Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Abbiategrasso Beyin Bankası Toplama, İşleme ve Yaşlanma Beyinleri Karakterize için Protokol

Published: June 3, 2020 doi: 10.3791/60296
* These authors contributed equally

Summary

Bu protokol, beyin bağışı programı ve beyinlerin doğru karakterizasyonu yoluyla bireysel beyin yaşlanma yörüngelerini izlemek için bir yöntem açıklar. Beyin bağışçıları seri çok boyutlu değerlendirmeler de dahil olmak üzere uzun vadeli bir uzunlamasına çalışmada yer almaktadır. Protokol beyin işleme ve doğru bir tanı metodolojisi ayrıntılı bir açıklamasını içerir.

Abstract

Sürekli yaşlanan bir popülasyonda nörodejeneratif bozuklukların görülme sıklığının artması beklenmektedir. Hastalık mekanizmalarının anlaşılması önleyici ve iyileştirici önlemler inanahtarıdır. Bunu başarabilmek için en etkili yol hastalıklı ve sağlıklı beyin dokusunun doğrudan incelenmesi yoluyla. Yazarlar, bir antemortem beyin bağışı programına kayıtlı bireyler tarafından bağışlanan kaliteli beyin dokusu elde etmek, işlemek, karakterize ve depolamak için bir protokol mevcut. Bağış programı, insanlara karşı yüz yüze empatik bir yaklaşım, birbirini tamamlayan klinik, biyolojik, sosyal ve yaşam tarzı bilgileri koleksiyonu ve normal yaşlanma ve bilişsel gerilemenin bireysel yörüngelerini izlemek için zaman içinde seri çok boyutlu değerlendirmeler içermektedir. Birçok nörolojik hastalık asimetrik olduğundan, beyin bankamız taze numuneleri dilimleme için benzersiz bir protokol sunar. Her iki yarımkürenin beyin bölümleri dönüşümlü olarak dondurulur (-80 °C'de) veya formalin ile sabitlenir; bir yarımkürede sabit bir dilim diğer yarımkürede donmuş bir karşılık gelir. Bu yaklaşımla, tüm dondurulmuş maddelerin tam bir histolojik karakterizasyonu elde edilebilir ve her iki yarımküreden histolojik olarak iyi tanımlanmış dokular üzerinde omik çalışmalar yapılabilir ve böylece nörodejeneratif hastalık mekanizmalarının daha eksiksiz bir değerlendirmesini yapabilirsiniz. Bu hastalıkların doğru ve kesin tanısı ancak klinik sendrom ile nöropatolojik değerlendirmenin birleştirilmesiyle elde edilebilir ve bu da patogenezin yorumlanması için gerekli önemli etiyolojik ipuçlarını ekler. Bu yöntem, yalnızca sınırlı bir coğrafi alanı kapsadığı için zaman alıcı, pahalı ve sınırlı olabilir. Sınırlamaları ne olursa olsun, sağladığı yüksek karakterizasyon derecesi ödüllendirici olabilir. Nihai hedefimiz ilk İtalyan Beyin Bankası'nı kurmak, tüm bunlar olurken nöropatolojik olarak doğrulanmış epidemiyolojik çalışmaların önemini vurgulamaktır.

Introduction

WHO'ya göre, şu anda yaklaşık 50 milyon kişi demans hastası ve bu rakamın 2050 yılına kadar üçkatına çıkarılaması öngörülüyor. Alzheimer Hastalığı demans önemli nedenidir, serebrovasküler hastalık ve diğer yaşa bağlı nörodejeneratif bozukluklar izledi. DSA, 2017 yılında demans konusunda farkındalığı artırmak ve buna karşı küresel bir eylem planını teşvik etmek için Küresel Demans Gözlemevi'nigeliştirdi. Her bireyin kendi beyin yaşlanma yörüngesi vardır, bu nedenle tedavi için arama nörodejeneratif hastalıkların patogenezkarmaşıklığı nedeniyle zor olabilir. Belki de, her kişi onu ya da kendi patogenezi kişiselleştirilmiş bir yaklaşım gerektiren beyin dokusu nda yazılı sahip. Böylece, beyin dokusu nun çalışma nörodejenerasyon mekanizmaları anlamak için anahtar olacaktır.

Nörolojitarihine baktığımızda, en etkileyici ve çığır açan keşiflerin insan beyninin doğrudan incelenmesi olmadan asla gerçekleşemeyeceğini fark ettik. Zaman boyunca, çalışılacak beyin dokusunun kaynağı ham diseksiyonlar, rasgele 'şans karşılaşmaları' ve bazı durumlarda yasadışı ticaret, organize beyin koleksiyonları ve stratejik modern beyin bankaları değişti. Birçok etik yönleri göz önünde bulundurulması, modern beyin bankalarını geçmişin beyin koleksiyonlarından farklı etkileyen başlıca faktörlerden biridir. İlk gerçek modern Beyin Bankaları (BBs)20. Nicholas Corsellis ve Wallace Tourtelotte modern beyin bankacılığının öncüleri olarak kabul edilebilir. İngiltere'de, Corsellis çeşitli zihinsel ve nörolojikbozukluklar2 etkilenen 1000'den fazla iyi belgelenmiş beyinler üzerinde tutan bir koleksiyon monte . Ayrıca, Corsellis biyokimyasal testler uğruna buz taze beyin dokusu korumak için ihtiyaç ortaya yardımcı oldu3. Bu arada ABD'de, Wallace Tourtelotte potansiyel beyin donörlerin talep kolaylaştırmak ve toplanan beyinler tam bir tıbbi ve nörolojik geçmişi 4 eşlik etmesini sağlamak için antemortem beyin bağışı programları tanıttı4,5. Beyin koleksiyonları ve modern BB'ler hakkında tarihsel bir genel bakış için Carlos ve ark. 6 .

Peki neden hala insan beynine ihtiyacımız var? Beyin hastalıkları sadece nöropatolojik inceleme sonrasında kesin bir tanı verilebilir. Nöropatoloji klinik tanıyı zorlar ve klinik semptomların doğru yorumlanmasının ve yeni sindromik varyantların histolojik bazlarının keşfinin anahtarıdır. Gerçekten de tanı patolojik tabloya göre yeniden tanımlanabilir. Bununla birlikte, otopsi oranı yenilikçi nörogörüntüleme teknikleri nin son gelişimi nedeniyle son yıllarda azalmıştır. Beyin görüntüleme yoluyla, beyindeki morfolojik, fonksiyonel ve metabolik değişiklikler, hem de protein misfolding ölçüde, vivoolarak değerlendirilebilir . Ancak, in vivo nörogörüntüleme ve diğer biyomarker çalışmalar sadece ince hücresel ve moleküler değişiklikleri tespit edemiyoruz gibi patolojik resmin bir "tahmin" verebilir. Moleküler görüntülemedeki ilerlemeler ve yeni biyobelirteçlerin, hedef moleküllerin veizleyiciler7'nin (örneğin, amiloid, TAU, mikroglial izleyiciler) keşfi, insan beynini klinik değerlendirmeler ve biyomarker testlerinden elde edilen verilerin yorumlanması için daha da vazgeçilmez kılmaktadır. Ayrıca, omik teknolojileri (genomik, epigenomik, transkripsiyon, metabolomikler, proteomikler, lipidomikler, vb), taze ve dondurulmuş beyin dokusu üzerinde yapılan, hastalık mekanizmaları anlamak ve risk genleri keşfetmek için yeni olanaklar açtı, yeni tanı ve prognostik belirteçleri, ve potansiyel ilaç hedefleri8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23.

Bu amaçlar için, modern BBs arşiv iyi karakterize, yüksek kaliteli beyin dokuları onları bilimsel topluluk için kullanılabilir hale3,24. BBs tarafından sağlanan beyinler tam bir klinik geçmişi eşlik etmelidir. BB'nin faaliyeti aşağıdakileri içerir: (1) Hastalıklı ve sağlıklı bireylerin beyin bağışı programlarına tanınması ve işe alınması; ideal koşul tam bir klinik, yaşam tarzı ve sosyal tarih elde etmek için yaşam boyunca donörlerin çok disiplinli bir takip elde etmek olacaktır, ve biyomarker profilleri; gerçekten de, bilişsel rezerv ve beyin yapısı yaşam tarzı ve sosyo-eğitim faktörleri bağlıdır25,26, bu yüzden bu bilgiler eldeki toplam veri zenginleştirir. (2) Beyin (beyin, beyincik ve beyin sapından oluşan) ve ilgili dokuların (örneğin, omurilik, kranial sinirler ve ganglia, vb.) donörün ölümünden sonra edinimi, tüm bunlar sırasında standart yasal ve etik düzenlemelere uyulması. (3) Uygun işleme (diseksiyon, fiksasyon, dondurma) beynin, standart bir operatif protokolde tanımlandığı gibi, yüksek kaliteli doku elde etmek ve multidisipliner araştırmalarda gelecekte kullanıma izin vermek. (4) Kesin tanıyı sağlayan ayrıntılı nöropatolojik karakterizasyon. (5) Depolama ve araştırma topluluğuna doku materyali dağıtımı27,28.

Tüm BB'ler hem dondurulmuş hem de formalin-sabit-parafin gömülü dokuları saklar. Her BB'nin kendi protokolü vardır. Biyomedikal Araştırma Enstitüsü (New Jersey)29 ve serebrovasküler patoloji30Deramecourt çalışma bihemisferik kesme protokolü gibi özel çalışmalar dışında, dünyanın en büyük BBs sadece orta hat boyunca serebrum, beyincik ve beyin sapı kesti (sagittal düzlem). Bir yarısı taze incelenir ve daha sonra biyokimyasal çalışmalar için dondurulmuş, diğer histopatolojik değerlendirme için formalin sabitise. Biyokimyasal ve histopatolojik analizler her yarımkürede ayrı ayrı yapılır. Hangi tarafın sabit veya dondurulmuş (yanallık) olarak karar, tekil banka31,32,33,34,35bağlıdır. Birçok nörolojik hastalık asimetrik olduğu gibi, bizim BB taze beyin dilimleme için benzersiz bir protokol sunuyor: beyin sapı bitişik bölümleri ve her yarımküre dönüşümlü sabit ve dondurulmuş; bir yarımkürede sabit bir dilim diğer yarımkürede donmuş bir karşılık gelir. Bu yöntem le beyin dokusunun kullanımı optimize edilmiştir ve her iki yarımkürenin her iki alanından histolojik ve biyokimyasal bilgileri elde etme ve karşılaştırma olanağı ile tüm dondurulmuş maddelerin tam bir histolojik karakterizasyonu elde edilebilir.

Beyin bankası projemizin çerçevesi Abbiategrasso kasabasıdır. Abbiategrasso, Kuzey İtalya'da Milano şehrinin yaklaşık 22 km güneybatısında küçük bir kasabadır. Yaklaşık 32.600 kişilik bir nüfusa sahiptir. Golgi-Cenci (GC) Vakfı'naev sahipliği yapmaktadır. GC Vakfı büyük bir Rehabilitasyon Geriatrik Hastanesi (ASP Golgi-Redaelli) bir parçasıdır ve yaşlanma ve yaşlı bakımı hakkında araştırma odaklanan bir enstitüdür. Özellikle zihinsel yaşlanma, onu etkileyen sosyal ve davranışsal faktörler ve yaşa bağlı nörobilişsel bozuklukların (NPH) altında yatan biyoloji ve patolojiyi incelemeye odaklanır. 2009 yılında GC Vakfı 1321 katılımcıyla (1644 uygun deneden: ilk yanıt oranı %80,3) ile yeni bir uzunlamasına çalışma başlattı. 1935 ve 1939 yılları arasında (70-75 yaş ları arasında), Kafkas kökenli, aynı küçük coğrafi bölgede yaşayan doğdu. Çalışma InveCe.Ab (Invecchiamento Cerebrale Abbiategrasso; İngilizce: Beyin Yaşlanma Abbiategrasso, ClinicalTrials.gov, NCT01345110) olarak adlandırıldı ve şu anda devam etmektedir. InveCe.Ab, demansın görülme sıklığını, prevalansını ve doğal tarihini değerlendirmek için maksimum homojenliğe ve en az değişkenliğe sahip bir kohort, davranışsal, psikososyal, klinik ve biyolojik değişkenler de dahil olmak üzere olası risk veya koruyucu faktörleri değerlendirmek için planlanmaktadır36. Kohortun özellikleri Şekil 1 ve Tablo 1'degösterilmiştir. Epidemiyolojik veriler Avrupa popülasyonundaki demans eğilimi ile tutarlıdır37,38 ve InveCe.Ab katılımcıları homojen genetik ve çevresel özelliklere sahiptir, normal yaşlanmadan nörobilişsel bozukluklara kadar olan yörüngeyi incelemek için iyi bir modeli temsil eder. Gerçekten de, homojen popülasyonlar yeterli istatistiksel güce ulaşmak için daha az deneklere ihtiyaç duyarlar. InveCe.Ab metodolojisi zaten başka bir yerdebildirilmiştir 36 ama periyodik kontroller yoluyla çok boyutlu yaklaşım altını çizmek için önemlidir (her 2-3 yılda) dahil değerlendirmeler aynı seti kullanarak: kan örnekleme (metabolik panel, homosistein ve vitaminler, profil Apolipoprotein E (APOE) ve biliş ve yaşlanma ile ilgili diğer genetik polimorfizmler için DNA ekstraksiyonu, antropometrik ölçümler (ağırlık, boy ve bel), Talking While Walking Test (çift görev testi), yaşam tarzı (Akdeniz diyet bağlılık, fiziksel aktivite ve bilişsel bağlılık düzeyleri) ve sosyal faktörler (sosyal tutulum, yalnızlık), bir nöropsikolojik değerlendirme ve klinik genel muayene değerlendirmek için bir röportaj. Bu kadar uzunlamasına verileri postmortem nöropatolojik verilerle karşılaştırmak araştırma için çok önemli olacaktır. Bu nedenle, ekibimiz ve özellikle Dr Michela Mangieri yukarıda belirtilen nöropatolojik yaklaşım gebe. 2014 yılından bu yana ve ikinci takip sırasında, InveCe.Ab katılımcıların beyinlerini bağışlamak istendi, ve böylece Abbiategrasso Beyin Bankası (ABB)doğum hakkında getirerek. ABB çekirdek bağış InveCe.Ab katılımcılar ama ABB şimdi diğer gönüllü bağış açıktır. Onlar ASP Golgi-Redaelli, farklı nörolojik hastalıklar veya ABB Projesi hakkında bilgi ve aynı coğrafi bölgeye ait yetişkin gönüllüler (Abbiategrasso ve çevresi) ile tutulmuş birkaç hasta ev hastalardır. Tüm bağışçılar aynı değerlendirme protokolünden geçer.

Yazarlar, normal yaşlanmanın bireysel yörüngelerini ve NCD'lere olası ilerlemeyi izlemek ve bu tür bağışçılardan elde edilen beyinleri doğru bir şekilde yönetmek, işlemek ve karakterize etmek için bir yöntem önermektedirler. Ayrıca amacımız, bireylerin beynin refahı ile ilgili periyodik nörolojik değerlendirmeler, seminerler ve eğitim faaliyetlerine katılmaları ve araştırma amacıyla beyin bağışı konusundaki farkındalıklarını artırmalarıdır.

Protocol

Kurumumuzun İnsan Araştırma Etik Komitesi ve BNE Davranış Kuralları doğrultusunda ABB, faaliyetlerini etik standartlara uygun olarak gerçekleştirmektedir39,40. Beyin hasat prosedürü sunuldu ve InveCe.Ab çalışma bağlamında Pavia Üniversitesi Etik Komitesi tarafından onaylandı36. Çalışma prosedürleri, 1964 Helsinki Bildirgesi'nde ve aşağıdaki değişikliklerde belirtilen ilkelere uygun olarak uygulanıyordu. Onay formu eksiksiz dir ve kolayca anlaşılır. Bağış programına katılmak kişisel bir karardır ve tam bir farkındalık gereklidir. Bir kişinin onay formunu imzalamaya yetkili görülmemesi durumunda, yasal vasi veya en akrabası (NOK) tarafından yetki belgesi verilir. Tablo 2, beyin bağışı için dahil etme ve dışlama kriterlerini rapor eder. Araştırma Federazione Alzheimer Italia gözetiminde yapıldı.

1. Beyin bağışı programına işe alım

  1. Projeyi (bağış programının kapsamı; beyin kaldırma, koruma, kullanma ve dağıtım süreci), herhangi bir zamanda programdan çekilme hakkı, anonimliğin korunması ve takip stratejilerini sunmak için beyin bağışı ve NOK ve/veya yasal vasilerine ilgi duyan denekleri toplayın. Ek biyomarker incelemeleri ve genetik testler olasılığını tartışın. Sonuçlar hakkında bilgilendirilmek için potansiyel donörün veya NOK'unun isteklerine dikkat edin.
  2. Hem Vakıf hem de bağışçı için maddi kazanç eksikliği de dahil olmak üzere tüm ekonomik yönlerini açıklayın (beyinler bağışlanır ve fedakarca dağıtılır). ABB'nin vücut taşıma masraflarını karşıladığını, aile ise cenaze, defin veya yakma masraflarını karşıladığını bildirin.
  3. Kabul edilmesi durumunda, bağış programına katılmak için onay imzasını alın. Bağışçıya anonimliği garanti etmek için tek bir sayısal kod verin. Uzunlamasına çalışmaya katılanların kimlik numarasını yazın ve beyin bankasının iki donör alt grubundan kolayca ayrılması için başka bir kod sağlayın (uzunlamasına çalışmaya katılanlar veya katılımcılar olmayanlar; bkz. Tablo 3).
  4. Bağışçıya donör ününü beyan eden ve Beyin Bankası'na ölümünü bildirmek için telefon numarasını (7/24 mevcut) gösteren bir kimlik kartı verin.

2. Donör değerlendirme ve seri takipleri

NOT: Aşağıda belirtilen sınavların yalnızca bazıları ve tümü için izin vermek mümkündür. Tüm klinik değerlendirmeler bir nörolog, nöroloji konusunda uzman bir geriatri uzmanı ve 3 psikolog da dahil olmak üzere aynı ekip tarafından yapılmaktadır. Yeni semptomlar gelişirse veya bilişsel gerileme ilerlerse, takipler arasındaki zaman aralığı kısaltılabilir.

  1. InveCe.Ab çalışmasında olduğu gibi, özerklik derecesi (ADL, IADL), kişisel alışkanlıklar, zihinsel işlevleri etkileyebilecek sosyal ve yaşam tarzı faktörleri de dahil olmak üzere bir yaşam tarzı-sosyal anket elde edin. Genetik, enfektif, toksik, metabolik, otoimmün, kardiyovasküler, travmatik, dejeneratif, neoplastik ve nörolojik hastalıklar la ilgili bilgilerle aile, tıbbi ve nörolojik geçmişi toplayın. Önceki klinik muayeneleri toplayın ve farmakolojik tedavileri listelayın.
  2. Kranial sinirler fonksiyonu, fundus oculi, görme alanı, kas gücü ve sesi, duyarlılıklar, tendon refleksleri, ekteroseptif ve ilkel refleksler, menenjit işaretleri, duruş, yürüyüş, hareketler, koordinasyon, sfinkerik fonksiyonlar ve odak veya Babinski işaretleri herhangi bir varlığı için test dahil olmak üzere kapsamlı bir nöro-motor değerlendirme yürütmek. Dili, zihinsel durumu ve davranıştaki her türlü değişikliği değerlendirin.
  3. Sözel ve görsel hafıza, dikkat, psikomotor hız, dil, semantik bellek, yürütme fonksiyonları ve visuospatial yetenekler (Ayrıntılar içinTablo 4) : küresel biliş ve belirli bilişsel alanların tam bir nöropsikolojik değerlendirme de dahil olmak üzere kapsamlı bir nöro-bilişsel değerlendirme yürütmek. Depresyonun varlığını göz önünde bulundurun (CES-D ölçeği).
  4. Hem kan kimyası analizinde(Tablo 5)hem de DNA, plazma ve periferik kan mononükleer hücrelerinin (PBMC) izolasyonve depolanmasında kullanılan kan örneğini elde edin. APOE genotipleme (rs429358 ve rs7412) (InveCe.Ab katılımcılarında daha kapsamlı bir genetik profilleme belirlenmiştir; bkz. Tablo 6). Kantitatif analiz (QEEG) için bir EKG (kardiyak değişiklikler, atriyal fibrilasyon) ve istirahat durumu Elektroensefalogram kaydedin.
  5. Beyin omurilik sıvısı (BOS) TAU, fosfo-TAU ve β-amiloid ve beyin görüntüleme (MRG in vivo dejenerasyon, iskemi veya inflamasyon tespit etmek için dahil olmak üzere isteğe bağlı biyomarker test düşünün; FDG-PET metabolik yetmezliği tespit etmek için; PIB-PET Alzheimer patofizyolojisi ile ilgili beyin amiloidoz tespit etmek).
  6. Beyin bağışçısının sonraki check-up programını planlayın. Farklı yaş gruplarına göre zaman aralıkları ayarlayın (64 yaşına kadar: her 10 yılda bir, 65-74 yaş: her 3 yılda bir, 75 yıldan itibaren: her 2 yılda bir).
  7. DSM-V'ye göre klinik tanı ve/veya nörobilişsel tanı koyun. Klinik demans evrelemesini Klinik Demans Derecelendirmesi (CDR) skoru ile sınıflandırın. CDR'yi ölümden önceki son dönemde güncelleyin.
  8. Kağıt takine benzer bir veritabanı hazırlayın. Toplanan tüm verileri Beyin Bankası veritabanına ekleyin. Herhangi bir hata olup olmadığını kontrol etmek için başka bir katip tarafından bir revizyon planlayın.

3. Ölüm ve beyin kaldırma zamanı

NOT: İtalyan yasalarına göre asystole ölümü doğrulamak için 20 dakikadan uzun süre dayanmalıdır. En az 20 dakika (thanatografi adı verilen) için düz elektrokardiyogram (EKG) kaydı, ölümün 24 saat içinde otopsi yapılmasını sağlar (DPR 285/90 madde 8 ve Kanun n. 578 Aralık 29, 1993). <24 saat ölüm sonrası zaman genel doku kalitesini korumak için iyi bir hedeftir. Otopsi süresi >30 saat olması durumunda otopsi iptal edilir (bkz. Tablo 2). Otopsi ekibi bir patolog, bir nörolog ve / veya nörobiyolog, bir hemşire, anatomik oda teknisyeni ve herhangi bir stajyer öğrencilerden oluşur; ilk iki ekip üyesi de nöropatolojik tanıyı yapar. Kadavra kullanımı ve diseksiyonu sırasında uygun giysilerin (palto, eldiven, gözlük ve saç ağı) kullanılması zorunludur. Bu bölümde, normalde laboratuvarımızda kullanılan ana araç ve gereçleri açıklıyoruz. Okuyucular kendi takdirine bağlı olarak kullanılacak araçları seçebilirsiniz. Burada kullanılan malzemelerin ayrıntılı bir açıklaması için lütfen Malzeme Tablosu'nabakınız.

  1. Aile tarafından seçilen cenaze ajansıA ait cesedi ABB tesislerine getirdiğinden emin olun. Kardiyak aktivitenin olmaması gereken thanatografiyi yapın. Eğer öyleyse, bir ölüm belgesi imzalayın ve otopsi işlemlerine başlayın.
  2. Kadavrayı otopsi odasına götürün. Kafatasının çevresini başın en geniş kısmı seviyesinde ölçün. Anteroposterior çapı (APD) elde etmek için nasion'dan inion'a kadar ölçün, bir kulaktan diğerine olan uzaklık enine çapı (TD) verir. Milik indeksi (CI) formülü kullanarak hesaplayın: CI = TD/APD x 100.
  3. Keskin bir neşter kullanarak, koronal düzlemde bir kafa derisi kesi yapmak, bir tarafta mastoid sürecinin ucundan diğer tarafına, tepe noktası üzerinden geçen. Saç, deri ve deri altı dokusunu kesin ve kafa derisinin iki kıvrımını kafatasının altından dikkatlice ayırın. Sarı supraorbital yağ görünür hale gelene kadar kesi gerçekleştirin ve ön kafa derisi yansıtacak. Diğer kısmı arka arkaya çekin.
  4. Neşter ve forseps kullanarak, her iki tarafta temporal kas küçük bir örnek almak, 4% formaldehit birini koymak ve diğer dondurma (bölüm 7 bakınız).
  5. Ön taraftaki V-cut'ı takiben bir elektrikli testere kullanarak kafatasını kesin. Kafatası kapağını çıkarın ve menineleri kesin. Dura numunesi hem %4 formaldehit ve dondurulmuş olarak sabitlenir (bkz. bölüm 7).
  6. Üçüncü ventriküle ulaşmak için korpus callosum'a 20 G 3.5 in. iğne takarak yaklaşık 10 mL BOS elde edin. BOS'un görünümünü, rengini ve bulanıklığını değerlendirin ve pH'ı ölçün. Daha sonra, her biri yaklaşık 1 mL 10 aliquots yapmak ve -80 °C onları saklayın.
  7. Beyin hassas hem frontal loblar çekerek yukarı kaldırın ve hem optik sinirler infundibulum kesti, iç karotis arterler (ICA) ve üçüncü, dördüncü, beşinci ve altıncı kranial sinirler. Posterior fossa ulaşmak için tentorium kesin ve vertebral arterler ve alt kranial sinirler kesti. Medullanın en kaudal kısmını kesmek için neşteri foramen magnumdan mümkün olduğunca derine yerleştirin. Bu noktada, yavaşça tüm beyin kaldırın.
  8. Neşterle, Meckel'in mağarasının üzerindeki kemiği delin ve her iki taraftan gasserian ganglion'u elde edin. % 4 formaldehit bir ganglion düzeltmek ve diğer dondurmak (bölüm 7 bakınız). Hipofiz bezini çıkarmak için cerrahi tokmak ve keski kullanarak kemik sella turcica kırın ve sonra% 4 formaldehit düzeltmek.
  9. Kafatasını ve tüm beyni makroskopik değişiklikler ve damar değişiklikleri için inceleyin. Bir ölçüm bandı ile, enine ve anteroposterior çapları elde beyin ölçmek. Willis çemberini özenle alın ve anatomik varyantlar, lezyonlar veya damar darlığı varlığı için makroskopik olarak (Şekil 2E) değerlendirin.
  10. Konveksitten 2-4 cm 2'lik1-2 adet leptomening alın ve %20 fetal sığır serumu (FBS), %1 kalem/strep, %1 glutamin ve %1 temel olmayan aminoasitler içeren 4 °C'de tam yüksek glikozlu Dulbecco'nun modifiye Edilmiş Eagle media (DMEM) kültür ortamında saklayın (daha önce bazı değişikliklerle birlikte yayınlandığı gibi)41.
    1. Fibroblast lar elde etmek için leptomeningleri 10 cm'lik petri kabına yerleştirin ve sıvıyı her seferinde fosfat tamponsal salin (PBS) ile iki kez yıkayın.
    2. Bir neşter ve pipet ucu kullanarak, yaklaşık 2 veya 3 mm küçük parçalar halinde leptomeningler kesilmiş, tohum 3-4 adet daha önce jelatin ile kaplanmış 6-iyi plaka her kuyuda 3-4 adet daha önce% 0.5 jelatin kaplı ve tam orta 2 mL ile doldurulur amhotericin B% 1 ile takviye (kültürün sterilitesini garanti etmek için bir biyogüvenlik kabininde işleme yapmak).
    3. Plakayı en az bir hafta boyunca 37 °C, %5 CO2 kuluçka makinesine yerleştirin ve harcanan ortamı her 3-4 günde bir değiştirin. Kuyu yaklaşık % 70'inde olduğu zaman steril 1x tripsinli hücreleri trypsinize. Bir T75 şişesi içine leptomeningeal fibroblastlar yerleştirin ve tam orta 12 mL ile doldurun. 5 gün sonra 900 μL FBS ve 100 μL dimetil sülfoksit (DMSO) ile saklayın.
  11. Ayrı ve serebrum, beyincik ve beyin sapı incelemek ve ayrı ayrı ağırlık. Epifiz bezini çıkar ve %4 formaldehitle düzeltin. Koku ampulleri ve optik sinirleri çıkarın ve yan bağımsız olarak, her çifti birini düzeltmek veya dondurmak. Doku bozulmasını en aza indirmek ve doku yumuşaklığını azaltmak için diseksiyon için hazır olana kadar en az 2-4 saat boyunca 4 °C'de serebrum, beyincik ve beyin sapını buzda tutun.
  12. Hasattan sonra kadavraya dikkat ve özen. Süper yapışkan tutkal kullanarak kemiği yeniden dikin ve cerrahi bir iğne ve emilemeyen dikişler kullanarak kafa derisini geri dikin.
  13. Kadavraya nazikçe davranarak merhuma saygı ve minnet gösterin. Temiz ve yüz tıraş, ve yıkama ve saç kuru, kadavra sevdikleriniz için görünür açık bir tabut koymak çünkü.
    NOT: Kadavranın yeniden besteedilmesi bir teknisyen tarafından yapılır. Protokol burada duraklatılmış olabilir.

4. ABB diseksiyon protokolü

NOT: Aynı patolog ve/veya nörolog beyin sapını, beyincik ve serebrumu duman kaputunun altında keser. Bir nörobiyolog kesitten sonra dilimleri düzenler. Beyin bölümlerini işlemeyan bir kursiyer, sonraki doku işleme aşamalarında kılavuz olarak hizmet vermek üzere veritabanına yüklenecek fotoğraflarla tüm prosedürü belgeler.

  1. Bir kesme bıçağı kullanarak, aksiyel beyin sapı kesmek ve rostral orta beyin düzeyinde ilk kesim yapmak, üstün kolikulus aracılığıyla, substantia nigra açığa iki dilim elde etmek için (SN).
  2. Yaklaşık 10 bölüm elde etmek için 8 mm beyin sapı dilimleri elde etmek için kesim geri kalanı olun. Lokus coeruleus (LC) ve medulla oblongata ile akustik striae inferior apeks sadece dördüncü ventrikül inferior apeks üzerinde vagus (DMNV) dorsal motor çekirdeği de dahil olmak üzere dilimler için gözlemlemek için dördüncü ventrikül üstün kenarları yakınında rostral pons geçen kesim dahil dikkatli olun.
  3. Bölümleri tanımlamak için tüm dilimleri rostrocaudal anlamda BS (beyin sapı) ve ardından Arapça sayılar olarak adlandırın. Son beyin sapı bölümünden sonra, sc (spinal cord) ve ardından 1-n sayılarını kullanın. Çıkarılan spinal metamerlerin sayısına bağlı olarak yaklaşık 2-4 SC dilimleri elde edilir(Şekil 2H-I).
  4. Sabitlenecek veya dondurulacak tüm bölümleri etiketleyin ve fotoğraf arşivi için resim çekin (Şekil 2). Daha sonra, aşağıda açıklandığı gibi tüm dilimleri düzeltin ve dondurun (4.7 ve 4.8 adımları).
  5. Vermis düzeyinde iki serebellar hemisfer ayırmak için sagital düzlemde serebellum kesin. Her yarımküreden 5 dilim elde etmek için sagital kesit yapın(Şekil 2F–G).
  6. Vermisteki tüm dilimleri CBR veya CBL olarak adlandırın (sırasıyla sağ ve sol beyincik için) ve bölümleri tanımlamak için Arapça numaraları kullanın. Sabit veya dondurulmuş tüm bölümleri dönüşümlü olarak etiketleyin ve arşiv için fotoğraf çekin (Şekil 2). Daha sonra, aşağıda açıklandığı gibi tüm dilimleri düzeltin ve dondurun.
  7. Korpus callosum(Şekil 2A-B)ile cerebrumun iki hemisferini ayırın ve koronal düzlemde tekil olarak dilimleyin. Optik kiazma ve mammillary organları arasında geçen bir düzlemde ilk kesim olun, frontal lob ile, temporal kutup, ön sindürme, anterior komissür, Meynert ve bazal ganglia çekirdeği.
  8. Mammillary organları geçerek ve bazal gangliyonu, anterior talamus, subtalamus ve amigdala açığa yaklaşık 1 cm arkai ikinci kesim gerçekleştirin. Her yarımküre için 15-20 bölüm elde etmek için 1 cm dilim elde etmek için ön ve arka bölgeleri incelemek için dilimleme devam edin.
  9. Dilimleri düz bir yüzeye ayarlayın. Anteroposterior yönünde orijinal konumunu takip lay, frontal oksipital kutup için, kısmı yukarı bakacak şekilde bir önceki dilim ile sürekli.
  10. Her iki yarımküreden kesitleri karşılaştırarak, sabit veya dondurulmuş malzeme olarak muhafaza edilecek her yarımküreden alternatif bölümleri seçin. Frontal ve temporal loblar, singulat, bazal ganglia, Meynert çekirdek bazalis, amigdala, talamus, hipokampus ve entorinal korteks, oksipito-temporal girus, parietal ve oksipital loblar dahil histopatoloji için sabit ve işlenmiş ana bölümleri tanıyın.
  11. Anteroposterior anlamdaki tüm dilimleri L (sol) veya R (sağda) ve ardından Arapça sayılar olarak adlandırın ve dilimin sabit mi yoksa dondurulup dondurulmayacağını belirten bir etiket koyun(Şekil 2A-D). Bölümleri tanımlamak için fotoğraf arşivi için bir resim çekin. Ardından, bölüm 7 ve 8'de açıklandığı gibi tüm dilimleri düzeltin ve dondurun.

5. Beyin ve damar muayenesi ve makroskopik patolojik değerlendirme (çıplak gözle)

  1. Meningeal değişiklikler, diffüz veya lokalize kortikal atrofi, hipokampal atrofi, ventriküler genişleme, serebellar atrofi, beyin sapı atrofisi, substantia nigra pallor, beyaz madde değişiklikleri (tip ve yer belirtin) göz önünde bulundurularak genel bir makroskopik inceleme gerçekleştirin.
  2. Ateroskleroz ve oklüzyon göz önünde bulundurularak Willis çemberini inceleyin. Atama puanı = 1 fazla% 50 darlık olmadan ateroma varlığında, en az bir arter% 50 veya daha fazla tıkanmış ise puan = 2, iki veya daha fazla arter% 50 veya daha fazla tıkanmış ise puan = 342. Diğer intrakranial damarlarda patolojinin varlığını veya yokluğunu değerlendirin.
  3. Parankimal vasküler lezyonları saptamak için beyin hemisferlerini, beyincik ve beyin sapı inceleyin. Lacunar lezyonlar (çap < 10 mm), iskemik veya hemorajik infarktlar ve kanama (çap > 10 mm) göz önünde bulundurun. Varsa, boyutu milimetre, sayı ve konum olarak belirtin. Ayrıca, subaraknoid kanama varlığı veya yokluğu düşünün.

6. Doku kalite kontrolü

NOT: Agonal faktör skoru (AFS) 0 ile 2 arasında değişmekte dir ve doku kalitesinin değerlendirilmesinde önemlidir. AFS'yi belirlemek için, ölüm zamanı (özellikle beyin asidozunun belirlenmesinde görülen durumlar) ve agonal durum (ani ölüm veya uzun süreli ıstırap) civarında meydana gelen klinik koşulları göz önünde bulundurun. AFS > 1 ise, beyin dokusu optimum kalitede olmayabilir43. Ayrıca beyin ve BOS pHdüşünün; pH < 6 ise, beyin dokusu optimum kalitede olmayabilir43,44.

  1. Ölüm hipoksi, uzun süreli asidoz, mekanik ventilasyon, multi-organ yetmezliği, yüksek ateş, şiddetli kranial travma, nörotoksik maddelerin yenmesi, şiddetli dehidratasyon, şiddetli hipoglisemi, epileptik durum ve uzun süreli koma gibi beyin dokusuna zarar verebilir koşullar neden olup olmadığını doğrulayın. Bu koşullardan biri varsa, 1 puan atayın.
  2. Agonal durum süresini doğrulayın (ölüm 1 saat içinde meydana gelirsehızlı, ölüm 1 ile 24 saat arasında gerçekleşirse ara, agonal durum 1 günden fazla sürerse yavaş). Bir ara veya yavaş bir ölüm gerçekleşirse, 1 puan atayın.
  3. AFS skorunu hesaplayın ve BOS pH'ı bir elektrot pH iğnesi ve doku pH'ı ile her lobdan ve serebellar kesitindeki bir beyin dilimindeki yüzey pH ölçerle ölçün.

7. Doku dondurma

  1. Tüm dokuların 4 °C'de buzda dondurulmasını engelleyin. Sonra, hızlı bir şekilde dondurun. Önceden dondurulmuş alüminyum tepsiye yerleştirin. Onları düz tutmak için birbirine bağlı alüminyum plaka ile kapak. 3 dk için -120 °C'de sıvı nitrojen koyun.
  2. Dilimleri, ilgili kimlik kodu ve dilim numarasıyla etiketlenmiş plastik bir torbanın içine yerleştirin. Plastik torbaları üç kriyojenik kutuya (sağ yarımküre, sol yarımküre ve beyin sapı için) ayırın ve -80 °C'de saklayın.

8. Doku fiksasyonu

  1. Dilimleri gazlı bezle tek tek sarın ve dilimleri %10 fosfat tamponlu formalin çözeltisi içine koyun. 1 gün sonra formalin çözeltisini yeni bir çözümle değiştirin. 4 °C'de soğuk bir odada yaklaşık 5 gün bekletin.
  2. Bir bütün olarak tüm dilimleri tutun ve iki parçaya hipokampus ve amigdala içeren sadece dilimleri bölün(Şekil 3). Her iki dilimin üst kısmı frontal lob içerecektir (Şekil 3'teR10a-L9a); alt kısımlar sırasıyla içerecektir: (1) amigdala, temporal lob ve bazal gangliyon (Şekil 3B'deL9b), ve (2) hipokampus ve temporal lobun bir kısmı (Şekil 3A'daR10b). Bu, çeşitli yapılar arasındaki ilişkiyi sürdürmek için yapılır.
  3. Tüm bölümleri fosfat tamponuna en az 2 gün boyunca koyup çapraz bağlantı ürünlerini temizleyip çıkarın.
    NOT: Protokol burada duraklatılabilir.

9. Dehidratasyon, temizleme, parafin gömme ve slayt hazırlama

  1. %70'ten %100'e kadar artan etil alkol konsantrasyonlarını, ksilen'i ve iki set erimiş parafin balmumu hazırlayın. Dehidratasyon, temizleme prosedürü ve parafin infiltrasyonu (makro (serebrum ve beyincik dilimleri) ve mikro numuneler (beyin sapı dilimleri ve diğer küçük örnekler) için iki farklı doku işleme protokolleri kullanın) için otomatik işlemci beyin bölümleri yerleştirin; Tablo 7). Bir metal veya plastik kalıp üzerine parafin balmumu doku gömmek.
  2. Montine indeksini nöropatolojik karakterizasyon için uygulayan tüm ilgi bölgelerini değerlendirmek için dilimlemek için bölümleri seçin45 (Tablo 8). Ardından, seçili bölümleri dilimleyin.
  3. Makrokesitler için bir kızak mikrotomu ve küçük kesitler için döner mikrotom kullanın. Hematoksilin ve Eozin (H&E) boyama için 5 m dilim, diğer lekeler ve immünohistokimya için 8 m dilim kesin. Dilimleri üç farklı türde histolojik slayta koyun: en büyük dilimler için 8,5 cm x 11 cm, orta dilimler için 5 cm x 7,5 cm ve en küçük ler için klasik 2,5 cm x 7,5 cm.
    NOT: Protokol burada duraklatılabilir.

10. Deparafinizasyon, histolojik boyama ve immünohistokimya (IHC)

  1. Sulu boya çözeltileri ile reaksiyona izin vermek için deparafinizasyon gerçekleştirin. Ksilen kullanarak ve azalan alkol konsantrasyonu (her adım için 5 dk) kullanarak gerçekleştirin. Distile su ile 5 dakika rehydrate.
  2. Mimari ve yapısal doku anormalliklerini ve hücresel morfolojiyi değerlendirmek için aşağıdaki histolojik lekeleri kullanın: H&E (vasküler mikroskobik lezyonlar ve inflamasyon için), Cresyl Violet (NISSL; nöronal kayıp için), Luxol Fast Blue (LFB; demiyelinasyon için), Gallyas (neuritik plaklar ve nöropiller için).
  3. Belirli hedef yapıların varlığını vurgulamak için immünohistokimya (IHC) kullanın. Anti-NeuN ve anti-GFAP nöronal ve glial kompartmanları tanımlamak için kullanılır; 4G8, AT8, α-SYN ve TDP-43 nörodejeneratif hastalıklarda birleşen proteinleri tanımlamak için kullanılır (Malzeme Tablosu).
    1. Pretreat 10 dk için % 3 H2O2 ile kesitler dewaxed sonra PBS durulayın. 4G8, α-SYN, TDP-43 ve NeuN antijenleri için 0,01 M pH 6 (2, 1 ve 2 dk için seri olarak mikrodalgada pişirilmiş) ile alma tedavisi yapın; 4G8 ve α-SYN için %70 formik asit kullanın. Preinkübat 30 dk için 5% normal keçi serumu.
    2. Bir gecede 4 °C'de birincil antikorla kuluçkaya yatırın. Ertesi gün, ikincil antikor (Envision+ System-HRP etiketli Polimer) ile kuluçkadan önce PBS'deki bölümleri oda sıcaklığında 1 saat pBS'de 1:2 seyreltme ile durulayın.
    3. Mikroskop altında reaksiyon gelişimine (büyütme 4-10x) bakarak diaminobenzidin (Liquid DAB+Substrat Kromojen Sistemi) ile pbs ve inkübat kromojen sistemde birkaç kez yıkayın. Son olarak PBS'deki bölümleri yıkayın. DPX montaj ile hematoksilin, dehidrat ve coverslip bölümleri karşı leke.
      NOT: Tablo 8 standart protokolü özetler. Seçili bölümlerde özel/özel lekeler ve reaksiyonlar kullanılırken, tüm bölümlerde H&E boyama yapın. Seçili servis talepleri ek alanlar veya reaksiyonlar gerektirir. Malzeme Tablosu IHC için kullanılan antikorların ayrıntılarını gösterir.

11. Temel nöropatolojik karakterizasyon

NOT: Nonspesifik beyin dokusu değişiklikleri, vasküler patoloji, Alzheimer Hastalığı (AD) patolojisi, AD-AD TAUopatiaları, sinükleinopatiler, TAR DNA bağlayıcı Protein (TDP-43) patolojisi ve hipokampal lezyonlar incelenmiştir. Parankimal mikroskobik lezyonları tespit etmek için kameraya bağlı optik mikroskop kullanılır. Histolojik değerlendirme nöropatoloji konusunda eğitimli personelden oluşan aynı ekip tarafından yapılır, bir nöroloji profesörü, bir nörolog ve bir patolog da dahil olmak üzere. Bu değiştirilmiş Montine yaklaşımı45 dayanmaktadır(Tablo 8) ayrıca dahil: (1) Fronto-Temporal Lob Dejenerasyonu patolojik damgasını oluşturan heterojen non-AD TAUopathies (FTLD) TAU mevduat ile ilgili: Pick hastalığı, akıcı olmayan Primer Progresif Afazi (TAU-nfPPA), Progresif Supranükleer Palsy (PSP)46,,47 ve Cortiko-Bazal Dejenerasyon (CBD)48. Buna ek olarak, non-AD TAUopatiler yaşlanma ile ilgili koşulları içerir ve Primer Yaşa Bağlı TAUopati (PART)49gibi kesin bir klinik önemi ile , Yaşa Bağlı TAU Astro-Gliopati (ARTAG)50, arjirophilic tahıl hastalığı48. (2) Parkinson Hastalığı (PD) ve Lewy Organları Demans (LBD) ile ilgili Lewy Tipi Sinükleinopati (LTS). LTS aramak için, aşağıdaki hiyerarşik adımları uygulayın: ilk başta, koku ampul, beyin sapı, amigdala / temporal korteks; önceki alanlar pozitif ise, limbik yapılar ekleyin (hipokampal oluşumu, entorinal korteks, anterior singulat), orta frontal girus, inferior parietal lobule ve oksipital korteks45. Kortikal LBD'nin klinik özellikleri mevcutsa (örneğin, dalgalanmalar ve/veya halüsinasyonlar), ilk adım için limbik yapıları ve izokorteksi göz önünde bulundurun. (3) TDP-43 mevduat, FTLD patolojik özelliği TDP-43 mevduat ile ilgili: Fronto-Temporal Demans davranışsal varyantı (bvFTD), Semantik Demans (SD veya svFTD), TDP-nfPPA ve FTD-Motor Nöron Hastalığı (FTD-MND). TDP-43 için IHC aşağıdaki bölümlerde yapılır: amigdala, hipokampus, entorinal korteks ve orta frontal girus; klinik FTLD şüphesi olan olgularda, diğer bölümleri incelemeyi düşünün51.

  1. GFAP ve NeuN için H&E, NISSL, LFB ve IHC kullanarak seçili bölümlerdeki nonspesifik beyin dokusu değişikliklerini değerlendirin. Nöronal rarefaction düşünün, balonlu nöronlar, spongiosis, gliozis, miyelin kaybı, inflamatuar veya tümöral infiltrasyon varlığı veya yokluğu. Bu değişikliklerin yaygın konumunu belirtin.
  2. Mikroskobik vasküler lezyonlarısaptamak için, en az iki hemisferik makro kesit (memperter gövdelerden ilk geçen (Charcot kesimi) frontal ve temporal loblar içeren H&E ve LFB slaytlarını inceleyin, bazal ganglia, anterior talamus, amigdala, ve oksipital lobdan geçen ikinci geçiş), hipokampal formasyonun "geniculate" bölümü, bir serebellar kesit ve beyin sapının üç ana bölümü (substantia nigra, locus coeruleus ve DMNV ile).
    1. Arterioloskleroz, lipohyalinoz, perivasküler alan dilatasyonu, beyaz madde kaybı, leptomeningeal ve/veya parenkimal ve/veya kapiller serebral amiloid anjiyopatisi gibi küçük damar hastalığını saptamak. Derecelendirme (0-3) ve yaygın konumu42,52belirtin. Hemosiderin sızıntı, mikro kanamave mikroinfarktların varlığını veya yokluğunu göz önünde bulundurun.
    2. Hiyerarşik Deramecourt şeması (damar duvarı değişiklikleri-küçük damar hastalığı-makroskopik enfarktlar) kullanarak bilişsel bozukluk için vasküler hasar katkısını değerlendirmek. Bu değerlendirme için bir frontal ve temporal lob bölümü düşünün, bazal gangliyon ve hipokampus (skor 0-20)30. Ayrıca, serebral vasküler hastalık VCING skoru (düşük-orta-yüksek) kullanarak bilişsel bozulmaya katkıda bulunduğu olasılığını tahmin, hemisferik makroskopik infarktlar ve şiddetli arterioloskleroz ve amiloid anjiyopati orta dahil olmak üzere oksipital lob küçük damar hastalığı dikkate alınarak elde53.
  3. Amiloid yayılması için IHC (4G8) kullanarak AD patolojisi değerlendirin. Thal'ın evrelerini (1-5)54, agrega Amiloid skorlama (0-3)45ve bölge başına morfolojiyi (diffüz, fokal, kored) tanımlayın.
    1. Ad Tau patolojisini IHC (AT8) kullanarak değerlendirin ve bölge başına yaygın morfolojiyi (nörofibrillary tangles, nöropil iplikleri, neuritik plaklar) tanımlayın. Braak'ın evresini tanımlayın (I-VI +; pozitif işaret, Braak hiyerarşisini takip eden hiperfosforilat Tau patolojisinin ek alanlarının varlığını gösterir)55 ve toplam puanlama (0-3)45.
    2. Gallyas boyama ve CERAD skoru (0-3)56kullanarak neuritik plakları değerlendirin. Daha sonra, Amyloid-B raak-C ERAD skoru (ABCBskoru 0-3): hiçbiri-düşük-orta-yüksek45kullanarak bir AD klinik sendromuna karşılık gelen nöropatolojik özelliklerin olasılığını tanımlayın.C
  4. Yaygın konumu ve tuhaf morfolojik resmi belirten AD OLMAYAN TAU patolojisinin varlığını veya yokluğunu fark etmek için AT8 IHC'yi kullanın. Alev şeklinde veya globose tangles, küresel-globuler eklemeler (yani, Pick's bodies)57, nöropil konuları, distrofik nöritler, arjirophilic taneleri gibi nöronal eklemeler düşünün; tufted astrositler, dikenli astrositler, astrositik plaklar, sarmal cisimler, küresel inklüetler58,59gibi glial eklemeler .
  5. Yukarıdaki nottaki alanlarda LTS'yi (Lewy cisimleri, soluk gövdeler ve Lewy nöritleri) tespit etmek için α-syn IHC'yi kullanın. Pozitiflik durumunda, lezyonların şiddetini değerlendirmek için McKeith'in derecesini (0-4) uygulayın60; sonra, topografik dağıtım için Beach aşamaları (I-IV) kullanın (koku ampul, beyin sapı baskın, limbik baskın, neokortikal)61. LBD ve ADpatolojisi 60,61,62arasındaki ilişkiyi tanımlamak için Beach ve Braak aşamalarını karşılaştırın.62
  6. Çoklu Sistem Atrofisinin (MSA) patolojik ayırıcı özelliği olan Glial Sitoplazmik İçkilerin (GCI; non Lewy-tipi glial sinükleinopati) varlığını veya yokluğunu göz önünde bulundurun ve yaygın konumlarını belirtin63.
  7. Yukarıdaki nottaki alanlardaTDP-43 birikintilerini tespit etmek için TDP-43 IHC'yi kullanın. Bölge başına yaygın morfolojiyi tanımlayın: Nöronal Sitoplazmik İnkiler (NcIs), Distrofik Nörit lerin eklenmesi (DNs), Nükleer İçkiler (NIIs). Deseni tanımlayın: A (baskın NCI'ler ve DN'ler: bvFTD ve nfPPA); B (baskın NCI:FTD-MND); C (baskın uzun DNs: svPPA ve bvFTD)51,64. AD durumlarda TDP-43 varlığını tanımlamak için Nelson şemasını kullanın65,66.
  8. Subiculum ve Sommer sektöründen (CA1) başlayarak hipokampusu değerlendirin. Rauramaa'nın skorunu kullanın (0-4): mikroinfarcts ve makroinfarktlar için sırasıyla 1-2; 3-4 orta ve şiddetli nöronal kaybına karşılık gelen, sırasıyla, ve hipokampal atrofi (hipokampal skleroz: HS). Patolojik protein birikintilerinin varlığına veya yokluğuna dikkat çekmek (frekans sırasını azaltarak: pTAU, TDP-43, α-syn)67.
  9. Nöropatolojik tanıyı tanımlayın ve veritabanına tüm patolojik verileri girin.
    NOT: Bağışçıların biyolojik materyalinin ve mantıklı verilerinin saklandığı odalar her zaman kilitlidir ve hem güvenliği hem de gizliliği garanti etmek için sadece yetkili personelin girmesine izin verilir. Dondurulmuş biyolojik malzeme -80 °C'de kilitli dondurucularda saklanırken, formalin-sabit parafin gömülü dokular oda sıcaklığında kilitli dolaplarda saklanır. Çift motorlu dondurucular kullanılır ve yedek dondurucu da mevcuttur. Ayrıca, dondurucuların her zaman çalıştığından emin olmak için, alarm veren 7/24 izleme sistemi sağlanır. Bir acil durum jeneratörü de mevcut, elektrik kesintisi durumunda. Katılımcılar, gizliliklerini sağlamak için sayısal bir kodla anonimleştirilmiştir; yetkili olmayan personelin bağışçıların kimliğine ve bunların mantıklı verilerine geri dönmesi mümkün değildir. Tüm bilgiler parola korumalı bir veritabanında toplanır; aynı şekilde, bu verilerin basılı bir kopyası kilitli arşivlerde tutulur.

Representative Results

Beyin donörler ve beyin hasat verileri
2014 yılında, 1061 uygun deneğin 1010'unun (yanıt oranı: %93; Şekil 1). InveCe.Ab uzunlamasına çalışma ile ilgili olarak, 1010 katılımcıdan 290'ı (%28,7) bağışçı olarak kaydolmayı kabul etti (160'ı kayıtlı ve 130'u kayıt yaptırmaniyetini ifade etti). Bağışçılarda eğitim düzeyi bağışçı olmayanlara göre daha yüksektir (bağışçılarımızın %66'sı orta-yüksek eğitim düzeyine sahiptir: 8 veya daha fazla okul yılı), kültür ve eğitimin önemini gösterir. Birçok "sağlıklı" bireyler de beyin bağışı programına ilgi gösterdi. Bizim "kontroller" çoğu onlar hastalıklı ve yakınları ile sempati ve nörolojik hastalıkların daha iyi anlaşılmasına yol açan araştırma bir şekilde katkıda bulunmak istiyorum itiraf. Yaşam süresince düzenli olarak kan veya ilik bağışı programlarına katılan özverili insanlar, ölümden sonra organ bağışlamayı kabul etmiş olan insanlar gibi beyin bağışı fikrine daha açık. Yaşayan bir alıcı olmamasına rağmen, bağışlarının araştırma için büyük önem taşıdığının farkındalar. Beyin bağışına katkıda bulunan bir diğer faktör de yakılma tercihidir. Şu anda, ABB donör popülasyonu toplam 427 bireyden (290 InveCe.Ab katılımcısı + 137 gönüllü veya ASP Golgi-Redaelli Geriatrik Hastanesi'nden hasta) içermektedir ve bunların %75'i 70 yaşında veya daha büyüktür. Kadınların açık bir üstünlüğü vardır (%64) ve zihinsel olarak bozulmamış yaşlı (%85). Şimdiye kadar, 27 beyin 40 ölen donörler (%67 otopsi oranı) dışarı hasat edilmiştir; ABB'ye ölüm bildirilmemesi, beyin yıkımına yol açan ciddi yaralanmalar, tehlikeli enfektif hastalıklar ve 1 CJD vakası gibi çeşitli nedenlerle 13 denek otopsi yapılmamıştır; 4 denek rızalarını iptal etti. Şimdiye kadar, hasat edilen 27 beyinden 24'ü kesin klinikopatolojik tanı ile tam bir nöropatolojik karakterizasyon alırken, geri kalan 3 beyin hala muayene altındadır(Tablo 3). ABB'den ek beyin toplama verileri şunlardır: ortalama ölüm yaşı (81 yıl); ortalama postmortem aralığı (10.37 saat); ortalama BOS pH (6.64); ortalama doku pH (6.07); ortalama beyin ağırlığı (1012.86 gr); AFS ölen deneklerin %90'ında 1 idi.

Nörofizyolojik biyobelirteçler (QEEG)
QEEG çok boyutlu yaklaşımın bir parçasıdır. Bu basit, non-invaziv ve ucuz bir yöntemdir, hafif Nöro-Bilişsel Bozukluk dönüşüm tespit etmek olası bir potansiyele sahip (hafif-NCD veya MCI) majör Nöro-Bilişsel Bozukluk (majör-NCD veya demans). Çok boyutlu yaklaşımımız sayesinde sade bir QEEG incelemesi yapılırken, demans için biyomarker olarak olası rolü test edilmiştir. 36 beyin donacı (18 normal yaşlı (NOLD), 11 hafif-NCD ve 7 majör-NCD; 9'u kesin nöropatolojik tanı ile birlikte, majör-NCD'de ortalama alfa ritim yüzdesinin hafif NCD (p: 0,002) ve NOLD (p: 0,033) ile karşılaştırıldığında önemli ölçüde daha düşük olduğunu göstermektedir. Tersine, daha yavaş EEG frekansları (teta/delta) majör NCD'de NOLD/mild-NCD'ye göre anlamlı olarak daha yüksekti (Bkz. Şekil 4'tekiörnek vakalar). Serimizde EEG ritim dağılımı, etyolojik tanıya bakılmaksızın nold/mild-NCD konularını majör-NDC hastalarından ayırt edebilir ve beyin ritimlerinin lezyon tipine bakılmaksızın dejeneratif lezyonların yükünden etkilendiğini düşündürmektedir. Gerçekten de incelenen 9 beyinden 7'si karışık patolojilere bağlı demans göstermektedir. Patolojinin doğasına ilişkin özgüllük düşük gibi görünecek ve beyin elektriksel ritimleri moleküler doğalarından çok lezyonların yükü ve topografyası tarafından etkilenmiş gibi görünmaktadır (Poloni, ve diğerleri AD/PD 2019, Lizbon, veriler yayınlanmamış).

Sembolik vakalar
ABB protokolü bazı durumlarda ve koşullarda yararlı ve gerekli olabilir. Bir örnek asimetrik patolojinin varlığıdır (Şekil 5). Protokolümüz bu tip patolojinin tanımlanması ve doğru karakterizasyonu için çok uygundur. Şimdiye kadar, bazıları Şekil 5'tegösterilen asimetrik tutulumu olan 4 beyni inceledik. Sağ koronal kesitte (Şekil 5 C) sol tarafa göre makroskopik, sağ taraf atrofisi(Şekil 5A)ciddi ventriküler dilatasyon(Şekil 5C)ile birlikte mevcuttur ( Şekil5B). Başka bir olgu sağ hemisferin enfarktüsünü gösterir (Şekil 5D) ve başka bir sağ mammillary vücut açık bir atrofi gösterir (Şekil 5E). Mikroskobik düzeyde FTLD olgusu, sağ ön tarafta sola göre daha yoğun olan asimetrik TDP-43 pozitifliğini gösterir(Şekil 5F,G).

Makrokesitler(Şekil 6A,C)genel bir görünüm elde etmek için kullanılır. LFB boyama hem 4G8 hem de AT8(Şekil 6B)için miyelin kaybının(Şekil 6D)ve IHC'nin belirlenmesine yardımcı olur. ABB serisinde, ilgili bireylerin beyinleri karşılaştırılabilir.

Şekil 7'dehomozigot ikizlerin beyinlerinden alınan mikroskobik görüntüler daha kolay karşılaştırma için yan yana yerleştirilir (ikiz 1 (BB137): Şekil 7A,C,E,G,I,K karşı ikiz 2 (BB138: Şekil 7B,D,F,H,J,L). Benzer bir önceki çalışmada olduğu gibi68, her iki ikiz klinik ve nöropatolojik değerlendirmeler ile karşılaştırıldı. İkizler birden fazla etiyoloji nedeniyle major-NCD tanısıaynı bildirilmiştir, ancak iki yıl arayla öldü, yaşları 83 (demans başlangıcı 72 yaşında) ve 85 (demans başlangıçlı 76 yaşında), sırasıyla. Beyinlerinde çok benzer nöropatolojik bir tablo vardır ve amiloid anjiyopati ile ilişkili yüksek AD patolojisi vardır. 4G8 immünoreaktivitesi korteks boyunca yayılır (Şekil 7A,B) ve bazal gangliyon (Şekil 7C,D) diffüz, yoğun, ve korol plaklar. Korteks ve serebellumun hem parankimal hem de leptomeningeal damarlarında da açıkça saptanır (Şekil 7A,B,G–J). Yüksek büyütmede, capCAA açıkça belirgindir (Şekil 7G,H). AT8 immünpozitif plaklar, tangles ve iplikler her iki beynin parietal kortekslerinde yaygındır(Şekil 7E,F,L). Amiloid ve NFT patoloji yükü ile ilgili olarak, ikiz 1 Thal evre 3 (montine A2) ve Braak evre 5 (montine B3) olarak kabul edilirken, ikiz 2 Thal evre 5 (montine A3) ve Braak evre 6 (montine B3) olarak kabul edilir. Onlar eğitim ve benzer yaşam tarzı aynı yıl vardı; Ancak, bir (BB137) evlendi ve kısa bir süre sonra dul kaldı, diğeri bekar (BB138) ise. Onlar hastalığın aynı başlangıç ve aynı ders ama farklı zaman dilimlerinde kliniko-patolojik değişkenlik farklı derecelerde gösterdi. Bu, genetik bileşenin hastalığın gelişiminde önemli bir rol oynamasına rağmen, epigenetik ve çevresel bileşenin biraz farklı belirtileri belirlemede temel rol oynadığı gerçeğini doğrular.

Bazı durumlarda, klinik tablo nöropatolojik özelliklere karşılık gelmez. Şekil 8'deiki farklı olgu klinik olarak AD olguları olarak tanımlanmıştır; nöropatolojik analizler, ara AD patolojisine ek olarak α-syn için diffüz pozitiflik olduğunu göstermektedir. İlk olguda, şiddetli LTS (Beach IV) resmi, girus sinjinosu boyunca homojen olarak bulunan Lewy cisimlerini gösterir (Şekil 8A) ve SN'de nöromelanin ile çevrili sitoplazmik inklütomlar olarak (Şekil 8B,C). İkinci olguda, Lewy nöritleri ile ilişkili Lewy cisimleri amigdalada(Şekil 8D,E)ve Meynert'in çekirdeğinde(Şekil 8F,G)diffüz olarak dağıtılır ve limbik LTS tanısı önerilir. Gerçekten de lezyonların topografyası moleküler doğalarından çok klinik tezahürleri oluşturur.

Figure 1
Şekil 1: Inve.Ce.Ab çalışmasının akış şeması. Başlangıç seviyesinde, demansın genel yaygınlığı %3 idi. Takipler sırasında prevalans oranları: %4.4 (1st)69,%7.1 (2. ), %10.9 (3) idi.ndrd Sekiz yıllık insidansı oranı 15 p/1000/yıl (%95 CI: 13-18 p/1000/yıl) idi. Donör alımı 2014 yılında (ikinci takip sırasında) başladı. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 2
Şekil 2: Serebrum (A), beyincik (F) ve beyin sapı (H) diseksiyon protokolü. Willis ve tek yarımküre daire gösterilir (E) ve (B). Sağ(C)ve sol tarafın(D)koronal kesikleri numaralandırılır ve alternatif olarak sabitlenir ("F") ve dondurulmuş ("C"). Sagital serebellum kesitleri (G) ve beyin sapı eksenel kesitleri(I)gösterilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 3
Şekil 3: Sabit sağ (A) ve sol (B) fronto-temporal lobun koronal dilimleri gösterilmiştir.
Hipokampus ve temporal lob (A, R10b) sağ dilimde frontal lob (A, R10a) ayrılır. Karşı dilimde, amigdala ve bazal gangliyonlar (B, L9b) frontal lobdan (B, L9a) ayrılır. Ölçek çubuğu: 1.7 cm. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Figure 4
Şekil 4: NOLD ve majör-NCD olgularında göreli spektral güç dağılımı. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 5
Şekil 5: Asimetrik patolojilerin temsili görüntüleri. (A) İlk vaka: sağ atrofi ile beyin. Koronal dilimler (B) ve (C) özellikle 10-12 (C, ok) bölümlerinde belirgin sağ taraflı ventriküler dilatasyon gösterir. (B) ve (C) bölümlerinde "F" sabit ve "C" dondurulmuş (İtalyanca: congelato)anlamına gelir. (D) İkinci olgu: sağ hemisferin şiddetli enfarkt. (E) Üçüncü olgu: sağ mammillary vücut atrofisi (ok). (F, G) Dördüncü olgu: mikroskobik görüntüler frontal sağ kortekste (G) frontotemporal demans durumunda sol (F) ile karşılaştırıldığında daha yoğun bir TDP-43 immünoreaktivitesi ni göstermektedir. Ölçek çubukları: 183 μm (F, G). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 6
Şekil 6: Makrokesitler. (A, C) Sabit fronto-temporal lob (A) ve taze parietal lob (C) koronal dilimler. (B) Histolojik fronto-temporal kesit AT8 antikor ile immünoetiketli. İmmünreaktivite açıkça korteksin her yerine dağılmış, ama temporal lobda daha yoğun. (D) Histolojik parietal bölüm LFB ile boyanmıştır. Ok beyaz maddenin demyelination bir alanı gösterir. Ölçek çubuğu: 1,55 cm (B, D). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 7
Şekil 7: İkizler. İki homozigot ikizin beyinleri arasında karşılaştırma: BB137 (A, C, E, G, I, K) ve BB138 (B, D, F, H, J, L). Nöropatolojik resimler çok benzer. (A) ve (B) amiloid plak, leptomeningeal (oklar) ve parenkimal (ok başları) kapları ile oksipital lobda diffüz 4G8 pozitifliği gösterir. Kapiller amiloid anjiyopati (yıldız) yüksek büyütmelerde iyi kabul edilmektedir (G) ve (H). 4G8 yaygın bazal gangliyonlar boyunca dağıtılır(C, D) ve beyincik leptomeningeal damarları etrafında (I, J: oklar). AT8 immünoreaktivite parietal korteks(E, F)düğümleri, iplikler ve plaklar (oklar) tanımlamak. Gallyas boyama (K) AT8 antikor olarak neuritik plaklar ortaya koymaktadır (L) yok. Ölçek çubukları: 470 μm (A-F; I-J); 90 μm (G–H; K–L). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 8
Şekil 8: Klinik ve nöropatolojik tanı. Bu bulguda nöropatolojik tanının klinik tanıdan farklı olduğu iki farklı olgu bildirilmiştir. α-syn için immünreaktivite beklenmeyen bir sonuçtur. (AC) İlk vaka: Gyrus cingoli (A), SN (B-oklar) içinde Lewy cisimlerinin homojen dağılımını gösterir. SN bir nöron olarak, bir çift Lewy vücut nöromelanin ile çevrili gösterilir (C). (DG) İkinci olgu: α-syn için diffüz pozitiflik amigdala (D, E) ve Meynert çekirdeğinde (F, G) saptanabilir. Hücresel cisimler ve Lewy nöritler (yıldız işareti) iyi işaretlenmiştir. Ölçek çubukları: 154 μm (A, D, F); 37 μm (B, E, G); 20 μm (C). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 9
Şekil 9: Transfer sözleşmesi şablonu. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

n %
Cinsiyet Erkek 607 45.9
Kadın 714 54.1
Doğum kohort 1935 236 17.8
1936 219 16.6
1937 264 20.0
1938 305 23.1
1939 297 22.5
Medeni durum Evli 872 66.1
Birlikte yaşama 13 1.0
Ayrılmış/Boşanmış 29 2.2
Dul 325 24.6
Tek 80 6.1
Birincil yaşam mesleği Mavi yakalı işçiler 666 50.6
Beyaz yakalı işçiler 459 34.9
Ev hanımı 191 14.5
Eğitim yılları ≤5 yıl 754 57.2
>5 yıl 565 42.8

Tablo 1: InveCe.Ab çalışma katılımcılarının sosyo-demografik özellikleri.

İçERME KRITERLER DıŞLAMA KRITERLERI
18 yaş ve üzeri tüm bireyler Bağışı bariz bir şekilde reddeden ler
Abbiategrasso sınırları içinde yaşayan insanlar Lombardiya bölgesi dışında yaşayan insanlar
Kendi rızalarını veren gönüllüler Potansiyel donör ve NOKs arasında tutarsızlıklar beyin bağışı ile ilgili istekleri
NOK'un izniyle karar veremeyen konular Beynin kıvamını büyük ölçüde yok eden durumlar
Doğal bir nedenle ölüm Prion hastalığı olasılığı göz ardı edilmedikçe klinik has been excluded ders <2 yıl
Cinayet veya intihardan kaynaklanan ölüm, adli tıp raporuna ihtiyaç
Post mortem aralığı >30 saat

Tablo 2: Beyin bağışı kriterleri.

Seks KOD BB KOD İnveCe Yaş edu (yıl) klinik tanı Cdr Afs PM (saat) pH dokusu pH likör nöropatolojik tanı
1 F BB 37 87 5 AD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 5 2 29 Nd Nd Yüksek AD patolojisi, orta derecede SVD, TDP43+, ctx LTS, HS
2 F BB 105 94 5 AD nedeniyle Major-NCD 5 1 5 5.72 6.78 Yüksek AD patolojisi, hafif SVD, HS
3 F BB 137 83 3 Birden fazla etiyolojiye bağlı Major-NCD (AD-VaD) 5 1 16 Nd Nd Yüksek AD patolojisi, orta derecede SVD, oksipital infarkt, CAA-capCAA
4 M BB 181 71 13 AD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 5 2 3 Nd Nd Şiddetli LTS (Beach IV), ara AD patolojisi, mildSVD, mCAA
5 M BB 115 I 636 78 18 AD nedeniyle Major-NCD 5 1 6 Nd Nd Ara AD, orta Derecede SVD, İnflamasyon, ILBD (Beach IIa), HS
6 F BB 23 I 65 79 3 Vasküler hastalığa bağlı majör-NCD 5 1 14 Nd Nd Şiddetli ve yaygın CAA, ara AD patolojisi
7 M BB 102 I 412 79 8 Vasküler hastalığa bağlı majör-NCD 3 1 8 Nd Nd Vasküler Demans, ILBD
8 M BB 224 I 16 80 3 Birden fazla etiyolojiye bağlı major-NCD 5 1 11 Nd 5.99 Orta SVD, Düşük AD patolojisi, ILBD (Beach IIa), HS
9 F BB 47 78 5 Major-NCD birden fazla etiyoloji (LBD-VaD BPSD) 5 0 8 Nd Nd Yüksek AD patolojisi, BG TAU patolojisi, ARTAG, hafif SVD, HS
10 F BB 153 I 965 79 5 Mild-NCD (yaygın metastazı olan kolon kanserine bağlı ölüm) 0.5 1 8 Nd 6.73 Düşük AD patolojisi, orta derecede BG-SVD
11 M BB 118 I 1211 79 13 NOLD (karaciğer kanserine bağlı ölüm) 0 2 3 Nd 6.51 Orta SVD
12 M BB 236 I 521 80 3 AD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 4 1 15 Nd 6.15 Yüksek AD patolojisi, Şiddetli BG-SVD (birkaç mikro kanama), HS
13 F BB 138 85 3 Birden fazla etiyolojiye bağlı Major-NCD (AD-VaD BPSD) 4 0 15 Nd 6.75 Yüksek AD patolojisi, orta derecede SVD, CAA, limbik TDP43
14 M BB 109 I 876 79 8 NOLD (beyin tümörüne bağlı ölüm - GBL) 0 1 16 Nd 6.4 Düşük AD patolojisi, ILBD (Beach IIa), hafif SVD
15 F BB 271 84 8 AD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 4 1 2 Nd 6.7 Orta AD, limbik LTS, orta BG-SVD, mCAA, TDP
16 F BB 71 I 1080 79 8 NOLD (kalp yetmezliğinden dolayı ölüm) 0 0 6 Nd 6.26 Orta BG-SVD, ILBD, amy TDP, düşük AD
17 F BB 189 I 858 80 5 AD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 3 0 20 Nd 6.42 Ara AD, CAA-capCAA, TDP43, orta BG-SVD, HS
18 F BB 278 I 924 80 5 LBD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 3 1 5 6.02 7.05 Ara AD, limbik LTS (Beach IV), limbik TDP, HS
19 F BB 247 104 8 Birden fazla etiyolojiye bağlı majör-NCD (muhtemelen karışık patoloji) 3 0 6 6.48 7.22 TAU patolojisi (PART-ARTAG), HS
20 M BB 85 I 19 83 10 LBD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 3 1 9 6.26 7.3 Şiddetli limbik LTS, ara AD, Orta SVD, şiddetli CAA-capCAA, HS
21 F BB 14 I 222 82 8 Birden fazla etiyolojiye bağlı Major-NCD (AD-VaD) 2 1 11 5.59 6.4 Orta AD patolojisi, Orta SVD
22 F BB 282 76 8 Majör Frontotemporal NCD (nfPPA BPSD) 3 1 10 6.07 6.39 TDP (tip A), ILBD, orta SVD, düşük AD, HS
23 F BB 154 I 1079 80 5 NOLD (yaygın metastazı olan kansere bağlı ölüm) 0 1 5 6.49 6.9 orta derecede SVD, CAA, düşük AD, limbik ensefalit
24 F BB 290 65 13 majör Frontotemporal NCD (bvFTD BPSD) 5 1 12 5.73 6.42 TDP (A tipi)
25 F BB 210 89 8 AD (BPSD) nedeniyle Major-NCD 5 1 15 5.94 6.4 devam ediyor
26 M BB 293 75 18 Majör Frontotemporal NCD (bvFTD BPSD) 5 1 8 6.14 6.83 devam ediyor
27 F BB 99 I 1370 79 9 NOLD (septik şoka bağlı ölüm) 0 2 14 6.3 7.12 devam ediyor
M/F Demek Demek Demek Demek Demek Demek Demek
0.5 81 7.7 3.2 1.0 10.4 6.1 6.6

Tablo 3: ABB serisinin klinik/nöropatolojik tanısı. BB: Beyin Bankası; edu (yıl): eğitim yılları; CDR: Klinik Demans Derecesi (0 = demans yok; 0.5 = hafif kognitif bozukluk; 1 = hafif demans; 2 = orta derecede demans; 3 = şiddetli demans; 4 = çok şiddetli demans; 5 = terminal demans); AFS: Agonal Faktör Puanı; PM (hrs): Post Mortem saat; nd: yapılmaz; M/F: Erkek/Dişi; BPSD: Demans Davranışsal ve Psikolojik Belirtileri; Vad: Vasküler Demans; NOLD: Normal yaşlılar; GBL: Glioblastoma; nfPPA: akıcı olmayan Primer Progresif Afazi; bvFTD: Frontotemporal Demans davranışsal varyantı; SVD: Küçük damar hastalığı; LTS: Lewy Tipi Synükleinopati; HS: Hipokampal Skleroz; CAA: Serebral Amiloid Anjiyopati; capCAA: kılcal CAA; mCAA: meningeal CAA; ILBD: Tesadüfi Lewy Vücut Hastalığı; BG: Bazal Ganglia; ARTAG: Yaşa Bağlı TAU Astro-Gliopati; BÖLÜM: Primer Yaşa Bağlı TAUopati; amy: amigdala.

Etki alanı Test adı
Depresyon Epidemiyolojik Çalışmalar Merkezi Depresyon Ölçeği (CES-D) [2]
Küresel biliş Mini-Mental Durum Muayenesi (MMSE) [1]
Sözel ve görsel Bellek Ücretsiz ve Cued Seçmeli Hatırlatma Testi [3]
Corsi Testi [4]
Rey-Osterrieth Kompleksi Şekil (ROCF) Geri Çağırma [5]
Dikkat / psikomotor hız Iz a yapma [6]
Dikkat Matrices [4]
Dil-anlamsal bellek Anlamsal Sözel Akıcılık (renkler, hayvanlar, meyveler, şehirler) [4]
İdari fonksiyonlar Iz yapma B [6]
Kuzgun Renkli Matrisler [7]
Visuospatial yetenekleri Saat Çizim Testi (CDT) [8]
Rey-Osterrieth Karmaşık Şekil (ROCF) Kopya [5]

Tablo 4: Beyin bağışçıları için nöropsikolojik değerlendirme.

Metabolitleri
Tam kan sayımı
Kolesterol HDL ve LDL
Trigliserid
Glikoz
Glisemik hemoglobin (HbA1c)
Homosistein
Kobalamin (B12 Vitamini)
Folat
Albümin
Üre
Kreatinin
Transaminazlar (ALT ve AST)
Gamma Glutamyl transferaz
Tiroid Uyarıcı Hormon (TSH)
D vitamini (25-hidroksi-D vitamini)
C-Reaktif Protein (CRP)
Elektrolit

Tablo 5: Beyin bağışçıları için metabolik panel.

GEN ADI dbSNP
Apolipoprotein E (APOE) rs429358
rs7412
Katalaz (CAT) rs1001179
Süperoksit dismutaz 2 (SOD2) rs4880
Anjiyotensinojen (AGT) rs699
Sirtuin 2 (SIRT2) rs10410544
Dış mitokondriyal membran translokılıfı 40 (TOMM40) rs2075650
Köprü entegratörü 1 (BIN1) rs7561528
Catechol-O-metiltransferaz (COMT) rs4680
Metilentetrahidrofolat redüktaz (MTHFR) rs1801133
rs1801131
Beyin kaynaklı nörotrofik faktör (BDNF) rs6265
çözünür taşıyıcı aile 6, üye 4 (SLC6A4 veya 5HTT) Hidroksitriptamin taşıyıcı gen bağlantılı polimorfik bölge (5-HTTLPR)
rs25531

Tablo 6: InveCe.Ab beyin bağışçıları için analiz edilen SNP'ler.

Işlem Çözüm Süre
MAKRO ÖRNEKLERİ MİkRO ÖRNEKLER
Fiksasyon %10 TAMPONLU FORMALIN 4 °C'de 8 gün 4 °C'de 8 gün
Yık -ama FOSFAT TAMPON Oda sıcaklığında 2-15 gün Oda sıcaklığında 2-15 gün
Yık -ama H2O YIKAMA 2-3 saat, musluk suyu 2-3 saat, musluk suyu
Dehidratasyon ETIL ALKOL %70 24 saat 8 saat
Dehidratasyon ETIL ALKOL %80 24 saat 4 saat
Dehidratasyon ETIL ALKOL %90 60 saat (genellikle hafta sonu) 4 saat
Dehidratasyon ETIL ALKOL %95 12 saat 4 saat
Dehidratasyon ETIL ALKOL %95 12 saat 4 saat
Dehidratasyon ETIL ALKOL %100 6 saat 4 saat
Dehidratasyon ETIL ALKOL %100 6 saat 4 saat
Temizleme XYLENE I 12 saat 10 saat
Temizleme XYLENE II 12 saat 10 saat
Infiltrasyon PARAFFIN I 12 saat 11 saat
Infiltrasyon PARAFFIN II 12 saat 11 saat
Katıştırma PARAFIN BALMUMU

Tablo 7: ABB doku işleme protokolü.

