Summary
Gram-negatif bakteriler iki mekansal olarak ayrılmış membran üretirler. Dış zar bir periplazm ve peptidoglikan tabakası ile iç zardan bölümlenir. Bu mikropların çift iki katmanlı izole yeteneği fizyolojisi ve patogenezini anlamak için kritik olmuştur.
Abstract
Bu yöntem, Gram-negatif bakterilerin zarfını total, iç ve dış membran (OM) fraksiyonlarına bölme ile çalışır ve iki katmanlı saflığı değerlendirmek için tahlillerle sonuçlandırır. OM iç membran ile karşılaştırıldığında artan bir genel yoğunluğu vardır, büyük ölçüde lipooligosaccharides varlığı nedeniyle (LOS) ve lipopolisakkaritler (LPS) dış broşür içinde. LOS ve LPS molekülleri benzer bir yapıya sahip amphipatif glikolipidler, bir lipid-A disakkarolipid ve çekirdek-oligosakkarit ikame oluşur. Ancak, sadece LPS molekülleri O-polisakkarit veya O-antijen olarak bilinen üçüncü bir alt birim ile dekore edilmiştir. Mevcut glikolipidlerin türü ve miktarı bir organizmanın OM yoğunluğunu etkileyecektir. Bu nedenle, çeşitli glikolipid içeriğine sahip bakterilerin zarlarının da tekniğimizle benzer şekilde izole edilip edilmeyeceğini test ettik. LPS üreten organizmalar için, Salmonella enterica serovar Typhimurium ve Escherichia coli, membranlar kolayca izole edildi ve LPS O-antijen moiety iki katmanlı bölümleme etkilemedi. Acinetobacter baumannii, O-antijen eksikliği LPS moleküllerine benzer kütleye sahip LOS molekülleri üretir; ancak, bu mikropların membranlar başlangıçta ayrılmış olamazdı. A. baumannii om'unun Enterobacteriaceae'den daha az yoğun olduğunu, bu nedenle sakaroz gradyanının ayarlandığını ve membranların izole edildiğini gerekçe gösterdik. Bu nedenle teknik uyarlanabilir ve diğer organizmalarile kullanılmak üzere değiştirilebilir.
Introduction
Gram-negatif bakteriler periplazmik alan ve peptidoglikan hücre duvarı1ile ayrılan iki membran üretirler. İç membran (IM) sitosol kapsar ve fosfolipidlerin simetrik bir çift katmanlı olduğunu. Peptidoglycan turgor basıncına karşı korur ve bir hücre şekli ile bakteri sağlar, ve dış membranbağlı (OM) lipoproteinler tarafından2,3. OM periplazmayı çevreler ve ağırlıklı olarak asimetriktir. İç broşür fosfolipidler oluşur ve dış broşür lipooligosaccharides olarak bilinen glikolipidler oluşur (LOS) veya lipopolysaccharides (LPS)4,5. Dış broşürdeki LOS/LPS moleküllerinin lipid asimetrisi ve biyokimyası, bakteriyi kendi ortamındaki tehlikelere karşı koruyan hücre yüzeyine bariyer özellikleri verir6,7.
LPS molekülleri üç bileşenden oluşur: lipid A disakkarolipid, çekirdek oligosakkarit, ve O-polisakkarit veya O-antijen. Lipid A, çoğalan bir asilate disakkarolipidtir. Core-oligosakkaritler kaba LPS veya R-LPS olarak bilinen 10-15 şekerden oluşur. Çekirdek iç bölgeye ayrılmıştır, oluşan 2-keto-3-deoksi-D-manno-octulosonic asit (kdo) ve bir veya daha fazla heptozkoz kalıntısı, ve genellikle heksoslar oluşan bir dış bölge (glikoz veya galaktoz) ve heptozlar, veya asetama şekerler5. Dış çekirdek bölgesi bileşenleri ve yapısında iç çekirdekten daha değişkendir. Salmonella spp., sadece bir çekirdek yapısı açıklanmıştır; ancak, Escherichia coli beş farklı çekirdek yapıları (K-12, R1, R2, R3 ve R4)8belirlenmiştir. Bu işlemde kullandığımız E. coli K-12 DH5α, r-LPS9üretimine neden olan bir mutasyon taşır. R-LPS molekülleri O-antijen moiety eksikliği ve LOS molekülleri benzer bir molekül ağırlığına sahip.
R-LPS'ye O-antijen eklenmesi bu molekülü yumuşak LPS veya S-LPS'ye dönüştürür. O-antijenler kısa 3-4 karbonhidrat alt birimlerinden üretilmiştir ve10zincir uzunlukları değişen birden fazla yöntem oluşur. Bazı LPS üreten bakteriler, Salmonella enterica serovar Typhimurium gibi (S. Typhimurium), kendi yüzeyinde LPS moleküllerinin trimodal dağılımını görüntülemek10,11. Çok uzun zincir O-antijenler yüz alt birim içerebilir ve yüz kilodalton üzerinde ağırlığında. O-antijenler antibiyotiklere direnmek, bakteriyofajlar tarafından predation kaçınmak için gerekli olan bakteri yüzey özellikleri sağlar, ve hastalığa neden.
Campylobactertürleri , Bordetella, Acinetobacter, Haemophilus, Neisseria ve diğerleri kendi yüzeyinde LPS molekülleri yerine LOS molekülleri oluşturmak12. LOS molekülleri lipid A ve çekirdek oligosakkaritler oluşur ama O-antijen eksikliği. Gram-negatif bakterilerin Bu tür yüzey özellikleri12değiştirmek için ek şeker ler ve şeker kombinasyonları ile çekirdek oligosakkaritler değiştirmek. Hem LOS hem de LPS üreten mikroplar lipid A ve katyonik moieties7ile çekirdek molekülleri fosfatlar türemiş . Bu eklemeler fosfoetanolamin içerir, galaktosamin ve aminoarabinose ikameler, anyonik yüzey yükü nötralize ederek işlev ve bu nedenle katyonik antimikrobiyal peptidler karşı koruma. Gram-negatif bakteriler de şekerdeğişken olmayan stoiyometrik ikame ile çekirdek oligosakkarit yapısını değiştirmek, ya da ekstra kdo molekülleri, ve lipid-A disaccharolipidler üzerinde asil zincirlerin sayısını değiştirmek7.
Yeteneği Gram-negatif bakterilerin OM im izole etmek için antimikrobiyal direnç ve hastalık patogenezi hücre zarfının rolünü anlamak için etkili olmuştur11,12. Bu yaklaşımın türevleri, OM için protein, fosfolipid ve glikolipid bileşenlerinin montaj, bakım ve yeniden biçimlendirilmesi mekanizmalarını saptamak için kullanılmıştır.
Laboratuvarımız, çeşitli Gram-negatif türlerde protein aracılı lipid regülasyonu ve lipid fonksiyonunu incelemek için rutin olarak bakteriyel lipidomik analizler yapar. Protokolde kullanılan hacimler ince tabaka kromatografisi ve sıvı kromatografi tandem kütle spektrometresi13,14ile radyoetiketli olmayan fosfolipidleri analiz etmek için bu işlemin rutin kullanımını yansıtır.
Protokol, Gram-negatif bakterilerin soğutulmuş süspansiyonunun yüksek ozroz çözeltisine maruz kalmaları ve OM'yi altta yatan peptidoglikan tabakasından ayrıştırmak için lisozyme ekleyerek başlar (Şekil 1)12. EDTA daha sonra lizozim penetrasyon kolaylaştırmak için eklenir, divalent katyon sekestrasyon komşu LOS / LPS molekülleri arasındaki lateral elektrostatik köprü etkileşimleri bozar beri15. Bizimkinin uyarlandığı orijinal protokol, plazma zarı ve sitosoldan oluşan gram-negatif bakteri hücresi formu olan sferoplastların oluşumunu gerektiriyordu, ancak peptidoglikan tabakası ve OM'den yoksun. Spheroplastların uyarlanmış yöntemle üretilmeleri mümkündür; ancak, teknik, başarı için kendi oluşumuna güvenmez veya niyet etmez. Bunun yerine, lysozyme-EDTA tedavi edilen bakteriler santrifüj ile hızla hasat edilir ve basınçlı lysis önce daha az konsantrasyon bir sakaroz çözeltisi yeniden askıya alınır. Spheroplastlar oluşturarak serbest bırakılmış olabilecek OM'ler teorik olarak tedavi edilen hücrelerin süpernatants hasat edilmelidir, ancak bu yaklaşım burada ayrıntılı değildir. Sonuçta, tedavi hücreleri membran ayırma prosedürü16verimliliğini ve tekrarlanabilirliğini artırır konvansiyonel homojenizasyon ve lysis, tabi tutulur.
Lysis'ten sonra, toplam membranlar ultrasantrifüj ile toplanır ve IM'ler ve OM'leri fraksiyonetmek için sürekli sakaroz yoğunluğu gradyan uygulamasına uygulanır. Klasik yaklaşım en az beş farklı sakaroz çözeltisi11,,12oluşur daha sürekli bir degrade kullanır. Protokolümüzdeki kesintili degrade üç sakaroz çözeltisi oluşur ve iki kat iki farklı kesirler17bölümlür. Gram-negatif bakterilerin OM'leri içindeki LOS ve LPS molekülleri zarfı üst kahverengi düşük yoğunluklu BIR IM fraksiyonuna ve daha düşük beyaz yüksek yoğunluklu OM fraksiyonuna bölmeye iter(Şekil 1 ve Şekil 2).
Acinetobacter baumannii kendi OM LOS molekülleri üretmek ve ayırmak zor bir hücre zarfı dik önemli multidrug dirençli insan patojenler vardır18,19. Son çalışmalar, burada sunduğumuz protokolün bir türemiş bu organizmaların iki katmanlı20bölünmesi için kullanılabilir düşündürmektedir. Bu nedenle protokolümüzü A. baumannii 17978'de test ettik. Başlangıçta, prosedür yetersizdi. Ancak orta yoğunluk çözeltisinin sakaroz konsantrasyonu ve büyük ölçüde geliştirilmiş ayırma(Şekil 2)olarak değiştirildi. A. baumannii,yabani tip S. için ayrışmayı doğrulamak için NADH dehidrogenaz tayini ve LOS/LPS ekstraksiyon ve algılama prosedürü kullanılmıştır. Tiphimurium ve iki O-antijen eksikliği enterobakteriyel genotip; yani, galE-mutant S. Tiphimurium ve laboratuvar suşu, E. coli DH5α (Şekil 3 ve Şekil 4).
Bu çalışmanın amacı, Gram-negatif bakterilerin zarlarını tekrarlı bir şekilde izole etmek için düzenli bir yaklaşım sağlamaktır. Protokol bu mikroplar için membran ilişkili moleküllerin birçok türde çalışma için kullanılabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Membran Ekstraksiyonu için Genel Reaktifler ve Ortam Hazırlığı
- Bakteriyel büyüme ortamı: Tamamen temizlenmiş ve otoklavlı 2 L şişede 1 L et suyu ortamıhazırlayın ve sterilize edin.
- Genel resuspension arabelleği (1 M Tris Tampon pH 7.5; 50 mL): 6.05 g Tris tabanını H2O'nun 30 mL'sinde çözün.2
- Divalent katyon şelasyon çözeltisinin ana stoku (0.5 M EDTA pH 8; 100 mL): 18.6 g disodyum etilen tetraasetat·2H2O ila 80 mL H2O. Stir ve NaOH ile pH'ı 8.0'a ayarlayın. Ultra saf H2O ile son hacmi 100 mL'ye ayarlayın.
NOT: Çözeltinin pH'ı NaOH ilavesi ile ~8.0'a ayarlanana kadar EDTA'nın disodyum tuzu erimez. - Ozmotik tampon A (0.5 M sakaroz, 10 mM Tris pH 7.5; 1 L): 171.15 g sakaroz ağırlığında ve 1 L silindire aktarın. 1M Tris pH 7.5 10 mL ekleyin. Ultra saf H2O. 4 °C'de 1 L'lik son bir hacme ayarlayın.
- İzozym (10 mg/mL; 5 mL): 50 mg (tavuk yumurtası-beyazı) izozim ağırlığında ve 4 °C'de 5 mL ultrasaf H2O. Deposunda çözünür.
- Seyreltilmiş divalent katyon şelasyon çözeltisi (1,5 mM EDTA; 500 mL): 1,5 mL 0,5 M EDTA (Adım 1,3) ila 497,5 mL ultrasaf H2O. 4 °C'de saklayın.
- Ozmotik tampon B (0.2 M sakaroz, 10 mM Tris pH 7.5; 2 L): 136.8 g sakaroz ağırlığında ve 2 L silindire aktarın. 1 M Tris pH 7.5 20 mL ekleyin. Ultra saf H2O. 4 °C'de depolayarak son hacmi 2 L'ye ayarlayın.
- Nükleaz ko-faktörü (1 M MgCl2; 10 mL): 2,03 g MgCl2·6H2O 8 mL ultrasaf H2O. Hacmi 10 mL'ye ayarlayın. Oda sıcaklığında saklayın.
- RNase ve DNase enzimleri de dahil olmak üzere nükleaz çözeltisi kokteyli: Bkz. Malzeme Tablosu. -20 °C'de saklayın.
- Proteaz inhibitörü kokteyl: Malzemeler Tablosubakınız. 4 °C'de saklayın.
- Düşük yoğunluklu izopiknik sakaroz gradyan çözeltisi (%20 w/v sakaroz, 1 mM EDTA, 1 mM Tris pH 7.5 Çözelti; 100 mL): 20 g sakaroz tartın ve 200 mL silindire aktarın. 100 μL 1 M Tris Tampon pH 7.5 ve 200 μL 0.5 M EDTA pH 8 ekleyin. Oda sıcaklığında ultra saf H2O. Depoile son hacmi 100 mL'ye ayarlayın.
- Orta yoğunluklu izopiknik sakaroz gradyan çözeltisi (%53 w/v sakaroz, 1 mM EDTA, 1mM Tris pH 7.5 Çözelti; 100 mL): 53 g sakaroz tartın ve 200 mL'lik silindire aktarın. 100 μL 1 M Tris Tampon pH 7.5 ve 200 μL 0.5 M EDTA pH 8 ekleyin. Oda sıcaklığında ultra saf H2O. Depoile son hacmi 100 mL'ye ayarlayın.
NOT: Sakaroz yüksek yüzdesi nedeniyle doğruluk sağlamak için mezun silindir bu çözüm hazırlayın. Bir manyetik karıştırma çubuğu ekleyin ve sakaroz tamamen çözelti içinde çözülmüş olana kadar karıştırın. Bu işlem birkaç saat sürebilir. - Yüksek yoğunluklu izopiknik sakaroz gradyan çözeltisi (%73 w/v sakaroz, 1 mM EDTA, 1 mM Tris pH 7.5 Çözüm; 100 mL): 73 g sakaroz tartın ve 200 mL'lik silindire aktarın. 100 μL 1 M Tris Tampon pH 7.5 ve 200 μL 0.5 M EDTA pH 8 ekleyin. Oda sıcaklığında ultra saf H2O. Depoile son hacmi 100 mL'ye ayarlayın.
NOT: Sakaroz yüksek yüzdesi nedeniyle doğruluk sağlamak için mezun silindir bu çözüm hazırlayın. Bir manyetik karıştırma çubuğu ekleyin ve sakaroz tamamen eriyene kadar karıştırın. Bu işlem birkaç saat sürebilir. - İzole-membran depolama arabelleği (10 mM Tris Tampon pH 7.5; 1 L): 1 M Tris Tampon pH 7.5 ila 1 L şişeye 1 mL ekleyin ve son hacmi ultrasaf H2O ile 1 L'ye ayarlayın.
- β-Nikotinamid adenin dinükleotid (NADH) (10 mg/mL solüsyon): Ultrasaf H2O.'da 10 mg NADH'yi yeniden askıya alın. -20 °C'de saklayın.
- Fenol çözeltisi 10 mM Tris HCl, pH 8.0, 1 mM EDTA ile dengelenmiştir: Bkz. Malzeme Tablosu. Çözeltiyi 4 °C'de saklayın.
- Lipopolisakkarit jel işeyz kiti: Bkz. Malzeme Tablosu.
- Bradford reaktifi: Bkz. Malzeme Tablosu.
NOT: Tutarlı sonuçlar elde etmek için tüm çözümler ve ortamlar tahkikatın icrası haftasında hazırlanmalıdır.
2. Membran Ekstraksiyonu için Bakterilerin Hazırlanması
- Taze agar plakaları üzerine dondurulmuş gliserol stokları gelen bakterileri streak. Koloniler geliştikten sonra plakaları 4 °C'de saklayın. Tek bir koloniyi, bir gecede istenilen bakteri suyu ve kültürü yle dolu 5 mL'lik bir tüpe dönüştürün.
- İstenilen optik yoğunluk elde edilene kadar bakteri, bir gecede bakteri kültürünü tercih edilen et suyu ve kültürün 1 L'sine geri seyreltin.
NOT: Tek bir bakteri kolonisinin 1 L'lik et suyu media'sına aşılanması, büyüme fenotiplerini bastırmaya meyilli mutant genotipler için tavsiye edilir, ancak bazı Gram-negatif bakteriler diğerlerinden daha yavaş büyür. Tek koloni aşısı ile yeterli kültür yoğunluğuelde etmek mümkün değilse, bir gecede bir kültürü 1 L'ye seyreltmek büyümeyi senkronize etmek için bir stratejidir. Bakteriyel-membran bileşimi kültürün büyüme evresine bağlı olarak değişir (logaritmik vs sabit faz)13. Zamanın bir fonksiyonu olarak bakteri kültürleri için optik yoğunluk değişimini ölçen büyüme eğrileri, kültür yoğunluğunu büyüme evresi ile ilişkilendirmek için tüm suşlarla birlikte yapılmalıdır. - Suyu kültürlerini içeren şişeleri buzüzerine ayarlayın. 600 nm (OD600)optik yoğunluğunu okuyun ve 6.0 ve 8.0 x 1011 bakteri kolonisi oluşturan birimleri (cfu) arasında eşdeğer kültür hacmini hesaplayın. S için. Tiphimurium, bu 0.6-0.8 arasında bir OD600 kültür 1 L karşılık gelir, bir OD600 1.0 kabaca 1.0x109 cfu/mL eşit olduğundan. Bu hacmi bir santrifüj tüpüne ekleyin ve kalan kültürlerin kullanılacak olana kadar buzda kalmasını sağlayın.
- 10 dk için sabit açıyüksek hızlı santrifüj 7.000-10.000 x g 4 °C'de santrifüj ile bakteri pelet.
NOT: Ön soğutma ve düşük sıcaklıkta santrifüjler korumak. Tüm işlem sırasında buz üzerinde örnekleri koruyun. - Decant ve dikkatle supernatant atın.
NOT: Membran fraksiyonları hemen çıkarılmayacaksa pelet dondurularak yanıp sönebilir ve/veya -80 °C'de saklanabilir. Ancak, hücrelerin hasat edildiği gün plazmoliz ile doğrudan devam edilmesi tavsiye edilir ve özellikle enterobakteriyel olmayan türler için tavsiye edilir.
3. Dış Membran ve Plazmolyz ayrışması
- Daha önce -80 °C'de depolanmışsa hücre peletlerini buz üzerinde eritin ve prosedürün geri kalanı için numuneleri buz üzerinde tutun. Santrifüj tüpü içindeki her hücre peletini 12,5 mL tampon A. Hücrelerin süspansiyonuna manyetik bir karıştırma çubuğu ekleyin.
- Her hücre resuspension'ına 180 μL 10 mg/mL likit (son konsantrasyon 144 g/mL) ekleyin. 2 dakika karıştırArak buz üzerinde örnekleri tutun.
- Her hücre nin süspansiyonuna 12,5 mM EDTA çözeltisi ekleyin ve 7 dakika daha buz üzerinde karıştırmaya devam edin.
- Süspansiyonu 50 mL konik bir tüpe ve santrifüje 9.000-11.000 x g'de 10 dakika 4 °C'de deler.
- Süpernatantları biyolojik tehlike atık kabına atın ve peletleri buzüzerinde tutun.
- Hücre peletine 25 mL arabellek B ekleyin.
- 55 μL 1 M MgCl2, 1 μL RNase/DNase nükleaz reaktifi (homojenizasyon dan önce plazmolyz geçiren bakterilerle ilişkili viskozite problemlerini önlemek için) ve hücre peletinin üstünde bulunan tampon B'nin hacmine 1 μL proteaz inhibitörü kokteyli ekleyin
- Tampon B karışımındaki peleti yeniden askıya alın. Homojen bir çözelti gözlemlene kadar boru ve girdap.
NOT: Bu protokolün 4. Resuspended hücreleri görünüm ve tutarlılık gibi viskoz kek hamuru olmalıdır. - 15 s. 15 s. Süspansiyonları buz üzerinde koruyun ve Adım 4'e geçin.
4. Basınçlı Homojenizasyon ve Lysis
NOT: Lysis için çeşitli yöntemler kullanılabilir. Sonication ısı üretimi nedeniyle ideal değildir. Ozmotik lysis elde edilebilir ama genellikle verimsizdir. Bu nedenle yüksek basınçlı sıvı ları öneririz. Yüksek basınçlı lysis çeşitli aletler kullanılarak elde edilebilir. Fransız Basını veya Emusliflex gibi homojenizasyon makinelerini öneriyoruz. Yüksek ozmolar sakaroz çözeltilerine yanıtı değişen birçok Gram-negatif bakteri türüile çalışıyoruz. Yüksek basınçlı homojenizasyon adımı verimliliği, tekrarlanabilirliği ve verimi artırır.
- 4 °C'de Fransız Press hücresini önceden soğutun veya homogenizer makinesinden metal bobini buzüzerine yerleştirin.
- Numuneyi Fransız basınç hücresine veya homogenizer örnekli silindire dökün ve hücreyi istenilen homojenizasyon basıncı altında getirin (10.000 psi, homogenizer kullanırken Fransız Press'i veya 20.000 psi kullanırken yeterli olmalıdır).
- Bir Fransız Press kullanıyorsanız basıncı korurken çıkış akış hızını saniyede yaklaşık bir damlaya ayarlayın.
- Örnekleri buzda tutarken hücre lisatını 50 mL konik tüpler halinde toplayın.
- 4.2-4.4 adımlarını tekrarlayın ve genellikle numunenin saydamlığında kademeli bir artışla belirtilir.
NOT: Numune haznesi yıkanmalı ve numuneler arasında Tampon B ile dengelenmelidir. - Lysed hücreleri buzüzerinde tutun.
5. Toplam Membran Fraksiyonu
- 4 °C'de 10 dakika boyunca 6.169 x g'de lized bakteri örneklerini 4 °C'de santrifüj edin ve kalan bozulmamış hücre materyalini peletleyin. (örn. lizisedilmemiş bakteri hücreleri).
- Ultracentrifugation için bir polikarbonat şişe içine homojenize membranlar içeren supernatant, kalan kısmını dağıtın.
DİkKAT: Gerekirse, hücre örnekleri tampon B ile seyreltilerek dengelenebilir. - Ultracentrifuge hücre lysates 184,500 x g için en az 1 saat, 4 °C. Bu adım membranların kalitesini etkilemeden bir gecede yapılabilir.
- Ultracentrifuge tüpünde kalan supernatant mevcut atın ve buz üzerinde membran pelet korumak(Şekil 1).
- Düşük yoğunluklu izopiknik-sakaroz gradyan çözeltisinin 1 mL'lik membran peletlerini cam-dounce homogenizer kullanarak yeniden askıya alın. Numuneyi homojen bir 1,5 mL mikrosantrifüj tüpe aktarmak ve buzüzerinde tutmak için cam pasteur pipetkullanın.
NOT: Sadece total membran bileşimi analizi isteniyorsa, 1 mL izole membran depolama tamponu için 1 mL düşük yoğunluklu izopiknik-sakaroz gradyan çözeltisi yerine geçilir. Adım 5.5 sadece total-bakteriyel membran örnekleri isteniyorsa izolasyon bitiş noktasıdır. Numuneleri -20 °C'de, daha fazla aşağı analiz gerekli olana kadar saklayın.
6. Çift Membranları Ayırmak Için Yoğunluk Gradyan Ultracentrifugation
- Sallanan kova rotoru ve ultracentrifuge için belirtilen uygun sayıda 13 mL polipropilen veya ultra açık üstü tüplertop.
-
Tüpü hafifçe eğilmiş bir pozisyonda tutun ve sakaroz degradesini yavaş yavaş yüksek yoğunluktan daha düşük yoğunluğa aşağıdaki sırayla ekleyerek hazırlayın:
2 mL %73 w/v sakaroz,1 mM EDTA, 1 mM Tris pH 7,5
4 mL %53 w/v sakaroz, 1 mM EDTA, 1 mM Tris pH 7,5- Daha sonra% 20 w / v sakaroz çözeltisi (adım 5.5) resuspended olmuştur toplam membran fraksiyonu (1 mL) ekleyin. Altında yatan sakaroz çözeltisi ile membran fraksiyonu karıştırma kaçının. Bölümler bu katmanların her biri arasında görünür olmalıdır.
- Son olarak, tüpü düşük yoğunluklu isopycnic-sucrose gradyan çözeltisi (yaklaşık 6 mL) ile doldurun. Polipropilen ve ultra net üstü tüpler tüp desteği için mümkün olduğunca dolu (tüp üstten 2 veya 3 mm) doldurulmalıdır.
- Acinetobacter baumannii 17978 için ayarlama
- Farklı bakteri örnekleri ile kullanmak için ayarlanmış bir sakaroz gradyanı uyarlayın. A. baumanniiiçin , aşağıdaki sakaroz gradyanı membranların daha eksiksiz ayrılmasını sağladı (Şekil 2).
2 mL %73 w/v sakaroz, 1 mM EDTA, 1 mM Tris pH 7,5
4 mL %45 w/v sakaroz, 1 mM EDTA, 1 mM Tris pH 7,5 - Daha sonra% 20 w / v sakaroz çözeltisi (adım 5.5) resuspended olmuştur toplam membran fraksiyonu (1 mL) ekleyin. Altında yatan sakaroz çözeltisi ile membran fraksiyonu karıştırma kaçının. Bölümler bu katmanların her biri arasında görünür olmalıdır.
- Son olarak, tüpü düşük yoğunluklu isopycnic-sucrose gradyan çözeltisi (yaklaşık 6 mL) ile doldurun. Polipropilen ve ultra net üstü tüpler tüp desteği için mümkün olduğunca dolu (tüp üstten 2 veya 3 mm) doldurulmalıdır.
- Farklı bakteri örnekleri ile kullanmak için ayarlanmış bir sakaroz gradyanı uyarlayın. A. baumanniiiçin , aşağıdaki sakaroz gradyanı membranların daha eksiksiz ayrılmasını sağladı (Şekil 2).
- Ultracentrifuge örnekleri bir gecede 288.000 x g ve 4 °C'de sallanan kova rotoru kullanarak.
NOT: Önceki adımlarda kullanılan hacimler için 16 saat ile 23 saat arasında santrifüj sürelerini öneririz. - P1000 pipet ucunun ucunu noktadan yaklaşık 5 mm kesin. Pipetkullanarak üst kahverengi IM tabakasını çıkarın. ULTRAsantrifüj için IM fraksiyonunu polikarbonat şişeye aktarın.
- Alt beyaz OM'nin IM fraksiyonuyla kirlenmediğinden emin olmak için sakaroz çözeltisinin yaklaşık 2 mL'sini %53-73 arabiriminin üzerinde bırakın. OM fraksiyonu için 6.4.Figure 1
NOT: Membranlar da bir iğne kullanarak alt santrifüj tüpleri delerek ve kesirler damla gibi membranlar toplayarak toplanabilir. - Ultracentrifuge tüpün kalan boşluğunu izole membran depolama tamponuyla doldurun ve ters çevirme veya pipetleme ile karıştırın. Örnekleri buzda sakla.
- 1 saat ve 4 °C için 184.500 x g ultracentrifugation tarafından şimdi yıkanmış ve izole membranlar toplayın.
- Supernatant atın ve dounce-homojenizasyon ile membranlar resuspend. 500-1000 μL depolama arabelleği ekleyin. 2 mL mikrosantrifüj tüplerinde numune toplayın.
- Bakteri zarı örneklerini -20 °C'de saklayın.
7. İki Katmanlı ayrımın onaylanması
NOT: İki katmanlı eksik ayırma teknik hata veya bazı türlerin benzersiz hücre zarf bileşimi nedeniyle oluşabilir. Ayırmayı onaylamak için, iki katmanlar arasındaki çapraz kontaminasyon derecesini ölçmek için iki bağımsız tahlil kullanmanızı tavsiye ederiz. İlk titre, sadece IM'de bulunan NADH dehidrogenazEnzimasının enzimatik aktivitesini algılar. İkinci titre, ağırlıklı olarak OM'de bulunan LOS veya LPS'nin varlığını algılar.
-
OSM'lerin IM'lerden izole olduğunu doğrulama
- Bradford protein idraki kullanarak her izole membran fraksiyonundaki protein konsantrasyonu ölçün.
- Boş bir 2 mL mikrosantrifüj tüpe 50 ila 500 μg proteine karşılık gelen numune hacmini ekleyin. Konsantrasyon türe bağlı olarak değişir, ancak 50 μg genellikle Enterobacteriaceae için yeterlidir. Toplam 990 μL hacim elde etmek için 10 mM Tris-tampon uygun hacmi ekleyin. İçeriği spektrofotometri için bir cuvette aktarın.
- Numuneye 10 mg/mL NADH çözeltisinin 10 μL'sini ekleyin ve ilk emiciliği 340 nm'de ölçün.
- 5 dakika boyunca her 30 s absorbansı ölçmeye devam edin.
- Verileri derle ve emicilik (y ekseni) değişimini, her membran fraksiyonu için zaman (x ekseni) değişimi grafiğiçizin(Şekil 3).
-
IM'lerin OM'lerden izole olduğunu onaylama
- Boş bir 2 mL mikrosantrifüj tüpe 50 ila 500 μg proteine karşılık gelen numune hacmini ekleyin. Konsantrasyon bakteri türlerine bağlı olarak değişir, ancak 50 μg genellikle Enterobacteriaceae için yeterlidir. 100 μL'lik son hacmi fosfat tamponlu tuzlu ile doldurun, bundan böyle sulu faz olarak anılacaktır.
- Sulu faza 5 μL Proteinaz K (stok 800 U/mL) ekleyin ve bir gecede 59 °C'de kuluçkaya yatırın.
- 68 °C'de 10 dakika boyunca 10 mL Tris doymuş Fenol'ü ısıtın.
- Proteinaz K ile tedavi edilen sulu faz örneklerini aşağı doğru çevirin ve sulu faz, girdap ve 10 dakika boyunca 68 °C'de inküble 1:1 oranında "sıcak" Tris-doymuş Fenol ekleyin.
- Şimdi süt-beyaz örnekleri 68 °C'den bir buz-su banyosuna aktarın ve 10 dakika kuluçkaya yatırın.
- Numuneleri 4 °C'de 10 dk için 2.100 x g olarak santrifüj edin.
- Üst sulu fazı yeni bir tüpe aktarın ve numune hemen kullanılmaması durumunda tüpü -20 °C'de saklayın.
- Örnekleri SDS yükleme tamponunda seyreltin ve %4-20 Tris-glisin gradyan jelin kuyularını yükleyin.
- Elektrofor 45 dk veya boya-ön jel altında olana kadar.
- Üreticinin talimatlarına uyarak LPS boyama kitini kullanarak jeli lekeleyin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Bu teknik, Gram-negatif bakteriler için IM'leri ve OM'leri izole etmek için etkili bir araç sağlar. Tüm yordamın anahat gösterilmiştir (Şekil 1). Genel olarak, 1 L'de 0.6-0.8'lik bir OD600'e kültürlerin normalleştirilmesi veya 6.0 ile 8.0 x 1011 bakteri hücresi arasında hasat edilmesi, sonraki ayırma için uygun miktarda membran materyalinin toplanmasını sağlayacaktır.
Bakterilerin lysing ve lysate ultracentrifuging üzerine, yapışkan kahverengi toplam membran pelet ultracentrifuge tüp altında görünür olacaktır. Membranı sürekli sakaroz yoğunluk gradyanı üzerinde kazıdıktan, homojenleştirerek ve ultrasantrifüj ettikten sonra, IM ve OM tasvir edildiği gibi ayrılmalıdır (Şekil 2). %20/53/73%(w/v) sakaroz yoğunlukgradientinin A. baumanniizarfını bölmek için yetersiz olduğunu, %20/%45/73 w/v degradesinin yeterli olduğunu bulduk(Şekil 2).45%
Her membran fraksiyonunun kalitesini ve saflığını değerlendirmek için çeşitli analitik yöntemler kullanılabilir. NADH-dehidrogenaz NAD'a NADH oksidasyonunu katalize eden bir iç membran enzimidir(Şekil 3). Hücresel lokalizasyonu göz önüne alındığında, IM'ler ve OM'ler arasındaki çapraz kontaminasyonu belirlemek için kullanılabilir. Her iki molekülün emici spektrumlarına göre, NAD ve NADH her biri 260 nm'de pik emiciliğe sahipken, sadece NADH 340 nm'de maksimum emiciliğe sahiptir. Böylece, 340 nm'de absorbansta bir azalma NADH'nin OKSIdasyonunun ve dolayısıyla numunedeki enzimin varlığının göstergesi olacaktır. Membranlar düzgün bir şekilde ayrılırsa, bu absorbance değişikliği yalnızca IM örneklerinde meydana gelmelidir (Şekil 3). OM numunelerindeki absorbanstaki azalma, IM malzemeleriyle çapraz kontaminasyonu gösterir. A. baumanniiiçin, membran miktarının üç katı veya protein eşdeğerlerinin 150 g'ı, enterobakteriyel suşlar için ölçülene benzer NADH dehidrogenaz aktivitesi düzeylerini göstermek için gerekliydi (Şekil 3). Bu nedenle, NADH oksidaz düzeyleria A. baumannii için daha düşük olması veya enzimin spesifik aktivitesinin azalması mümkündür.
OM'nin dış broşürü esas olarak LOS veya LPS moleküllerinden oluşur. Bu nedenle, LPS/LOS'un IM ve OM örneklerinden sonraki elektroforez ile çıkarılması ve LPS boyama ile görselleştirme, bu yapıların OM'deki zenginleştirmelerini IM fraksiyonlarına göre yansıtacaktır. LOS ve LPS moleküllerinin sentezi sitoplazmada başlar ve IM5yüzeyinde tamamlanır. LOS ve LPS yapıları tek yönlü olarak OM'ye taşınır ve dış broşüre yerleştirilir. Biyosentez IM'ye öncül eki içerdiğinden, IM fraksiyonları için her zaman soluk bir bantlama paterni gözlenir. Ancak, OM fraksiyonundaki moleküllerin yoğunluğu, LOS/LPS yapılarının zenginleşmesi nedeniyle IM fraksiyonundan çok daha fazladır (Şekil 4). Elde edilen membran miktarı süspansiyondaki protein konsantrasyonu belirlenerek ölçüldü. A. baumannii'den, enterik organizmalardan LPS moleküllerini tespit etmek için gerekli miktara kıyasla LOS'yi çıkarmak ve saptamak için membran miktarının altı katı gerekliydi(Şekil 4). Bunun bu organizmalar için OM'deki LOS moleküllerinin protein düzeylerine göre azaldığını yansıttığını, ancak bu hipotezi ayrıntılı olarak takip etmemiş olmamızı neden ediyoruz.
Şekil 1: Bu yöntem makalesinde açıklanan Gram-negatif bakteriyel membran izolasyon prosedürünü gösteren şema. Gösterilen bakteri hücrelerinin toplanması ve toplam izole için kullanılan prosedürdür, iç (IM), ve dış membranlar (OM). Yaklaşım IM iki katmanlı yoğunluğu ile karşılaştırıldığında bu mikroplar için OM iki katmanlı artan yoğunluğu dayanır. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: Membranları standart ve modifiye sakaroz yoğunluk gradyanları kullanılarak izole edilen farklı Gram-negatif türlerin temsil sonuçları bu makalede açıklanmıştır. (A) yabani tip Salmonella enterica serovar Typhimurium 14028s için isopycnic santrifüj sonrası kesintili sakaroz yoğunluk gradyanların Görüntüleri, (B) galE-mutant S. O-antijenlerden yoksun LPS molekülleri üreten Tiphimurium LT2 ve (C) Escherichia coli K-12 DH5α, aynı zamanda O-antijenleri olmayan LPS molekülleri üretir. İç zar (IM) dış zardan (OM) ayrılır ve kahverengi bir malzeme olarak %20-53 sakaroz arabirimine lokalize olur. Beyaz OM katmanı, bu fraksiyonun daha yüksek yoğunluğu nedeniyle %53-73 sakaroz arabirimine lokalize olur. (D) Yabani tip Acinetobacter baumanii 17978'in toplam membranları %20/53/73% (w/v) sakaroz gradyanı kullanılarak ayrılmadı,(E)ancak %20/45/73% (w/v) sakarrosegradkullanarak ayırdı. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 3: Dış membran (OM) saflığını test etmek için NADH dehidrogenaz testi için temsili sonuçlar. Enzimin varlığı, NADH-dehidrogenaz, ayırma verimliliğini test etmek için iç (IM) ve OM örneklerinde test edildi. (A) NADH'nin NAD'ye oksidasyonu bakteriyel IM'de bulunan bir enzim tarafından katalize edilir. Reaksiyon substratı (NADH) 340 nm maksimum absorbans vardır; bu nedenle, bu dalga boyunda optik yoğunluğunda bir azalma örnekte enzimvarlığının göstergesidir. IM'ler ve OM'ler (B) yabani tip S için ölçüldü. S. Tiphimurium, (C) E. coli K-12 DH5α ve (D) galE-mutant S. Tiphimurium. Bu membranlar %20/53/73% w/v sakaroz izopiknik sakaroz yoğunluğu gradyanı kullanılarak izole edildi. A. baumanniiiçin membranlar %20/45/73% w/v sakaroz degradesi kullanılarak izole edilmiştir. Membranların saflığını test etmek için NADH testi enterobakteriyel organizmalar için (E) 50 μg ve A. baumanniiiçin toplam proteinlerin150g'ı kullanılarak yapılmıştır. (F) eğrisi, total proteine göre NADHEdehidrogenazın göreceli düzeylerinin A. baumannii için S'den daha az olduğunu öne sürdüğünden, daha yüksek bir protein konsantrasyonu(F)eklenmiştir. Tiphimurium ve E. coli. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 4: LPS ve LOS ekstraksiyon ve görselleştirme prosedürü için temsili sonuçlar iç membran (IM) saflık test etmek. Toplam protein50 μg karşılık membran örnek hacmi S IM ve dış membran (OM) LPS ayıklamak için kullanılmıştır. Tiphimurium ve E. coli DH5-alfa. A. baumannii zarlarından LPS çıkarmak için toplam proteinin 300 μg'sine karşılık gelen membran numunesinin hacmi kullanılmıştır. Hacimler endotoksinsiz su ile 100 μl'ye normalleştirildi ve Proteinaz K. LPS veya LOS ile tedavi edildi sıcak fenol ekstraksiyonu (1:1 su:fenol) ve 21 μl özleri % 4-20 gradyan poliakrilamid jel üzerine yüklendi ve PRO-Q Zümrüt 300 boyama ile im fraksiyonlarının OM malzemeleri ile çapraz kontaminasyonunu değerlendirmek için görüntülendi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu yöntem, bakteri fizyolojisi ve patogenezinde hücre zarfının rolünü anlamada araştırmacılara yardımcı olmaya devam edecektir. Sıralı ultracentrifugation adımları aşağıdaki saflaştırılmış toplam, iç ve OM fraksiyonu elde edilebilir. Bu membranlar, membran protein lokalizasyonu ve fonksiyonu, periplazma boyunca taşınması ve ticareti ve çeşitli çevre koşullarında bireysel iki katmanlı bileşimi ile ilgili hipotezleri test etmek için izole olarak test edilebilir. Los/ LPS ve OM proteinleri gibi bireysel OM bileşenlerinin patogeneze katılımını araştıran biyolojik çalışmalar, bu teknikle toplanan izole membran fraksiyonları kullanılarak hayvansal ve hücresel modellerde de yapılabilir.
Prosedürümüz Enterobacteriaceae, özellikle S ile kullanılmak üzere optimize edilmiştir. Değişken zincir uzunluğunda O-antijenler içeren LPS molekülleri üreten Tiphimurium. Bu protokol aynı zamanda O-antijenleri sentezleme yeteneğini kaybetmiş model bakteri, E. coli K-12 için de çalışır. Yabani tip ve O-antijen eksikliği S kullanarak. Typhimurium 14028s ve E. coli K-12 strain DH5α, biz bu mikroplar için membranlar ayırmak için yeteneği önemli ölçüde O-antijenlerin varlığı etkilenmiş olmadığını göstermektedir. Ancak, LOS üreten bakteri, A. baumannii 17978 zarf ayırmak için, biz iki katmanlı izole etmek için kesintili gradyan orta yoğunluklu sakaroz çözeltisi konsantrasyonunu azaltmak zorunda kaldı(Şekil 2). Özellikle, orta yoğunluklu çözeltinin konsantrasyonunun %53'ten %45'e kaydırılması, OM'nin uyarlanmış degradedeki %45-73 arabirimine bölünmesiiçin yeterliydi. A. baumanniiiçin %53-73 degrade kullanırken, OM materyalinin büyük bir kısmı genellikle %20-53 arabiriminde IM fraksiyonunun biraz altında gözlenmiştir(Şekil 2). Seyrek OM malzeme A. baumanniiiçin% 53-73 arayüzü mevcuttu. Bu sonuçlar% 20/53%/73 gradyan bu koşullar altında A. baumannii iki katmanlı ayırmak için yetersiz olduğunu ileri sürdü.
Özetle, çeşitli OM-glikolipid içeriği ve seviyesine sahip organizmaları yerleştirmek için yoğunluk gradyanında ayarlamalar yapılabilir ve yaklaşım diğer Gram-negatif bakteriler için uyarlanabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Çıkar çatışması bildirilmemiş.
Acknowledgments
Bu çalışma P20GM10344 ve R01AI139248 tarafından Z. D. Dalebroux'a verildi.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1 L Centrifuge bottles, PC/PPCO, super speed, with sealing cap, Nalgene | VWR | 525-0466 | |
| 1 L Pyrex Media Storage Bottle with High Temperature Cap | VWR | 10416-312 | |
| 2,000 mL Erlenmeyer Flask, Narrow Mouth | VWR | 10545-844 | |
| 4-20% mini PROTEAN Precast Protein Gels, 12 well | BIORAD | 4561095 | |
| 4x Laemmli Sample Buffer 10 mL | BIORAD | 1610747 | |
| 50 mL sterile polypropylene centrifuge tubes | VWR | 89049-174 | |
| 7 mL Dounce Tissue Homogenizer with Two Glass Pestles | VWR | 71000-518 | |
| 70 mL polycarbonate bottle assembly | Beckman Coulter Life Sciences | 355622 | |
| Agar Powder | VWR | A10752 | |
| B10P Benchtop pH Meter with pH Probe | VWR | 89231-664 | |
| Barnstead GenPure xCAD Plus UV/UF - TOC (bench version) | ThermoFisher Scientific | 50136146 | |
| Benzonase Nuclease | MilliporeSigma | 70746-3 | |
| EDTA disodium salt dihydrate 99.0-101.0%, crystals, ultrapure Bioreagent Molecular biology grade, J.T. Baker | VWR | 4040-01 | |
| EmulsiFlex-C3 | Avestin, Inc. | ||
| Fiberlite F13-14 x 50cy Fixed Angle Rotor | ThermoFisher Scientific | 75006526 | |
| Hydrochloric acid 6.0 N | VWR | BDH7204 | |
| IBI Scientific Orbital Platform Shaker | Fischer Scientific | 15-453-211 | |
| LB Broth Miller | VWR | 214906 | |
| Lysozyme, Egg White, Ultra Pure Grade | VWR | VWRV0063 | |
| Magnesium chloride hexahydrate | Sigma Aldrich | M2670 | |
| NADH | Sigma Aldrich | 10107735001 | |
| Optima XPN-80 - IVD | Beckman Coulter Life Sciences | A99839 | |
| Pharmco Products PURE ALCOHOL 200 PROOF GL 4/CS | Fischer Scientific | NC1624582 | |
| Phenol Solution, Equilibrated with 10 mM Tris HCl, pH 8.0, 1 mM EDTA, BioReagent, for molecular biology | Sigma - Millipore | P4557 | |
| Pierce Coomassie Plus (Bradford) Assay Kit | Thermofisher | 23238 | |
| Pro-Q emerald 300 Lipopolysaccharide Gel Stain Kit | Thermofisher | P20495 | |
| Proteacease -50, EDTA free | G Biosciences | 786-334 | |
| Proteinase K, Molecular Biology Grade | New England Biolabs | P8107S | |
| Sodium hydroxide ≥99.99% | VWR | AA45780-22 | |
| Sorval RC 6 Plus Centrifuge | ThermoFisher Scientific | 36-101-0816 | |
| Sucrose | MilliporeSigma | SX1075-3 | |
| SW 41 Ti Swinging-Bucket Rotor | Beckman Coulter Life Sciences | 331362 | |
| Tris(hydroxymethyl)aminomethane (TRIS, Trometamol) ≥99.9% (dried basis), ultrapure Bioreagent Molecular biology grade, J.T. Baker | VWR | JT4109-6 | |
| Type 45 Ti Fixed-Angle Titanium Rotor | Beckman Coulter Life Sciences | 339160 | |
| Ultra-Clear Tube ,14 x 89mm | Beckman Coulter Life Sciences | 344059 | |
| Vortex-Genie 2 | VWR | 102091-234 |
References
- Silhavy, T. J., Kahne, D., Walker, S. The bacterial cell envelope. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2, 000414 (2010).
- Egan, A. J., Vollmer, W. The physiology of bacterial cell division. Annals of the New York Academy of Sciences. 1277, 8-28 (2013).
- Pazos, M., Peters, K., Vollmer, W. Robust peptidoglycan growth by dynamic and variable multi-protein complexes. Current Opinion in Microbiology. 36, 55-61 (2017).
- Raetz, C. R. Enzymology, genetics, and regulation of membrane phospholipid synthesis in Escherichia coli. Clinical Microbiology Reviews. 42, 614-659 (1978).
- Whitfield, C., Trent, M. S. Biosynthesis and export of bacterial lipopolysaccharides. Annual Review of Biochemistry. 83, 99-128 (2014).
- Needham, B. D., Trent, M. S. Fortifying the barrier: the impact of lipid A remodelling on bacterial pathogenesis. Nature Reviews Microbiology. 11, 467-481 (2013).
- Simpson, B. W., Trent, M. S. Pushing the envelope: LPS modifications and their consequences. Nature Reviews Microbiology. 17, 403-416 (2019).
- Ebbensgaard, A., Mordhorst, H., Aarestrup, F. M., Hansen, E. B. The Role of Outer Membrane Proteins and Lipopolysaccharides for the Sensitivity of Escherichia coli to Antimicrobial Peptides. Frontiers in Microbiology. 9, 2153 (2018).
- Liu, D., Reeves, P. R. Escherichia coli K12 regains its O antigen. Microbiology. 140 (1), 49-57 (1994).
- Kalynych, S., Morona, R., Cygler, M. Progress in understanding the assembly process of bacterial O-antigen. FEMS Clinical Microbiology Reviews. 38, 1048-1065 (2014).
- Osborn, M. J., Gander, J. E., Parisi, E., Carson, J. Mechanism of assembly of the outer membrane of Salmonella typhimurium. Isolation and characterization of cytoplasmic and outer membrane. Journal of Biological Chemistry. 247, 3962-3972 (1972).
- Osborn, M. J., Munson, R. Separation of the inner (cytoplasmic) and outer membranes of Gram-negative bacteria. Methods in Enzymology. 31, 642-653 (1974).
- Cian, M. B., Giordano, N. P., Masilamani, R., Minor, K. E., Dalebroux, Z. D. Salmonella enterica serovar Typhimurium use PbgA/YejM to regulate lipopolysaccharide assembly during bacteremia. Infection and Immunity. , (2019).
- Masilamani, R., Cian, M. B., Dalebroux, Z. D. Salmonella Tol-Pal Reduces Outer Membrane Glycerophospholipid Levels for Envelope Homeostasis and Survival during Bacteremia. Infection and Immunity. 86, (2018).
- Nikaido, H. Outer Membrane of Salmonella-Typhimurium Transmembrane Diffusion of Some Hydrophobic Substances. Biochimica Et Biophysica Acta. 433, 118-132 (1976).
- Dalebroux, Z. D., Matamouros, S., Whittington, D., Bishop, R. E., Miller, S. I. PhoPQ regulates acidic glycerophospholipid content of the Salmonella Typhimurium outer membrane. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111, 1963-1968 (2014).
- Castanie-Cornet, M. P., Cam, K., Jacq, A. RcsF is an outer membrane lipoprotein involved in the RcsCDB phosphorelay signaling pathway in Escherichia coli. Journal of Bacteriology. 188, 4264-4270 (2006).
- Thorne, K. J., Thornley, M. J., Glauert, A. M. Chemical analysis of the outer membrane and other layers of the cell envelope of Acinetobacter sp. Journal of Bacteriology. 116, 410-417 (1973).
- Geisinger, E., Huo, W., Hernandez-Bird, J., Isberg, R. R. Acinetobacter baumannii: Envelope Determinants That Control Drug Resistance, Virulence, and Surface Variability. Annual Review of Microbiology. 73, 481-506 (2019).
- Kamischke, C., et al. The Acinetobacter baumannii Mla system and glycerophospholipid transport to the outer membrane. Elife. 8, (2019).
