Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Behavior
Click here for the English version

Behavior

גרימת אפילפסיה פוסט טראומטית במודל עכבר של פגיעה במוח החוזר ומפוזר טראומטי

Published: February 10, 2020 doi: 10.3791/60360
Automatic Translation
1, 1,2,3
1Fralin Biomedical Research Institute at Virginia Tech Carilion, 2School of Neuroscience, Virginia Tech, 3Department of Biological Sciences, Virginia Tech

Summary

פרוטוקול שיטתי זה מתאר מודל חדש לבעלי חיים של אפילפסיה פוסט-טראומטית לאחר פגיעה קלה במוח הטראומטי. החלק הראשון לפרטים צעדים לפגיעה מוחית טראומטית אינדוקציה באמצעות מודל שונה ירידה במשקל. החלק השני מספק הנחיות לגבי הגישה הכירורגית עבור מערכות מידע חד-ערוצית לרכישת נתונים אלקטרונצלוגרפיה.

Abstract

פגיעה מוחית טראומטית (TBI) היא גורם מוביל של אפילפסיה נרכש. TBI יכול לגרום נזק המוח מוקד או לפזר. פגיעה מוקד היא תוצאה של כוחות מכניים ישירים, החודרים לעיתים דרך הגולגולת, ויוצרים פגיעה ישירה ברקמת המוח. אלה גלויים במהלך הדמיה מוחית כאזורים עם חבלה, קרע, דימום. נגעים מוקד לגרום מוות עצבי והיווצרות צלקת גליה נמצאים 20%-25% של כל האנשים שישאו tbi. עם זאת, ברוב המקרים TBI, הפציעה נגרמת על ידי כוחות האצה ההאטה הרקמות העוקבות, והתוצאה היא ללא מוקד, לפזר נזק. אוכלוסיית משנה של מטופלים TBI ממשיכה לפתח אפילפסיה פוסט-טראומטית (PTE) לאחר תקופת השהיה של חודשים או שנים. כיום, אי אפשר לנבא אילו מטופלים יפתחו PTE, והתקפים בחולים PTE מאתגרים לשלוט, המחייב מחקר נוסף. עד לאחרונה, השדה היה מוגבל רק לשני מודלים בעלי חיים/מכרסמים עם אימות ספונטני פוסט טראומטית התקפים, הן הצגת עם נגעים מוקד גדול עם אובדן רקמות מסיבי בקליפת המוח ולפעמים מבנים משנית. בניגוד לגישות אלה, נקבע כי מפוזר TBI המושרה באמצעות מודל שונה ירידה במשקל מספיק כדי ליזום פיתוח של ויהיו התקפי המושרה ובלתי מנוצעי, גם בהעדר נגעים מוקד או אובדן רקמות. בדומה לחולי אנוש עם אפילפסיה פוסט טראומטית שנרכש, מודל זה מציג עם תקופת השהיה לאחר פציעה לפני התקף התפרצות. בפרוטוקול זה, הקהילה תסופק עם מודל חדש של אפילפסיה פוסט טראומטית, המפרט כיצד לגרום לפזר TBI שאינם להטיות ואחריו ניטור לטווח ארוך של בעלי חיים באמצעות וידאו-electro, במהלך מספר חודשים. פרוטוקול זה יפרט את הטיפול בבעלי חיים, את הליך ירידה במשקל, מיקום האלקטרודה עבור שתי מערכות רכישה, ואת האתגרים התכופים שאירעו במהלך כל אחד מהצעדים של ניתוח, ניטור הדואר, ורכישת נתונים.

Introduction

כל שנה TBI משפיעה על האומדן 60,000,000 אנשים ברחבי העולם. אנשים מושפעים נמצאים בסיכון גבוה יותר לפתח אפילפסיה, אשר יכול להתבטא שנים לאחר הפציעה הראשונית. אם כי tbis חמורים קשורים עם סיכון גבוה יותר של אפילפסיה, אפילו tbis מתון מגביר את הסיכוי של האדם לפתח אפילפסיה1,2,3,4. כל TBIs ניתן לסווג כמוקד, לפזר, או שילוב של שניהם. לפזר פגיעה מוחית, נוכח רבים אם לא כל TBIs, היא תוצאה של רקמות המוח של צפיפויות שונות הטיית אחד נגד השני בשל האצה-האטה וכוחות הסיבוב. על פי ההגדרה, פגיעה מפוזר מתרחשת רק בבידוד בפגיעה מוחית מתונה/זעזוע מוח, שבה אין נגעים במוח גלויים על סריקות טומוגרפיה ממוחשבת5.

קיימות כעת שתי בעיות קריטיות בניהול חולים שיש להם, או נמצאים בסיכון, פיתוח אפילפסיה פוסט טראומטית (PTE). הראשון הוא שפעם PTE התבטא, התקפים עמידים בפני תרופות נגד אפילפסיה זמין (AEDs)6. שנית, העורכים אינם יעילים באותה מידה במניעת epileptogenesis, ואין גישות טיפוליות יעילות חלופיות. על מנת לטפל בגרעון זה ולמצוא מטרות טיפוליות טובות יותר ומועמדים לטיפול, יהיה צורך לחקור מנגנונים סלולריים ומולקולריים חדשים בשורש של PTE6.

אחת התכונות הבולטות של אפילפסיה פוסט טראומטית היא התקופה הסמויה בין האירוע הטראומטי הראשוני והתחלתה של ספונטנית, תגרות, התקפים חוזרים. האירועים המתרחשים בתוך החלון הזמני הזה הם מוקד טבעי עבור החוקרים, כי חלון הזמן הזה עשוי לאפשר טיפול ומניעה של PTE לחלוטין. מודלים בעלי חיים הם הנפוצים ביותר עבור מחקר זה, כי הם מציעים מספר יתרונות ברורים, לא הפחות שהוא כי ניטור רציפה של חולים אנושיים יהיה גם מעשי ויקר בגלל מעבר מתמשך של זמן. בנוסף, ניתן לחקור מנגנונים סלולאריים ומולקולריים בשורש epileptogenesis רק בדגמי בעלי חיים.

מודלים בעלי חיים עם התקפים פוסט טראומטיים ספונטנית ואפילפסיה הם העדיפו על פני דגמים בהם התקפים הם המושרה לאחר TBI על ידי פחות מבחינה פיזיולוגית האמצעים, כגון על ידי כימופרכוסים או גירוי חשמלי בחריפות, כרוני, או על ידי הבזק. מודלים ספונטנית פוסט טראומטית התפיסה מבחן כיצד TBI משנה את רשת המוח בריא המוביל epileptogenesis. מחקרים באמצעות גירוי נוסף לאחר TBI להעריך כיצד חשיפה TBI מפחיתה את הסף התפיסה משפיע על הרגישות להתקפים. היתרונות של מודלים בעלי חיים עם התקפים המושרה כימית או עם גירוי חשמלי הם בדיקת המנגנונים הספציפיים של refractoriness העורכים ואת היעילות של הקיימים והרומן של העורכים. ובכל זאת, מידת הרלוונטיות והתרגום של נתונים אלה לבני אדם עשויה להיות מעורפלת7 בגלל המנגנונים הבאים: 1) מנגנוני התפיסה עשויים להיות שונים מאלה המושרה על ידי tbi בלבד; 2) לא כל הדגמים האלה להוביל ויהיו ספונטניים7; 3) נגעים שנוצרו על ידי הסוכן פרכוסים עצמה, עם צינורית נדרש עבור מסירתו, או על ידי עירור מיקום האלקטרודה במבני עומק (למשל, ההיפוקמפוס או האמיגדלה) יכול כבר לגרום להתקף רגישות מוגברת ואפילו היפוקמאל אפילפטית בשדה פוטנציאל7. יתר על כן, כמה הסוכנים פרכוסים (כלומר, חומצה kainic) לייצר נגעים היפוקמאל ישירה טרשת, אשר אינה אופיינית לאחר מפוזר TBI.

עד לאחרונה, רק שתי מודלים של בעלי חיים של אפילפסיה פוסט טראומטית היו קיימים: השפעה מבוקרת בקליפת העור (CCI, מוקד) או פגיעה בכלי הקשה של נוזל (FPI, מוקד ולפזר)8. שני הדגמים לגרום לנגעים מוקד גדול לצד אובדן רקמות, דימום, ו gliosis ב מכרסמים8. מודלים אלו מחקים אפילפסיה פוסט-טראומטית. הנגרמת על ידי נגעים מוקד גדול מחקר שנערך לאחרונה הראה כי חוזר (3x) לפזר TBI מספיקה לפיתוח של ותקפים ואפילפסיה ספונטנית בעכברים גם בהעדר נגעים מוקד9, הוספת מודל PTE שלישי מכרסם עם מאושר ונשנים ספונטנית התקפים. מודל חדש זה מחקה שינויים סלולריים ומולקולריים הנגרמת על ידי מפוזר TBI, טוב יותר לייצג את אוכלוסיית האדם עם קל, זעזוע מוח מתון. במודל זה, התקופה הסמויה של שלושה שבועות או יותר לפני התקף התפרצות הופעתה של מאוחר, ספונטנית, חוזרים ונשנים מאפשר לחקור את הסיבות השורש של פוסט טראומטי epileptogenesis, בדיקות את היעילות של גישות מניעתי ומועמדים טיפוליים חדשים לאחר התקף התפתחות, ויש לו פוטנציאל להתפתחות של בסמנים הepileptogenesis פוסט טראומטית כי

הבחירה במודל החי לחקר אפילפסיה פוסט-טראומטית תלויה בשאלה המדעית, סוג הפגיעה במוח ובאילו כלים ישמשו לקביעת המנגנון הסלולארי והמולקולרי הבסיסי. בסופו של דבר, כל מודל של אפילפסיה פוסט טראומטית חייב להפגין הן הופעתה של התקפים ספונטניים לאחר TBI ותקופת השהיה הראשונית בקבוצת משנה של בעלי חיים TBI, כי לא כל החולים שישאו TBI להמשיך לפתח אפילפסיה. לעשות זאת, אלקטרונצגרפיה (EEG) עם רכישת וידאו סימולטני משמש בפרוטוקול זה. הבנת ההיבטים הטכניים מאחורי חומרת רכישת נתונים וגישות היא קריטית לפענוח נתונים מדויק. היבטים החומרה הקריטיים כוללים את סוג מערכת ההקלטה, סוג של אלקטרודות (בורג או חוט עופרת) וחומרים שהם עשויים, רכישת וידאו מסונכרן (כחלק ממערכת EEG או צד שלישי), ומאפיינים של מערכת המחשב. חובה לקבוע את פרמטרי הרכישה המתאימים בכל סוג של מערכת בהתאם למטרת המחקר, אירועי EEG של עניין, שיטת ניתוח נוספת, וקיימות של אחסון נתונים. לבסוף, יש לשקול את השיטה של תצורת האלקטרודה (מונטאז '), מאחר שלכל אחד יש יתרונות וחסרונות והוא ישפיע על פרשנות הנתונים.

פרוטוקול זה מפרט כיצד להשתמש במשקל Marmarou שונה להוריד משקל10,11 כדי לגרום לפזר את הפציעה כתוצאה ספונטנית, תגרות, והתקפים חוזרים בעכברים, מתארת גישות כירורגית לרכוש יחיד, multi-channel רציפה, וידאו מסונכרן EEG באמצעות מונואואר, דו קוטבית, או משולבת מעורב.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל ההליכים בעלי החיים המתוארים בפרוטוקול זה בוצעו בהתאם לוועדה לטיפול בבעלי חיים מוסדיים ולשימוש (IACUC) של וירג טק ובציות למוסדות הבריאות הלאומיים ' מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה ' .

1. פרוטוקול טיפול בבעלי חיים

הערה: פרוטוקול זה נועד לhabituate בעלי חיים שהוזמנו מספק למתקן לאחר הגעתם ולטפל בהם לטיפול בניסויים. זה משפר את בעלי החיים להיות על ידי הפחתת מתח וחרדה ומפשט הליכים מסוימים הדורשים טיפול בבעלי חיים, כולל גרימת TBI, ניטור לאחר הניתוח, וחיבור החיה למערכת הרכישה.

  1. כאשר בעלי חיים רבים מתקבלים מהספק, מתייג את האוזן ומקצים אותם באופן אקראי לקבוצה ניסיונית (TBI) או לקבוצת בקרה (ניתוח מזויף) תוך שילוב אותם בכלובים של 2-5 בעלי חיים. בעלי חיים TBI בנפרד מחיות מזויף כי עכברים מזויפים לפעמים לפעול באגרסיביות לעבר עכברים שעברו TBI.
  2. טיפול ביום 1 (24-48 שעות לאחר תיוג האוזניים): הכינו תרשים לרישום תגי אוזניים, תאריך לידה, תאריכי טיפול, משקל בעלי חיים בימי הטיפול, משך הטיפול ומקטע להערות ותצפיות.
  3. מספל בעדינות את החיה בשתי הידיים. אל תתפסו את החיה בזנבו כפי שהיא מעוררת מנגנוני הגנה ותגובת דחק.
  4. בדוק ותעד את. תג האוזן של בעל החיים
  5. מניחים את החיה במיכל על קנה המידה במשקל ולהקליט את המשקל.
  6. בעדינות ספל את החיה עם שתי הידיים שוב ולטפל בו 1 דקות, ומאפשר לו לנוע ולחקור בתוך הידיים. לבצע את זה על ספסל בחדר השגרה ולהיזהר לא להפיל את החיה על הרצפה.
  7. לאחר 1 דקות של טיפול, למקם את החיה בכלוב שלו.
  8. חזור על שלבים 1.3 ל-1.7 עבור שאר החיות בכלוב.
  9. הטיפול ביום 2 (למחרת): חזור על שלבים 1.2-1.5.
  10. בעדינות ספל את החיה עם שתי הידיים שוב ולטפל בו 2 דקות, ומאפשר לו לנוע ולחקור בתוך הידיים. לבצע את זה על ספסל בחדר השגרה ולהיזהר לא להפיל את החיה על הרצפה.
  11. לאחר 2 דקות של טיפול, מניחים את החיה חזרה בכלוב.
  12. חזרו על שלבים 1.10-1.11 עבור שאר החיות בכלוב.
  13. הטיפול ביום 3 (למחרת): חזור על שלבים 1.2-1.5.
  14. בעדינות ספל החיה עם שתי הידיים שוב ולטפל בו 4 דקות, ומאפשר לו לנוע ולחקור בתוך הידיים. לבצע את זה על ספסל בחדר השגרה ולהיזהר לא להפיל את החיה על הרצפה.
  15. לאחר 4 דקות של טיפול, מניחים את החיה חזרה בכלוב.
  16. חזרו על צעדים 1.14-1.15 לבעלי החיים האחרים בכלוב.
  17. הטיפול ביום 4 (יום בקרה, 1 שבוע מטיפול יום 1): חזור על שלבים 1.2-1.5.
  18. בעדינות ספל החיה עם שתי הידיים שוב ולטפל בו 4 דקות, ומאפשר לו לנוע ולחקור בתוך הידיים. לבצע את זה על ספסל בחדר השגרה ולהיזהר לא להפיל את החיה על הרצפה.
  19. לאחר 4 דקות טיפול, למקם את החיה חזרה בכלוב שלו.
  20. חזור על שלבים 1.18-1.19 עבור שאר החיות בכלוב.
    הערה: יום טיפול הבקרה מבחן את שימור ההתנהגות הרגועה לאחר פרוטוקול טיפול בן שלושה ימים.

2. הליך ירידה במשקל

  1. מניחים את העכבר בתא אינדוקציה. הגדר את זרימת החמצן והוואקום הן ל-1 ל/דקה והן לרמת הגז של isofלוריאן ל-3%-5%. . לפני 5 דקות
  2. להסיר את העכבר מן התא אינדוקציה ולמקם אותו על משטח קצף. בדיקת העדר תגובה לבוהן או לצביטה בזנב.
  3. לנהל משכך כאבים (0.1 מ"ג/ק"ג בופרינורין) תת-עורי. אם ניתוח EEG מבוצע באותו היום, לנהל את בופרנורפין תת-עורי בשילוב עם carprofen שאינם סטרואידיות אנטי דלקתיות (5 מ"ג/ק"ג).
  4. ניהול תמיסת נתרן לקטט (3 μL לכל גרם של משקל החיה) תת-עורי לפני או אחרי הפגיעה האחרונה. פתרון הנתרן לקטט יכול להיות מעורב עם משככי כאבים לניהול מהיר בזריקה אחת.
    הערה: תמיסת נתרן לקטט מכילה תערובת של נתרן כלוריד, אשלגן כלורי, סידן כלוריד, נתרן לקטט במים. שלב זה מסייע להחלפת נוזלים ואלקטרוליטים, ומסייע להחלמה.
  5. מקמו את ראשו של העכבר מתחת לצינור השחרור במשקל (איור 1א) ומניחים דיסק נירוסטה שטוח (1.3 ס"מ קוטר, 1 מ"מ עובי, ו 880 mg משקל) במרכז הראש, בין קו העיניים והאוזניים.
    הערה: דיסק זה מפזר את ההשפעה על פני השטח של הגולגולת (איור 1B).
  6. להסיר את הסיכה בצינור ירידה במשקל כדי לשחרר את המוט 100 g במשקל מגובה 50 ס"מ. כדי לגרום לפציעה המזויף עבור עכברים בקרת, להסיר את המוט משקל מהצינור כדי למנוע שחרור בשוגג של הסיכה ואת ירידה במשקל.
    הערה: הראש של בעל החיים חייב להיות ממוקם שטוח, כך מוט חופשי נופל על פני השטח כולו של הדיסק.
  7. מניחים את החיה התת-מודע על גבו להתאוששות על משטח חימום מכוסה מגבת ספיגה מרופדת וסטרילית. הזמן התאוששות רפלקס מחמיר (כלומר, הזמן שלוקח את העכבר לימין עצמו מגבו) ניתן למדוד כבדיקה עבור הזמן המושקע בחוסר הכרה.
  8. כאשר החיה לחזור להכרה, מניחים אותו בכלוב נקי כי כבר מחומם על כרית חימום, עם ג'ל שחזור וכמה חתיכות הלחלח להתאושש עבור 45 דקות. ודא שיש מספיק פסולת כדי שהכלוב לא יהיה מחומם מדי. התחממות יתר החיה יכולה להוכיח בדיוק כמו מכשול התאוששות כמו מאפשר לעכבר להיות קר מדי.
  9. לאחר 45 דקות, חזור על שלבים 2.1-2.8 פעמיים, תוך השמטת שלב 2.3 (כלומר, ניהול משככי כאבים ותרופות אנטי דלקתיות).
  10. הרשו לבעלי החיים להתאושש 1 עד 2 h אם ניתוח ה השרשה של EEG מבוצע באותו יום.

3. הכנת שדה כירורגי לשרשה של אלקטרודות EEG

הערה: אוטוקלב את כלי הניתוח והברגים לפני הניתוח. נקו את כפפות הניתוח על ידי ריסוס ושפשוף עם 70% אתנול לפני ואחרי נגיעה בבעלי חיים, חומרים לא סטריליים, ובין טיפול בבעלי חיים. מעקר את כלי הניתוח ל -2-3 דקות בתוך העיקור (ראה טבלת חומרים) בין בעלי חיים. לפני הצבת חיה חדשה. במנגנון הסטרטקטיק ודא שהשדה הכירורגי מכיל את כל הרכיבים הנחוצים לניתוח (איור 2). העדר הליך כירורגי פולשני כדי לגרום TBI במודל זה יש כמה יתרונות: 1) השרשה של האלקטרודות הוא גמיש יכול להתבצע באותו יום כמו TBI או לאחר פרק זמן מוגדר; 2) זמן ההחלמה של בעל החיים הוא מהיר יותר; 3) הגולגולת נותרה שלמה, ומאפשרת יותר שטח וגמישות לנטיעת אלקטרודות.

  1. . בחדר אינדוקציה במשך 5 דקות
  2. העבר את העכבר מחדר אינדוקציה למנגנון סטריאוטקטיקה ומניחים אותו על העטוף סטרילי על משטח חימום עם גז isof, שפופרות ואקום מחובר לקונוס האף.
  3. שמרו על טמפרטורת הגוף ב-37 ° c במהלך הניתוח. מניחים את חיישן הטמפרטורה כך שהוא יוצר קשר עם החזה או קיר הבטן של העכבר.
  4. תקן את ראשו של בעל החיים במקום באמצעות פסי האוזן.
  5. שמרו על ההרדמה ב-1.5%-3.5% לערך או בשעה ~ 60 נשימות/דקות במישור הכירורגי (ללא תגובה לבוהן או לצביטה בזנב).
  6. החילו משחת עיניים על עיני החיה כדי לשמור עליהם משומנים במהלך הניתוח.
  7. לנהל תערובת של משככי כאבים (0.1 mg/ק"ג בופרנורפין) ואת התרופה שאינה סטרואידיות אנטי דלקתיות (5 מ"ג/ק"ג carprofen) בזריקה אחת תת-עורי אלא אם כן התבצע מוקדם יותר במהלך היום, ובמקרה כזה החיה כבר קיבלה משככי כאבים ואנטי-דלקות.
    הערה: בופראורפין צריך להיות מנוהל שוב אם הזמן בין ניתוח המיקום הראשון TBI ו EEG עולה 8 h או אם בעל החיים מציג סימנים של כאב 8 h לאחר המינהל הראשון, אבל זה צריך להינתן ללא תוספת של carprofen.
  8. ניהול תמיסת נתרן לקטט (3 μL לכל גרם של משקל החיה) תת-עורי להחליף נוזלים ואלקטרוליטים בבעלי חיים.
    הערה: אם מבוצעת ניתוח מיד לאחר ה-TBI, שלב זה חייב להיות מתוזמן כראוי. תמיסת נתרן לקטט צריך להיות מנוהל כל 2 h בעוד בעל החיים עובר את ההליכים ופעם אחרי הניתוח, 2 h מן הזריקה הקודמת.
  9. להסיר את השיער מן הקרקפת באמצעות קרם להסרת שיער.
  10. לפני ביצוע החתך, לחטא את העור של הקרקפת עם povidone-יוד הפתרון חיטוי כירורגי ו 70% אתנול לסירוגין משטחי עם תחבושות גזה סטרילית בתנועה מעגלית 3x (20 s לכל פתרון בכל פעם).
  11. באמצעות אזמל, לעשות חתך rostral-caudal על קו האמצע של הקרקפת מעבר לעיניים אל גב הראש. שיטה זו של פתיחת הקרקפת מועדף על חיתוך הקרקפת, כמו מדפים העור ניתן לאטום מעל או סביב EEG-cap מתן יציבות יותר.
    הערה: בעת הכנת הגולגולת עבור השרשה של 3-EEG הר, חיתוך הקרקפת נדרש, כמו בגודל של הר הראש לא יאפשר סגירה של מדפים העור מעל הר הראש.
  12. הרחב את אזור החיתוך על-ידי החלת הומוסטטיסטיקה קטנים על גבולות העור הפתוח. אם מתרחשת דימום כלשהו לאחר החתך, נקי עם גזה כותנה סטרילית או ספוגית.
  13. הסר בעדינות את הקרום (כלומר, הקרום הדק מעל עצם הגולגולת) עם להב אזמל. אם מתרחש דימום כלשהו במהלך שלב זה, לחץ על אתר הדימום באמצעות ספוגית כותנה סטרילית עד שייעצר.
  14. השתמש משטחי כותנה סטרילי לנקות את הגולגולת עם חמצן מימן, אבל להימנע מלגעת רקמות רכות סביב אזור הגולגולת חשוף. חזרו על שלב זה עד לניקוי הגולגולת מכל רקמה רכה ומראה לבנבן.
  15. ייבש את הגולגולת עם. גזה סטרילית או ספוגית כותנה
    הערה: שלבים 3.12-3.15 חשובים לקיבוע הנכון של האלקטרודות והשיניים בצמנט. כל רקמה רכה, דימום לא מעורער, ופסולת יכול לגרום לזיהום, הקיבעון הראש לא יציב, מעוות או חסר האות, ואובדן של השתל בתוך מספר ימים או שבועות לאחר הניתוח.

4. מיקום אלקטרודה

  1. שתל את ה-EEG היחיד (1EEG) כותרת הערוץ.
    הערה: קיצורים בקואורדינטות הסטריאוטקטיקה מייצגים קשרים מרחביים ומציינים את המרחק במילימטרים של המטרה מהמגמה בכיוון מסוים על ראש החיה: האחורי הקדמי (AP) והמדילי-לרוחב (ML). הדבר אינו ישים בפרוטוקול זה משום שהאלקטרודות ממוקמות לתוך החלל האפידורל ולא במבנה מסוים בתוך המוח (איור 3). וין + הוא אלקטרודה פעילה ווין-הוא התייחסות האלקטרודה שלה.
    1. השתמש מקדחה במהירות גבוהה עם סיבית פלדה (0.5 מ"מ, עגול, 1/4 בתוך.) ב ~ 5000-6000 סיבובים לדקה (rpm) כדי ליצור שישה חורים בגולגולת (שלושה עבור ברגים יציבות ושלושה אלקטרודות) באמצעות קואורדינטות סטריאוטקטיקה שסופקו12. עבור שני ברגים קדמי: AP = + 1.5 מ"מ, ML = ± 1.5 mm; עבור הבורג האחורי האחד: AP =-5.2 מ"מ, ML =-1.5 מ"מ; עבור האלקטרודה הקרקעית: AP =-5.2 מ"מ, ML = + 1.5 מ"מ; עבור אלקטרודות ההקלטה: AP =-2.3 מ"מ, ML = ± 2.7 mm, עם וין + לימין ווין-שמאלה.
    2. הוסף שלושה ברגים ליציבות משופרת של השלב הראשי. באמצעות מברג, הפעל את הברגים 1-1.5 x כל אחד להיות קבוע בצורה בלתי נשכח בגולגולת.
      הערה: הצבת הברגים עמוק יותר תגרום נזק למוח.
    3. הכנס את הר EEG לתוך זרוע של מחזיק סטריאוטקטיקה ומקם את הר הראש כך ששלושת האלקטרודות ממוקמות לאורך קו האמצע הגולגולתית. בתצורה זו את הקרקע האלקטרודה ואת הפתיחה המתאימה שלה על גבי הר הראש הוא בגב, האלקטרודה וין + באמצע, ו-האלקטרודה ווין בחזית. ניתן לעשות סימון על הר הראש עם סמן קבוע.
    4. לכופף את כל האלקטרודה 90 °, כך הסוף של כל חוט הוא כפוף כלפי מטה והוא ממוקם מעל חור הגולגולת המקביל. לאחר מכן, למדוד את אורך 1 מ"מ של החלק של החוט הניצב כעת לחור בגולגולת לקצץ את עודף (איור 3). זה יבטיח הצבת אפידורל. של האלקטרודות האלקטרודות אמורות להיות בקושי. נוגעות במשטח הדורא
    5. הנמך את הראש וכוונן את כל שלושת האלקטרודות שיתאימו לחור הגולגולת המתאים. עבור הקלטה אפידורל, האלקטרודות חייב להיות ממוקם מעל או בקושי לגעת מאטר דורא.
    6. הכנת מלט שיניים ליישום על ידי ערבוב של 1/2 סקופ של אבקה עם מספר טיפות של ממס. השתמשו במרית ערבוב ומערבבים עד שהתערובת הסופית היא המרק, הדביק אך מחושל, ונוקשה מספיק כדי לדחוס כראוי כאשר מניחים על הגולגולת של בעל החיים.
    7. החלת תערובת בטון שיניים המכסה את כל הברגים והאלקטרודות ולחכות ~ 3 עד 5 דקות על זה כדי לגבש. הקפידו לא לכסות את המעמד הפלסטי במלט שיניים, כי זה יהיה בלתי אפשרי לחבר את החיה לקומוטטור עם קשר.
    8. שחררו את החומרים המחזיקים את מדפים העור וסגרו את החתך על ידי חיבור מדפים סביב המעמד הפלסטי. החלת מספר טיפות של דבק רקמה (ראה טבלת חומרים) כדי לאטום את מדפים העור.
    9. החלת חומר חיטוי כלורהקדין לאזור סביב השתל כדי למנוע זיהום. אם בעל החיים הוא תחת הרדמה עבור יותר מ 2 h לאחר ההזרקה הקודמת של תמיסת נתרן לקטט, נתון במהלך אינדוקציה TBI, ניהול אחר הזרקה תת-עורי. כדי לשמור על הידרציה נכונה של בעל החיים, חזור על הזריקה כל 2 h כי החיה מבלה בהרדמה.
    10. לאחר הניתוח, לתת הזרקה סופית של תמיסת נתרן לקטט 2 h לאחר הזריקה הקודמת. אם הניתוח הוא פחות מ 2 שעות, לנהל את מינון ההתאוששות הסופי של תמיסת נתרן לקטט 2 h מן הזריקה הראשונה.
    11. הסר את בעל החיים ממנגנון הסטריאוטקטיקה וממד את משקלו של בעל החיים לאחר ניתוח EEG כהתייחסות לניטור עתידי. בשל השתל, משקלו של בעל החיים יהיה גדול יותר מאשר לפני הניתוח.
    12. מניחים את החיה בכלוב נקי על משטח חימום חם להחלמה.
  2. שתל את שני EEG ו-EMG אחד (2EEG/1EMG) ערוצים ראש.
    1. השתמשו בברגמה כנקודת ציון למיקום של הר הראש. החל כמות קטנה של דבק רקמות (ראה טבלת חומרים) לצדו התחתון של הר הראש 2EEG/1emg, הימנעות ארבעה חורים בורג ומניחים את הכותרת 2EEG/1emg על פני הגולגולת.
      הערה: אין קואורדינטות ספציפיות למיקום של הר הראש הזה. הר הראש הוא 8 מ"מ אורך ו 5 מילימטר רחב, אשר מכסה את רוב משטח הגולגולת. מיקום הראש עם הקצה הקדמי ͂ 3.0 מ"מ הקדמי של ברז הוא אופטימלי ומספק איכות האות טוב. מיקום ידני מהיר הכרחי לפני ירידה של מרפא דבק רקמות. לאפשר כ 5 דקות לדבק רקמות לרפא לחלוטין.
    2. השתמש במחט סטרילית 23 G כדי ליצור חורים טייס עבור ברגים דרך ארבעת הפתחים בראש ההר. כדי להשיג זאת, בעדינות לדחוף את המחט לאט לסובב עד קצה המחט חודר לגולגולת מבלי לפגוע במוח. הסירו את כל הדימום מחורי הטייס בעזרת ספוגית כותנה סטרילית.
    3. הכנס את 0.10 ברגים בחורי הטייס וסובב אותם עד שכל אחד מהם יתוקן בתוך הגולגולת. זה יכול להיות עד למחצית אורך הבורג, אבל לא את האורך המלא, כי זה יגרום לנזק בקרום המוח והקליפה. אם הר הראש ממוקם כך יש פער בין משטח הגולגולת ואת הקצה האחורי של הראש להשתמש בשני 0.12 ברגים בחלק האחורי.
    4. הפוך את הפתח הקטן בצידי הנרתיק של שני המרכיבים (האפוקסי הכסוף) למארז התאום. קחו מרית דו צדדית והשתמשו בכל צד כדי לגרוף סכום קטן ושווה של כל רכיב מהתיק וערבבו אותם יחד. השתמש רק כמות קטנה מספיקה עבור ניתוח יחיד, כי התערובת מתגבש בתוך 20 דקות. לאטום את צדי הנרתיק כדי למנוע ייבוש.
      הערה: האפוקסי הכסוף מאפשר מגע חשמלי תקין בין הבורג לראש הכותרת ומגביר את יציבות הברגים.
    5. החל כמות קטנה של התערובת הזאת בין חור הברגה לבין הבורג, ולאחר מכן הדק כל בורג עד שראשו מונח על בסיס השתל. ודא שאין אפוקסי כסוף יוצר קשר בין שני הברגים מכיוון שכל בורג משמש כאלקטרודה בודדת, כדי להבטיח אות מדויק, אין ליצור קשר עם הבורג השני.
    6. אם תערובת האפוקסי הכסוף הייתה במקומה, יש חלון זמן שניות להוציא בזהירות את העודף כדי להפריד את החיבור. לכופף בזהירות את EMG מוביל מהקצה האחורי של הר הראש כדי לעקוב אחר המתאר של ראשו של בעל החיים וצווארו, ולאחר מכן להכניס אותם השרירים הקרה.
    7. הכנת מלט שיניים ליישום על ידי ערבוב של 1/2 סקופ של אבקה עם מספר טיפות של ממס. השתמשו במרית ערבוב ומערבבים עד שהתערובת הסופית היא המרק, הדביק אך מחושל, ונוקשה מספיק כדי לדחוס כראוי כאשר מניחים על הגולגולת של בעל החיים.
    8. החלת תערובת המלט שיניים המכסה את הראש כולו תוך הימנעות כיסוי החורים שישה פינים, כמו זה יהפוך את זה בלתי אפשרי לחבר את מגבר טרום. המתן ~ 3 עד 5 דקות עבור מלט לגבש. ודא כי העור אינו חתום על הר הראש עם מלט שיניים.
    9. שחררו את החומרים המחזיקים את מדפים העור וסגרו את החתך על ידי חיבור מדפים סביב המעמד הפלסטי. החלת מספר טיפות של דבק רקמה כדי לאטום את מדפים העור.
      הערה: אם חתך העור נעשה זמן רב יותר כדי לאפשר יישור של מוביל חוט EMG, העור יכול להיות אטום עם דבק רקמה או משמים. איטום העור עם דבק רקמה מספיקה בדרך כלל. עם זאת, אם במהלך פתיחת ניטור לאחר הניתוח של החתך הוא נצפתה, תפרים מומלצים במקום.
    10. החלת חומר חיטוי כלורהקדין לאזור סביב השתל כדי למנוע זיהום. ניהול תמיסת נתרן לקטט (3 μL לכל גרם של משקל החיה) תת-עורי להחליף נוזלים ואלקטרוליטים אם בעל החיים הוא תחת הרדמה עבור יותר מ 2 h לאחר הזריקה הקודמת.
    11. הסר את בעל החיים ממנגנון הסטריאוטקטיקה וממד את משקלו של בעל החיים לאחר ניתוח EEG כהתייחסות לניטור עתידי. בשל השתל, משקלו של בעל החיים יהיה גדול יותר מאשר לפני הניתוח.
    12. מניחים את בעל החיים בכלוב נקי על משטח חימום חם, עם ג'ל להחלמה ומספר חתיכות של לחלח להחלמה.
  3. שתל שלושה ערוצי EEG (3EEG) ראש.
    1. השתמש מקדחה במהירות גבוהה עם סיבית פלדה (0.5 מ"מ, עגול, 1/4) ב ~ 5000-6000 סל ד כדי ליצור שישה חורים בגולגולת (שלושה עבור ברגים יציבות שלושה עבור אלקטרודות) באמצעות קואורדינטות סטריאוטקטיקה שסופקו12. עבור קרקע והתייחסות משותפת עבור EEG1 ו-EEG2: AP = 5.2 מ"מ, ML = ± 1.5 mm; עבור EEG1 ו EEG2: AP =-3.0 מ"מ, ML = ± 3.0 mm; עבור EEG3 עצמאי: AP =-1.4 מ"מ, ML = ± 1.5 mm.
    2. הניחו את ששת אלקטרודות הברגים לתוך חורי הגולגולת.
      הערה: הצבת הברגים עמוק יותר תיצור נזק משמעותי למוח. אלקטרודות בורג מספקות יציבות טובה יותר של הר הראש.
    3. הכנת מלט שיניים ליישום על ידי ערבוב של 1/2 סקופ של אבקה עם מספר טיפות של ממס. השתמשו במרית ערבוב ומערבבים עד שהתערובת הסופית היא המרק, הדביק אך מחושל, ונוקשה מספיק כדי לדחוס כראוי כאשר מניחים על הגולגולת של בעל החיים.
    4. החלת תערובת בטון שיניים המכסה את המשטח החשוף כולו של הגולגולת וכל אלקטרודה בורג. ודא כי העור אינו חתום על הר הראש עם מלט שיניים. המתן ~ 1-2 דקות עבור מלט לחזק במקצת. אין צורך להמתין עד למיצוק מלא לפני שתמשיך לשלב הבא.
    5. תדליק את ברזל ההלחמה. כדי לחמם אותו הצב את ראש הדור השלישי בזרוע של בעל סטרטקטיקה.
      הערה: הצב את הר הכיוון כך שששת מיקומי העופרת בחוט יתאימו למיקום החוט המוביל של כל אלקטרודה בורג.
    6. הנמך את הראש כך שהחלק הגייתי שלו מונח על גבי מלט שיניים.
    7. סובב את התיל של כל הפניה מכל אחד מאלקטרודות הברגים עם קצה חוט התיל המתאים של הר הראש.
      הערה: הפיכת מוביל התיל השגוי תגרום לפענוח נתונים מורכב או בלתי אפשרי.
    8. חתוך בזהירות את החוט העודף באמצעות מספריים. הלחמה כל זוג חוט מעוות. בשביל הולכה האות הנכון
      הערה: כל זוג חוטים חייבים ליצור מגע עם זוג אחר, אחרת איכות האות ופענוח הנתונים יהיו בסכנה.
    9. כופף כל זוג מולחם של חוט מוביל סביב הר הראש, הימנעות קשר בין זוג.
      הערה: אם החוט המוביל לא נחתך מספיק קצר זה יכול להיות קשה לכופף אותם סביב הר הראש בלי לגעת בחוט אחר. במקרה זה, לכופף זוג אחד קודם, לכסות את זה עם תערובת בטון שיניים, לחכות ~ 1-2 דקות כדי לגבש, ולאחר מכן להמשיך עם הזוג הבא באותה צורה.
    10. סיים לכסות את כל החוט עם בטון דנטלי עוזב רק את החלק השחור של הר הראש חשוף.
      הערה: להיזהר לא להחיל כל אבקת בטון שיניים או תערובת לראש החלק החשוף של הכותרת כמו כל פסולת או מלט בחורים יחסום את הקשר ויוביל להיעדרות האות או רעש.
    11. שחררו את הדימום. מחזיק את מדפים העור החלת חומר חיטוי כלורהקדין לאזור סביב השתל כדי למנוע זיהום.
    12. ניהול תמיסת נתרן לקטט (3 μL לכל גרם של משקל החיה) תת-עורי להחליף נוזלים ואלקטרוליטים אם בעל החיים היה תחת הרדמה במשך יותר מ 2 h לאחר הזריקה הקודמת.
    13. הסר את בעל החיים ממנגנון הסטריאוטקטיקה וממד את משקלו של בעל החיים לאחר ניתוח EEG כהתייחסות לניטור עתידי. בשל השתל, משקלו של בעל החיים יהיה גדול יותר מאשר לפני הניתוח.
    14. מניחים את בעל החיים בכלוב נקי על משטח חימום חם, עם ג'ל להחלמה ומספר חתיכות של לחלח להחלמה.
      הערה: מי חמצן מימן מסייע בהסרת כל הרקמה הרכה הנותרים מן הגולגולת.

5. חיבור בעלי חיים למערכת הרכישה

  1. ספל את בעל החיים בשתי הידיים כדי להסירו מכלוב הרכישה ולהעבירו לאזור נקי עם משטח שטוח, כמו למשל תחנת העברת בעלי חיים (ATS).
  2. בעדינות לתפוס את העכבר על ידי העור של גבו. אל תתפסו את החיה בזנבו, כי זה גורם למצוקה.
  3. לזהות את הפתיחה ב-EEG ראש המתאים אלקטרודה הקרקע ולהתאים את הסיכה המתאימה של הקשר לחיבור הנכון.
    הערה: חיבור הפוך מהקומוטטור לראש החיה יביא לקריאה שונה מהאלקטרודות ומצורות הגל המעוותות.
  4. החזר את בעל החיים אל כלוב הרכישה וחבר את הקצה השני של החבל (EEG System 1) או טרום מגבר (EEG System 2) אל הקומוטטור.
    הערה: בעת חיבור הקדם-מגבר (EEG System 2) אל החבל מפני הקומוטטור, התאימו את הסימנים הלבנים בקצות שני הקצוות. חיבור הפוך יגרום נזק תמידי של המגבר ודורש תיקונים על ידי היצרן, אשר יקרים.
  5. סובב בעדינות את הקשר בין בעל החיים לקומוטטור כדי להבטיח שמנגנון פועל כראוי והחיה יכולה לנוע בחופשיות.

6. הגדרות רכישת נתוני EEG

  1. הגדר פרמטרים של רכישת מערכת EEG.
    1. קבע קצב דגימה ל-500 Hz; להרוויח 5,000; מצב נורמה 35 Hz; . בסדר. הגדר מסנן מעבר גבוה ל-0.5 Hz.
      הערה: 100 הרץ (מעבר נמוך) מובנה ואינו מחייב קלט ידני.
  2. הגדר פרמטרים לרכישה של מערכת EEG.
    1. קבע קצב דגימה ל-600 Hz; יחידות פרה להרוויח 100; להשיג 1 (EEG1, 2). הגדר מסנן מעבר נמוך ל-100 Hz.
      הערה: 1 הרץ (מעבר גבוה) מובנה ואינו מחייב קלט ידני.

7. הגדרות רכישת נתוני וידאו

  1. הגדר פרמטרי רכישה עבור מערכת EEG 1.
    הערה: יש צורך במערכת רכישת וידאו של צד שלישי לקבלת נתוני וידאו בו.
    1. קבע קצב מסגרות בין 15 (מינימום מומלץ) ו-30 (מקסימום זמין) לאיכות וידאו מתאימה. הגדר את הרזולוציה ל640 x 640 פיקסלים. הגדר סוג דחיסה ל-H. 264H.
  2. הגדר פרמטרי רכישה עבור מערכת EEG 2.
    הערה: מערכת EEG זו מציעה מערכת וידאו ותוכנה אשר מסנכרנים וידאו ונתוני EEG יחד בקובץ יחיד עד ארבע בעלי חיים (ראו טבלת חומרים).
    1. קבע קצב מסגרות בין 15 (מינימום מומלץ) ו-30 (מקסימום זמין) לאיכות וידאו מתאימה. הגדר את הרזולוציה ל640 x 480 פיקסלים. הגדר את סוג הדחיסה בתבנית הקובץ WebM.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

הפרוטוקול המתואר כאן מתאר את השיטה לאינדוקציה של פציעה מפוזרת בבידוד (למשל, בהעדר נגע מוקד) באמצעות מודל עכבר של TBI מפוזר חוזר ונשנה (איור 1). איור 1a מתאר את מכשיר הירידה במשקל ואת מרכיביו (איור 1א, a1-a5) משמש לאינדוקציה של tbi במודל זה וצעדים מכריעים במהלך ההליך (איור 1B, b1-b5).

מאפייני המודל הזה כוללים את העדר נגע מוקד למוח כתוצאה TBI, אובדן התודעה, שיעור הישרדות גבוה, הופעתה של התפרצות התקף מאוחר (> 1 שבוע של TBI), ו ספונטנית, תגרות, והתקפים חוזרים בקבוצת משנה של עכברים TBI לאחר תקופת השהיה של לפחות שלושה שבועות לאחר TBI.

פרוטוקול זה מדגים הליכים מפורטים עבור הגדרת שדה כירורגי נקי (איור 2), מספק גישה צעד אחר צעד כדי לשתול מערכי אלקטרודה שונים (איור 3), וכולל מדריך מפורט על שימוש בשתי מערכות שונות לרכישת EEG (לראות את טבלת חומרים) לגילוי התקפים (איור 4 ואיור 5) במודל זה הכוח הספקטרלי של התקף אופייני מעיד על צפיפות גבוהה יותר בטווח התדרים של 10 עד 40 Hz עם שיא של 15 הרץ (איור 4). רוב ההתקפים בעכברים הם מסוהים, עם משך ממוצע של 12 עד 15. רק חלקיק קטן של התקפים אינו מחשמל. השוואה יסודית בין היתרונות והחסרונות של השימוש בכל אחת מהמערכות מפורטת בסעיף ' דיון '. יתר על כן, פרוטוקול זה מדגים את צירי הזמן להתקף התפרצות בבעלי חיים לאחר ירידה משקל חוזר TBI, מראה את התפיסה האשכול בכמה בעלי חיים (איור 6) אשר מדגיש את החשיבות של רכישת רציפה ולא לסירוגין הקלטות, כמו זה יבטיח ריבוד מדויק של בעלי חיים המפתחים התקפים ספונטניים לאחר tbi מאלה חשוב מכך, פרוטוקול זה דן גם את היתרונות ואת החסרונות של מודלים מכרסמים של PTE ואת יכולתם לייצג אוכלוסיה מסוימת של בני אדם לאחר TBI.

Figure 1
איור 1: מודל העכבר של TBI מפוזר חוזרים ונשנים. (A) התקן ירידה במשקל. (a1) . שפופרת ירידה במשקל (a2) . מוט במשקל 100 גרם (a3) . הסיכה מחזיקה את המוט (a4) מחרוזת להרים את המוט אם לשנות את גובה או להסיר את המוט מצינור ירידה במשקל. (a5). משטח קצף להנחת החיה מתחת לצינור השחרור במשקל. (ב) הליך ירידה במשקל. (b1) תקליטור נירוסטה ממוקם במרכז הראש בין קו העיניים והאוזניים. (b2 ו- b3) לאחר האישור החזותי שראשו של בעל החיים נמצא בתנוחה השטוחה ומשטח הקצף מועבר, הצבת ראשו של בעל החיים מתחת לצינור הירידה במשקל. ((b4) שחרור של הפין מחזיק את מוט המשקל, להכות את המרכז של תקליטור נירוסטה. (b5) העכבר ממוקם על מגבת סטרילית מיד לאחר ההשפעה ואובדן התודעה מוערך על ידי מדידת הזמן שלוקח לבעל החיים כדי להתאושש ואת הזכות עצמה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 2
איור 2: הכנה לשדה כירורגי ו-EEG הצבת מיקום האלקטרודות. כלים אוטומטיים וחומרים נחוצים לניתוח והשתלת אלקטרודות מוכנים לפני שההרדמה על החיה להבטחת הזמינות של כל החלקים הנדרשים. זהו אזור סטרילי והכרחי לא לזהם אזור זה עם חומרים לא סטריליים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 3
איור 3: ציוני דרך סטריאוטקטיקה וייצוג סכמטי של מיקום אלקטרודה באמצעות מערכת EEG 1 ו-2. הפאנל העליון מתאר את השיטות של השתלת שלושת הראשים השונים המתוארים בפרוטוקול זה. (א) ערוץ EEG יחיד, מונטאז דו קוטבי. (ב) שני ערוצי EEG עם התייחסות משותפת, מונטאז דו קוטבית ו emg-ערוץ אחד. (ג) שלושה ערוצי EEG, באמצעות מונוסולאר (ערוץ 1-2) ו דו קוטבית (ערוץ 3) מונטאז. הפאנל התחתון מתאר את טעינות וברגים מושתל כמו בלוח העליון. שלושת סוגי הברגים המשמשים בפרוטוקול זה לשתי מטרות: כמו ברגים יציבות (מערכת EEG 1) או שניהם יציבות כאלקטרודה (EEG System 2). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 4
איור 4: התקף ספונטני שנרכש באמצעות מערכת EEG 1. הפאנל העליון מתאר התקף ספונטני בעכבר 23 ימים לאחר ירידה משקל חוזרות TBI באמצעות נתונים שנרכשו באמצעות הר EEG. (א) פעילות טרום-ictal (טרום תפיסה). (ב) הפעילות הזאת (ב) ictal. (ג) הפוסט-ictal (לאחר התפיסה) דיכאון. החלונית התחתונה: צפיפות ספקטרום החשמל מחושבת באמצעות סקריפט ותוכנה מותאמים אישית (ראה טבלת חומרים). ממוצע כוח = הכוח הממוצע של ספקטרום הכוח בתוך התקופה (יחידות: V2/Hz). תדירות חציון = תדירות שבה מגיעים 50% מכלל הכוח הכולל בתקופה (יחידות: Hz). תדר ממוצע = תדירות שבה הגיע הכוח הממוצע בתקופה (יחידות: Hz). הגבול הספקטרלי = התדר שמתחתיו מגיע אחוז שהוגדר על-ידי המשתמש של הכוח הכולל בתקופה (יחידות: Hz). תדירות שיא = תדירות שבה מתרחשת העוצמה המירבית במהלך התקופה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 5
איור 5: ותקפים ספונטניים שנרכשו באמצעות מערכת EEG 2. (א) פרכוס לא-מנזעי (אלקטרוגרפי) ספונטני בעכבר 65 ימים לאחר ירידה משקל חוזרת tbi. נתונים שנרכשו באמצעות הר 2EEG/1EMG כותרת. (ב) התקף מסיבי ספונטנית בעכבר 97 ימים לאחר ירידה במשקל tbi. נתונים שנרכשו באמצעות הר EEG. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 6
איור 6: מקרים תפיסת ציר הזמן בעכברים לאחר ירידה משקל חוזר TBI. ההתקף המוקדם ביותר נצפה. שלושה שבועות לאחר הפציעה כמה בעלי חיים לפתח אשכולות של התקפים בתוך אותו יום ואחריו מספר שבועות ללא התקפים. בעלי חיים נרשמו לארבעה חודשים לאחר TBI. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

   

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

בניגוד CCI ו-FPI מודלים הגורם מיקוד או שילוב של פציעה מיקוד ומפוזר, המודל של TBI מפוזר חוזרים שתוארו בפרוטוקול זה מאפשר אינדוקציה של פציעה מפוזר בהעדר פגיעה במוח מוקד ואינו דורש פתחי הקרקפת או הגולגולת ואת הדלקת הקשורה. יתרון נוסף של היעדר כריתת הגולגולת במודל זה הוא שהוא מאפשר לא רק להשתיל את האלקטרודות עבור הקלטה מתמשכת כרונית EEG, אלא גם את היצירה של חלון הגולגולת thinned לכרונית ב vivo 2-פוטון הדמיה של בעלי החיים לפני, מיד לאחר, ובמשך ימים, שבועות, ואפילו חודשים לאחר TBI כפי שמתואר ב שנדרא ו Robel 201913.

ללא קשר למודל בעל החיים שנבחר, גישת רכישת הנתונים שאומצה היא מרכיב מכריע בכל מחקר מוצלח ומקיף. במודלים מכרסמים של אפילפסיה פוסט טראומטית התדירות של התקפים הוא נמוך14, נע בין 0.3 ליום 0.4 התקפים להיום9,15, ואת התקופה הסמויה לפני ההתקף הראשון יכול להימשך בכל מקום מימים או שבועות אפילו חודשים לאחר הליך tbi הראשונית. לבסוף, בניגוד למודלים לא טראומטיים, אשר יש שכיחות גבוהה בדרך כלל של התקפים על פני תקופה קצרה יותר של זמן, בממוצע רק 9%-50% של בעלי חיים עם tbi יהיו התקפים ספונטניים על פני תקופה של עד שישה חודשים8,16. הדבר מרמז על כך שמחקרים משמעותיים דורשים הקלטה רציפה של וידאו EEG.

מטרת היסוד של כל דגם בעלי חיים של TBI היא לשכפל ככל האפשר את צורות שונות של TBI שנמצאו בחולים אנושיים, כדי לחקור טוב יותר את המנגנונים הסלולריים והמולקולריים בבסיס PTE. טכניקות בפרוטוקול זה יסייעו להקל על גילוי מטרות טיפוליות, בדיקות היעילות והסבילות של מועמדים מניעתי וטיפוליים חדשים, והתפתחות של סמנים אמינים או מפרקנים של אפילפסיה בעקבות טראומטית.

אתגרים פוטנציאליים במהלך הליך ירידה במשקל
מכיוון שהראש אינו קבוע במסגרת סטריאוטקטיקה, יש לנקוט טיפול נוסף כדי להבטיח מיקום שטוח של הראש ולוחית המתכת. אם המוט המשוקלל פוגע בצלחת המתכת או בראש בזווית או אם המשקל מחליק לצד ראש העכבר, הביומכניקה של הפציעה תהיה שונה, ואולי התוצאה היא פציעה מתונה או לא. בעבר, לוחית המתכת הייתה דבוקה לגולגולת כדי למזער את השונות. עם זאת, הסרת לוחית מתכת דבק מן הגולגולת העכבר בעקבות ירידה במשקל, גם אם מבוצע עם טיפול, המושרה נזק קרום המוח, וכתוצאה מכך נזק כלי הדם והנזק העוקב לרקמת המוח אפילו בבעלי חיים מזויפים. יתר על כן, החתך דורש ריפוי, העלול להיות מעורב תגובה חיסונית היקפית, אשר עשוי להציג שינויים. מסיבות אלו נבחרו להשמיט את הדבקת לוחית המתכת לגולגולת. בעלי חיים עלולים למות עם חזרה (כלומר, 3x בפרוטוקול זה) פציעה. עכברים בעלי משקל גוף מתחת ל -25 גרם לא יכולים לסבול השפעות חוזרות ונשנות. בעוד פציעות יחיד כמעט אף פעם לא לגרום לתמותה, עד 7% של C57BL/6 בעלי חיים למות לאחר השפעות חוזרות ונשנות9. מנועים יכולים להיות מצופים בכמה בעלי חיים. כאלה המניפסט של האיבר החוצה או חריגות הילוך. זהו בדרך כלל גורם התחזיות להחלמה ירודה ומומלץ להקריב את החיה. סימנים של כאב או מצוקה כוללים ירידה במשקל, לטפח עניים, התייבשות, חרדה מוגברת, פעילות גישוש נמוכה או נעדרת (הידרוג'ל/התאוששות, צ'או ו/או נסטלה נשארים ללא שינוי). כאבי הצלה (0.1 מ"ג/ק"ג של buprenorphine) יכולים להיות מנוהלים תת-עורי כל 8 h במשך שלושה ימים מ TBI כדי להקל על הכאב ולמנוע את החיה מלהגיע נקודת הקצה ההומאנית. תמיסת נתרן העורית לקטט (3 μL לכל גרם של משקל החיה) ניתן לנהל פעמיים ביום עבור מנשאי. בעלי חיים בדרך כלל להתאושש בתוך שלושה ימים לאחר TBI. מומלץ להשתמש בתוצאת מצבי הגוף של חמישה בשלב (BCS) לניטור בעלי חיים לאחר הליכים ניסיוניים. השלבים כוללים (1) רזים (מבני השלד הם בולטים מאוד, חוליות מקוטע מאוד); (2) ממוזג (פילוח של טור החוליות הוא ברור, עצמות האגן בקלות מוחשי); (3) ממוזג (חוליות והאגן הירכיים אינם מוחשי בולט עם לחץ קל); (4) ממוזג (עמוד השדרה הוא טור רציף, חוליות מוחשי רק עם לחץ המשרד); (5) שמנים (העכבר חלק ומגושם, מבנה העצם נעלם תחת בשר ושומן תת עורית). נקודת הקצה ההומאנית מגיעה כאשר BCS הוא 1-2, 20% או יותר ירידה במשקל בעכבר מבוגר בהשוואה למשקל pre-TBI שלו, הסימפטומים של כאב או מצוקה אינם מגיעים על ידי משככי כאבים, סימנים של השחתה עצמית, סימפטומים של התייבשות, היפותרמיה, נוכחות של לוגיקה נוירולוגית (לא נורמלי הליכה או יש להתחשב בכמה תוצאות אפשריות של ניהול החומר. בופראורפין מוזרק תת-עורי מגיע השיא הראשון של השפעה כאבים שלה ב 10 דקות לאחר ההזרקה17. ההשפעה הראשונה מתרחשת שניות לאחר ביופריפין מנוהל, מציע כי המדידה הראשונה של זמן ההתחלה לא סביר להיות מושפע. עם זאת, לא ניתן לכלול אותו במלואו כמשתנה. מכאן, הניסויים מתבקשים לממש את שיקול דעתם. אם הליך ירידה במשקל מלווה בניתוח סטריאוטקטיקה ו carprofen מנוהל חשוב לציין כי carprofen הוא סוכן אנטי דלקתי שעשוי להשפיע על מקרי תפיסה, ומכאן ניסויים מומלץ לשקול את השימוש בו בקפידה.

אתגרים פוטנציאליים במהלך הניתוח
הסיכון של זיהום או זיהום יהיה הוריד עם השימוש של 70% אתנול, אבל זה לא יגרום לתנאים סטרילי. לחילופין, ניתן להשתמש בכפפות ניתוח סטרילי. עם זאת, מנגנון הסטריאוטקטיקה אינו עצמו סטרילי, ולכן כל מניפולציה ידנית תגרום לאובדן המצב הסטרילי של הכפפות. מכאן, ריסוס עם 70% אתנול נדרש לאחר המגע עם כל חומר לא סטרילי במהלך הניתוח. קידוח דרך הגולגולת לתוך המוח יוצר נזק לרקמת המוח ועלול לגרום דימום מהנתיך. יצירת חורי הגולגולת. מקבלת טיפול קיצוני מתקן את תרגיל היד בזרוע הסטריאוטקטיקה ומנמיך בהדרגה ומעדיף על קידוח החורים תוך החזקת התרגיל באופן ידני. אלקטרודות וברגים קיבוע עלולים לשקוע עמוק יותר מהמתוכנן, לפגוע בקרום המוח (השמה העמוק) או בקליפת הקליפה (השמה הקורטימתי). זה עלול לגרום לדימום. מהנתיך ולפגיעה ממוקד הניסויים חייבים להימנע מהתחממות יתר של בעל החיים במהלך הניתוח. אם חיישן הטמפרטורה אינו קבוע כהלכה, הוא לא ישמור על הטמפרטורה הדרושה 37 ° c, גרימת התחממות יתר, כוויות, ולעיתים מותו של בעל החיים כתוצאה מכך. עיניו של בעל החיים מתייבשות, מעצבנות או פגועות במהלך הניתוח, אם לא משומנים ברגע שהחיה מונחת במנגנון הסטרטקטיק.

ניטור פוסט-פעיל
ניטור postאופרטימתחיל מיד לאחר ההליך או ניתוח מסתיים. שימו לב לבעל החיים עד שיתעורר מהרדמה וחפשו את הנוכחות או העדר סיבוכים הקשורים לניתוח, כולל דימום או פראזיס. אם הדימום הוא הבחין מסגירת החתך לא מושלם, להחזיר את החיה, לנקות את האתר דימום עם כלורקסדין, לבצע סגירת הפצע כפי שמתואר לעיל ולהחזיר את החיה לכלוב ההתאוששות. בערך 1-2 לאחר הניתוח, החיה צריכה להיות ערה לגמרי מההרדמה, ולנוע בחופשיות בכלוב ללא סימני פראזיס או כאב. החיה תתחיל לטפח את עצמו, ולכן איטום החתך הכרחי כדי למנוע מהחיה לפתוח אותו במהלך הטיפוח. לאחר שהחיה התאוששה, העבירו אותו לכלוב/לתא שישמש לרכישת נתוני EEG. זה יאפשר לבעל החיים לקבל נובעת לסביבה החדשה. הדבר חשוב במיוחד להקלטה ארוכת טווח (חודשים). כלוב החיות חייב להיות ג'ל שחזור (ראה לוח חומרים), הלחלח, נסטלה, ובקבוק מים. זה יאפשר התאוששות נאותה ייתן גישה חיה לחומרים מזינים ומים. המשיכו לעקוב אחר החיה מדי יום. ההערכה חייבת לכלול (א) בדיקה חזותית של התנהגות בעלי חיים עבור סימנים של כאב או מצוקה, כולל אובדן משקל, מטפח עניים, חרדה מוגברת, נמוך או נעדר פעילות גישוש (הידרוג'ל/התאוששות, צ'או ו/או נסטלה נשאר ללא שינוי) וריפוי נאות של אזור החתך סביב שתל EEG; (ב) הערכת סינכרון BCS עבור סימנים של התייבשות תזונה; (ג) משקלו של בעל החיים. ניהול תמיסת נתרן לקטט (3 μL לכל גרם של משקל החיה) תת-עורי אם בעל החיים מראה סימנים של התייבשות (ראה שולחן חומרים). ניהול בופרנורפין (0.1 מ"ג/ק"ג) תת-עורי אם בעל החיים מראה סימנים של כאב או מצוקה. אם סימני הכאב ממשיכות להיות ביופרפין ניתן לנהל כל 8 h. הניטור חייב להיות מוגבר פעמיים ביום אם בעל חיים מראה סימנים של כאב ו/או מצוקה. לאפשר לבעל החיים להתאושש לפחות שלושה ימים לאחר ניתוח EEG לפני ההתחברות למערכת הרכישה באמצעות הקשר. קריטריוני נקודות הקצה האנושיים זהים לאתגרים פוטנציאליים במהלך הליך ירידה במשקל שלעיל.

יתרונות וחסרונות של מערכות רכישה וטעינות
היתרון העיקרי של מערכת EEG 1 עם כותרת אחת ערוץ EEG הוא עלות נמוכה יחסית של חומרה, רכיבים, שירות. התצורה פשוט וישירה גם מאפשר למשתמשים להתאים אישית את המערכת להעדפות שלהם. כל מגבר דיפרנציאלי מספק ערוץ EEG יחיד, למרות שמספר מגברי מגברים יכולים להיות מחוברים זה לזה, ולהגדיל את מספר הערוצים עבור כל חיה. במערכת זו, תצורת ערוץ יחיד לכל בעל חיים שימש לרכישת הקלטות EEG לטווח ארוך כרונית של 20 בעלי חיים בו זמנית. התקפים פוסט טראומטיים מוכללת בדרך כלל, עם מצרף דו קוטבי דו צדדי של אלקטרודות זה קל לזהות סוג זה של פעילות אפילפטית. החיסרון בגישה זו, לעומת זאת, הוא שאי אפשר לזהות באופן אמין את הפואליות, הפראליזציה, או את התפשטות הפעילות האפילפטית, משום שזה ידרוש מספר ערוצים. אתגר פוטנציאלי נוסף יכול להיות זיהום רעש של הערוץ היחיד לאורך זמן, עיבוד זה לא מסוגל לרכוש נתונים שימושיים מן החיה. ניתן להתגבר על זה על ידי שילוב של שני מגברים או יותר מגבר, אשר מכפיל את מספר הערוצים לכל חיה. לבסוף, הנתונים שנרכשו מערוץ אחד קשים יותר להבחנה מחפצים פוטנציאליים, ופעילות אפילפטית נתמכת בצורה הטובה ביותר על-ידי הקלטות וידאו של התנהגות החיה. מסיבה זו, כל ההקלטות משולבים ניטור וידאו רציפה עם רכישת EEG. הגבלה של מערכת זו ותוכנה היא שהיא אינה כוללת את מערכת רכישת הווידאו, ולכן דורשת מערכת מותאמת אישית של צד שלישי לרכישת וידאו סינכרוני.

היתרון העיקרי של מערכת EEG 2 עם כותרת מרובת ערוצים הוא האיכות הגבוהה של האות בשל הסינון המצטבר של האות הנרכש על ידי מגבר הקדם (ראה טבלת חומרים) לפני העברת דרך הקומוטטור אל המגבר. מגברים במערכת זו מאפשרים רכישת נתונים בשלושה ערוצים בתצורות הבאות: 2 EEG + 1 ערוץ EMG או שלושה ערוצי EEG (ראה לוח חומרים). הדבר מאפשר איתור לא רק של פעילות מוכללת אלא גם, פוטנציאל, מוקד אפילפטית פעילות. יתרון מרכזי נוסף הוא כי מערכת זו תוכננה במיוחד עבור מחקר בעלי חיים ולכן מציע מערכת הקלטת וידאו ותוכנה המסוגלת לסנכרן את ה-EEG ואת ערוצי וידאו עבור עד ארבע בעלי חיים בקובץ אחד, מה שהופך את הניתוח קל יותר ונוח יותר מאשר מערכת EEG 1. מערכת זו קלה לשימוש לצורך רכישת נתונים לניתוח התפיסה והשינה ללא כל שינוי במערכת שאינה סוג הכותרת המשמשת. הכותרת 2EEG/1EMG מאפשר לשתול את האלקטרודות במיקומים קבועים בלבד, בשל הגודל והתצורה של לוח המעגל. אלקטרודות בורג עם חוט מוביל בראש 3EEG טוען לאפשר גמישות בנטיעת במיקום הרצוי עם האפשרות לעשות או מmonopolar או רכישה דו-קוטבית בהתאם היכן אלקטרודה התייחסות ממוקם. עם זאת, השתילה של הראש 3EEG דורש הלחמה, אשר מוסיף יותר צעדים לניתוח ודורש הרבה יותר זהירות ודיוק. המחברים המחוברים ומגברים עוצבו במיוחד עבור מכרסמים קטנים כמו עכברים וחולדות בוגרות, הם דקים, כבלי משקל נמוך שגורמים ללחץ קטן על ראשו של בעל החיים. חיסרון של המערכת הוא העלות הגבוהה יחסית של החומרה, התוכנה, רשיון הווידיאו והרכיבים (כלומר, מגברים מוקדמים וטעינות הראש).

משמעות ושלבים קריטיים ברכישת נתוני EEG
לתקשורת יש מנגנון מסתובב, המאפשר לחבל להסתובב בהתאם לכיוון תנועת החיות. אם המנגנון נכשל, התנועה של בעל החיים יהיה מוגבל, אשר יכול לגרום להסרת כובע EEG. ניתן לנסות את הניתוח החוזר למקום אלקטרודות חדשות. עם זאת, זה יכול להיות מאתגר או בלתי אפשרי אם ההסרה של כובע EEG הקודם גרם נזק לגולגולת ולמוח. שיעור הדגימה לרכישת נתוני EEG חייב להיות לפחות 2-2.5 x התדירות הגבוהה ביותר של הריבית. שיעורי דגימה גבוהים יותר מגבירים את הרזולוציה הגבוהה יותר של הנתונים במחיר של גידול בגודל הקובץ, שעשוי להקשות על האחסון והעיבוד של הקלטות רציפות של בעלי חיים מרובים. מכאן, יש צורך למטב את קצב הדגימה לרמה המאפשרת קבלת הנתונים הדרושים ללא אובדן איכות תוך צמצום גודל הקובץ.

שלבים מובהקות וקריטיים ברכישת נתוני וידאו
ב מכרסמים, כמו בבני אדם, PTE יכול להתבטא עם שינויים רחבים הסימפטומים הקשורים בפיזיולוגיה ואלקטרוגרפיה, מה שהופך את הצורך לקבל וידאו סימולטני במהלך רכישת EEG כדי לפרש כראוי ולסווג את אירועי EEG שנצפו. פרשנות של נתוני EEG בהיעדר וידאו מסונכרן מאתגרת במיוחד כאשר ערוץ EEG אחד משמש. במקרה זה, זה יכול להיות קשה לקבוע אם ה-EEG הוא חפץ, אלא אם כן ראיות אחרות (וידאו) תומך בסיווג כהתקף. ממצאים בתנועה יכולים להופיע בדומה לתבנית האלקטרוגרפית של ההתקף. מכאן, וידאו עם או בלי אישור EMG הוא דרישה. בעוד הקלטת וידאו מבוצעת במהלך מחזורי אור וכהה, איכות הווידאו לא תמיד משביע רצון וברור בשעות החשוכות. בנוסף, אם החיה הוא התרחק מן המצלמה במהלך אירוע ה-EEG כמו ictal, זה יכול להיות מאתגר כדי להעריך את התנהגותו. במקרים אלה, רכישת מכשיר אלקטרומגנט (EMG) בנוסף EEG ווידאו יכול לפתור את האתגר על ידי מתן מידע על פעילות השריר במהלך ותקפים התנהגותיות מתון יותר (עם רכיבים מוטוריים נמוך) או כדי לאשר את העדר תנועת בעלי חיים במהלך היעדרות כמו ספייק-ו-איטית-גל פולט על EEG. האתגרים הפוטנציאליים עם ערוץ EMG דומים האתגרים עם ערוצי EEG, כגון זיהום רעש, מיקום שגוי של אלקטרודות, או אלקטרודות להיות רופף (או לאבד מגע משטח) על זמן ממושך של ההקלטה. השימוש וידאו יחד עם ניתוח EEG יש שתי מטרות: כדי לוודא כי אירוע EEG אינו חפץ הנגרם על ידי תנועת בעלי החיים (התנהגות גישוש, שתייה, לעיסה, גירוד, מתיחה, טיפוח, או נשימה מהירה/מאומצת) ולהבדיל בין התקפים בלתי מעיים. מומלץ להשתמש בקנה מידה משתנה של ראסין כדי לאפיין ותקפים מוכי אי-התקפי חשמל. השלבים כוללים (0) התקף אלקטרוגרפי טהור ללא כל ביטוי מוטורי לזיהוי; (1) מרכב מחברת orofacial והנהון ראש; (2) מטומטם בפוריוני; (3) פורליהבייט דו-ממדי; (4) פוראלימגה קלבוס וגידול; (5) forelimb הקללנו עם גידול ונפילה. כל ערוץ וידאו חייב להראות בבירור את המשטח כולו עם בעל החיים בכלוב, תווית עם מספר זיהוי בעלי חיים, טיפ בקבוק מים, מזון, דיאטה/שחזור ג'ל. כדי להבטיח רכישת וידאו בשעות החשוכות, השתמש במקור לילה אינפרא-אדום. (מצלמות מסוימות כוללים התקנים מוכללים או עשויים לדרוש חלקים נוספים. ראה את רשימת החומרים). התאימו את המסגרת לקצב השני ורזולוציית התמונה. קצב המסגרות והרזולוציה הגבוהים יותר מגיעים לעלות של גודל קובץ גדול יותר. החסרונות העיקריים של רכישת וידאו במהלך ניסויים ממושכים כרוניים ממושכת כוללים את הצורך לאחסן כמויות גדולות מאוד של נתונים ואת הקשיים הטכניים המעורבים בעיבוד הקבצים הגדולים. הידע של הנסניסה לפענוח יעיל של נתוני ההתנהגות יחד עם EEG חייב להיחשב גם כן.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

. למחברים אין מה לגלות

Acknowledgments

עבודה זו נתמכת על ידי R01 NS105807/NS/NINDS NIH HHS/ארצות הברית ולרפא מבוסס על מענק שהתקבל מחקר הצבא של ארצות הברית הרפואה בחומרהפיקוד, המחלקה להגנה (משרד ההגנה), באמצעות בריאות פסיכולוגית טראומה במוח טראומטית תוכנית מחקר תחת הפרס לא. W81XWH-15-2-0069. איוון זויידהוק מוערך מאוד על הגהה של כתב היד.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.10" screw Pinnacle Technology Inc., KS, USA 8209 0.10 inch long stainless steel
0.10" screw Pinnacle Technology Inc., KS, USA 8403 0.10 inch long with pre-soldered wire lead
0.12" screw Pinnacle Technology Inc., KS, USA 8212 0.12 inch long stainless steel
1EEG headmount Invitro1 (subsidiary of Plastics One), VA, USA MS333/8-A/SPC 3 individually Teflon-insulated platinum iridium wire electrodes (twisted or untwisted, 0.005 inch diameter) extending below threaded plastic pedestal
2EEG/1EMG headmount Pinnacle Technology Inc., KS, USA 8201 2EEG/1EMG channels
3% hydrogen peroxide Pharmacy
3EEG headmount Pinnacle Technology Inc., KS, USA 8235-SM-C custom 6-Pin Connector for 3EEG channels
Buprenorphine Par Pharmaceuticals, Cos. Inc., Spring Valley, NY, USA 060969
Buprenorphine Par Pharmaceuticals, Cos. Inc., Spring Valley, NY, USA 060969
C57BL/6 mice Harlan/Envigo Laboratories Inc male, 12-16 weeks old
C57BL/6 mice The Jackson Laboratory male, 12-16 weeks old
Carprofen Zoetis Services LLC, Parsippany, NJ, USA 026357 NOTE: this drug is added during weight drop only if stereotactic electrode implantation will be performed on the same day
Chlorhexidine antiseptic Pharmacy
Dental cement and solvent kit Stoelting Co., USA 51459
Drill Foredom HP4-917
Drill bit Meisinger USA, LLC, USA HM1-005-HP 0.5 mm, Round, 1/4, Steel
Dry sterilizer Cellpoint Scientific, USA Germinator 500
EEG System 1 Biopac Systems, CA, USA
EEG System 2 Pinnacle Technology Inc., KS, USA
Ethanol ≥70% VWR, USA 71001-652 KOPTEC USP, Biotechnology Grade (140 Proof)
Eye ointment Pro Labs Ltd, USA Puralube Vet Ointment Sterile Ocular Lubricant available in general online stores and pharmacies
Fluriso liquid for inhalation anesthesia MWI Veterinary Supply Co., USA 502017
Hair removal product Church & Dwight Co., Inc., USA Nair cream
Isoflurane MWI Veterinary Supply Co., USA 502017
Povidone-iodine surgical solution Purdue Products, USA 004677 Betadine
Rimadyl/Carprofen Zoetis Services LLC, Parsippany, NJ, USA 026357
Solder Harware store
Soldering iron Weller, USA WP35 ST7 tip, 0.8mm
Stainless steel disc Custom made
Sterile cotton swabs
Sterile gauze pads Fisher Scientific, USA 22362178
Sterile poly-lined absorbent towels pads Cardinal Health, USA 3520
Tissue adhesive 3M Animal Care Products, USA 1469SB

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Christensen, J., et al. Long-term risk of epilepsy after traumatic brain injury in children and young adults: a population-based cohort study. Lancet. 373 (9669), 1105-1110 (2009).
  2. Lowenstein, D. H. Epilepsy after head injury: an overview. Epilepsia. 50, Suppl 2 4-9 (2009).
  3. Ferguson, P. L., et al. A population-based study of risk of epilepsy after hospitalization for traumatic brain injury. Epilepsia. 51 (5), 891-898 (2010).
  4. Abou-Abbass, H., et al. Epidemiology and clinical characteristics of traumatic brain injury in Lebanon: A systematic review. Medicine (Baltimore). 95 (47), 5342 (2016).
  5. Management of Concussion/mTBI Working Group. VA/DoD Clinical Practice Guideline for Management of Concussion/Mild Traumatic Brain Injury. The Journal of Rehabilitation Research and Development. 46 (6), 1-68 (2009).
  6. Piccenna, L., Shears, G., O'Brien, T. J. Management of post-traumatic epilepsy: An evidence review over the last 5 years and future directions. Epilepsia Open. 2 (2), 123-144 (2017).
  7. Loscher, W., Brandt, C. Prevention or modification of epileptogenesis after brain insults: experimental approaches and translational research. Pharmacological Reviews. 62 (4), 668-700 (2010).
  8. Ostergard, T., Sweet, J., Kusyk, D., Herring, E., Miller, J. Animal models of post-traumatic epilepsy. Journal of Neuroscience Methods. 272, 50-55 (2016).
  9. Shandra, O., et al. Repetitive Diffuse Mild Traumatic Brain Injury Causes an Atypical Astrocyte Response and Spontaneous Recurrent Seizures. Journal of Neuroscience. 39 (10), 1944-1963 (2019).
  10. Foda, M. A., Marmarou, A. A new model of diffuse brain injury in rats. Part II: Morphological characterization. Journal of Neurosurgery. 80 (2), 301-313 (1994).
  11. Marmarou, A., et al. A new model of diffuse brain injury in rats. Part I: Pathophysiology and biomechanics. Journal of Neurosurgery. 80 (2), 291-300 (1994).
  12. Paxinos, G., Keith, B. J., Franklin, M. The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , Elsevier Science. (2007).
  13. Shandra, O., Robel, S. Imaging and Manipulating Astrocyte Function In Vivo in the Context of CNS Injury. Methods in Molecular Biology. 1938, 233-246 (2019).
  14. Pitkanen, A., Immonen, R. Epilepsy related to traumatic brain injury. Neurotherapeutics. 11 (2), 286-296 (2014).
  15. Kharatishvili, I., Nissinen, J. P., McIntosh, T. K., Pitkanen, A. A model of posttraumatic epilepsy induced by lateral fluid-percussion brain injury in rats. Neuroscience. 140 (2), 685-697 (2006).
  16. Pitkanen, A., Bolkvadze, T., Immonen, R. Anti-epileptogenesis in rodent post-traumatic epilepsy models. Neuroscience Letters. 497 (3), 163-171 (2011).
  17. Gades, N. M., Danneman, P. J., Wixson, S. K., Tolley, E. A. The magnitude and duration of the analgesic effect of morphine, butorphanol, and buprenorphine in rats and mice. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 39 (2), 8-13 (2000).

Tags

התנהגות סוגיה 156 TBI אפילפסיה התקפים astrogliosis EEG מתון TBI זעזוע מוח מפוזר TBI אפילפסיה פוסט טראומטית
גרימת אפילפסיה פוסט טראומטית במודל עכבר של פגיעה במוח החוזר ומפוזר טראומטי
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Shandra, O., Robel, S. Inducing… More

Shandra, O., Robel, S. Inducing Post-Traumatic Epilepsy in a Mouse Model of Repetitive Diffuse Traumatic Brain Injury. J. Vis. Exp. (156), e60360, doi:10.3791/60360 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter