Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Koroner Anjiyoplasti Sonrası Kardiyovasküler Prognozda Koroner Progenitor Hücreleri ve Çözünür Biyobelirteçler

doi: 10.3791/60504 Published: January 28, 2020

Summary

Koroner anjiyoplasti sonrası kardiyovasküler prognozu etkileyen majör advers kardiyovasküler olayların gelişimi koroner hasar ve vasküler onarım ın boyutundan etkilenir. Yeni koroner hücresel ve çözünür biyobelirteçlerin kullanımı, vasküler hasar ve onarım reaktif, MACE ve prognoz gelişimini tahmin etmek için yararlıdır.

Abstract

Majör advers kardiyovasküler olaylar (MACE) koroner iskemik yaralanmaya bağlı koroner anjiyoplasti geçiren hastaların kardiyovasküler prognozunu olumsuz etkiler. Koroner hasarın boyutu ve vasküler onarım mekanizmaları MACE'lerin gelecekteki gelişimini etkileyen faktörlerdir. Plak özellikleri ve koroner arter kompleksi gibi içsel vasküler özellikler MACE'ler için prognostik bilgi göstermiştir. Ancak, intrakoroner sirkülasyon biyobelirteçlerinin kullanımı, koroner hasar ve onarımı içeren dinamik mekanizmaları daha yakından yansıttığı için MAC'lerin erken teşhisi ve prognozu için uygun bir yöntem olarak öne sürülmemiştir. Anjiyoplasti sırasında koroner sirkülasyon biyobelirteçlerinin belirlenmesi, mononükleer progenitor hücrelerinin alt popülasyonlarının sayısı (MpCs) yanı sıra inflamasyon yansıtan çözünür moleküllerin konsantrasyonu gibi, hücre yapışması, ve onarım, sağlar gelecekteki gelişmelerin değerlendirilmesi ve MACE'lerin prognozu 6 ay sonrası koroner anjiyoplasti. Bu yöntem, çEL'lerin tahmini ve hastaların risk tabakalaşması için uygulanabilecek kardiyovasküler prognoz üzerindeki etkisi ile ilgili periferik kan dolaşımı biyobelirteçlerinden daha iyi performans ve çevirisel yapısı ile vurgulanmıştır. anjiyoplasti geçiren koroner arter hastalığı ile.

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Koroner anjiyoplasti ve stent, koroner arter hastalığı (CAD) olan hastalar için bir kurtarma prosedürünü temsil eder. Ancak kardiyovasküler ölüm, miyokard infarktüsü, koroner restenoz ve anjin veya dekompanse kalp yetmezliği atakları da dahil olmak üzere majör advers kardiyovasküler olaylar (MACE) koroner girişimden aylar sonra ortaya çıkabilir ve bu da hastaneye planlanmamış ziyaretlere yol açabilir. MAC'ler dünya çapında yaygındır ve morbi-mortaliteleri1'dir.

Koroner iskemik yaralanma erken vasküler yanıt ve reparative mekanizmaları onların farklılaşma yeteneği ve / veya anjiyo-reparative potansiyeli nedeniyle MPC'lerin mobilizasyonu içeren yanı sıra hücreler arası yapv molekülleri (ICAM), matris metalloproteinases (MDP) ve reaktif oksijen türleri gibi çözünür moleküllerin üretimi, hücre adezyonu yansıtan, doku remodeling, ve okside okside edici. Plak özellikleri ve koroner arter karmaşıklığı gibi içsel vasküler özellikler MACE'leri tahmin etmek için kullanılmış olsa da, bazı çalışmalar koroner endotel'de meydana gelen yaralanma ve onarım mekanizmalarına bağlı biyobelirteçlerin koroner anjiyoplasti2,3,4,5'egönderilen CAD'li hastalarda kardiyovasküler olayların erken teşhisi ve prognozu için çok yararlı olabileceğini ileri sürmüştür.