Bölge H&E CRESIL MENEKŞE LFB GALLYAS 4G8 AT8 α-SYN TDP-43 Neun GFAP
Beyin sapı
Vagus'un Medulla- Dorsal Motor Çekirdeği X X X
Pons - Locus Coeruleus X X X
Orta beyin - Substantia Nigra X X X X
Beyincik
Serebellar korteks ve Dentate çekirdeği X X X X
CEREBRUM
Orta frontal girus X X X X X X X
Bazal Ganglia + Meynert çekirdeği X X X X X X
Sinkus, ön X X X X X X X
Amigdala X X X X X X
Talamus ve Subtalamik çekirdek X X
Superior ve orta temporal gyri X X X X X X X X X
Hipokampus ve Entorinal korteks X X X X X X X X X X
Inferior parietal lobül X X X X X X X
Oksipital korteks X X X X X
Koku ampulü X X

Tablo 8: Değerlendirilen bölgeler, boyama ve immünohistokimya.

Discussion

Protokoldeki kritik adımlar
Amacımız, uzunlamasına gözlemden elde edilen detaylı geçmişe sahip konulardan gelen kaliteli dokuları elde etmek, karakterize etmek ve depolamaktır. Bu amaca ulaşmak için aşağıdaki temel hususlarla uğraşmak gerekmektedir. Yukarıda açıklandığı gibi, protokol ilk önemli adım olan bağışçıların işe alınması ile başlar. Daha sonra, bağışçıların takip programına devam etmesi ve beynin gerçek bağışına kadar zaman içinde projeye yapışmasını sürdürmeleri gerekmektedir. Ölüm anında, yeterli doku kalitesi için önemli olan otopsi ekibinin 24 saat içinde toplanması için ABB personelinin derhal bilgilendirilmeleri gerekmektedir. Serebral hemisferlerin taze kesimi sabit bir el ve belirli bir eğitim gerektirir. Yavaş donma nedeniyle hücresel hasar önlemek ve kriyostat ve Omics için kaliteli dilimler elde etmek için, hızlı bir şekilde dondurulmuş olması önemlidir. Formalin çözeltisinin (1 mm/saat) penetrasyon hızı göz önünde bulundurularak, doku antijenitesini korumak için tek dilimin ıslatma süresi minimumda tutulur.

Yöntemin sorun giderme
Yukarıda belirtilen kritik adımları ele almak için aşağıdaki yaklaşımı sunuyoruz. Donör alımı ve takiplere bağlılık: Vücudun figürü, saflık ve bütünlüğüne zarar verme korkuları veya ölümden sonra acı hissetme olasılığı da dahil olmak üzere beyin bağışını engelleyen çeşitli faktörler vardır. Hatta bazıları otopsinin hala hayattayken yapılabileceğinden endişe ediyor70,71. Cenaze düzenlemeleri ve mali yük bozulması ile ilgili endişeler de mevcuttur72. Ayrıca, bir sağlık personelinin ölüm sonrası prosedürler hakkında bilgi eksikliği ve potansiyel bağışçıların veya nok'larının endişelerini giderememeleri kayıt işlemlerini engelleyebilir. Tüm bu faktörler, kayıtlı katılımcı sayısının düşük olması ve zaman içinde donör kaybı olasılığının yüksek olması ile düşük bir farkındalık düzeyine neden olabilir. Gerçekten de, donör işe alma programı farkındalık yaymak, güven aşılamak ve kayıt ve takip katılım yüksek oranlarda korumak insanları ikna verimli olmalıdır. Deneyimlerimize göre, bu potansiyel bağışçıların dikkatli seçimi ve BB'nin amaçlarının ayrıntılı açıklaması yoluyla yapılır. Hem sağlıklı insanların hem de nörodejeneratif hastalıklardan ve ailelerinden etkilenenlerin korkularını ve ihtiyaçlarını karşılayan eğitim faaliyetleri ve empatik bir yaklaşım sunuyoruz. Potansiyel bağışçıların bizzat yaklaştıklarında rıza gösterme olasılıklarının daha yüksek olduğunu görüyoruz. Yüz yüze yaklaşım, beyin bağışı ve takip değerlendirmelerine yüksek bir kayıt yüzdesi elde etmek için temel olan karşılıklı güven ve saygıya dayalı bir ilişki yaratır. Güçlü bir etik anlayışına sahip yüksek eğitimli bir personel önce potansiyel bağışçıya yaklaşır, ölümden sonra beyni bağışlama olasılığını tartışır, insan beyin dokusunun nörobilimsel araştırmalara değerini açıklar ve ölüm sonrası prosedürlerle ilgili şüpheleri açıklar. Ağız olumlu kelime eşit derecede önemlidir. Beyin hasat sonra, uygun dikkat ve bakım kadavra yeniden oluşturmak için verilir. Kadavraya nazikçe davranarak merhuma saygı ve minnet göstermek önemlidir. Birkaç ay sonra, bir toplantı aile üyeleri tarafından istendiğinde nöropatolojik analiz sonuçlarını iletmek için planlanır.

Ölüm ve beyin hasadı zamanı: Kişi kabul ettiğinde donör olur ve 24 saat/gün, 7 gün/hafta (bize bağlı OLAN ASP Golgi-Redaelli Geriatri Hastanesi'nin resepsiyon numarası) iletişim kurmak için bir numara içeren bir kimlik kartı verilir. Ayrıca hastaneye yatış durumunda kullanılmak üzere yakınlarına yapıştırıcı etiketi verilir. Cenaze ekipleridaha önce cesedi otopsi ekibinin çağrıldığı ABB tesislerine getirmeleri için bilgilendirildi. Otopsi ekibi bir patolog, bir nörolog ve/ veya nörobiyolog ve bir anatomik oda teknisyeni, her gün 06:00-23:00 arasında nöbette olan oluşur; bazı stajyer öğrenciler de sık sık yardımcı olmak ve fotoğraf çekmek için mevcut.

Taze kesme prosedürlerinin hassasiyeti ve tutarlılığı, yöntemi geliştirmiş ve nöropatolojide birkaç yıllık deneyime sahip aynı iki operatörün (bir nörolog ve bir patolog) katılımı yla sağlanır. Dilimleri dondururken, önceden dondurulmuş alüminyum tepsiye konur ve onları iyi düz tutmak için birbirine bağlı bir alüminyum plaka ile kaplıdır. Hemen sonra, -80 °C'de depolamadan önce 3 dakika sıvı nitrojene konur. Sabitlenecek dilimler ayrı ayrı gazlı bez sarılır ve bir gün sonra yerine %10 fosfat tamponlu formalin çözeltisi içine batırılır. Daha sonra, en fazla 5 ek gün formalinda tutulur; ancak formalin çözeltisinin 1 mm/gün'e kadar nüfuz ettiğini göz önünde bulundurarak ıslatma süresini daha da kısaltmak istiyoruz.

Yöntemin sınırlamaları
Burada açıklanan araştırma yöntemi sadece sınırlı bir coğrafi alanı kapsamaktadır ve bağış programına katılan bireyler genel nüfusu tamamen temsil etmeyecek özelliklere sahiptir. Kabul edilebilirden daha fazla olmasına rağmen, 24 saate kadar bir postmortem aralığı bazı protein yapılarında değişiklikler üretebilir, enzimler ve beyin dokusunun RNA. AFS ve pH tayini doku kalitesini belirlemek için tamamen yeterli olmayabilir73 ve RNA bütünlüğüne dayalı doku kalitesini doğrulamak için başka yollar geliştiriyoruz.

Mikrotom kesme prosedürü ile ilgili olarak, anatomik ilişkilerin yeniden yapılanmasında çok yararlı olsa da, makrokesitlerin kullanımının basit olmadığı ve bazı teknik güçlükler sunduğu unutulmamalıdır. Yöntemimiz zorlu ve zaman alıcıdır. Maliyetleri oldukça yüksek ve finansman her zaman kolay değildir. Finansman öncelikle kamu (ASP Golgi-Redaelli Geriatri Hastanesi) ve özel kaynaklar (Golgi-Cenci Vakfı), özel bağışlar, kar amacı gütmeyen kuruluşlar (örneğin "Federazione Alzheimer Italia") gelir ve katılım hibe.

ABB yönteminin mevcut/alternatif yöntemleraçısından önemi
Başlangıçta, beyin bağışı programımız InveCe.Ab uzunlamasına çalışmaya katılan bireyleri hedef aldı. Sonuç olarak, bağışlanan beyinler yıllar içinde toplanan ayrıntılı klinik, biyolojik ve sosyal bilgiler le birlikte verilir. ABB'nin gücü tam olarak bu ayırt edici kökenden kaynakla türetilmiştir. Gerçekten de, biyolojik özellikleri ve çevresel maruziyetleri paylaşan sosyal ve genetik olarak ilişkili bir grup insanı incelemek istatistiksel analizi geliştirir. Ayrıca, çalışma aşağıdaki yararları içerir: 1) Toplumun ihtiyaçlarını göz etmek ve sağlamak ("sormadan önce verme" eylemi): insanlar pratisyen hekime bilgi verilen ücretsiz bir periyodik kontrol alırlar, sekreterimizin bir telefon numarası istişareler için sağlanır ve ağır özürlüler evlerinde ziyaret edilir; 2) Periyodik seminerler (beyin sağlığı, beyin bağışı ve genel sağlık ile ilgili) ve tematik derslerin planlanması (örn. yaşlılar için bilgi teknolojisi cihazlarının kullanımı) aracılığıyla, katılımcılara, kamu salonlarıve pratisyen hekimlerin eğitim faaliyetlerine katılmaları; 3) İnsanlarla tanışmak ve yüz yüze bir yaklaşım benimsemek. Tüm bu unsurlar ABB projesinin gücünü oluşturmaktadır. Ayrıca, proje ilgili tıbbi personelin klinik yeteneklerini geliştirir, onlar antemortem değerlendirmeler ve postmortem nöropatolojik değerlendirmeler hem de deneyim kazanmak gibi. Bu bağlamda, "Azınlık yaşlanma araştırma çalışması" çok tuhaf bir deneyim söz etmek istiyorum. Bu çalışma, Chicago bölgesinde yaşayan sınırlı ve seçilmiş sayıda Afrikalı Amerikalıyı kapsıyor (1.357 uygun deneğin 784'ü: yanıt oranı %57). Katılımcılar her yıl evlerinde ziyaret edildi ve beyin bağışı programına katılmaları istendi. Bu çalışma, beyin bağışı programına yüksek oranda olumlu yanıt almak bizimkine benzerliği olan alışılmadık bir yaklaşıma dayanmaktadır (784 katılımcıdan 352'si kayıtlıydı: %44, otopsi oranı oldukça tatmin edici olmasa da (%53)74. Tıpkı "Azınlık yaşlandırma araştırması" çalışmasında olduğu gibi, eğitim faaliyetleri ve empatik bir yaklaşım sunarak mükemmel sonuçlar elde ediyoruz. Özellikle yanıt oranımız %93, kayıt oranımız %28.7 ve şu anda otopsi oranı %67. Bu oranlar, insanları doğrudan ilgilendiren projelerin bağışların daha önemli bir yüzdeye sahip olduğunu göstermektedir. Diğer beyin bağışı programları, potansiyel bağışçılar ile bir ilişki bina içine daha az dikkat ile, genellikle düşük bir kayıt yüzdesi var, etrafında olmak 10-15% veya daha az73,75.

Nöropatolojik analizle biten daha önceki birkaç kohort çalışması vardır. Ayrıca, beyin bankaları ve depoların çoğunluğu hastalık merkezli ve sağlıklı donörler "hastalıklı" beyin sayısına göre "kontrol" beyin bir kıtlığı vardır. Sadece sınırlı,sayıda BBs73,74, 76,,7777,78,79,80yaşlanma yörüngeleri çalışma için hem hastalıklı hem de normal konuları içeren nüfus çalışmaları dayanmaktadır. ABD74'teki "Azınlık yaşlandırma araştırması" ve Finlandiya76'daki "Vantaa 85+ çalışması" gibi bazı çalışmalar bizimkine benzer olmakla birlikte kohortun sona ermesiyle sonuçlanması eğilimindedir. Bunun yerine, ABB'nin bağış programının gelecekte de uzun bir süre devam etmesi, potansiyel bağışçıların yer aldığı ve InveCe.Ab uzunlamasına çalışmanın bitiminden sonra bile takipleri planlaması öngörülüyor. Bu yaklaşım, işe alım yöntemimizi emeklilik topluluğunu hedefleyen "Güneş Sağlığı Araştırma Enstitüsü (SHRI) beyin bağışı programına" benzer hale getirir73. Beyin bağışı için SHRI protokolü dünyanın en kısa ortalama ölüm sonrası aralığı (3.92 saat) ile çok etkilidir. Dünyanın en büyük BBs benzer, SHRI protokolü sadece orta hat (sagittal düzlemde) içinde serebrum, beyincik ve beyin sapı kesti, sonra bir yarısı taze ve biyokimyasal çalışmalar için dondurulmuş kesilir, diğer histopatolojik değerlendirme için formalin sabittir. Ancak, SHRI diseksiyon protokolünün güçlü yanlarından biri, tüm yarımküre yerine tek tek dilimlerin fiksasyonudur. Gerçekten de, bir yarımküreyi bir bütün olarak sabitlemek, yüzey ve çekirdek arasındaki farklı fiksasyon degradeleri nedeniyle en uygun olmaz. Ayrıca, kortikal proteinler formalin çözeltisine uzun süreli maruz kalma dan etkilenebilir. Böylece, neden tek tek dilimleri düzeltmek için karar nedeni.

Hangi tarafın sabit veya dondurulmuş olarak karar, tekil banka bağlıdır (her zaman aynı, rasgele atanan veya diseksiyon günü tek ya da çift olup olmadığına bağlı olarak atanmış)31,32,33,34,35. Biyokimyasal ve histopatolojik analizler her yarımkürede ayrı ayrı yapılır. Birçok nörolojik hastalık asimetrik olduğundan, BB'miz taze numuneleri dilimlemek için benzersiz bir protokol sunar: beyin sapından ve beyincik ve serebrumun her yarımküresinden alternatif kesitler sabit veya dondurulmuş malzeme olarak korunur; bir yarımkürede sabit bir dilim diğer yarımkürede donmuş bir karşılık gelir. Yöntemimiz, tüm dondurulmuş maddelerin tam bir histolojik karakterizasyonu elde etmek ve her iki tarafın her alanında nsonuçlarını karşılaştırma fırsatı verir. Girişte de belirtildiği gibi, açıklanan yöntem bize beyin dokusundan mümkün olduğunca çok bilgi elde etmek için izin verir. Ayrıca, ABB yöntemi hemen hemen tüm bilinen beyin proteinopatileri ve vasküler patoloji de dahil olmak üzere temel ama tam bir nöropatolojik karakterizasyon, verir. Bilişsel bozukluğun belirlenmesinde vasküler yaralanmaların tartışmalı rolü nedeniyle, vasküler yük30,53için bir çift puanlama kullanmaya karar verdi.

Protokolde açıklandığı gibi, çok disiplinli bir yaklaşım kullanıyoruz. Bu zaman alıcı ve emek li bir yöntem olmasına rağmen, araştırma için çeşitli avantajlar sağladığına inanıyoruz. Örneğin, bir önceki çalışmada, biz kendi başına yüksek tHcy veya APOE-ε4 alel ile ilişkili MTHFR C677T TT, bellek kaybı yerine yönetici işlev bozuklukları ile ilgili olabileceğini gösterdi81. Bu nedenle, nöropatolojik düzeyde bu özel genetik profili olan konuları değerlendirmek ilginç olabilir. Bu, bankamızda toplanan biyolojik materyallerin araştırılması yoluyla doğrulanabilir yeni araştırma hipotezleri oluşturmada bu tür derinlemesine takibin nasıl yararlı olduğuna bir örnektir. Yaklaşımımızın avantajının bir diğer göstergesi de QEEG'nin, orijinalliği ve göreceli kullanım kolaylığı açısından rutin olarak gerçekleştirdiğimiz değerlendirmeler arasında yer alan bir diğer gösteridir. Nitekim, EEG kortikal piramidal nöronlar82ait dendritlerin elektriksel potansiyelleri kaydederek serebral korteksin sinaptik aktivitesini algılar . QEEG biliş83ile ilgili kortikal sinaptik aktivite nin tahmini için bir biyomarker olarak kabul edilebilir. Özellikle, düşük frekanslarda genel bir artış ile beynin arka kısmında alfa ritimlerinde bir azalma (teta ve delta ritimleri) kortikal bağlantı arıza ile ilgili olmuştur. Bu tanı korelasyon çalışmalarının çoğu sadece olası ve kesin bir tanı84,85,86,87bir klinik tanı dayalı olduğu düşünülmelidir. Sadece çok az hedeflenen çalışmalar QEEG ve LTS varyantları arasındaki korelasyon araştırmak için nöropatolojik resim ile QEEG verileri karşılaştırdık88,89, ftld ve AD83arasındaki ayrım . Çalışmamızı nöropatolojik tanı tanımı ile bitirerek, serebral elektriksel aktivite üzerine yapılan gözlemleri doğru bir şekilde yorumlamak mümkündür. Ayrıca her konuda seri QEEG'yi gerçekleştirerek, intra-bireysel EEG dalgalarının yörüngesini ve nöropatolojik resimle olan bağıntılarını takip edebiliriz. Zaman içinde kortikal elektriksel aktivitebireysel değişiklikler aşağıdaki incipient demans için bir biyomarker olarak anlamını daha iyi anlaşılmasına yol açabilir.

Gelecekteki uygulamalar ve yöntemin yönü
Doku dağılımının uygulanması ana hedeflerimizden biridir. Bunu yapmak için, biz sadece GC Vakfı (geriatri), Pavia Üniversitesi Nöroloji bir akademisyen, gc Vakfı ve Geriatri Hastanesi ASP Golgi-Redaelli hem de bir nörolog ve bir patolog direktörü de dahil olmak üzere bilimsel bir komisyon kurdu. Beyin dokusu, histolojik slaytlar ve diğer biyolojik örnekleri dağıtırken, bağışçıların araştırma amacıyla bağışı kabul ettiğini hatırlamak önemlidir. Bu nedenle malzeme nin dağıtımı, BNE Davranış Kuralları40'taaçıklandığı gibi ihtiyatlı bir şekilde gerçekleşmelidir. Malzeme için bir istek tespül eden taraflar, gerekli numunenin türünü ve miktarını belirtmeli, araştırma projesinin açıklamasını ve numunelerin nasıl kullanılacağını ve mümkün olduğunda önceki yayınların kanıtlarını sağlamalı (transfer anlaşması için Şekil 9'abakınız). Beyin bankası finansal kazanç için çalışmıyor. Yani, araştırmacılar tarafından ödenen ücretler sadece doku temini, işleme, depolama ve dağıtım giderlerini kapsamalıdır.

Proteomik ve transkripsiyon gibi ekzom dizilimi ve Omics teknikleri ile vakaları analiz etmeye başlama planları harekete geçti. Alternatif örnekleme metodolojimiz, her iki yarımküreden histolojik olarak iyi tanımlanmış dokular üzerinde omik çalışmalarının yapılmasına olanak sağlayacaktır. Bu yaklaşım la aynı yarımkürenin farklı beyin bölgelerinde ve diğer yarımkürenin ilgili bölgelerinde gen aktivasyon paterni karşılaştırmak mümkün olacak ve histopatoloji ile gen aktivasyonu ilişkilendirmek mümkün olacaktır. Bu alanda, histolojik slaytların bilgisayarlı analizi ve klinik, histolojik ve omik verilerin en son korelasyonunu içeren derin öğrenme uygulamaları büyük ilgi göstereceği dir. Birçok farklı değişken arasındaki diğer korelasyonlar ve diğer olası teknolojik uygulamalar tanımlanabilir. Her iki yarımküreden gelen dondurulmuş maddelerin kullanılabilirliği gen aktivasyonu ve protein dağılımının doğru bir topografyasını sağlayacaktır. Bu sağlıklı konularda bile özellikle ilgi olacaktır, hem beyin fonksiyonları ve bazı hastalıklar asimetrik olduğu göz önüne alındığında.

Ayrıca, iyi karakterize beyin donörlerinden hücre kültürleri elde edebilirsiniz. Gerçekten de, hasat beyinleptomeninges gelen hücre kültürleri hastalık veya yaşlanma mekanizmaları daha fazla araştırma için kullanılabilir canlı hücreleri kaynağı, indüklenen pluripotent kök hücreleri sayesinde (iPSCs) leptomeningeal fibroblastlar yeniden programlama ve ileri modellerde nöral hücrelere ayırarak içerir90.

Beyin yaşlandıkça, farklı değişim profilleri moleküler, hücresel ve doku düzeyinde oluşabilir. Her beyin eşsizdir. Her iç ve dış stres yanıt kendi yolu vardır; bazıları direnirken, diğerleri farklı patolojiler gösterir. Klinik tablo ile nöropatolojik tablo arasındaki tutarsızlıklar genellikle vardır, çünkü lezyonların topografyası moleküler doğalarından çok klinik sunumu belirler. Doğru ve kesin tanı ancak klinik sendrom ile nörolojik bulgularla birleştirilerek elde edilebilir ve bu bulgular hastalıkların patogenezini çözmek için gerekli önemli etiyolojik ipuçlarını eklemektedir. Avrupa'da nöropatolojik tanıya standart bir yaklaşım oluşturma çabası vardır. Tanı protokolümüz neredeyse tamamen beyin bankacılığı için nöropatolojik tanı ile ilgili son yayınlanan yönergeleri izler91. Bu bize toplamak ve iyi belgelenmiş beyin dokusu paylaşmak için izin verecektir, ilk İtalyan Beyin Bankası kurma potansiyel amacı ile. Nitekim, İtalya'da beyin depoları ama kohort çalışmalara dayalı beyin bankaları vardır. Amacımız, İtalya genelinde yaygın olarak uygulanabilecek beyin dokusu hasat için ortak bir protokol kullanan ve benzer materyalleri paylaşan bir ağ kurmak için bir yöntem geliştirmektir. Bunu yapmak için, diğer araştırma merkezlerinin katılımı ve belirli bir web sitesinin oluşturulması gelecek için ana hedefler arasında yer almaktadır.

Yenilikçi teknolojiler sürekli nörodejeneratif hastalıkların moleküler doğasının analizi ve biyomarker tanımlama için kullanılmaktadır. Bu bağlamda, nöropatolojik olarak doğrulanmış epidemiyolojik yaklaşımın önemini vurgulayan, uzunlamasına çalışmalarla elde edilen bilişsel ve yaşlanma yörüngeleri hakkında bilgiler eşliğinde beyinlere giderek artan bir ihtiyaç olacaktır92.

Disclosures

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Acknowledgments

Bu çalışmayı Dr.ssa Michela Mangieri'ye ithaf etmek istiyoruz. O erken ölmeden önce, o gebe ve Abbiategrasso Beyin Bankası Projesi başladı.

Biz cömertçe kendi vücudunun en asil organ bağış araştırma katkıda bulunan beyin bağışçıları için müteşekkiriz; onlar olmadan bu araştırma mümkün olmazdı.

Valeria Marzagalli'ye ABB projesindeki değerli çalışmaları için minnettarız.

Yazarlar, değerli rehberlik ve bilge danışman için Prof Johannes Attems, Dr Paolo Fociani ve Dr Giorgio Giaccone teşekkür ederiz.

Dr.sa Alice Cirrincione ve Bayan Giulia Bortone'a proje boyunca yaptıkları değerli yardımlar için teşekkür ederiz.
Bayan Tere Cassani'ye desteği ve işbirliği için "Federazione Alzheimer Italia" için çok teşekkür ederiz.
Yazarlar Dr Matteo Moretti ve Prof Antonio Marco Maria Osculati, Halk Sağlığı, Deneysel ve Adli Tıp, Pavia Üniversitesi Bölümü müteşekkir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
50ml polypropilene conical tube 30x115mm BD 405253
Anti-GFAP Dako Z0334 policlonal primary antibody (anti-rabbit); dilution = 1:1000
Anti-NeuN (A60) Chemicon MAB377 monoclonal primary antibody (anti-mouse); dilution = 1:1000
Anti-phospho TAU (AT8) ThermoScientific MN1020 monoclonal primary antibody (anti-mouse); dilution = 1:200
Anti-phospho TDP-43 (pS409/410-2) CosmoBio TIP-PTD-P02 policlonal primary antibody (anti-rabbit) ; dilution = 1:4000; pretreatment : Three step in microwave for 2 min-1 min-2 min with citrate buffer 0.01M pH 6
Anti-α-SYN (KM51) Novocastra NCL-L-ASYN monoclonal primary antibody (anti-mouse); dilution = 1:500; pretreatment: 1) Three step in microwave for 2 min-1 min-2 min with citrate buffer 0.01M pH 6 ; 2) 70% formic acid in H2O for 10 min
Anti-βamyloid (4G8) BioLegend 800703 monoclonal primary antibody (anti-mouse); dilution = 1:1000; pretreatment : 70% formic acid in H2O for 10 min
Cutting board BD 352070
DMEM High Glucose Carlo Erba FA30WL0101500 medium
Electrical saw with 5d blade CEA 06.06.14/06.00.16
Electrode pH measure surface 12mm CEA 70064.250 HHH
Electrode pH needle Fisher Scientific 11796338
EnVision+System-HRP Dako K4001 secondary antibody (anti-mouse); dilution 1:2
EnVision+System-HRP Dako K4003 secondary antibody (anti-rabbit); dilution 1:2
Ethylether SMI 8401530
Feather safety trimming knife blade 14cm Fisher Scientific 11749798
Fetal Bovine Serum Carlo Erba FA30WS1810500 medium supplement; dilution = 20%
Forceps 15cm surgical or anatomical Uvex 500XG
Gloves CEA 01.28.14
Glue Arcobaleno 2624000800002
Head supporter Lacor 60456
L-Glutamine (100X) Carlo Erba FA30WX0550100 medium supplement; dilution = 1%
Measuring tape CEABIS CEATA34
Non adsorbable monofilament black polyamide UHU Bostik 8000053131470
Non-Essential Amino Acids Solution (100X) Life Technologies 11140050 medium supplement; dilution = 1%
Pen/Strept Solution (100X) Carlo Erba FA30WL0022100 medium supplement; dilution = 1%
Spinal needle quincke tipe point 20GA 3.50IN 0.9x90mm CEA 03.06.16
Sterile scalpel with n°21 blade
Surgical basin Olcelli Farmaceutica A930857255
Surgical mallet and surgical cisel CEA 79.68.88
Surgical scissor CEA 27.08.45/79.68.64
Feather M130RC

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. The Global Dementia Observatory Reference Guide World Health Organization. , at http://apps.who.int/bookorders (2018).
  2. Kasper, B. S., et al. Neuropathology of epilepsy and psychosis: the contributions of J.A.N. Corsellis. Brain: a journal of neurology. 133, Pt 12 3795-3805 (2010).
  3. Overy, C., Tansey, E. M. The development of brain banks in the UK. c.1970-c.2010. , Available from: www.histmodbiomed.org (2013).
  4. Tourtellotte, W. W., Itabashi, H. H., Rosario, I., Berman, K. The National Neurological Research Bank. A collection of cryopreserved human neurological specimens for neuroscientists. Annals of the New York Academy of Sciences. 436, 513-516 (1984).
  5. Tourtellotte, W. W., Rosario, I. P., Conrad, A., Syndulko, K. Human neuro-specimen banking 1961-1992. The National Neurological Research Specimen Bank (a donor program of pre- and post-mortem tissues and cerebrospinal fluid/blood; and a collection of cryopreserved human neurological specimens for neuroscientists). Journal of neural transmission. 39, Supplementum 5-15 (1993).
  6. Carlos, A. F., Poloni, T. E., Medici, V., Chikhladze, M., Guaita, A., Ceroni, M. From brain collections to modern brain banks: A historical perspective. Alzheimer's & dementia. 5, New York, N.Y. 52-60 (2019).
  7. Szymański, P., Markowicz, M., Janik, A., Ciesielski, M., Mikiciuk-Olasik, E. Neuroimaging diagnosis in neurodegenerative diseases. Nuclear medicine review. Central & Eastern Europe. 13 (1), 23-31 (2010).
  8. Nowak, D., Hofmann, W. K., Koeffler, H. P. Genome-Wide Mapping Of Copy Number Variations using SNP Arrays. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 36 (4), 246-251 (2009).
  9. Bush, W. S., Moore, J. H. Chapter 11: Genome-wide association studies. PLoS computational biology. 8 (12), 1002822 (2012).
  10. Dirks, R. A. M., Stunnenberg, H. G., Marks, H. Genome-wide epigenomic profiling for biomarker discovery. Clinical epigenetics. 8 (1), 122 (2016).
  11. Felsenfeld, G. A Brief History of Epigenetics. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 6 (1), 018200 (2014).
  12. Cogswell, J. P., et al. Identification of miRNA Changes in Alzheimer's Disease Brain and CSF Yields Putative Biomarkers and Insights into Disease Pathways. Journal of Alzheimer's Disease. 14 (1), 27-41 (2008).
  13. Lau, P., et al. Alteration of the microRNA network during the progression of Alzheimer's disease. EMBO molecular medicine. 5 (10), 1613-1634 (2013).
  14. Lowe, R., Shirley, N., Bleackley, M., Dolan, S., Shafee, T. Transcriptomics technologies. PLoS computational biology. 13 (5), 1005457 (2017).
  15. Simpson, J. E., et al. Microarray analysis of the astrocyte transcriptome in the aging brain: relationship to Alzheimer’s pathology and APOE genotype. Neurobiology of aging. 32 (10), 1795-1807 (2011).
  16. Shevchenko, G., Konzer, A., Musunuri, S., Bergquist, J. Neuroproteomics tools in clinical practice. Biochimica et biophysica acta. 1854 (7), 705-717 (2015).
  17. Patterson, S. D. Proteomics: evolution of the technology. BioTechniques. 35 (3), 440-444 (2003).
  18. Paraizo Leite, R. E., Tenenholz Grinberg, L. Closing the gap between brain banks and proteomics to advance the study of neurodegenerative diseases. Proteomics. Clinical applications. 9 (9-10), 832-837 (2015).
  19. Giacomelli, C., Daniele, S., Martini, C. Potential biomarkers and novel pharmacological targets in protein aggregation-related neurodegenerative diseases. Biochemical Pharmacology. 131, 1-15 (2017).
  20. Faghihi, M. A., Mottagui-Tabar, S., Wahlestedt, C. Genetics of neurological disorders. Expert review of molecular diagnostics. 4 (3), 317-332 (2004).
  21. Toft, M. Advances in genetic diagnosis of neurological disorders. Acta Neurologica Scandinavica. 129, 20-25 (2014).
  22. Kumar, D., Weatherall, D. J. Genomics and clinical medicine. , 651 (2008).
  23. Han, G., Sun, J., Wang, J., Bai, Z., Song, F., Lei, H. Genomics in Neurological Disorders. Genomics, Proteomics & Bioinformatics. 12 (4), 156-163 (2014).
  24. Gere, C. A Brief History of Brain Archiving. Journal of the History of the Neurosciences. 12 (4), 396-410 (2003).
  25. Fratiglioni, L., Paillard-Borg, S., Winblad, B. An active and socially integrated lifestyle in late life might protect against dementia. Lancet neurology. 3 (6), 343-353 (2004).
  26. Spartano, N. L., et al. Association of Accelerometer-Measured Light-Intensity Physical Activity With Brain Volume. JAMA Network Open. 2 (4), 192745 (2019).
  27. Bell, J. E., et al. Management of a twenty-first century brain bank: experience in the BrainNet Europe consortium. Acta neuropathologica. 115 (5), 497-507 (2008).
  28. Ravid, R., Park, Y. mok Brain banking in the twenty-first century: creative solutions and ongoing challenges. Journal of Biorepository Science for Applied Medicine. 2, 17 (2014).
  29. Iacono, D., Geraci-Erck, M., Peng, H., Bouffard, J. P. Symmetric Bihemispheric Postmortem Brain Cutting to Study Healthy and Pathological Brain Conditions in Humans. Journal of visualized experiments: JoVE. (118), (2016).
  30. Deramecourt, V., et al. Staging and natural history of cerebrovascular pathology in dementia. Neurology. 78 (14), 1043-1050 (2012).
  31. Netherlands Brain Bank Information for tissue applicants. , Available from: https://www.brainbank.nl/media/uploads/file/Information for tissue applicants_2019.pdf (2019).
  32. UK Brain Bank Network Process used by the banks for tissue processing and storage. The UK Brain Bank Network protocol. , Available from: https://mrc.ukri.org/documents/pdf/process-used-by-the-banks-for-tissue-processing-and-storage/ (2019).
  33. Vonsattel, J. P. G., Del Amaya, M. P., Keller, C. E. Twenty-first century brain banking. Processing brains for research: the Columbia University methods. Acta neuropathologica. 115 (5), 509-532 (2008).
  34. A Tour Of The Brain Bank. Brain Bank. , Available from: https://hbtrc.mclean.harvard.edu/pdf/about/HBTRC-Tour-2013.2.pdf (2019).
  35. Sheedy, D., et al. An Australian Brain Bank: a critical investment with a high return! Cell and tissue banking. 9 (3), 205-216 (2008).
  36. Guaita, A., et al. Brain aging and dementia during the transition from late adulthood to old age: design and methodology of the "Invece.Ab" population-based study. BMC Geriatr. 13, 98 (2013).
  37. Lobo, A., et al. Prevalence of dementia and major subtypes in Europe: A collaborative study of population-based cohorts. Neurologic Diseases in the Elderly Research Group. Neurology. 54, 4-9 (2000).
  38. Hofman, A., et al. The prevalence of dementia in Europe: a collaborative study of 1980-1990 findings. Eurodem Prevalence Research Group. Int J Epidemiol. 20 (3), 736-748 (1991).
  39. BrainNet Europe - Code of Conduct. , Available from: https://www.brainnet-europe.org/indexe151.html?_option=com_content_view=article_id=89_Itemid=89 (2008).
  40. Klioueva, N. M., Rademaker, M. C., Huitinga, I. Design of a European code of conduct for brain banking. Handbook of Clinical Neurology. 150, Elsevier B.V. (2018).
  41. Lee, K., Saetern, O. C., Nguyen, A., Rodriguez, L., Schüle, B. Derivation of Leptomeninges Explant Cultures from Postmortem Human Brain Donors. Journal of visualized experiments: JoVE. (119), (2017).
  42. Esiri, M. M., Wilcock, G. K., Morris, J. H. Neuropathological assessment of the lesions of significance in vascular dementia. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry. 63 (6), 749-753 (1997).
  43. Tomita, H., et al. Effect of agonal and postmortem factors on gene expression profile: quality control in microarray analyses of postmortem human brain. Biological psychiatry. 55 (4), 346-352 (2004).
  44. Stan, A. D., et al. Human postmortem tissue: what quality markers matter. Brain research. 1123 (1), 1-11 (2006).
  45. Montine, T. J., et al. National Institute on Aging-Alzheimer's Association guidelines for the neuropathologic assessment of Alzheimer's disease: a practical approach. Acta Neuropathologica. 123 (1), 1-11 (2012).
  46. Boxer, A. L., Yu, J. T., Golbe, L. I., Litvan, I., Lang, A. E., Höglinger, G. U. Advances in progressive supranuclear palsy: new diagnostic criteria, biomarkers, and therapeutic approaches. The Lancet Neurology. 16 (7), 552-563 (2017).
  47. Dickson, D. W., Ahmed, Z., Algom, A. A., Tsuboi, Y., Josephs, K. A. Neuropathology of variants of progressive supranuclear palsy. Current opinion in neurology. 23 (4), 394-400 (2010).
  48. Dickson, D. Neurodegeneration: the molecular pathology of dementia and movement disorders. , Wiley-Blackwell. (2011).
  49. Crary, J. F., et al. Primary age-related tauopathy (PART): a common pathology associated with human aging. Acta neuropathologica. 128 (6), 755-766 (2014).
  50. Kovacs, G. G., et al. Aging-related tau astrogliopathy (ARTAG): harmonized evaluation strategy. Acta neuropathologica. 131 (1), 87-102 (2016).
  51. Alafuzoff, I., et al. Neuropathological assessments of the pathology in frontotemporal lobar degeneration with TDP43-positive inclusions: an inter-laboratory study by the BrainNet Europe consortium. Journal of neural transmission. 122 (7), Vienna, Austria. 957-972 (2015).
  52. Love, S., et al. Development, appraisal, validation and implementation of a consensus protocol for the assessment of cerebral amyloid angiopathy in post-mortem brain tissue. American journal of neurodegenerative disease. 3 (1), 19-32 (2014).
  53. Skrobot, O. A., et al. Vascular cognitive impairment neuropathology guidelines (VCING): the contribution of cerebrovascular pathology to cognitive impairment. Brain. 139 (11), 2957-2969 (2016).
  54. Thal, D. R., Rüb, U., Orantes, M., Braak, H. Phases of A beta-deposition in the human brain and its relevance for the development of AD. Neurology. 58 (12), 1791-1800 (2002).
  55. Braak, H., Alafuzoff, I., Arzberger, T., Kretzschmar, H., Del Tredici, K. Staging of Alzheimer disease-associated neurofibrillary pathology using paraffin sections and immunocytochemistry. Acta Neuropathologica. 112 (4), 389-404 (2006).
  56. Mirra, S. S., et al. The Consortium to Establish a Registry for Alzheimer's Disease (CERAD): Part II. Standardization of the neuropathologic assessment of Alzheimer's disease. Neurology. 41 (4), 479-479 (1991).
  57. Finger, E. C. Frontotemporal Dementias. CONTINUUM: Lifelong Learning in Neurology. 22, 2, Dementia 464-489 (2016).
  58. Kovacs, G. G. Neuropathology of Neurodegenerative Diseases. , Cambridge University Press. Cambridge. (2014).
  59. Kovacs, G. G., et al. Neuropathology of the hippocampus in FTLD-Tau with Pick bodies: a study of the BrainNet Europe Consortium. Neuropathology and applied neurobiology. 39 (2), 166-178 (2013).
  60. McKeith, I. G., et al. Diagnosis and management of dementia with Lewy bodies: third report of the DLB Consortium. Neurology. 65, 1863-1872 (2005).
  61. Beach, T. G., et al. Unified staging system for Lewy body disorders: correlation with nigrostriatal degeneration, cognitive impairment and motor dysfunction. Acta neuropathologica. 117 (6), 613-634 (2009).
  62. McKeith, I. G., et al. Diagnosis and management of dementia with Lewy bodies. Neurology. 89 (1), 88-100 (2017).
  63. Trojanowski, J. Q., Revesz, T. Neuropathology Working Group on MSA Proposed neuropathological criteria for the post mortem diagnosis of multiple system atrophy. Neuropathology and applied neurobiology. 33 (6), 615-620 (2007).
  64. Mackenzie, I. R. A., et al. A harmonized classification system for FTLD-TDP pathology. Acta neuropathologica. 122 (1), 111-113 (2011).
  65. Nelson, P. T., et al. Limbic-predominant age-related TDP-43 encephalopathy (LATE): consensus working group report. Brain. 142 (6), 1503-1527 (2019).
  66. Josephs, K. A., et al. Staging TDP-43 pathology in Alzheimer's disease. Acta neuropathologica. 127 (3), 441-450 (2014).
  67. Rauramaa, T., et al. Consensus recommendations on pathologic changes in the hippocampus: a postmortem multicenter inter-rater study. Journal of neuropathology and experimental neurology. 72 (6), 452-461 (2013).
  68. Iacono, D., et al. Same Ages, Same Genes: Same Brains, Same Pathologies?: Dementia Timings, Co-Occurring Brain Pathologies, ApoE Genotypes in Identical and Fraternal Age-matched Twins at Autopsy. Alzheimer Disease & Associated Disorders. 30 (2), 178-182 (2016).
  69. Guaita, A., et al. Influence of socio-demographic features and apolipoprotein E epsilon 4 expression on the prevalence of dementia and cognitive impairment in a population of 70-74-year olds: The InveCe.Ab study. Archives of Gerontology and Geriatrics. 60 (2), 334-343 (2015).
  70. Stevens, M. Factors influencing decisions about donation of the brain for research purposes. Age and ageing. 27 (5), 623-629 (1998).
  71. Le Bouc, R., et al. Limiting Factors of Brain Donation in Neurodegenerative Diseases: The Example of French Memory Clinics. Journal of Alzheimer's disease: JAD. 49 (4), 1075-1083 (2016).
  72. Samarasekera, N., et al. Brain banking for neurological disorders. The Lancet. Neurology. 12 (11), 1096-1105 (2013).
  73. Beach, T. G., et al. The Sun Health Research Institute Brain Donation Program: description and experience, 1987-2007. Cell and tissue banking. 9 (3), 229-245 (2008).
  74. Barnes, L. L., Shah, R. C., Aggarwal, N. T., Bennett, D. A., Schneider, J. A. The Minority Aging Research Study: ongoing efforts to obtain brain donation in African Americans without dementia. Current Alzheimer research. 9 (6), 734-745 (2012).
  75. de Lange, G. M., Rademaker, M., Boks, M. P., Palmen, S. J. M. C. Brain donation in psychiatry: results of a Dutch prospective donor program among psychiatric cohort participants. BMC psychiatry. 17 (1), 347 (2017).
  76. Peuralinna, T., et al. APOE and AβPP Gene Variation in Cortical and Cerebrovascular Amyloid-β Pathology and Alzheimer's Disease: A Population-Based Analysis. Journal of Alzheimer's Disease. 26 (2), 377-385 (2011).
  77. Kawas, C. H. The oldest old and the 90+ Study. Alzheimer's & dementia: the journal of the Alzheimer's Association. 4, Suppl 1 56-59 (2008).
  78. Bennett, D. A., Schneider, J. A., Arvanitakis, Z., Wilson, R. S. Overview and findings from the religious orders study. Current Alzheimer research. 9 (6), 628-645 (2012).
  79. O'Brien, R. J., et al. Neuropathologic studies of the Baltimore Longitudinal Study of Aging (BLSA). Journal of Alzheimer's disease: JAD. 18 (3), 665-675 (2009).
  80. Jonkman, L. E., et al. Normal Aging Brain Collection Amsterdam (NABCA): A comprehensive collection of postmortem high-field imaging, neuropathological and morphometric datasets of non-neurological controls. NeuroImage: Clinical. 22, 101698 (2019).
  81. Polito, L., et al. High homocysteine and epistasis between MTHFR and APOE: association with cognitive performance in the elderly. Experimental gerontology. 76, 9-16 (2016).
  82. Amzica, F., Lopes Silva, F. Cellular substrates of brain rhythms. Niedermeyer's Electroencephalography is now in its thoroughly updated sixth edition. , 33-63 (2009).
  83. Vecchio, F., et al. Resting state cortical EEG rhythms in Alzheimer's disease: toward EEG markers for clinical applications: a review. Supplements to Clinical neurophysiology. 62, 223-236 (2013).
  84. Gouw, A. A., et al. EEG spectral analysis as a putative early prognostic biomarker in nondemented, amyloid positive subjects. Neurobiology of Aging. 57, 133-142 (2017).
  85. Babiloni, C., et al. Abnormalities of cortical neural synchronization mechanisms in patients with dementia due to Alzheimer's and Lewy body diseases: an EEG study. Neurobiology of Aging. 55, 143-158 (2017).
  86. Bonanni, L., et al. Quantitative electroencephalogram utility in predicting conversion of mild cognitive impairment to dementia with Lewy bodies. Neurobiology of Aging. 36 (1), 434-445 (2015).
  87. Engedal, K., et al. Quantitative EEG Applying the Statistical Recognition Pattern Method: A Useful Tool in Dementia Diagnostic Workup. Dementia and Geriatric Cognitive Disorders. 40 (1-2), 1-12 (2015).
  88. Caviness, J. N., Beach, T. G., Hentz, J. G., Shill, H. A., Driver-Dunckley, E. D., Adler, C. H. Association Between Pathology and Electroencephalographic Activity in Parkinson's Disease. Clinical EEG and Neuroscience. 49 (5), 321-327 (2018).
  89. Goossens, J., et al. EEG Dominant Frequency Peak Differentiates Between Alzheimer's Disease and Frontotemporal Lobar Degeneration. Journal of Alzheimer's Disease. 55 (1), 53-58 (2016).
  90. Bordoni, M., et al. From Neuronal Differentiation of iPSCs to 3D Neuro-Organoids: Modelling and Therapy of Neurodegenerative Diseases. International Journal of Molecular Sciences. 19 (12), 3972 (2018).
  91. Alafuzoff, I. Minimal neuropathologic diagnosis for brain banking in the normal middle-aged and aged brain and in neurodegenerative disorders. Handbook of clinical neurology. 150, 131-141 (2018).
  92. Wharton, S. B., et al. Epidemiological Neuropathology: The MRC Cognitive Function and Aging Study Experience. Journal of Alzheimer's Disease. 25 (2), 359-372 (2011).

Tags

Nörobilim Sayı 160 Beyin Bankası nöropatoloji yaşlanma yaşlı bakımı uzunlamasına kohort çalışması beyin bağışı beyin diseksiyonu protokolü QEEG kliniko-patolojik korelasyon omik
Abbiategrasso Beyin Bankası Toplama, İşleme ve Yaşlanma Beyinleri Karakterize için Protokol
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Poloni, T. E., Medici, V., Carlos,More

Poloni, T. E., Medici, V., Carlos, A. F., Davin, A., Ceretti, A., Mangieri, M., Cassini, P., Vaccaro, R., Zaccaria, D., Abbondanza, S., Bordoni, M., Fantini, V., Fogato, E., Cereda, C., Ceroni, M., Guaita, A. Abbiategrasso Brain Bank Protocol for Collecting, Processing and Characterizing Aging Brains. J. Vis. Exp. (160), e60296, doi:10.3791/60296 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter