Summary
Данная рукопись описывает протокол для определения того, является ли воздействие озона, критерия загрязнителя воздуха, ухудшает альвеолярный макрофаг энеррозитоз in vivo. Этот протокол использует широко используемые реагенты и методы и может быть адаптирован к нескольким моделям легочной травмы, чтобы определить влияние на альвеолярный макрофage эпрероцитоз.
Abstract
Озон (O3) является критерием загрязнителя воздуха, который усугубляет и увеличивает заболеваемость хроническими легочными заболеваниями. O3 воздействия, как известно, вызывают воспаление легких, но мало известно о том, как воздействие изменяет процессы, важные для разрешения воспаления. Эффероцитоз является процесс разрешения, в котором макрофаги фагоцитации апоптотические клетки. Цель юга этого протокола состоит в том, чтобы измерить альвеолярный макрофаг эпрероцитоз после O3индуцированной травмы легких и воспаления. Было описано несколько методов измерения эффоцитоза; однако, большинство из них требуют манипуляций ex vivo. Описано в деталях здесь протокол для измерения в vivo альвеолярный макрофage efferocytosis 24 ч после O3 воздействия, который избегает ex vivo манипуляции макрофагов и служит простой метод, который может быть использован для точного представления возмущений в этот процесс разрешения. Протокол является технически неинтенсивным и относительно недорогим методом, который включает в себя ингаляцию всего тела O3 с последующим аспириальным аспирированием апоптотических клеток (т.е. юркат Т-клеток) в то время как под общим наркозом. Альвеолярный макрофage efferocytosis затем измеряется световой микроскопии оценки макрофагов, собранных из бронхоальвеолярной (BAL) лаважа. Эффероцитоз, наконец, измеряется путем расчета энемероцитарного индекса. В совокупности, изложенные методы количественно эвэроцитической активности в легких in vivo, а также выступающей для анализа негативных последствий для здоровья O3 или других ингаляционных оскорблений.
Introduction
Легкое постоянно подвергается воздействию экологических оскорблений, в том числе частиц воздуха, вирусов, бактерий и окислительных газов, которые вызывают воспаление легких1,2,3. Эти оскорбления могут поставить под угрозу газообмен и вызвать необратимые повреждения тканей4,5. Альвеолярные макрофаги, которые составляют примерно 95% иммунных клеток, найденных в мурин и легких человека при гомеостазах, являются критическими регуляторами воспаления легких после экологических оскорблений1,2, 3,4,5. Альвеолярные макрофаги имеют важное значение во время защиты хозяина путем фагоцитизации и устранения патогенных микроорганизмов. В последнее время альвеолярные макрофаги были показаны для содействия ткани гомеостаза и разрешения воспаления через эффоцитоз6,7. Эффроцитоз является фагоцитарный процесс, в котором макрофаги поглотить и устранить апоптотические клетки8,9,10. Эфтероцитоз также приводит к производству посредников (т.е., IL-10, TGF-я, PGE2, и оксида азота), что еще больше увеличить процесс, в результате чего разрешение воспаления9,10,11 ,12,16,18. Этот процесс необходим для профилактики вторичного некроза и содействия ткани гомеостаза12,13,14. Несколько исследований связали нарушения эвнерозитоза с различными хроническими заболеваниями легких, включая астму, хроническую обструктивную болезнь легких, и идиопатический легочный фиброз8,9,15, 16,17.
O3 является критерием загрязнителя воздуха, который усугубляет и увеличивает заболеваемость хроническими легочными заболеваниями19,20,21. O3 вызывает воспаление легких и травмы и, как известно, ухудшить альвеолярный макрофаг фагоцитоз бактериальных патогенов22,23. Тем не менее, неизвестно, является ли O3 ухудшает альвеолярный макрофаг энероцитоза. ИсследованиеO 3-индуцированных изменений в альвеолярных макрофаг эпрероцитоз даст потенциальное представление о том, как воздействие может привести к хронической заболеваемости легочнымзаболеванием и обострение. Ниже описан простой метод оценки альвеолярного макрофага эффоцитоза в легких самок мышей после острого воздействия O3.
Изложенный метод обладает рядом преимуществ по сравнению с другими протоколами эневоцитоза, обычно используемыми в этой области, устраняя использование дорогостоящих флуоресцентных красителей, обширные измерения цитометрии потока и манипуляции ex vivo альвеолярных макрофагов24 ,25. Кроме того, этот протокол измеряет альвеолярный макрофаг энероцитоз в контексте микроокружения легких, который может влиять на функцию макрофагов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Все методы были одобрены Институциональным комитетом по уходу и использованию животных (IACUC) Университета Восточной Каролины.
1. Озон (O3) и отфильтрованное воздействие воздуха (День 1)
- Поместите максимум 12 самок C57BL/6J мышей, 8-12 недель, в стальной клетке (с 12 отдельными отсеками) с проволочной сеткой крышки в O3 экспозиции камеры.
- Поместите термометр в камеру экспозиции с клеткой, чтобы точно зафиксировать температуру и влажность.
- Включите кислород и ультрафиолетовый (УФ) свет, который крепится к аппарату.
ПРИМЕЧАНИЕ: Регулируемый воздушный поток (Зgt;30 изменения воздуха/ч) с контролируемой температурой (22-23 градусов по Цельсию) и относительной влажностью (45%-50%) получено аппаратом O3. O3 генерируется системой в камере экспозиции, направляя 100% кислорода через генератор УЛЬТРАВ-свет, а затем смешивается с фильтрованным воздухоснабжением. - Отрегулируйте концентрацию O3 до 1 промилле и регулярно записывайте уровни O3 каждые 10 минут в течение 3 ч. Постоянно следите за температурой и влажностью камерного воздуха, как и концентрация O3 с фотометром УФ-света.
ПРИМЕЧАНИЕ: Фильтрованное воздействие воздуха выполняется в аналогичном аппарате, и только фильтрованное поступление воздуха проходит через камеру экспозиции. - Вернуть животных в их соответствующих клетках с постельными принадлежностями, питание, и вода объявление libitum после 3 ч O3/ фильтрованного воздействия воздуха.
2. Подготовка линии клеток Jurkat T (День 2)
ПРИМЕЧАНИЕ: Все процедуры должны проводиться в кабинете биологической безопасности класса II.
- Культура Jurkat Т-клеток в 24 мл базально-клеточной культуры среднего - 10% FBS 5% пенициллина / стрептомицина при 37 КС и 5% CO2 (Таблица Материала). Jurkat T клетки подвесной линии ячейки, которые могут быть сохранены путем пропуска 1:6-1:8 в предварительно разогретых культивирования средств каждые 3 дня. Не трясите.
- Чтобы подготовить апоптотические клетки, вырастить их до 90% стопроцентной в каждой колбе (которая занимает 3-4 дней, чтобы достичь после прохождения). Для этого исследования, использовать клетки из пяти t75 колбы для получения достаточного количества клеток, используемых в этом протоколе.
ПРИМЕЧАНИЕ: Сопливоеля колба содержит около 20-24 миллионов клеток. - Pipette вверх клетки (которая вся колба) от каждой колбы (приблизительно 24 mL) и переносить клетки к стерильной конической трубке 50 mL используя серологический пипетка. Используйте несколько конических труб окональных труб окональных колб.
- Подсчитайте клетки, удалив 11-й аликот клеток из конической трубки 50 мл и смешайте с 11 злицу мипанов синего пятна и пипетки 11 Зл на гемоцитометрические слайды.
- Вставьте слайд в автоматизированный счетчик ячейки и запишите количество живых ячеек, чтобы вычислить общее количество клеток в каждой колбе, умножив количество живых ячеек на 24, так как каждая колба содержит 24 мл носителей.
- Центрифуги яточной подвески на 271 х г в течение 5 минут при комнатной температуре (RT) для пеллетных клеток.
- Откажитесь от супернатанта путем аспирации и повторно йетю в средствах массовой информации, чтобы получить 3,0 х 106 ячеек на мл.
- Aliquot 5 мл клеток в 100 мм х 20 мм ткани культуры блюда (примерно девять блюд будет использоваться; общее количество клеток в каждом блюде должно быть 15 х 106).
- Используйте одно блюдо для контроля / неэкспонированных, а остальные блюда будут подвергаться УФ.
- Установите ультрафиолетовый кросслинкер на правильный энергетический уровень, нажмите энергетическую кнопку и введите "600" с помощью номерной площадки, которую машина будет читать как 600 j/cm2 х 100.
ПРИМЕЧАНИЕ: УФ-кросслинкерные энергоблоки в "J/cm2 х 100; таким образом, для достижения 60 millijoules / см2, конвертировать единицв в соответствии с УФ-кросслинкер. - Облучать все блюда клетками, не включая контроль, на 60 миллиджоулей (мДж)/см2 с помощью УФ-кросслинкера. Удалите верхнюю крышку ткани культуры блюда во время ВОЗДЕЙСТВИЯ УФ-излучения, как УФ-излучение не будет проникать в пластиковую крышку.
- Инкубировать все блюда в инкубаторе клеточной культуры, включая неэкспонированный контроль, при 37 градусах По цельсии при 5% CO2 на 4 ч.
- Подтвердить апоптоз потокциометрии с помощью апоптоза ассса обнаружения комплект, содержащий аннексию V и пропидий йодид (PI) (маркеры для апоптоза и некроза, соответственно) после 4 ч инкубации, в инструкции производителя26, 27.
ПРИМЕЧАНИЕ: Облучение юркат Т-клеток в УЛЬТРА-кросслинкер на энергетическом уровне 600 J /cm2, после 4 ч инкубации приведет к 75% апоптотические (как ранние, так и поздние) клетки, имеющие более ранний апоптотический фенотип, чем поздний апоптотический фенотип. Это облегчает для альвеолярных макрофагов распознать их и поглотить, как их мембраны бескомпромиссны, в отличие от поздних апоптотарных клеток, что приводит к более высокому энемероцитарного индекса и более точной визуализации альвеолярного макрофафаээнероцитоза в этом исследовании.- Бассейн 333 Зл (1 х 106 клеток) юркат Т-клеток из нескольких блюд (как "без УФ" и "УФ-экспонированных") вместе, чтобы использовать для анализа компенсации труб.
- Aliquot 333 Зл юркат Т-клеток в неокрашенных, приложение V одно пятно, PI одно пятно, не УФ-контроля, и 600 "J/cm2 УФ-экспонированных кислотированных цитометрии труб.
- Центрифуга трубки на 188 х г в течение 5 мин на RT и decant супернатант.
- Вымойте клетки, повторно приостановив в 500 л холодного, 1x фосфат-буфера сольников (PBS).
- Центрифуга и пеллетные клетки при 188 х г в течение 5 мин на RT. Отбросьте супернатант после центрифугации.
- Подготовьте 400 qL 1x связывающего буфера на трубку потока путем разбавления 10x связывающий буфер с дистиллированной водой в то время как клетки центрифугирования.
- Подготовьте инкубационный реагент приложения V и PI (100 л на образец/трубку) в соответствии с инструкциями производителя.
- Декант супернатант после центрифугации и аккуратно resuspend все трубы в 400 зл. L 1x связывающий буфер, а затем добавить 100 qL аннексии V инкубационный реагент для каждого образца трубки. Наконец, добавить 100 злиц из приложения V одно пятно и PI одно пятно на их соответствующих труб, но не добавляйте ничего за 1x связывающий буфер к неокрашенной трубки.
- Инкубировать трубки в темноте в течение 15 минут на RT.
- Центрифуга все клетки на 188 х г в течение 5 мин на RT и декант супернатант.
- Resuspend клетки в 400 злиц 1x связывающий буфер, а затем проанализировать образцы для апоптоза по потоку цитометрии. Соберите не менее 10 000 событий на трубку, чтобы обеспечить точное представление окрашивания.
- Объедините все облученные клетки из посуды в коническую трубку 50 мл и клетки гранул центруляцией при 271 х г в течение 5 мин на РТ.
- Откажитесь от супернатанта из трубки путем аспирации и повторного отвода клеток в 24 мл стерильного фосфатного буферного солевой солевой раствора (PBS) и пеллетных клеток центрифугированием при температуре 271 х г в течение 5 мин при комнатной температуре.
- Откажитесь от супернатанта из трубки путем аспирации и повторной работы клеток в количестве PBS, используемых для дозирования мышей, утвержденных IACUC. Используемая доза составляет от 5-10 х 106 клеток/50 л на мышь; таким образом, для 10 мышей, повторно притяжаться в 500 ЗЛ (количество клеток в каждой дозе варьируется в зависимости от того, сколько клеток культивируется для облучения).
ПРИМЕЧАНИЕ: Макияж по крайней мере две дополнительные дозы для учета любой жидкости, которая может прилипнуть к сторонам кончика пипетки в результате потери клеток.
3. Морин ротоглотки засиливание апоптотические клетки (День 2)
- Подготовка дозирования инокулум апоптотические клетки с помощью пипетки P200 до анестезии мышей, чтобы ускорить процедуру. В соответствии с институциональными руководящими принципами, объем 50 кЛ, содержащий приблизительно 5-10 х 106 клеток, используется для зависания ротоглотки (o.p.) для обеспечения наилучших результатов.
- Анестезия мышей в ясной камере с 2% изофлуран на скорости потока 1 л / мин или в соответствии с институциональными руководящими принципами. Анестезия от одного до двух мышей одновременно; число определяется уровнем комфорта экспериментатора. Наблюдайте картину дыхания и подтвердите глубокие вдохи видимы с отсчетами 2-3 s между вдохами. Проверьте глубину анестезии на отсутствие реакции на щепотку ног.
- Расположите мышь в полулежачем положении на спине. Используйте хирургическую строку, связанную между колышками на наклонной акриловой листовой доске, чтобы приостановить на верхнечелюстные резцы.
- Используя пару тупых не-шедрищи щипки, слегка захватить и потяните мышь язык. Привить апоптотические клетки в полость рта с пипеткой P200. Дозировка является успешным, когда мыши делают треск шум 1-2 с после предоставления дозы.
ПРИМЕЧАНИЕ: Позаботьтесь, чтобы избежать индуцирования травмы либо языка или ротоглотки до апоптотической клетки застоя. - С перчатками палец, осторожно блокировать нос, пока мышь вдыхает в то время как язык убирается. Обложка нос, пока жидкость не видна в полости рта и мышь приняла два или более ингаляций.
ПРИМЕЧАНИЕ: Как мыши обязывают нос передышки, покрытие носа помогает гарантировать, что мышь будет вдыхать апоптотические клетки в легкие. - Снимите мышь с доски для прививки и верните ее в клетку, чтобы можно было восстановиться после анестезии. Поместите мышь на спину, чтобы предотвратить постельные принадлежности или мусора от блокирования nares во время отзыва.
- Подождите 90 минут после мыши восстанавливается после анестезии, чтобы альвеолярные макрофаги поглотить приток апоптотические клетки после того, как все мыши проснулись от анестезии. Как правило, пробуждение после анестезии займет 1-2 мин, что не должно повлиять на исход/время застоя.
4. Сбор и переработка бронхоальвеолярной жидкости для лаважа (День 2)
- Эвтаназия каждой мыши в институциональных руководящих принципов 90 минут после мыши проснулся от анестезии от дозирования с апоптотические клетки. Здесь используется смертельная инъекция кетамина и ксилазина (90 мг/кг и 10 мг/кг соответственно), за которой следует выделение диафрагмы.
ПРИМЕЧАНИЕ: Эта точка времени позволяет достаточно времени для альвеолярных макрофагов, чтобы чувствовать и поглотить апоптотические клетки38. - Взвешивать всех мышей (g) по шкале и рекордные веса. Используйте вес тела для расчета объема BAL (26,25 мл/кг массы тела).
- Поместите мышей на спину и спрей 70% этанола для стерилизации груди и шеи области.
- Сделать 2 "продольный разрез чуть ниже грудины вдоль всей брюшной стороны с хирургическими ножницами, и, держа грудину с щипками, ник диафрагмы, чтобы легкие, чтобы упасть обратно в грудную полость.
- Вырезать боковой по бокам грудной клетки, чтобы легкие больше места, чтобы расширить при вращывания, а затем сложить грудной полости обратно с щипками.
- Сделать 1 "вертикальный разрез вдоль сосуды через шею, чтобы разоблачить трахеи.
- Используйте два щипча, чтобы вытащить мышцы и ткани от трахеи и разоблачить его. Избегайте дополнительных потенциальных кровотечений и резки трахеи, так как она окружена сосуды, продольные мышцы, и соединительной ткани.
- Используйте иглу, чтобы сделать щель в трахеееи (около одной четверти расстояния вниз от головы) и вставить канюлю (18 G х 1,25") с шприцем предварительно загружены с 1x PBS (26,25 мл / кг массы тела, 0,7-1,0 мл в 8-10 недель женщина C57Bl/6J) Hea.
- Нажмите объем PBS в легкие медленно, чтобы легкие, чтобы раздуть то, вытащить объем обратно в шприц. Повторите этот процесс в общей сложности 3 раза.
- Соберите объединенную жидкость для промывки с каждой конкретной мыши в трубке длиной 15 мл.
- Centrifuge бронхоальвеолярной лавировки на 610 х г в течение 6 мин при 4 c и собирать супернатант в трубку 1,5 мл и заморозить при -80 градусов по Цельсию. Гранулы представляют клетки из бронхоальвеолярного пространства.
- Удалите остаточные эритроциты в собранной жидкости BAL, добавив 1 мл буфера лиза ACK RBC в клеточную гранулу, затем хорошо вихрь и лиза в течение 1 мин на льду. После этого добавьте 4 мл PBS, чтобы остановить реакцию лиза.
- Пеллетные клетки центрифугированием при центру в 610 х г в течение 6 мин при 4 градусах По Цельсию и аспирируют супернатант с помощью вакуумного аспиратора.
- Resuspend клетки в 1 мл 1x PBS и 10% FBS к каждой трубе образца BAL. Подсчитайте клетки на гемоситометре для количественной оценки общего количества воздушных камер из каждого образца (без трипансиного синего). Центрифуга 120 л каждого образца на слайды на 56 х г в течение 3 мин, используя среднее ускорение и цитоцентрифуге. Сухие горки на ночь.
5. Расчет альвеолярного макрофафа энероцитетного индекса (День 3)
- Пятно слайды с гематоксилином и эозином, чтобы для расчета как энероцитных и дифференциальных клеток рассчитывается, по крайней мере 200 клеток, подсчитанных с каждого слайда.
- Просмотр слайдов под настройками яркого поля на биологическом микроскопе (лучше всего будет работать цель 20x или 40x).
- Рассчитайте энероцитарный индекс на основе соотношения числа альвеолярных макрофагов, которые фагитозааа апоптотические юркат Т-клетки альвеолярных макрофагов без поглощения апоптотической клетки из общего числа 200 макрофагов на скольдении ячейки. Преобразуйте соотношение в процент для ввода данных. Используйте следующее уравнение:
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
O3 воздействия, как известно, вызывают воспаление легких и травмы, и эвнеросцитоз необходим для поддержания ткани гомеостаза. C57BL/6J самок мышей подверглись воздействию фильтрованного воздуха (FA) или 1 промилле O3 для 3 ч и некропсии 24 ч после воздействия для изучения легочного воспаления и травмы. O3-экспонированных мышей отображается значительное увеличение макрофагов и нейтрофилов в воздушном пространстве по сравнению с группой управления FA (Рисунок 1A,B). Кроме того, O3-экспонированных мышей было значительное увеличение белка BAL, маркер альвеолярной эпителиальной дисфункции барьера 24 ч после экспозиции(рисунок 1C).
Чтобы определить,если O 3-индуцированного легочного воспаления связано с дефектами в альвеолярных макрофаг эвнероцитоз in vivo, C57BL/6J женские мыши были привиты с апоптотической Jurkat T клеток через ротогловские аспирации 24 ч после FA или после O3 воздействия. Апоптоз в клетках Jurkat T был подтвержден цитометрией потока до дозирования, и произошло значительное увеличение в начале (аннексия Vи PI- и поздно (аннексияV и PI)апоптотические клетки(Рисунок 2A, B). Уровень воздействия и время инкубации привели к повторяющимся результатам апоптотической клетки Jurkat T . Увеличенное изображение того, что было определено как энемероцитарный макрофаг, показано на рисунке 3A. Эфероцитарные макрофаги были определены как макрофаги, которые охватили ickat T-клетки (указанные черными стрелками), по сравнению с обычными альвеолярными макрофагами (указанными белыми стрелками) (Рисунок 3B). Когда альвеолярный макрофаг эвнероцитоз был оценен с использованием протокола, было статистически значимоеснижение энефроцитарного индекса O 3-экспонированных группы по сравнению с FA управления(Рисунок 3B, C). Эти данныепоказывают, что O 3-индуцированное воспаление легких связано со снижением очистки апоптотические клетки, которые могут продлить травмы легких и воспаление.
Рисунок 1: O3 воздействие вызывает воспаление легких и травмы. C57BL/6J самки мышей подверглись воздействию фильтрованного воздуха (FA) или 1 промилле O3 для 3 ч. 24 ч после воздействия, мыши были некропсии для анализа легочного воспаления и травмы (n No 6 в группе). (A) Бронхоальвеолярная лаважная (BAL) дифференциалы клеток были рассчитаны, затем эпителиальные (эпи), эозинофилы (эос), лимфоциты (лимфа), макрофаги (МЗ) и нейтрофилы (ПМН) были идентифицированы по крайней мере с 200 клеток, подсчитанных с каждого слайда. (B) Репрезентативное изображение сотовых дифференцианов. (C) Всего белка в жидкости BAL. Данные выражаются в виде индекса SEM (Зп злт; 0,01). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 2: Подтверждение УФ индуцированного апоптоза в клетках Jurkat T. Клетки Jurkat T подверглись воздействию УФ-излучения (60 мДж/см2)с помощью УФ-кросслинкера (модель 1800). После воздействия УФ-излучения, Юркат Т-клетки были инкубированы при 37 кв с 5% CO2 на 4 ч. После инкубации, юркат Т-клетки были окрашены аннексией V и пропидий йодид (PI), а апоптоз был оценен цитометрией потока. Ранние апоптотические, поздние апоптотические и некротические клетки идентифицируются как аннексия V/PI-, приложениеV/PI, приложение V-/PI, соответственно. Представитель потока цитометрии рассеяния участков (с 10000 зарегистрированных событий) из (A) неэкспонированных юркат Т-клеток и (B) УФ-экспонированных Юркат Т-клеток. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 3: O3 воздействия уменьшает альвеолярный макрофаг энефроцитоз. C57BL/6J самки мышей подверглись воздействию фильтрованного воздуха (FA) или 1 промилле O3 для 3 ч. 24 ч после экспозиции, мыши были ротогарингеально привиты примерно 5 х 106 апоптотические клетки Jurkat T. 1,5 ч после зависания была выполнена бронхоальвеолярная лаважка (BAL), а энемероцитарный индекс был рассчитан в макрофагах BAL по световой микроскопии после подсчета 200 макрофагов (n - 11 на группу). (A) Представитель изображение энероцитарного макрофага. (B) Идентификация альвеолярных макрофагов (белые стрелы) и энероцитарного макрофаг (черные стрелы) после FA или O3 воздействия. (C) Расчет энероцитарного индекса после воздействия FA или O3 (зп злт; 0.0001). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 4: Субоптимальный апоптоз юркат Т-клеток с использованием 350 нм матовые луковицы. Клетки Jurkat T облучались с помощью УФ-кросслинкера в течение 10 мин и инкубировали при 37 градусах Цельсия при 5% CO2 на 1 ч. После воздействия УФ-излучения, Юркат Т-клетки были инкубированы при 37 кв с 5% CO2 на 4 ч. После инкубации, юркат Т-клетки были окрашены аннексией V и пропидий йодид (PI), затем апоптоз был оценен цитометрией потока. Ранние апоптотические, поздние апоптотические и некротические клетки идентифицируются как аннексия V/PI-, приложениеV/PI, и приложение V-/PI, соответственно. Показаны представительные участки цитометрии потока (с 10 000 зарегистрированных событий) УФ-экспонированных ячеек Jurkat T с 350 нм лампами. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Эффероцитоз является противовоспалительным процессом, в котором макрофаги очистить апоптотические клетки и мусор, а также производить несколько противовоспалительных посредников9,10,11,12,16 ,18. Несколько моделей эвнероцитоза дали представление о том, как макрофаг является критической клеткой в разрешении воспаления6,7. В последнее время прогрессирование хронических заболеваний легких было связано с дефектами в эвнероцитоз евтероцитоз8,9,15,16,17. Однако в настоящее время неясно, приводит ли воздействие загрязнителей воздуха, таких как O3, к дефектам в эвнероцитозах. Этот протокол позволяет оценить альвеолярный макрофаг эпреноцитоз после воздействия O3. Он также количественно efferocytosis in vivo с помощью световой микроскопии и позволяет измерения эвнероцитоза в контексте микросреды легких, без манипуляций ex vivo или дорогих флуоресцентных красителей. Хотя этот протокол выполняется в контексте воздействия O3, несколько моделей воспаления легких и травмы могут быть использованы с этим протоколом для оценки альвеолярного макрофафага эпрероцитоза.
Преимуществами этого метода перед существующими методами являются его способность анализировать альвеолярные макрофаги в контексте физиологической среды. Анализ ex vivo альвеолярных макрофагов включает покрытие и инкубацию апоптотические клетки. Покрытие альвеолярных макрофагов может вызвать как физиологические, так и геномные изменения, которые могут изменить эффоцитоз28,29,30. Кроме того, в легких, альвеолярные макрофаги существуют в микроокружении, которое содержит сурфактант и компоненты жидкости подкладка легких, которые, как известно, влияет на функцию макрофага31,32,33, 34,35. Наш метод позволяет измерения энефроцитоза в легких без каких-либо манипуляций ex vivo, что более физиологически актуально. Будущие применения этого протокола могут привести к более углубленным исследованиям о том, как микросреда легких может изменить альвеолярный эпрероцитоз макрофага.
Важнейшим компонентом этого протокола является генерация апоптотарных клеток для оценки альвеолярного эффоцитоза макрофага. Это включает в себя оптимизацию правильного уровня воздействия УФ, чтобы вызвать апоптоз, а не некроз. Наш протокол использует уф-кросслинкер с 254 нм лампы волнеи и уровень экспозиции 60 мДж /см2. Выбор УФ-лампы имеют решающее значение в производстве апоптоза, а не некроза. 350 нм УФ-лампы отлично подходят для протеиновой мембраны перекрестной связи и стерилизации, но не вызывают апоптоза35,36,37. Пример точечного участка клеток Jurkat T, подвергающихся воздействию 60 мДж/см2 с 350 нм луковиц, показан на рисунке 4 со значительным увеличением поздних апоптотических и некротических клеток. Кроме того, протокол использует 4 ч инкубационного воздействия после УФ-облучения. Для оптимизации этой части протокола мы ранее изучили различные инкубационные сроки и обнаружили, что 1,5 и 2 ч инкубационного послеэкспозиции только дали около 40% апоптоза, с энероцитарным индексом менее 5% (данные не показаны). Основываясь на современной литературе, всего апоптотических клеток в 70%-80% достаточно для измерения эффоцитоза38.
Ограничением этого протокола является то, что он исследует эмероцитную реакцию всех макрофагов в воздушном пространстве после воздействия FA или O3 и не отличает макрофаги резидентов тканей от набранных макрофагов. Макрофаг, называемый альвеолярным макрофагом, происходит от печени плода, в то время как завербованные макрофаги происходят из кровеносного эмбрионального происхождения. После травмы, легкие могут иметь очень неоднородные макрофаг населения с уникальной генетикой и выражением маркеров поверхности клеток28,29,30,31,32, 33,34,35. Известно, что иммунологическая реакция и функция этих популяций макрофагов различны; Однако, недавние исследования показали, что ткани резидентов макрофаг имеют большую энероцитарную реакцию по сравнению с набранных макрофагов29,30,31. Определение энемероцитарной реакции макрофагов резидентов тканей против набранных макрофагов можно оценить с помощью текущего протокола; однако популяции макрофагов должны быть очищены FACS и покрыты на слайдах для анализа. Кроме того, этот протокол оценивает альвеолярную макрофагную энероцитетную функцию в одном штамме инбредных, коммерчески доступных мышей. Ранее сообщалось, что различные штаммы мышей показывают различные реакции на воздействие O3, в том числе воспаление легких39,40. Таким образом, могут быть различия в альвеолярных макрофаг эффоцитоз на основе штамма исследуются. Это переменная, которая должна быть рассмотрена при выполнении этого in vivo асссе.
В заключение, описанный выше протокол позволяет оценить альвеолярный макрофег эпрероцитоз in vivo. Этот протокол является экономически эффективным и простым, что делает его анализ, который может быть широко использован. Кроме того, этот метод может быть применен к многочисленным моделям травмлегких и / или воспаление, чтобы увеличить понимание того, как различные легочные оскорбления могут изменить макрофаг эпреноцитоза.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не заявляют о конфликте интересов.
Acknowledgments
Это исследование финансируется Институтом воздействия на здоровье Уолтера А. Розенблита премии и NIEHS R01ES028829 (к K. M. G). Мы хотели бы поблагодарить д-р Дайан Уолтерс (Департамент физиологии, ECU) за ее помощь в получении репрезентативных изображений альвеолярных макрофагов.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Annexin V-FITC Kit | Trevigen | 4830-250-K | The TACS Annexin V-FITC Kit allows rapid, specific, and quantitative identification of apoptosis in individual cells when using flow cytometry. |
BCL2 Jurkat T Cells | ATCC | ATCC CRL-2899 | The BCL2 Jurkat cell line was derived by transfecting human Jurkat T cells with the pSFFV-neo mammalian expression vector containing the human BCL-2 ORF insert and a neomycin-resistant gene. Has been for models of measuring efferocytosis. |
Countess II Automated Cell Counter | Thermofisher | AMQAX1000 | It is a benchtop assay platform equipped with state-of-the-art optics, full autofocus, and image analysis software for rapid assessment of cells in suspension. Very easy to use. |
Cytospin 4 Cytocentrifuge | Thermofisher | A78300003 | Provides economical thin-layer preparations from any liquid matrix, especially hypocellular fluids such as bronchoalveolar lavage fluid. |
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated | Thermofisher | 16140071 | Provides Nutrients to cultured cells for them to grow. It is standard for cell culture. |
Kwik-Diff Reagent 2, Eosin | Thermofisher | 9990706 | Eosin staining that stains cytoplasm. |
Kwik-Diff Reagent 1, Fixative | Thermofisher | 9990705 | Fixes cells to be stained by H&E. |
Kwik-Diff Reagent 3, Methylene Blue | Thermofisher | 9990707 | Methylene Blue staining that stains the nucleus. |
Penicillin-Streptomycin | Sigma/Aldrich | P0781-100ML | Penicillin-Streptomycin is the most commonly used antibiotic solution for culture of mammalian cells. Additionally it is used to maintain sterile conditions during cell culture. |
RPMI 1640 Medium, GlutaMAX Supplement | Thermofisher | 61870036 | RPMI 1640 Medium (Roswell Park Memorial Institute 1640 Medium) was originally developed to culture human leukemic cells in suspension and as a monolayer. RPMI 1640 medium has since been found suitable for a variety of mammalian cells, including HeLa, Jurkat, MCF-7, PC12, PBMC, astrocytes, and carcinomas. Helps grow Jurkat T cells fast and efficiently. |
Stratagene UV Stratalinker 1800 UV Crosslinker | Cambridge Scientific | 16659 | The Stratalinker UV crosslinker is designed to induce apoptosis, crosslink DNA or RNA to nylon, nitrocellulose, or nylon-reinforced nitrocellulose membranes. |
Teledyne T400 ultraviolet light photometer | Teledyne API | T400 | The Model T400 UV Absorption analyzer uses a system based on the Beer-Lambert law for measuring low ranges of ozone in ambient air. |
Teledyne T703 Ozone calibrator | Teledyne API | T703 | Provides feedback control of the UV lamp intensity, assuring stable ozone output. |
References
- Puttur, F., Gregory, L. G., Lloyd, C. M. Airway macrophages as the guardians of tissue repair in the lung. Immunology and Cell Biology. , (2019).
- Gregoire, M., et al. Impaired efferocytosis and neutrophil extracellular trap clearance by macrophages in ARDS. European Respiratory Journal. 52 (2), (2018).
- Fan, E. K. Y., Fan, J. Regulation of alveolar macrophage death in acute lung inflammation. Respiratory Research. 19 (1), 50 (2018).
- Michlewska, S., McColl, A., Rossi, A. G., Megson, I. L., Dransfield, I. Clearance of dying cells and autoimmunity. Autoimmunity. 40 (4), 267-273 (2007).
- Bhattacharya, J., Westphalen, K. Macrophage-epithelial interactions in pulmonary alveoli. Seminars in Immunopathology. 38 (4), 461-469 (2016).
- Donnelly, L. E., Barnes, P. J. Defective phagocytosis in airways disease. Chest. 141 (4), 1055-1062 (2012).
- Morimoto, K., Janssen, W. J., Terada, M. Defective efferocytosis by alveolar macrophages in IPF patients. Respiratory Medicine. 106 (12), 1800-1803 (2012).
- Vandivier, R. W., et al. Dysfunctional cystic fibrosis transmembrane conductance regulator inhibits phagocytosis of apoptotic cells with proinflammatory consequences. American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 297 (4), L677-L686 (2009).
- Grabiec, A. M., et al. Diminished airway macrophage expression of the Axl receptor tyrosine kinase is associated with defective efferocytosis in asthma. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 140 (4), 1144-1146 (2017).
- Chen, W., Frank, M. E., Jin, W., Wahl, S. M. TGF-beta released by apoptotic T cells contributes to an immunosuppressive milieu. Immunity. 14 (6), 715-725 (2001).
- Gao, Y., Herndon, J. M., Zhang, H., Griffith, T. S., Ferguson, T. A. Antiinflammatory effects of CD95 ligand (FasL)-induced apoptosis. Journal of Experimental Medicine. 188 (5), 887-896 (1998).
- O'Brien, B. A., Fieldus, W. E., Field, C. J., Finegood, D. T. Clearance of apoptotic beta-cells is reduced in neonatal autoimmune diabetes-prone rats. Cell Death and Differentiation. 9 (4), 457-464 (2002).
- Shen, Z. X., et al. Mineralocorticoid Receptor Deficiency in Macrophages Inhibits Atherosclerosis by Affecting Foam Cell Formation and Efferocytosis. Journal of Biological Chemistry. 292 (3), 925-935 (2017).
- Allard, B., Panariti, A., Martin, J. G. Alveolar Macrophages in the Resolution of Inflammation, Tissue Repair, and Tolerance to Infection. Frontiers in Immunology. 9, 1777 (2018).
- Hamon, R., et al. Bushfire smoke is pro-inflammatory and suppresses macrophage phagocytic function. Science Reports. 8 (1), 13424 (2018).
- Angsana, J., Chen, J., Liu, L., Haller, C. A., Chaikof, E. L. Efferocytosis as a regulator of macrophage chemokine receptor expression and polarization. European Journal of Immunology. 46 (7), 1592-1599 (2016).
- Karaji, N., Sattentau, Q. J. Efferocytosis of Pathogen-Infected Cells. Frontiers in Immunology. 8, 1863 (2017).
- Brouckaert, G., et al. Phagocytosis of necrotic cells by macrophages is phosphatidylserine dependent and does not induce inflammatory cytokine production. Molecular Biology of the Cell. 15 (3), 1089-1100 (2004).
- Gonzalez-Guevara, E., et al. Exposure to ozone induces a systemic inflammatory response: possible source of the neurological alterations induced by this gas. Inhalation Toxicology. 26 (8), 485-491 (2014).
- Robertson, S., et al. CD36 mediates endothelial dysfunction downstream of circulating factors induced by O3 exposure. Toxicological Sciences. 134 (2), 304-311 (2013).
- Kilburg-Basnyat, B., et al. Specialized Pro-Resolving Lipid Mediators Regulate Ozone-Induced Pulmonary and Systemic Inflammation. Toxicological Sciences. 163 (2), 466-477 (2018).
- Jakab, G. J., Spannhake, E. W., Canning, B. J., Kleeberger, S. R., Gilmour, M. I. The effects of ozone on immune function. Environ Health Perspect. 103 Suppl 2, 77-89 (1995).
- Gilmour, M. I., Hmieleski, R. R., Stafford, E. A., Jakab, G. J. Suppression and recovery of the alveolar macrophage phagocytic system during continuous exposure to 0.5 ppm ozone. Experimental Lung Research. 17 (3), 547-558 (1991).
- Nayak, D. K., Mendez, O., Bowen, S., Mohanakumar, T. Isolation and In Vitro Culture of Murine and Human Alveolar Macrophages. Journal of Visualized Experiments. 10 (134), (2018).
- Tao, H., et al. Macrophage SR-BI mediates efferocytosis via Src/PI3K/Rac1 signaling and reduces atherosclerotic lesion necrosis. Journal of Lipid Research. 56 (8), 1449-1460 (2015).
- Coe, L. M., et al. FGF-23 is a negative regulator of prenatal and postnatal erythropoiesis. Journal of Biological Chemistry. 289 (14), 9795-9810 (2014).
- Yong, W. K., Abd Malek, S. N. Xanthohumol induces growth inhibition and apoptosis in ca ski human cervical cancer cells. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. , 921306 (2015).
- Van de Laar, L., et al. Yolk Sac Macrophages, Fetal Liver, and Adult Monocytes Can Colonize an Empty Niche and Develop into Functional Tissue-Resident Macrophages. Immunity. 44 (4), 755-768 (2016).
- Lavin, Y., et al. Tissue-resident macrophage enhancer landscapes are shaped by the local microenvironment. Cell. 159 (6), 1312-1326 (2014).
- Beattie, L., et al. Bone marrow-derived and resident liver macrophages display unique transcriptomic signatures but similar biological functions. Journal of Hepatology. 65 (4), 758-768 (2016).
- Svedberg, F. R., et al. The lung environment controls alveolar macrophage metabolism and responsiveness in type 2 inflammation. Nature Immunology. , (2019).
- Crowther, J. E., et al. Pulmonary surfactant protein a inhibits macrophage reactive oxygen intermediate production in response to stimuli by reducing NADPH oxidase activity. Journal of Immunology. 172 (11), 6866-6874 (2004).
- Silveyra, P., Floros, J. Genetic variant associations of human SP-A and SP-D with acute and chronic lung injury. Frontiers in Bioscience. 17, 407-429 (2012).
- Schagat, T. L., Wofford, J. A., Wright, J. R. Surfactant protein A enhances alveolar macrophage phagocytosis of apoptotic neutrophils. Journal of Immunology. 166 (4), 2727-2733 (2001).
- Gomez Perdiguero, E., et al. Tissue-resident macrophages originate from yolk-sac-derived erythro-myeloid progenitors. Nature. 518 (7540), 547-551 (2015).
- Nebbioso, A., et al. Time-resolved analysis of DNA-protein interactions in living cells by UV laser pulses. Scientific Reports. 7 (1), 11725 (2017).
- Novak, Z., et al. Efficacy of different UV-emitting light sources in the induction of T-cell apoptosis. Photochemistry and Photobiology. 79 (5), 434-439 (2004).
- Park, Y. J., et al. PAI-1 inhibits neutrophil efferocytosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (33), 11784-11789 (2008).
- Kleeberger, S. R., Reddy, S., Zhang, L. Y., Jedlicka, A. E. Genetic susceptibility to ozone-induced lung hyperpermeability: role of toll-like receptor 4. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 22 (5), 620-627 (2000).
- Wesselkamper, S. C., Chen, L. C., Kleeberger, S. R., Gordon, T. Genetic variability in the development of pulmonary tolerance to inhaled pollutants in inbred mice. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 281 (5), L1200-L1209 (2001).