CAD yaralanma ve onarım altında yatan mekanizmaları anlamak sürekli ilgi intrakoroner sirkülasyon biyobelirteçleri çalışmaya araştırmacılar motive etti, koroner örnekleme daha yakından vasküler hasar yansıtır çünkü ve onarım6. Ancak, insan çalışmalarında koroner biyobelirteçlerin karakterizasyonu kıt olmuştur7,8,9. Bu nedenle, bu çalışmanın amacı koroner sirkülasyon MpC'ler ve çözünür moleküllerin miktarını belirlemek için bir yöntem tanımlamak için, hem vasküler yaralanma ve onarım yansıtan, ve bu biyobelirteçler MACE ve koroner anjiyoplasti uygulanan CAD hastalarının klinik prognoz ile ilişkili olup olmadığını göstermek için. Bu yöntem damar hasarına en yakın yerleri örnekleme ile elde edilen vasküler ilgili, sirkülasyon mpc'leri ve çözünür moleküllerin kullanımına dayanmaktadır. Ayrıca alt ekstremite iskemi, inme, vaskülit, ventromboz ve vasküler yaralanma ve onarım içeren diğer yaralanmalar için klinik çalışmalar için yararlı olabilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Bu protokol, insan araştırmaları etik komitesinin kurumsal yönergelerini karşılamaktadır.

1. Koroner Anjiyografi, Ultrason ve Kan Örneği

  1. Koroner girişimden önce temel klinik ve demografik bilgi isteyin. Bireyin verilerini toplayın: yaş, cinsiyet, mevcut sigara durumu, vücut kitle indeksi (VKİ), yüksek tansiyon, dislipidemi, diabetes mellitus, ilaçlar, ve mevcut koroner anjiyografi endikasyonu.
  2. Radyal bir yaklaşım kullanarak kalp kateterizasyonu ile koroner anjiyografi yapın. Bu işlem uzman kardiyologlar tarafından hemodinamik odasında floroskopi kılavuzu altında yapılmalıdır.
    NOT: Değerli gemileri tanımlayın. Bu çalışmada değerli damarlar 1.5 mm'den büyük kesitli arterler ve %50'den fazla lümen darlığı olarak tanımlanmıştır.
  3. İntravasküler ultrason kateterini ilgi bölgesine ilerletin ve görüntüleri kaydedin. En küçük ışık alanını bulmak ve ölçmek için uygun yazılımı kullanın.
  4. Plak en yakın yerden 10 mL kan toplamak için bir koroner kateter kullanın.
  5. Hasta taburcu olduktan sonra, çalışma bitiş noktalarını takip etmek için periyodik tıbbi değerlendirmeler planlayın. Telefon lateması mümkün değilse veya doktor ziyareti 2 aydan uzun bir süre gecikirse, çalışmanın bitiş noktalarını doğrulamak için yetkili bir kişi (önceden tasarlanmış) isteyin.
    NOT: Aşağıdaki macelerden herhangi birini düşünün: 1) kardiyovasküler ölüm, 2) yeni miyokard enfarktüsü, 3) 24 saat içinde planlanmamış bir tıbbi ziyaret isteyen kararsız anjina, 4) koroner anjiyografi ile gösterildiği gibi stent restenozis, 5) dekompanse ataklar klinik dikkat gerektiren kalp yetmezliği.

