Summary
神経内分泌腫瘍(NETs)は神経堤の神経内分泌細胞に由来する。彼らは成長が遅く、文化に挑戦しています。我々は、スフェロイドとしてそれらを培養することにより、小腸からNETを成長させるための代替戦略を提示します。これらのスフェロイドは、小さな腸ネットマーカーを有し、薬物検査に使用することができます。
Abstract
小腸神経内分泌腫瘍(SBNET)は、腸の腸内クロマフィン細胞に由来する稀な癌である。この分野の研究は、非常に少数の患者由来SBNET細胞株が生成されているので、限られている。十分に分化したSBNET細胞は成長が遅く、伝播しにくい。確立された少数の細胞株は容易に利用できないし、培養中の時間が経つ後もNET細胞の特性を発現し続けないかもしれない。SBNET細胞は長い倍増時間を持ち、癌関連線維芽細胞を急速に分裂させるには多くの濃縮ステップが必要となるため、新しい細胞株の生成には何年もかかる可能性があります。これらの限界を克服するために、細胞外マトリックス(ECM)におけるスフェロイドとして外科的に除去された腫瘍からSBNET細胞を培養するプロトコルを開発しました。ECMは、SBNET細胞をカプセル化し、腫瘍微小環境を模倣してSBNET細胞の増殖を可能にする3次元マトリックスを形成する。ここでは、SBNETスフェロイドの増殖速度を特徴付け、免疫蛍光顕微鏡と免疫組織化学を用いてSBNETマーカーを同定する方法を説明し、スフェロイドが神経内分泌腫瘍細胞であることを確認した。また、ラパマイシンの細胞毒性を試験するためにSBNETスフェロイドを用いた。
Introduction
小腸神経内分泌腫瘍(SBNETs)は、小腸の腸内クロマフィン細胞に由来する。SBNETは一般的にゆっくりと成長することが知られているが、それらは一般的に肝臓1に転移する。外科的除去または腫瘍切除は多くの場合考えることができるが、再発はほぼ普遍的であり、したがって、医療療法は管理において重要な役割を果たす。薬物検査のための新しいSBNET細胞株を生成するために多大な努力が投資されています。しかし、成功はほとんどありませんでした。6つのSBNET細胞株(KRJ-I、CND2、GOT1、P-STS、L-STS、H-STS)のみが報告されています2,3,4,5;そして残念ながら、1つの細胞株はもはやNETマーカー6および他の3つのSBNET細胞株(KRJ-I、L-STS、H-STS)を発現しなくなり、NETs7の代わりに形質転換リンパ芽球に由来すると判断した。SBnETを標的とする薬剤の同定を加速するためには、インビトロ薬物検査のための代替方法が必要である。
ここでは、切除されたSBNETの利用可能性を利用し、ECMで成長するスフェロイドとしてこれらの患者由来SBNETを培養する方法を確立した。この原稿の全体的な目標は、免疫蛍光染色および免疫組織化学によるSBNETマーカーの保持のためのこれらのスフェロイドを特徴付ける3次元(3D)培養および輪郭手順としてSBNETを培養する方法を記述することです。
さらに、これらのSBNETスフェロイドをNETs8の抗癌剤であるラパマイシンの効果をテストするためにどのように使用できるかを示す。このプロトコルの背後にある根拠は、インビトロでSBNET細胞を成長させ、薬物検査に使用する新しい方法を開発することです。SBNET細胞株を確立する従来の方法に対するこの技術の利点は、SBnNETの3D培養物を迅速に得ることができ、薬物検査を3週間以内に行うことです。SBNETのスフェロイドは、SBNET患者の新薬を同定するためにインビトロ薬剤スクリーンを行うためのモデルとして使用される可能性がある。SBNET細胞株は広く利用できないため、SBNETスフェロイドの3D培養はSBNNETを研究するための新しいインビトロモデルとして機能し、現場の科学者間で共有することができます。
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Protocol
ヒト神経内分泌腫瘍サンプルを用いる全ての実験は、アイオワ大学病院および診療所IRB委員会(議定書番号199911057)によって承認されている。すべての材料と機器のリストは、材料の表に記載されています。成長メディアと主要なソリューションの一覧を表 1に示します。
1. 小腸神経内分泌腫瘍(SBNET)コレクションと細胞解離
- 外科病理学の中心からの腫瘍組織の確認の後に切除された患者SBNETのサンプルを得る。
- SBNETを5mmの立方体にカットし、DMEM/F12培地の25 mLを円錐形のチューブに入れて保管し、実験室への輸送を行います。
- 1%FBSを含むDMEMで腫瘍を転写し、1%ペニシリン/ストレプトマイシン(ペン/ストレプ)、1%グルタミン(洗浄培地)を含み、この洗浄媒体で15分間インキュベートする。
- 生殖不能の湾曲したはさみを使用して、腫瘍を新しい皿とミンチ腫瘍に1mm未満に移します。
- 25 mLの洗浄媒体を含む新しい50 mLチューブにひき刻まれた組織を移します。
- 4°Cで15分間500 x gでサンプルを遠心分離します。
- 上清を廃棄し、コラゲナセ(100U/mL)とDNase(0.1mg/mL)を含む洗浄媒体の10 mLでペレットを再懸濁します。
- みじん切り腫瘍の消化を37°Cインキュベーターで1.5時間のゆっくりと振る(50rpm)で消化できるようにします。
2. ECMにおける腫瘍スフェロイドとしてのSBNTの培養
- 消化が完了した後(ステップ1.8)、4°Cで15分間500 x gで遠心分離機を、上清を廃棄し、洗浄媒体の15 mLでペレットを再懸濁する。
- 新しい50 mLチューブの上に70 μmのセルストレーナーを置き、セルストレーナーの上に洗浄媒体の10 mLを移します。洗浄媒体を旋回してプラスチックチューブの側面を覆い、NET細胞がプラスチックチューブの側面に付着するのを防ぎます。
- セルストレーナーを介してセル懸濁液をフィルタリングします。
- 4°Cで15分間500xgで遠心分離機を廃棄し、洗浄媒体の200μL(総容積は〜250μL)でペレットを再懸濁し、氷の上に置きます。
- 洗浄培地の500μL(1/100希釈係数)に5μLの細胞を移します。血球計を用いて希釈した細胞を使用して、1ミリリットル当たりの細胞数を得る。希釈係数を補正するには、100 を掛けます。
- ステップ 2.5 で得られた mL 当たりのセル数に、ステップ 2.4 (~250 μL) で得られた懸濁液中の細胞の総体積を乗算します。
- 4°Cで15分間500xgで遠心分離機を使用し、上清を廃棄し、液体ECM(1 x 106細胞/mL)で細胞を再懸濁し、氷の上に保ちます。
- ECMのSBNETスフェロイドの5-20 μLを96ウェルプレートに移し、37°Cのインキュベーターにプレートを5分間入れることで液体ECMを固化させます。
- SBNET培養培地の200 μL(DMEM/F12 + FBS + 1% PEN/STREP + 1% グルタミン + 10 mM ニコチンアミド + 10 μg/mLインスリン) をECMのSBNETスフェロイドを含む96ウェルプレートの各ウェルに添加します。
- あるいは、ヒト肝臓または膵臓オルガノイド9を増殖させるために以前に記載されているものと同様の幹細胞培地中の培養SBNETオルガノイドは、材料の表に記載されている。
- 5~7日ごとにメディアを変更します。
3. ImageJを用いたSBNETスフェロイドサイズの定量化
- 10倍の目的を使用して、文化の1日目、4、7、14、23、97でSBNETのスフェロイドの5-10枚の写真を撮ります。
- ImageJ で保存したイメージを開きます。[分析]タブに移動し、[測定値の設定]オプションを選択し、[エリア]オプションをオンにします。
- ツール バーの楕円形選択ツールを使用して、よく焦点を合わせた回転楕円の周囲に楕円または円を生成します。
- [分析]タブに移動し、[測定]オプションを選択します。25~50 SBNETスフェロイドから面積測定を取得するには、手順 3.4 と 3.5 を繰り返します。値はピクセル二乗で指定されます。
- 各ピクセルのサイズを各ピクセルの長さで、顕微鏡画像の μm 変換係数に分割して、ピクセル領域を μm2に変換します。
注:SBNET細胞は主にスフェロイドとして成長し、いつかは楕円体として成長します。
4. 免疫蛍光によるSBNETSスフェロイドの特性
- ECMで成長したオルガノイドをP1000ピペットを使用して1.5 mLチューブに移します。
- 1分間1,500 x gで遠心分離機を取り出し、上清を取り除きます。
- 1 mLのPBSを加えてオルガノイド培養物を洗浄し、1分間1,500xgで遠心分離機を混合し、上清を除去する。
- 4%パラホルムアルデヒドの500 μLを加えてオルガノイドを固定し、15分間インキュベートします。
- PBSの1 mLで培養物を2回洗います。
- PBS + 3% BSA + 0.1% トリトン X 100 を 5 分間添加して培養物を透過化します。
- その後、PBS+3%BSAの1 mLで3回洗浄します。
- シナプトフィシン(SYP)10で1/600希釈またはクロモグラニンA(CgA)11およびソマトスタチン受容体2(SSTR2)12で1/400希釈抗体バッファー(2.5%ウシヌメシン、0.1ナトリウム)に対する一次抗体で1時間インキュベートアジド、25 mMトリスpH 7.4、150mM塩化ナトリウム)。
注: チューブあたり 300 μL 以上の抗体溶液を使用します。 - PBS + 3% BSAの1 mLで3回洗浄します。
- 抗体バッファー内の1/500希釈でFITCに結合した二次抗体を1時間1時間インキュベートし、チューブ当たり300μL以上の抗体溶液を使用する。
- PBS + 3% BSAの1 mLで3回洗浄します。すべての上清を吸引し、廃棄することを確認してください。
- 核汚れをDAPIに含む取り付け媒体を5μL加えます。
- P20ピペットを使用して、ステップ4.12からSBNETスフェロイドの5 μLをガラススライドに転送し、カバースリップでシールします。
- 10x、20xまたは40xの目的を使用して蛍光顕微鏡を使用して画像を撮ります。
5. SBNETスフェロイドの免疫組織化学による特性化(IHC)
- P1000ピペットを使用して、培養プレートから1.5 mLチューブにSBNETスフェロイドを移します。
- 1分間1,500 x gで遠心分離機を取り出し、上清を取り除きます。
- ステップ5.2からチューブに10%ホルマリンの500 μLを加え、パラフィン埋め込み前に2~5日間室温でインキュベートし、4μmの厚いスフェロイドセクションを切断してSBNETスフェロイドを修正します。
- 3-in-1自動スライド処理ステーションを使用して20分間97°Cに加熱することにより、pH9の抗原検索液における熱誘発エピトープ検索を脱パラフィン化、再水和、および使用して、抗体インキュベーション用のスライドを調製します。
- SYP10に対する一次抗体を15分間、CgA11を15分間1/800希釈、SSTR212を1/5,000希釈で30分間ブロックし、インキュベートします。
- 抗SYPおよびCgA染色のための15分間、抗SSTR2染色のための30分のための二次抗体検出システムでインキュベートする。400倍の目的を使用して写真を撮ります。
6. ラパマイシンによるSBNETオルガノイドの治療
- DMSOでラパマイシンを溶解し、10mMのストック溶液を得る。
- DMSOを使用してSBNET培養培地を調出し(例えば、SBNET培養培地の1mL+DMSOの1μL)と10μMのラパマイシンを含むSBNET培養培地(例えば、SBNET培養培地の1mL+1μLの1μL)を調出す。
- DMSOまたは10 μMラパマイシンを使用してSBNET培養培地を使用して200 μL培地をSBNETスフェロイド培養物に転送します。
- SBNETスフェロイドを37°Cインキュベーターで5日間インキュベートします。
- エチジウムホモジマーの1 μMを追加し、30分間インキュベートエチジウムホモジマーを含む培地を取り出し、200μLのPBSで洗浄し、各ウェルに200μLのPBSを移します。
- 蛍光顕微鏡の10x、20x、または40倍の目的を持つ赤いフィルターキューブを使用して薬物治療の有無にかかわらずSBNETスフェロイドの顕微鏡画像を撮ります。
注:エチジウムホモジマーで染色された死細胞は、市販の顕微鏡の赤色フィルターキューブGを使用して赤色で表示されます(材料の表)。あるいは、信号は535 nm励起および624 nm放出の分光光度計を使用して捕獲することができる。
7. SBNET スフェロイドの分割
注:これは、拡張のために、他の研究者との共有のために行われます。
- P1000ピペットを使用してECMを機械的に破壊し、SBNETのスフェロイドでECMを無菌の1.5 mLチューブに吸引します。
- 4°Cで1,000 x gで遠心分離機を取り除き、すべての上清を取り除き、チューブを氷の上に置きます。
- ペレットに新しいECMの体積を2~4倍に加えます。新しい ECM を古い ECM と SBNET のスフェロイドとミックスして、上下 10x をピペッティングします。気泡の導入を避ける。
- ECMおよびSBNETスフェロイド混合物の5-20 μLを新しいプレートに移し、ECMが固化することを可能にする。
- 新しいSBNET媒体でカバーし、インキュベーターに転送します。回収率は約95~100%です。
- SBNET スフェロイドを別のラボに出荷する場合は、新しい ECM を使用して SBNET スフェロイドを T25 フラスコに転送し、ECM を固化します。
- T25フラスコをSBNETのスフェロイド媒体で満たし、キャップのネジをしっかりと入れ、出荷パッケージを準備します。
- SBNET スフェロイド培養を受け取った後、培養培地を取り外し、ステップ 7.1 ~ 7.5 を実行して、SBNET スフェロイドを培養に戻します。
8. SBNETスフェロイドの凍結貯蔵と回収
- SBNETのスフェロイドを5~10の小さな井戸から15 mLの管に移します。4°Cで15分間500xgで遠心分離機を除去し、凍結培地(90%FBS + 10%DMSO)で再中断し、細胞凍結容器に保存し、-80°Cに置きます。
- 液体窒素に移して長い貯蔵を行う。
- SBNETのスフェロイドを回収するには、凍結したバイアルを氷の上に置き、内容が完全に解凍されるまで待ちます。チューブを反転し、解凍プロセスをスピードアップするために氷の上に再配置します。
- サンプルが解凍されたら、予め冷やされた遠心分離機の中に入れ、10分間1,000 x gで回転させます。
- 上清を取り除き、ECMでスフェロイドを再中断します。チューブを氷の上に置き、20 μLを新しいプレートに移し、ECMが固化するのを待ちます。
- ROCK阻害剤(Y-27632)13の10μMを持つSBNET培養培地の200μLを200μLに転送し、インキュベーターに移す。
- SBNET スフェロイドの回復と成長を 1 週間許可します。古い培養培地を取り出し、200μLのSBNET培養培地で補充し、インキュベーターに戻す。
- SBNET スフェロイドが成長し続けることを許可します。
注:急速に成長するスフェロイドが凍結保存後に回復し始めるのに少なくとも1週間かかります13.SBNETのスフェロイドは成長を開始するのに最低2〜4週間かかります。多くのSBNET細胞は最初の2週間以内に死亡し、生存率は10%未満である。これは非常に時間がかかり、低収量プロセスであるため、培養フラスコで他の研究者SBNETスフェロイドと共有することをおりかねます(ステップ7で説明)。凍結貯蔵と回収は、細菌汚染が発生した場合のバックアップ計画としてのみ使用してください。
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Representative Results
現在、2、3、4、5のSBNET細胞株は2つしか確立され、公開されており、多くの研究者が容易に利用できるわけではありません。ここでは、ECMにおけるスフェロイドとしての培養SBNETを提案し、これをSBNET薬物感受性を研究する代替モデルとして用いる。肝臓に転移したSBNET由来の患者由来腫瘍を採取し、SBNET細胞を放出するために消化し、SBNETスフェロイド培養を確立するための液体ECMと混合した(図1A)。このSBNETのKi-67は4.3%でした。SBNETスフェロイドの成長率は低いが、その成長は顕微鏡イメージングによって監視することができる(図1A)。培養メディアを週に1回変更すると、SBNETのスフェロイドのサイズが2倍になると約14日かかります(図1B)。培養中の14日後、SBNETスフェロイドはサイズが大きくなるわけではない。代わりに、一部の SBNET セルは隣接する場所に関連付け、新しいスフェロイドを形成します。SBNETスフェロイド培養物を伝播させるには、SBNETスフェロイドを含むECMを収穫し、新しい培養培地で新しい培養プレートに再播種する(ステップ7)。
オルガノイド培養物にSBNET細胞が含まれていることを確認するために、シナプトフィシン、クロモグラニンA、ソマトスタチン受容体2型(SSTR2)などのSBNETマーカー用のスフェロイドを免疫蛍光(IF)顕微鏡を用いて染色する簡単で高速な方法を説明します。ステップ4)。シナプトフィシン、クロモグラニンAおよびSSTR2に特異的な抗体を用いて、我々のIFデータは、これらのマーカーが細胞質およびSBNET細胞の膜(図2A、緑色)培養中の1か月後または9ヶ月後に局在することを示した(Figure 2B)).SYP、CgAおよびSSTR2抗体の特異性を確保するために、緑色シグナルが検出されなかったとして、SYP、CgAまたはSSTR2(図2C)を発現しない膵臓腫瘍からのオルガノイドラインに対して同じ染色手順を行った。このSBNETの球状IF実験の主な利点は、4時間以内に行うことができ、免疫組織化学(IHC;図 3)ステップ5でSBNETスフェロイドのIHCを実行するためのプロトコルを提供する。
SBNETをスフェロイドとして培養することは、SBNETの成長を阻害する薬剤を同定するための貴重な技術です。原理の証明として、我々は5日間ラパマイシンでSBNETスフェロイドを治療し、mTOR阻害剤、NETs8を治療するために一般的に使用される薬物のクラス。我々の対照SBNETスフェロイドと比較して、ラパマイシン処理されたスフェロイドはブドウのような構造を形成し、アポトーシスまたは壊死性になった(図4A-D)。死細胞は、エチジウムホモディマーを用いてDNAおよびRNAを染色し、明るい赤色信号14を生成することを用いて検出することができる。この色素は生細胞の細胞膜に浸透することができません。
図1:患者由来の小腸神経内分泌腫瘍(SBNETs)をスフェロイドとして細胞外マトリックス(ECM)で増殖させた(A)切除されたSBNETから腫瘍細胞を単離し、ECMと混合して培養した。スケールバーは、ImageJを用いて定量化された培養中の日数に対して、SBNETスフェロイドの表面積を100μm(B)表記します。データは、1人の患者のSBNETスフェロイドから得られ、平均の平均領域±標準誤差として表される。30~60個のスフェロイドの表面積を、各時間点について測定した。この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図2:SBNETスフェロイドの免疫蛍光(IF)染色。もしSBNETのスフェロイドの染色は、(A)培養で1ヶ月後および(B)培養中9ヶ月後に染色する。(C)SBNETマーカーを陰性対照として発現しない膵臓腫瘍オルガノイドの染色。腫瘍スフェロイドを4%パラホルムアルデヒドで固定し、1/600希釈でシナプトフィシン(SYP)に対する抗体を用いて染色し、1/400希釈でクロモグラニンA(CgA)、1/400でソマトスタチン受容体2(SSTR2)を染色した。If画像は、それぞれ10x、20xまたは40xの目的を使用して、SYP、CgAおよびSSTR2染色のための100ミリ秒、200ミリ秒および400ミリ秒の露光時間で撮影された。スケールバーは50 μmを表し、この図のより大きなバージョンを表示するにはここをクリックしてください。
図3:SBNETスフェロイドの免疫組織化学(IHC)染色ホルマリン固定およびパラフィン埋め込みSBNETスフェロイドセクションは、(A)SYP、(B)CgA、および(C)SSTR2抗体で脱パラフィン化、水分補給、ブロックおよび染色された。画像は400倍の目的を用いて撮影した。スケールバーは50 μmを表し、この図のより大きなバージョンを表示するにはここをクリックしてください。
図4:薬物検査にSBNETスフェロイドを用いたもの(A)DMSOで5日間処理したSBNETスフェロイドの明るいフィールド画像。(B)DMSOで処理し、エチジウムホモジマー(エチジウムH)で染色したSBNETスフェロイドの画像。(C)10μMのラパマイシンを5日間処理した後にブドウ状構造を形成する死んだSBNETスフェロイドの明るい視野画像。(D)エチジウムHで染色されたデッドSBNETスフェロイドは赤い点として現れる。エチジウムH染色の画像は、100ミリ秒の露光時間で赤色フィルターキューブを用いて撮影した。スケールバーは10 μmを表し、この図のより大きなバージョンを表示するにはここをクリックしてください。
| 成長メディアまたはソリューション | 組成 |
| ウォッシュミディアム | 1% FBS を含む DMEM, 1% ペン/STREP, 1% グルタミン |
| SBNET カルチャ メディア | DMEM/F12 + 10% FBS + 1% PEN/STREP + 1% グルタミン + 10 mM ニコチンアミド + 10 μg/mL インスリン |
| 抗体バッファー | 2.5% ウシ血清アルブミン, 0.1% アジドナトリウム, 25 mMトリス pH 7.4, 150 mM 塩化ナトリウム |
| 凍結媒体 | 90% FBS + 10% DMSO |
| ヒト肝幹細胞単離培地 | DMEM/F12、1%ペン/ストレップ、 1% グルタマックス, 10 mM HEPES, 1/50 B27 サプリメント, 1/100 N2 サプリメント, 1 mM N-アセチルシステイン, 200 ng/mL Rspo 1, 50ng/mL EGF, 100 ng/mL FGF10, 10mM ニコチナミド, 10m mM forM |
| ヒト膵臓幹細胞単離培地 | DMEM/F12, 1% ペン/ストレップ, 1% グルタマックス, 10 mM HEPES, 1/50 B27 サプリメント, 1/100 N2 サプリメント, 1 mM N-アセチルシステイン, 200 ng/mL Rspo 1, 25 ng/mL ノギン, 50ng/mL EGF, 100 ng/mL FGF10, 10 mM ニコチンアミド, 10 mM フォルスコリン, 5uM A83-01, UGe |
表 1.成長メディアとソリューションの一覧。
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Discussion
腫瘍3D培養は、前臨床薬物検査15のための貴重なリソースとなっている。乳癌および前立腺癌腫瘍16,17から様々な腫瘍オルガノイドバイオバンクが最近確立されている。本研究では、SBNETをスフェロイドとして培養するための詳細なプロトコルと、免疫蛍光と試験薬物感受性によってNETマーカーのスフェロイド培養を検証する簡単かつ迅速な方法を提供する。私たちの経験から、SBNETのスフェロイドは様々な培養メディアで成長することができます。彼らは、我々が以前に公開されたプロトコル9から適応したヒト膵臓または肝臓分離のための幹細胞培養でわずかに速く成長する。これは幹細胞培地よりも安価であるため、インスリンとニコチンアミドを補うDMEM/F12培地でSBNETを成長することを選択しました。胎児ウシ血清の割合を増加させることは、SBNETオルガノイド培養物の成長を促進するための別の戦略です。ただし、これにより、カルチャメンテナンスの全体的なコストも増加します。
10x、20xまたは40xの目的を使用して蛍光顕微鏡でIF染色およびイメージングを行うことは、SBNETマーカーの発現を迅速かつ簡単にテストする方法です。ただし、IHC (図 2、図 3)と比較して、明確に定義されたローカリゼーションは行いません。例えば、IFデータは、SSTR2の膜局在化が検出しにくいことを示した。我々は主に、以前に報告されたサイトソリックSSTR2を検出します, 18.マーカータンパク質のより良い局在化を得るために、我々はIFと共焦点顕微鏡を使用することをお勧めします。全体として、IF は SBNET マーカーを迅速に確認するのに便利な方法です。当社の抗体(抗SYP、抗CgA、抗SSTR2)は、IF実験においてSYP、CgA、またはSSTR2(図2C)を発現しない陰性対照オルガノイドと交差反応しなかった。この提案は、我々が検出した蛍光信号がSBNETスフェロイドに特異的であることを示唆する。
SBNETスフェロイドの収率を高めるために、このプロトコルの重要なステップは、細胞濾過ステップ(ステップ2.2)の間に、組織培養プレートにアリコートするための液体ECMとSBNETを混合することである(ステップ2.8)。SBNET細胞がプラスチックに付着するのを防ぐために、セルストレーナー膜と回収管をメディアで覆うことを確認してください。液体ECMは、氷の上に置かれていない場合、急速に固化します。ECMおよびSBNET細胞を冷たく保つために、組織培養フードに小さな氷の容器を持っていることを確認してください。
この手法の制限は、SBNET スフェロイドの低成長速度です。実験は効率的に計画し、過剰な量のSBNETスフェロイドを使用しないようにする必要があります。もう 1 つの制限は、凍結解凍後の回復が遅い場合です。SBNETのスフェロイドが成長し始めるのに解凍後1ヶ月以上かかります。この制限を克服するために、SBNET スフェロイドをカルチャ内で継続的に維持し、必要に応じて分割することをお勧めします (ステップ 7)。培養9ヶ月後も、SBNETスフェロイドはSBNETマーカーの発現を維持している(図2B)。
SBNETの3D培養は、他のがん細胞株の従来の2D培養よりも労働集約的ですが、多くのSBNET研究者が既存の細胞株にアクセスできないため、SBNETのインビトロ培養には非常に貴重なモデルです。このプロトコルにより、科学者や臨床医は、切除された腫瘍からSBNET球状の培養物を確立し、他の実験室と共有することができます。さらに、SBNETスフェロイドは、SBNET患者由来異種移植片マウスモデルの確立に使用される可能性がある。全体として、ここで提示される技術は、膵臓または肺NETなどの他のNETの薬物検査を培養、特徴付け、および実行するために適応することができる。オルガノイドの増殖速度は、NETと患者サンプルの異なるタイプの間で変化する。
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Disclosures
著者は何も開示していない。
Acknowledgments
この作業は、NIH助成金P50 CA174521(J.R.ハウとA.M.ベリッツィに)によってサポートされました。P.H. Earは、P50 CA174521キャリア向上プログラム賞を受賞しています。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anti-rabbit FITC | Jackson ImmunoResearch | 11-095-152 | Secondary antibody couple to a green fluorophore |
| Antigen Retrieval Solution | Agilent Dako | S2367 | Solution at pH 9 for preparing slides for IHC |
| Autostainer Link 48 | Agilent Dako | Not Available | Automated system for antibody staining |
| Cell freezing container | Thermo Scientific | 5100-0001 | Container to for freezing cells |
| CellSence | Olympus | Version 1.18 | Computer software for using fluorescent microscope |
| Chromogranin A antibody | Abcam-45179 | RB-9003-PO | Antibodies for IF |
| Chromogranin A antibody (clone LK2H10) | Thermo Scientific | MA5-13096 | Antibodies for IHC |
| Collagenase | Sigma | C0130 | Enzyme for digesting tumor tissue |
| DMEM | Gibco | 11965-092 | Medium for tissue preparation |
| DMEM/F12 | Gibco | 11320-033 | Medium for organoid cultures |
| DMSO | Sigma | D8418 | Solvent for dissolving drug |
| DNAse | Sigma | DN25 | Enzyme for digesting tumor tissue |
| Ethidium Homodimer | Chemodex | CDX-E0012-T1E | DNA and RNA binding dye |
| FBS | Gibco | 16000044 | Reagent for culture media |
| Fluorescent microscope | Olympus | CKX35 | Microscope for taking pictures of SBENT spheroids |
| Glutamine | Gibco | A2916801 | Reagent for culture media |
| ImageJ | National Institutes of Health | Version 1.51 | Computer software for image analysis |
| Insulin | Sigma | I0516 | Reagent for culture media |
| Matrigel | Corning | 356235 | Matrix to embed and anchore organoids |
| Mounting medium (VECTASHIELD) | Vector Laboratories | H-1200 | Fixative for labelled-cells with a nuclear stain |
| Nicotinamide | Sigma | 72340 | Reagent for culture media |
| Paraformaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 15710 | Reagent to fix cells |
| PEN/STREP | Gibco | 15140-122 | Reagent for culture media |
| PT Link | Agilent Dako | Not Available | Automated system to prepare slides for IHC staining |
| Rapamycin | Alfa Aesar | J62473 | Drug that can inhibit NET growth |
| Secondary antibodies for IHC | Agilent Dako | K8000 | Secondary antibodies for IHC using Polymer-based EnVision FLEX system |
| SSTR2 antibody | GeneScritp | A01591 | Antibodies for IF |
| SSTR2 antibody (clone UMB1) | Abcam | ab134152 | Antibodies for IHC |
| Synaptophysin antibody | Abcam | 32127 | Antibodies for IF |
| Synaptophysin antibody (clone DAK-SYNAP) | Agilent Dako | M7315 | Antibodies for IHC |
| TritonX | Mallinckrodt | 3555 KBGE | Reagent to permeablize cells |
| Y-2763 ROCK inhibitor | Adipogen | AG-CR1-3564-M005 | To improve SBNET spheroid viability after freeze thaw |
References
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