2018).
- Oostindjer, M., et al. Effects of environmental enrichment and loose housing of lactating sows on piglet performance before and after weaning. Journal of Animal Science. 88, 3554-3562 (2010).
- Munsterhjelm, C., et al. Environmental enrichment in early life affects cortisol patterns in growing pigs. Animal. 4, 242-249 (2010).
- Bracke, M. B. M., Koene, P. Expert opinion on metal chains and other indestructible objects as proper enrichment for intensively-farmed pigs. PLoS One. 14, (2019).
- Marcet Rius,, M,, et al. Providing straw to allow exploratory behaviour in a pig experimental system does not modify putative indicators of positive welfare: peripheral oxytocin and serotonin. Animal. 12, 2138-2146 (2018).
- Giuliotti, L., Benvenuti, M. N., Giannarelli, A., Mariti, C., Gazzano, A. Effect of Different Environment Enrichments on Behaviour and Social Interactions in Growing Pigs. Animals. 9, (2019).
- Stafford, K. J. Tail biting: an important and undesirable behaviour of growing pigs. Veterinary journal. 186, 131-132 (2010).
- Sutherland, M. A. Welfare implications of invasive piglet husbandry procedures, methods of alleviation and alternatives: a review. New Zealand Veterinary Journal. 63, 52-57 (2015).
- Herskin, M. S., Jensen, K. H., Thodberg, K. Influence of environmental stimuli on nursing and suckling behaviour in domestic sows and piglets. Animal Science. 68, 27-34 (1999).
- Lawrence, A. B., et al. The Effect of Environment on Behavior, Plasma-Cortisol and Prolactin in Parturient Sows. Applied Animal Behaviour Science. 39 (94), 313-330 (1994).
- Baxter, E. M., Lawrence, A. B., Edwards, S. A. Alternative farrowing accommodation: welfare and economic aspects of existing farrowing and lactation systems for pigs. Animal. 6, 96-117 (2012).
- Oliviero, C., Heinonen, M., Valros, A., Halli, O., Peltoniemi, O. A. Effect of the environment on the physiology of the sow during late pregnancy, farrowing and early lactation. Animal Reproduction Science. , 365-377 (2008).
- Thomsen, R., Edwards, S. A., Rousing, T., Labouriau, R., Sorensen, J. T. Influence of social mixing and group size on skin lesions and mounting in organic entire male pigs. Animal. 10, 1225-1233 (2016).
- Rydhmer, L., Hansson, M., Lundstrom, K., Brunius, C., Andersson, K. Welfare of entire male pigs is improved by socialising piglets and keeping intact groups until slaughter. Animal. 7, 1532-1541 (2013).
- Heimburge, S., Kanitz, E., Otten, W. The use of hair cortisol for the assessment of stress in animals. General and Comparative Endocrinology. , 10-17 (2019).
- Morgan, L., et al. Effects of group housing on reproductive performance, lameness, injuries and saliva cortisol in gestating sows. Preventive Veterinary Medicine. , 10-17 (2018).
- Meyer, J. S., Novak, M. A. Minireview: Hair cortisol: a novel biomarker of hypothalamic-pituitary-adrenocortical activity. Endocrinology. 153, 4120-4127 (2012).
- Meyer, J., Novak, M., Hamel, A., Rosenberg, K. Extraction and analysis of cortisol from human and monkey hair. Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2014).
- Lahrmann, H. P., Oxholm, L. C., Steinmetz, H., Nielsen, M. B., D'Eath, R. B. The effect of long or chopped straw on pig behaviour. Animal. 9, 862-870 (2015).
- Boumans, I., de Boer, I. J. M., Hofstede, G. J., Fleur, la, E, S., Bokkers, E. A. M. The importance of hormonal circadian rhythms in daily feeding patterns: An illustration with simulated pigs. Hormones and Behavior. 93, 82-93 (2017).
- Schonreiter, S., et al. Salivary cortisol as a stress parameter in piglets. Tierarztliche Praxis Ausgabe G: Grosstiere - Nutztiere. 27, 175-179 (1999).
- Cook, N. J., Hayne, S. M., Rioja-Lang, F. C., Schaefer, A. L., Gonyou, H. W. The collection of multiple saliva samples from pigs and the effect on adrenocortical activity. Canadian Journal of Animal Science. 93, 329-333 (2013).
- Reimert, I., Rodenburg, T. B., Ursinus, W. W., Kemp, B., Bolhuis, J. E. Responses to novel situations of female and castrated male pigs with divergent social breeding values and different backtest classifications in barren and straw-enriched housing. Applied Animal Behaviour Science. , 24-35 (2014).
- Avan de Weerd, H., Day, J. E. L. A review of environmental enrichment for pigs housed in intensive housing systems. Applied Animal Behaviour Science. 116, 1-20 (2009).
- Wright, K. D., Hickman, R., Laudenslager, M. L. Hair Cortisol Analysis: A Promising Biomarker of HPA Activation in Older Adults. Gerontologist. 55 Suppl 1, S140-S145 (2015).
- Decorte, I., et al. Detection of total and PRRSV-specific antibodies in oral fluids collected with different rope types from PRRSV-vaccinated and experimentally infected pigs. BMC Veterinary Research. 10, 134 (2014).