2. Sirkülasyon MPC'lerinin Belirlenmesi (Şekil 2)

  1. Toplama dan 1 saat içinde kan süreci. Toplanan kanın 6 mL'sini 15 mL konik bir tüpe aktarın ve 1x fosfat tamponlu salin (PBS), pH = 7,4 ile 1:1 (v/v) seyreltin.
  2. Üç test tüpüne 2 mL yoğunluk gradyan ortamı ekleyin. Dikkatle yoğunluk gradyan orta içeren her test tüpü içine seyreltilmiş kan üç eşit hacimli aliquots aktarın.
    NOT: Yoğunluk gradyan orta ve seyreltilmiş kanın toplam hacmi test tüpü maksimal kapasitesinin dörtte üçünü geçmemelidir.
  3. Santrifüj 1.800 x g, 4 °C için 30 dk. Katmanlar arasındaki arayüzdeki bandı yeni bir tüpe aktarın. 1.800 x g,6 dk için 4 °C'de 2 mL PBS ve santrifüj ekleyin. Pelet MPC'leri içerecektir.
  4. Peleti birkaç kez yıkayın. Önceki çözeltiyi aspire edin ve taze PBS'de hücre peletini nazikçe yeniden askıya alın. Sonraki yıkıntılar için, santrifüj 1.800 x g, 4 °C 2 dk. İşlemi 6x tekrarlayın.
  5. PBS 1 mL hücre pelet resuspend. Hücre süspansiyonunun 20 μL'sini %0,4 trypan mavisi ile karıştırın, seyreltilmiş 1:1 (v/v). Bir hemositometre bir damla uygulayın ve bir ışık mikroskobu altında lekesiz hücreleri saymak.
  6. MPCs tayini devam edin. Etiket 5 mL akış sitometri tüpleri ve tüp başına 1 x 106 hücre dışarı aliquot. Karşılık gelen isotip uyumlu kontrol antikorlarını hazırlayın. Santrifüj 1.800 x g, 4 °C 6 dakika için ve supernatant atın.
  7. 1x PBS (pH = 7.4), 2 mM ethylenediamamintetraasetik asit (EDTA) ve %0.05 büyükbaş serum albumin (BSA) içeren bir antikor kuluçka çözeltisinin 100 μL'lik bir kısmını seyreltilmiş primer antikor ekleyin. 10 s için resuspend ve 4 °C'de 20 dakika kuluçka, ışık korumalı. Protokol bu adımda PBS'de %4 paraformaldehitteki lenfositlerin sabitlenmesi ve 4 °C'de 24 saate kadar numunelerin depolanması ile duraklatılabilir.
    NOT: Bu protokolde kullanılan primer antikorların son konsantrasyonları CD45 1:50, CD34 1:20, KDR 1:50, CD184 1:20, CD133 1:50 idi.
  8. Santrifüj 1.800 x g, 4 °C 2 dk ve supernatant atın. 1x PBS 'nin 500 μL'sinde (pH = 7.4), 2 mM EDTA'da yeniden askıya alın.
  9. Akış sitometri analizini yapın. Arka plan boyama kurmak için isotype uyumlu kontrol antikorları kullanın. Daha sonra, seçerek fsc / SSC arsa yayılmış lenfositler, artık granülositler dışlamaya çalışırken, hücresel enkaz, ve diğer parçacıklar, genellikle alt bulunan, arsa sol ayarı. Bu dağılım %100 olarak kabul edilir.
  10. Ortak immünoffenotip CD45+ ve CD34+ile hücrelerin yüksek sayıda içeren bir kapı kullanın. Çift pozitif immünofenotipleri için, daha önce CD45+, CD34+tanımlayan bir kapı kdr (VEGFR-2)+ ,CD133+veya CD184+eklenmesi ile kullanın. MPC alt popülasyonlarını belirli hücre yüzey ibelirteçlerine göre tanımlayın. Geçitli olayların yüzdesi olarak bildirin.
  11. MPC'lerin ana alt popülasyonlarını tanımlayın. Bu çalışmada ana immünfenotipleri CD45+CD34+CD133+, CD45+CD34 + CD45+CD184+, CD45+CD184+CD433+CD184+, CD45+CD34+KDR+, CD45+CD34 + CD34 + KDR+CD133+ve CD45+CD34+KDR+CD14.
    NOT: Kullanılan hücre yüzeyi belirteçleri CD45 (lenfositler), CD34 (endotel ve/veya vasküler hücreler), KDR (VEGFR-2, endotel hücrelerinin membran belirteci), CD133 (endotel progenitor hücreleri) ve CD184 (hematopoetik kök hücreler ve endotel hücreleri) idi.

3. Plazmada Çözünen Biyobelirteçlerin Belirlenmesi

  1. SICAM-1 ve MMP-9 konsantrasyonlarını belirlemek için enzime bağlı immünosorbent ttiki (ELISA) kullanın(Şekil 3, üst sıra).
    1. 3.000 x gkan örneklerini santrifüj, oda sıcaklığında 5 dk ve plazma toplamak.
    2. Standartları, numune tüplerini ve kontrol tüplerini etiketleyin. ELISA kitinde bulunan yıkama tamponu ile 2 kat yıkayarak, önceden kaplanmış kuyuları analiz tabağındaki önceden kaplanmış kuyuları dengeleyin.
    3. Standartları, numuneleri ve kontrolleri kuyulara aktarın. 90 dk için 37 °C'de mühür ve kuluçka.
      NOT: Kuyuların tamamen kurumasına izin vermeyin.
    4. İçeriği atın ve biotin algılama antikor ekleyin. 37 °C'de 60 dk.'da mühürleyin ve kuluçkaya yatırın.
    5. İçeriği atın ve 3x yıkayın. Plak ve inkübate sırayla streptavidin çalışma çözeltisi ile 37 °C'de 37 °C'de, ışık la korunan. Kuluçkalar arasında 3x yıkayın. Renk geliştiğinde, durdurma çözümlerini ekleyin ve bir mikroplaka ELISA okuyucuda optik yoğunluk emiciliğini okuyun.
  2. Tümör nekroz faktör alfa (TNFα) ve interlökin 1 beta (IL-1β) konsantrasyonu belirlemek için bir immüno-manyetik multiksing testi kullanın(Şekil 3, alt satır).
    1. Standartları, numune tüplerini ve kontrol tüplerini etiketleyin.
    2. 30 s. Için manyetik boncuk şişeleri girdap uygun büyüklükte tüpler için boncuk süspansiyon aktarın, ve sonra çoklama test plakası kuyulara. Periyodik girdap boncukların yağışını önler.
    3. El manyetik plakayı güvenli bir şekilde takın. Boncuklar her kuyunun altında birikmesi için 2 dakika bekleyin ve hızlı bir şekilde bir lavabo veya atık konteyner üzerinde, hem el manyetik plaka yıkayıcılık ve plaka montaj ters. Kuyuların içindeki boncukları korumak için elde tutulan manyetik plakayı yıkama yıkamayı unutmayın.
    4. Her kuyuya 150 μL yıkama tamponu ekleyin ve boncukların alt tabakada birikmesine izin vermek için 30 s bekleyin. 3.2.3 adımdaki gibi içindekileri atın. Ardından, 25 μL evrensel test arabelleği (kitte sağlanan) ve ardından 25 μL hazırlanmış standartlar, numuneler ve kontroller ekleyin.
    5. Plakayı kapatın ve oda sıcaklığında en az 60 dakika kuluçka, ışık korumalı, sürekli 500 rpm sallayarak. Alternatif olarak, mümkünse 500 rpm sürekli sallayarak, 4 °C, ışık korumalı bir gecede kuluçka.
    6. 150 μL yıkama tamponu ekleyerek 2kat yıkayın ve 30 s bekleyin. Bekleyin 2 dakika ve bir lavabo veya atık konteyner üzerinde ters.
    7. 25 μL algılama antikor karışımı ile sırayla kuluçkaya yatırın ve ardından oda sıcaklığında 30 dakika boyunca 25 μL streptavidin-PE çözeltisi, kapalı ve ışık korumalı ve 500 rpm'de sürekli titreme ile. 3.2.6 adımda açıklandığı gibi kuluçkalar arasında 2x yıkayın.
    8. Okumaları alın. 120 μL okuma arabelleği ekleyin. Plakayı kapatın ve oda sıcaklığında 5 dakika kuluçkaya yatın, ışıkla korunun, sürekli 500 rpm'de sallayın. Okumayı çoklayıcı bir test okuyucusunda çalıştırın. Okuma parametrelerini her analyte göre ayarlayın.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Koroner anjiyografi yapılan 52 hastadan koroner, venöz sinüs ve periferik kan toplandı ve hipertansiyon ve dislipidemi prevalansı yüksek tiyatuvar ı gösterdi. Klinik takipte 11 (%21.1) MAC'ler koroner anjiyografiden 6 ay sonra meydana geldi: ölüm (n = 1), hastaneye devam gerektiren anjina (n = 6), miyokard enfarktüsü (n = 2) ve/veya kalp yetmezliği bulgusu (n = 4).

Çoğu MpC'nin temel koroner konsantrasyonu, MPC alt popülasyonlarında CD34+CD133+ ve CD45+CD34+CD133+CD133 +CD184 + olarak daha büyük bir azalma ile MAC'ler(Şekil 4)gelişen hastalarda önemli ölçüde daha düşüktü. Aynı şekilde, MACE'ler geliştiren hastalarda sICAM-1 koroner miktarlarda ve daha düşük MMP-9 'da taban çizgisi artmıştır(Tablo 1).

Koroner MPC'ler (alt popülasyonlar CD45+CD34+CD133+ ve CD45+CD34+CD133+CD184+) ve sICAM-1 (ortanca değerleri ile iki yönlü) MACE'siz sağkalım için prognostik yeteneği gösterdiler (Şekil 5).

Koroner kan tayini ile ilgili çok az bilgi olduğu için, farklı koşullar altında çözünür biyobelirteçlerin dinamiklerini daha da karakterize ettik. Tümör nekroz faktörü alfa (TNFα) ekspresyonu, intravasküler ultrason kullanarak aynı koroner arterdeki farklı lümen alanlarının karşılaştırılmasına dayalı olarak ölçüm zamanına (pre- veya anjiyoplasti) ve koroner örneklemenin yerine göre varyasyonlar göstermiştir(Şekil 6).

Figure 1
Şekil 1: Koroner anjiyografi ve kan toplama. Görüntü, hemodinamik odasında floroskopi kılavuzu altında yapılan radyal bir yaklaşım la kalp kateterizasyonu gösterir. Kardiyoloji uzmanları anjiyografi sırasında koroner damarları değerlendirir ve balon anjiyoplastisinden hemen önce kalp kateteri ile ateroma plağı ve/veya sinüs kanına en yakın yerden koroner kan toplar. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 2
Şekil 2: Kan örneği hazırlanması ve aksit sitometri ile MpCt tayini. (A) Kan santrifüjünden sonra yoğunluk gradyanı (mavi ok = lenfosit bandı). (B) Lenfosit fazının toplanması. (C) 1x PBS ile yıkıyor. (D) Santrifüj. (E) Test tüpünün alt kısmında pelet oluşumu. (F) Neubauer hücre süspansiyon yükü. (G) Işık mikroskobu kullanılarak lenfosit hücre sayısı. (H) Hücre alt popülasyonlarının akış sitometrisi ile belirlenmesi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 3
Şekil 3: Kanda çözünen aracıları belirlemek için immünoassays. Üst sıra: Enzime bağlı immünosorbent tsay (ELISA). Resim, harita örneklerinden (not defteri) alınan bilgilerin, örnek hazırlama, antikor kuluçka ve yıkar sonra okumaları başlatmak için yazılıma nasıl aktarıldığını gösterir. Ayrıca, standart kuyularda (plakadaki sol sütunlar) veya test örneklerinde (plakadaki sağ sütunlar) sarı renk gelişimini gösterir. Alt sıra: İmmüno-manyetik çoklama tetkik. Örnek hazırlanmasından, manyetik boncuk-antikor kuluçka ve yıkar sonra, örnek bilgileri uygun immüno-manyetik çoklama test sistemi okuyucu yazılımına aktarıldı ve ekranda tipik bir standart eğri gösterilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 4
Şekil 4: Koroner dolaşımmononükleer progenitor hücreleri (MPCs). Bu rakam, temel %MPC alt popülasyonlarını gösterir. (A) Akış sitometrisinden temsili okumalar. (B) %MPC alt popülasyonlarının akış sitometrisi ile ölçülmesi, MACE'lerin sunumuna göre çizilir (*) = p < 0.05 ile anlamlı fark. Bu rakam Suárez-Cuenca ve ark.10değiştirilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 5
Şekil 5: Koroner dolaşım hücreli (MpC), çözünür biyobelirteçler ve prognoz. Bu rakam, akış sitometrisi ve (B) ELISA tarafından belirlenen sICAM-1 plazma konsantrasyonu ile belirlenen (A) %MPCs alt popülasyonlarının temel koroner kan miktarlarını göstermektedir, her ikisi de 6 aylık takip sırasında MAC'lerin sunumuna göre çizilmiştir. Mavi çizgi, her biyomarker için daha düşük %MPC'ler veya daha yüksek sICAM-1 gibi risk değerlerine sahip bireylerin sayısını gösterir. sICAM-1 = çözünür hücreler arası adezyon molekülü 1. Bu rakam Suárez-Cuenca, ve ark.10değiştirilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 6
Şekil 6: Koroner sirkülasyonda çözünen biyobelirteçlerin değişkenliğini belirleyen durumlar. Bu rakam, tümör nekroz faktör alfasının intrakoroner konsantrasyonunda (TNFα), ölçüm zamanına göre(A: Pre-anjiyoplasti veya B: Anjiyoplasti sonrası) yanı sıra koroner örneklemenin yerini (intravasküler ultrason ile ölçülen 3,5 mm'lik bir kesip iki koroner lümen çapı arasında karşılaştırma) gösterir. (*) = p < 0.05 pre-ve. anjiyoplasti ile elde edilen biyobelirteç farkı ve koroner lümen çapları ≤3,5 mm vs. >3.5 mm.'lik yerlerde örnekleme farkı. Bu rakam Suárez-Cuenca ve ark.11'dendeğiştirilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Table 1
Tablo 1: Bazal kanda çözünen biyobelirteçler. (*) p < 0.05 fark biyobelirteçleri koroner kan ve periferik dolaşım gösterir. (**) p < 0,05'i gösterir, MAC'ler vs MAC'ler olmadan; tek kuyruklu bağımsız T-testi. Kısaltmalar: sICAM-1 = çözünür hücreler arası adezyon molekülü 1; IL-1β = interlökin 1 beta; MMP-9 = matriks metalloproteinaz 9.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Etkilenen koroner arterden kan toplanması zor olabilir. Bazen koroner artere zar zor ulaşılabiliyor. Bu durumda venöz sinüsten örnekleme alternatif olabilir. Koroner arter ile venöz sinüste dolaşan biyobelirteçleri karşılaştıran doğrulama testleri yaptık ve anlamlı bir farklılık olmadı. Ancak, dolaşan biyobelirteçlerin performansı sadece koroner örnekleme için doğrulandı. Bu nedenle venöz sinüsten elde edilen biyobelirteçlerin performansı araştırılacak.

Kan toplanmasından sonra ilk 3 saat içinde MPC'ler için numuneleri işlemek en iyisidir. Bu nedenle kardiyoloji ekibi ile laboratuvar araştırmacıları arasında iyi bir iletişim kurulmalıdır. MpC'lerin izolasyonu sırasında, MpC'lerin peletini yıkarken yoğunluk gradyan hazırlığı sırasında kan örnekleri yatırılırken dikkatli olunmalıdır. Son olarak, kolaylık sağlamak için, hücreleri her zaman bir sitometri tüpüne aktarır, birincil antikorları ekler, hücreleri bir gecede 4 °C'de sabitler ve saklar ve ertesi gün akış sitometrisini gerçekleştiririz. Dolaşan MpC'lerin biyomarker rolü ile ilgili olarak, önemli çabalar progenitor hücreleri arasında en klinik olarak yararlı immünfenotipleri standartlaştırmak için alınmıştır12, ancak çalışmanın bir sınırlama dolaşan progenitor hücrelerinin belirli alt popülasyonları tam CAD veya diğer vasküler hastalıklar içinde tüm klinik senaryolar için karakterize edilmemiştir gerçeği olabilir. Bu nedenle her çalışmada farklı sirkülasyon progenitor hücre alt popülasyonları araştırılmalıdır.

Çözünür belirteçlerin belirlenmesi sırasında ELISA ve çoklama tahlilleri için bazı genel öneriler çok kanallı bir pipet kullanılmasını, yan duvarlara dokunmadan her kuyunun altına çözeltiler yatırmayı ve tsay sırasında kuyular. Manyetik boncukların sürekli girdap ile çökmesini önlemek için, özellikle çoklama tetkikleri için plakadaki numune dağılımını her zaman kontrol edin. Ayrıca, kuyuların içindeki manyetik boncukları korumak için alt plakayı elde tutulan manyetik plakayı yıkayarak taktığından emin olun, aksi takdirde numuneler yıkıntılar sırasında kaybolur.

Biz koroner dolaşan MPCs bulundu, özellikle hematopoetik kökenli olanlar, yanı sıra sICAM-1 ve MMP-9, tahmin ve MACE prognoz için olağanüstü biyobelirteçleri vardı. Bu inflamatuar yanıt ve / veya vasküler hasar arabulucuları MPC seferberlik ve işe alım için homing sinyalleri uyarmak kavramı ile tutarlıdır, yerel dokuonarımıteşvik 4 . Buna göre, çeşitli ortamlarda bu biyobelirteçlerde varyasyonlar bulduk. Anjiyoplasti ve/veya koroner örneklemenin yeri ile ilgili değişiklikler, anjiyoplasti sırasında ateroma plağı üzerindeki etkisinin etkisi, plağın büyüklüğü ve plak içinde koroner akışa ayrılmış çözünür mediatorların salınımı ile açıklanabilir11. Artmış IL-1β sürekli plak ve klinik komplikasyonların gelişiminde yer almıştır13.

Bilgimiz için, bu prospektif koroner dolaşım MpC'ler ve vasküler yaralanma ve onarım prognostik biyobelirteçler olarak koroner anjiyoplasti gönderilen bir popülasyonda çözünen mediatörlerin rolünü değerlendiren ilk çalışmadır, dahil olmak üzere anjiyoplasti ile ilgili değişikliklerin karakterizasyonu, koroner örneklemenin yeri ve koroner ile periferik örneklemenin karşılaştırılması. Bu yöntemin koroner anjiyografi yapılan herhangi bir hastanede kolaylıkla kurulabileceğini düşünüyoruz. Ancak, bir sınırlama biz bir acil servis bölümünden yayımlanan kronik stabil anjina olan hastalarda ağırlıklı olarak bu metodolojiuygulanan olmasıdır.

CAD'de MAC'ler tahmini veya prognoz için kullanılan mevcut geleneksel yöntemler orta derecede tahmin yeteneğine sahiptir. CAD ve anjiyoplasti sonrası oluşan onarım ve rejenerasyondan sorumlu patofizyoloji mekanizmalarına dayanan yeni biyobelirteçlerin bulunmasına giderek artan bir ilgi olmuştur. Bu tür biyobelirteçler geleneksel yöntemlerle karşılaştırıldığında benzer veya daha iyi tahmin performansı göstermiştir3,4,5,14,15. Bu nedenle, koroner sirkülasyon MpC'lerinin ve çözünen arabulucuların MAC'ler için riski öngörmedeki rolünün gelecekteki prospektif çalışmalarda daha da inceleneceğini düşünüyoruz.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Acknowledgments

Yazarlar Kurumsal Program E015 desteğine teşekkür eder; ve Fondo Sektörel FOSSIS-CONACYT, SALUD-2014-1-233947.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
BSA Roche 10735086001 Bovine Serum Albumin (BSA) as a buffering agent, stabilizer, standard and for blending.
Calibration Beads Miltenyi Biotec / MACS #130-093-607 MACQuant calibration beads are supplied in aqueous solution containing 0.05% sodium azide. 3.5 ml for up to 100 tests
CD133/1 (AC133)-PE Milteny Biotec / MACS #130-080-801 Antibody conjugated to R-Phycoerythrin in PBS/EDTA buffer
CD184 (CXCR4)-PE-VIO770 Miltenyi Biotec / MACS #130-103-798 Monoclonal, Isotype recombinant human IgG1, conjugated
CD309 (VEGFR-2/KDR)-APC Miltenyi Biotec / MACS #130-093-601 Antibody conjugated to R-Phycoerythrin in PBS/EDTA buffer
CD34-FITC Miltenyi Biotec / MACS #130-081-001 The monoclonal antibody clone AC136 detecs a class III epitope of the CD34
CD45- VioBlue Miltenyi Biotec / MACS #130-092-880 Monoclonal CD45 Antibody, human conjugated
Conical Tubes Thermo SCIENTIFIC #339651 15ml conical centrifuge tubes
Cytometry Tubes FALCON Corning Brand #352052 5 mL Polystyrene Round-Bottom Tube. 12x75 style. Sterile.
EDTA BIO-RAD #161-0729 Heavy metals, (as Pb) <10ppm, Fe <0.01%, As <1ppm, Insolubles <0.005%
Improved Neubauer Without brand Without catalog number Hemocytometer for cell counting. (range 0.1000mm, 0.0025mm2)
K2 EDTA Blood Collection Tubes BD Vacutainer #367863 Lilac plastic vacutainer tube (K2E) 10.8mg, 6 mL.
Lymphoprep Stemcell Technologies 01-63-12-002-A Sterile and checked on the presence of endotoxins. Density: 1.077±0.001g/mL
Paraformaldehyde SIGMA-ALDRICH #SZBF0920V Fixation of biological samples, (powder, 95%)
Pipette Transfer 1,3mL CRM Globe PF1016, PF1015 The transfer pipette is a tool that facilitates liquid transfer with greater accuracy.
Test Tubes KIMBLE CHASE 45060 13100 Heat-resistant test tubes. SIZE/CAP 13 x 100 mm

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Cassar, A., Holmes, D. R. Jr, Rihal, C. S., Gersh, B. J. Chronic coronary artery disease: diagnosis and management. Mayo Clinic Proceedings. 84, (12), 1130-1146 (2009).
  2. Regueiro, A., et al. Mobilization of endothelial progenitor cells in acute cardiovascular events in the PROCELL study: time-course after acute myocardial infarction and stroke. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 80, 146-155 (2015).
  3. Sen, S., McDonald, S. P., Coates, P. T., Bonder, C. S. Endothelial progenitor cells: novel biomarker and promising cell therapy for cardiovascular disease. Clinical Science (Lond). 120, (7), 263-283 (2011).
  4. Samman Tahhan, A., et al. Progenitor Cells and Clinical Outcomes in Patients With Acute Coronary Syndromes. Circulation Research. 122, (11), 1565-1575 (2018).
  5. Tomulić, V., Gobić, D., Lulić, D., Židan, D., Zaputović, L. Soluble adhesion molecules in patients with acute coronary syndrome after percutaneous coronary intervention with drug-coated balloon, drug-eluting stent or bare metal stent. Medical Hypotheses. 95, 20-23 (2016).
  6. Jaumdally, R., Varma, C., Macfadyen, R. J., Lip, G. Y. Coronary sinus blood sampling: an insight into local cardiac pathophysiology and treatment? European Heart Journal. 28, (8), 929-940 (2007).
  7. Kremastinos, D. T., et al. Intracoronary cyclic-GMP and cyclic-AMP during percutaneous transluminal coronary angioplasty. International Journal of Cardiology. 53, (3), 227-232 (1996).
  8. Karube, N., et al. Measurement of cytokine levels by coronary sinus blood sampling during cardiac surgery with cardiopulmonary bypass. American Society for Artificial Internal Organs Journal. 42, (5), M787-M791 (1996).
  9. Truong, Q. A., et al. Coronary sinus biomarker sampling compared to peripheral venous blood for predicting outcomes in patients with severe heart failure undergoing cardiac resynchronization therapy: the BIOCRT study. Heart Rhythm. 11, (12), 2167-2175 (2014).
  10. Suárez-Cuenca, J. A., et al. Coronary circulating mononuclear progenitor cells and soluble biomarkers in the cardiovascular prognosis after coronary angioplasty. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 23, (7), 4844-4849 (2019).
  11. Suárez-Cuenca, J. A., et al. Relation of Coronary Artery Lumen with Baseline, Post-angioplasty Coronary Circulating Pro-Inflammatory Cytokines in Patients with Coronary Artery Disease. Angiology Open Access. 7, 01 (2019).
  12. Schmidt-Lucke, C., et al. Quantification of circulating endothelial progenitor cells using the modified ISHAGE protocol. PLoS One. 5, (1), e13790 (2010).
  13. Moyer, C. F., Sajuthi, D., Tulli, H., Williams, J. K. Synthesis of IL-1 alpha and IL-1 beta by arterial cells in atherosclerosis. American Journal of Pathology. 138, (4), 951-960 (1991).
  14. Morales-Portano, J. D., et al. Echocardiographic measurements of epicardial adipose tissue and comparative ability to predict adverse cardiovascular outcomes in patients with coronary artery disease. International Journal of Cardiovascular Imaging. 34, (9), 1429-1437 (2018).
  15. Huang, X., et al. Endothelial progenitor cells correlated with oxidative stress after mild traumatic brain injury. Yonsei Medical Journal. 58, (5), 1012-1017 (2017).
Koroner Anjiyoplasti Sonrası Kardiyovasküler Prognozda Koroner Progenitor Hücreleri ve Çözünür Biyobelirteçler
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Suárez-Cuenca, J. A., Robledo-Nolasco, R., Alcántara-Meléndez, M. A., Díaz-Hernandez, L. J., Vera-Gómez, E., Hernández-Patricio, A., Sánchez-Díaz, K. S., Gutiérrez-Buendía, J. A., Contreras-Ramos, A., Ruíz-Hernández, A. S., Pérez-Cabeza de Vaca, R., Mondragón-Terán, P. Coronary Progenitor Cells and Soluble Biomarkers in Cardiovascular Prognosis after Coronary Angioplasty. J. Vis. Exp. (155), e60504, doi:10.3791/60504 (2020).More

Suárez-Cuenca, J. A., Robledo-Nolasco, R., Alcántara-Meléndez, M. A., Díaz-Hernandez, L. J., Vera-Gómez, E., Hernández-Patricio, A., Sánchez-Díaz, K. S., Gutiérrez-Buendía, J. A., Contreras-Ramos, A., Ruíz-Hernández, A. S., Pérez-Cabeza de Vaca, R., Mondragón-Terán, P. Coronary Progenitor Cells and Soluble Biomarkers in Cardiovascular Prognosis after Coronary Angioplasty. J. Vis. Exp. (155), e60504, doi:10.3791/60504 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter