Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

פיתוח של מודל פולשני, בסיוע לייזר של הקרנית הפסד של תא אנדותל

Published: April 24, 2020 doi: 10.3791/60542
* These authors contributed equally

Summary

כאן, אנו מציגים פרוטוקול כדי לנתק את תאי הקרניות של הקרנית (CEC) מהקרום של האישה (DM) באמצעות "YAG" (בלייזר) של ממברנה הvivo לשעבר של המחלה של keratopathy בולולס (BK).

Abstract

Nd: לייזרים YAG שימשו כדי לבצע ניתוח בעינית לא פולשנית, כגון capsulotomy במשך כמה עשורים עכשיו. האפקט המרחיק מסתמך על התמוטטות אופטית במוקד הלייזר. גלי הלם אקוסטי בועות הקצף נוצרות, גרימת קרע ברקמה. גודל בועה והגברה של הלחץ משתנים באמצעות אנרגיית הדופק ומיקומו של נקודת המוקד. במחקר זה, עיניים פורקלסי חזירי הוקמו מול מסחרית זמין Nd: YAG לייזר. משתנה אנרגיות הדופק, כמו גם עמדות שונות של נקודות מיקוד אחורי הקרנית נבדקו. נגעים וכתוצאה מכך הוערכו על ידי שני פוטון מיקרוסקופ ו היסטולוגיה כדי לקבוע את הפרמטרים הטובים ביותר עבור התנתקות בלעדית של תאים אנדותל הקרנית (CEC) עם נזק מינימלי השני. היתרונות של שיטה זו הם הצריבה המדויקת של CEC, מופחתת נזק סביבתי, ומעל לכל, טיפול ללא מגע.

Introduction

שקיפות הקרנית חיונית להעברת האור לרשתית ולפוטוטורטורים1. בהקשר זה, מצב יחסי של התייבשות הוא קריטי כדי לשמור על סיבי הקולגן בתוך משתית הקרנית מיושרים כראוי. הומאוסטזיס זה מתוחזק על ידי תאי הקרנית אנדותל (CEC) ממוקם על קרום האמת (DM)2. האנדותל היא שכבת הקרניות הפנימית ביותר. יש לו מכשול חשוב ותפקוד המשאבה, אשר חיונית עבור שקיפות הקרנית3. בניגוד האפיתל, האנדותל אינו מסוגל לחדש את העצמי4. לפיכך, כל נזק תאי שנגרם על-ידי מחלה או טראומה מגרה את התאים האנדותל הנותרים כדי להגדיל ולהגר, לכסות את הפגמים הנובעים ולשמור על פונקציונליות הקרנית5. עם זאת, אם צפיפות ה-CEC נופלת מתחת לסף קריטי, פירוק האנדותל מוביל לבצקת, וכתוצאה מכך ראייה מטושטשת וחוסר נוחות או כאב חמור אפילו4. למרות הזמינות של תרופות כדי להקל על הסימפטומים, כיום הטיפול הסופי היחיד במקרים אלה הוא השתלת הקרנית, אשר ניתן לבצע בצורה של השתל בעובי מלא או השתלת אנדותל מלצ'יני. הנוהל האחרון הינו זמין בתור ממברנה של הממברנה האנדוספיה (DMEK), כמו גם של התפשטות הנוכחות האוטומטית של מתיחת העומק (DSAEK)6. עם זאת, ההגנה של שנותרו CEC ושיפור ההישרדות שלהם יכול להיות יעד חלופי, אשר זקוק למודל מחלה נאותה כדי לבחון תרופות טיפוליות פוטנציאליות.

הנוכחי CEC מחלת הפסד מודלים להתמקד בהשמדת האנדותל באמצעות הזרקה של סוכנים רעילים (g., בנזלקוניום כלוריד) לתוך החדר הקדמי או על ידי שחיקה מכנית של התאים באמצעות שיטה של ירידות פולשני7,8. בעוד מודלים אלה מבוססים היטב, חסרונות כגון תגובה דלקתית כללית ונזק סביבתי לא מדויק קיימים. לכן, מודלים אלה נוטים יותר לייצג את השלבים הסופיים של המחלה, כאשר האפשרויות הכירורגי הנ ל הם בלתי נמנעים.

עם ההתקדמות אסטרטגיות הטיפול הסלולרי כגון בתאי גזע וטיפול גנטי, היישום של אלה טיפולים סלולריים יכול להיות שימושי בשלבים המוקדמים של הפסד CEC9. לאחר מכן, אנו זקוקים למודל המייצג את השלבים המוקדמים האלה של המחלה בצורה מספקת יותר. בהקשר זה, מודלים של תרבות התא השתפרו בעשור האחרון אבל הם עדיין מוגבלים בתוקף שלהם, כמו תאים בתחום החוץ לא יכול להתקרב לשכפול האינטראקציות המורכבות המתרחשות בין סוגי התא השונים בתוך הקרנית10. לכן, vivo ex ובדגמי המחלות vivo עדיין בביקוש גבוה ושיפור הקיימים הוא בעל אינטרס מוחלט.

פולשני, ניתוח תוך העינית על ידי פוטושיבוש באמצעות מניאודימיום: YAG (Nd: YAG) לייזר הפך הליך שגרתי עבור רופאי עיניים ברחבי העולם מאז השקתו בסוף שנות ה-7011. פוטושיבוש מסתמך על קליטת אור לא לינארית המובילה להקמת פלזמה, הדור של גלי הלם אקוסטי, ויצירת בועות קוויטציה, בכל פעם שאתר היישום ממוקם בסביבה נוזלית12. באופן כללי, תהליכים אלה תורמים להשפעה המיועדת של חיתוך רקמות מדויק. עם זאת, הם יכולים גם להיות מקור נזק סביבתי מיותרים הגבלת הכליאה המקומית של ניתוח לייזר13.

החיזוי של השפעות מכניות כתוצאה מכך השתפר באופן משמעותי באמצעות אפיון של הפצת גל ההלם וקורס החפירה. זוהי המטרה שלנו למקד את CEC עם נזק קטן לרקמות שמסביב ככל האפשר כדי לספק מודל פולשני, לייזר בסיוע ניסיוני המודל עבור בשלבים המוקדמים של הפסד CEC. לצורך זה, יש צורך לקבוע את האנרגיות האופטימליות של הדופק ומיקומי הנקודות של מוקדי הלייזר.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל ההליכים הכרוכים ברקמת בעלי חיים עוקבים אחר ההנחיות של ועדת האתיקה המקומית לטיפול בבעלי חיים.

1. הכנת תרבות איברים וטיפול לייזר

  1. השיגו עיניים פורקליות טריות מהמטבחיים שמור אותם קריר (4 ° c) ב שונה בינונית הנשר של דולבco (dmem) עם גלוקוז גבוה, שיושלם עם L-גלוטמין, נתרן פירובט, פניצילין/סטרפטומיצין (1%), סרום חזירי (10%), מעתה המכונה במאמר זה כמדיום מלא.
  2. הסרת רקמות מיסיביות עם מספריים ולהשרות את העיניים 5% povidone-הפתרון האופטלמולוגי של יוד עבור 5 דקות לפני הצבת אותם מלוחים מעוקר מאגור פוספט (PBS) עד השימוש.
  3. עיניים מסך עבור הפתווגיות מקטע הקדמי הראשי, כגון צלקות הקרנית, בצקת, ו אטימות אחרות עם התקן ספקטרלי קוהרנטית אופטי של טומוגרפיה ממוחשבת (טבלת חומרים).
  4. למקם את העיניים מול יחידת מנורה שחור מצויד Nd: YAG לייזר (טבלה של חומרים), אשר יש אורך גל של 1,064 ננומטר ו קוטר ספוט מוקד של 10 יקרומטר באוויר.
    הערה: לצורך מיקום אופטימלי מנגנון החזקת תלת-ממד מודפס משמש, אשר נועד להחזיק את חברת העין, מבלי ללחוץ יותר מדי על זה (איור 1).
  5. השתמש הגדלה של 12x ולהדוף את התאורה כדי להמחיש את שכבות הקרניות הבודדות.
  6. הגדר את אנרגיית הדופק (למשל, 1.6 mJ) ונקודת המיקוד (לדוגמה, 0.16 מ"מ) עבור אבלציה סלקטיבית של תאי האנדותל.
  7. במקום הקרנף ברור שיהיה בקרבת לימבוס והכנס אתהחומרהגמיש ביותר (לוח חומרים) כדי לייצב את התא הקדמי.
  8. בלו את הקרנית המרכזית שטופלה בלייזר באמצעות טרפין של 8 מ"מ.
  9. הניחו את הקרנית המחפירה בבאר של לוחית של 12-הצלחות עם האתר האנדותל הפונה כלפי מעלה והדגם בתוך 3 מ ל של מדיום מלאה ב-37 ° c עד 3 ימים.
    הערה: ניתן להוסיף למדיום סוכני cytop, פוטנציאליים במהלך שלב זה.

2. הכנה להיסטולוגיה

  1. הכנת מאגר של סורנסן עם pH של 7.4 המכיל 19.6 mL של 133 mM KH2פו4 ו 80.4 Ml של 133 mm Na2hpo4.
  2. להסיר את המדיום מתוך קרנית המכילה היטב ולקבוע את הרקמה 20 דקות בטמפרטורת החדר (RT) באמצעות מתנול-בחינם פאראפורמלדהיד (4%) במאגר של סורנסן
  3. מניחים רקמות ב -20% סוכרוז ב-PBS עד כיורים רקמות (1 h) ולאחר מכן ב 30% סוכרוז ב-PBS לילה ב-RT. דאג להימנע ממגע עם בועות וממשק פני האוויר. הטמע רקמות בטמפרטורת חיתוך מיטבית (OCT) ובחנות at-80 ° c.
  4. גזור סעיפים 10 יקרומטר עבה באמצעות קריוסטט ב-27 ° c.
    הערה: מברשת שיער גמלים שימושי כדי להנחות את הקטע המתעוררים על להב הסכין.
  5. העבר את המקטע לשקופית מיקרוסקופ על ידי נגיעה בשקופית לרקמות בתוך 1 דקות של חיתוך אותו כדי למנוע הקפאת ייבוש של הרקמה. אחסן את השקופיות ב--80 ° c.

3. המטאוקסילין ואאוזין (H & E) מכתים

  1. חלקי אוויר יבשים במשך כמה דקות כדי להסיר לחות.
  2. כתם עם מסוננים 0.1% מיימרים המטאוקסילין במשך 10 דקות בצינור 50 mL.
  3. בצנצנת Coplin, לשטוף קריר פועל ddH2O עבור 5 דקות ולטבול ב 0.5% אאוזין 10x.
  4. טבול ב-ddH2O עד אאוזין מפסיק בעירום ולאחר מכן לטבול 50% (10x), כמו גם 70% (10X) אטוה.
  5. משקל 95% אטוח (30 s) ו 100% אטוח (60 s) לפני שטבול בקסילן מספר פעמים.
  6. לבסוף לטעון, coverslip הדגימה לפני נטילת תמונות באמצעות מיקרוסקופ אור.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

באמצעות ההליך המוצג כאן, התייחסו לעיניים עם Nd: YAG לייזר, הערכת אנרגיות פולס שונות (1.0-4.6 mJ) ועמדות של נקודות מוקד (מרחק מהמשטח האחורי של הקרנית: 0.0-0.2 מ"מ) כדי למצוא את הפרמטרים האופטימליים. מספר משכפל (n = 3) הוערך עבור כל קבוצת כוכבים של פרמטרי הלייזר (12 x 21).

בנוסף לפרוטוקול הנ ל, הדגימה נותחה עם מיקרוסקופ שני פוטון לפני קיבעון ו-H & E כתמים. מיקרוסקופ שני פוטון השתמשו במצב מוצק, נעול במצב 80 MHz Ti: לייזר ספיר עם טווח כוונון של 690-1b040 nm ופלט לייזר ממוצע של > 900 mW ב 800 nm כמקור אור. הוא העביר פולסים ברוחב של כ 150 fs למדגם. תמונות צולמו עם מטרה מיקרוסקופ (20x/0.95) באורך גל של 730 ננומטר ו 30 mW של כוח לייזר.

שני פוטון, כמו גם תמונות מיקרוסקופית אור נבדקו באופן עצמאי על ידי 3 סוקרים, אשר היו עיוורים להגדרות ניסיוני היה צריך להקצות את התמונות לשלוש קטגוריות: (1) אין נזק, (2) נזק רב מדי, או (3) כמות הזכות של נזק (איור 2 ואיור 3). מבוסס על ההערכה שלהם מפת חום חושבה (איור 4). באמצעות מפה זו החום ניתן לבחור את הכוכבים הנכונים של פרמטרי לייזר כדי באופן סלקטיבי CEC ablate אוחר עם נזק מינימלי לרקמות שמסביב (ירוק). תוצאות מראות כי נקודת המוקד של הלייזר חייב להיות לפחות 0.15 מ"מ מאחורי אנדותל הקרנית עבור אנרגיית הדופק הנמוך ביותר (1.0 mJ) נבדק. עבור אנרגיות הדופק גבוה יותר מ-2.9 mJ, המרחק הארוך ביותר שנבדק (0.2 מ"מ) עדיין קרוב מדי לאנדותל.

Figure 1
איור 1: התקנה ניסויית. (א) העיניים היו קבועות מנגנון החזקת תלת-ממד חלקית, אשר אפשרה יישור מדויק לגבי קרן הלייזר. (ב) לפני טיפול לייזר, הרקמה הוערכו עם קטע הקדמי של טומוגרפיה אופטית קוהרנטית אופטי כדי לבדוק את הפתווגיות הגדולות קטע קדמי. המיקומים של נקודות לייזר מוקד מצוינים עם מופת עבור 0.0 מ"מ (כוכבית שחורה), 0.1 מ"מ (כוכבית אדומה), ו 0.2 מ"מ (כוכבית כחול). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 2
איור 2: מיקרוסקופ 2-פוטון. התוצאות נעו משום נזק בכלל (א), נזק סביבתי נרחב (ב) לאבלציה סלקטיבית של תאי האנדותל (C). ראש החץ האדום מראה את קרום הממברנה של האור, וראשי חץ ירוקים מצביעים על אבלציה סלקטיבית של CEC-אשכולות. סרגל בקנה מידה = 100 μm. נא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 3
איור 3: היסטולוגיה. המטאוקסילין והאאוזין מאשרים את טווח הנזק משום נזק בכלל (א), נזק סביבתי נרחב (ב) לאבלציה סלקטיבית של תאי האנדותל (C). ראש החץ האדום מראה את קרום הממברנה של האור, וראשי חץ ירוקים מצביעים על אבלציה סלקטיבית של CEC-אשכולות. סרגל בקנה מידה = 100 μm. נא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 4
איור 4: מפת החום המציגה את ההסתברות של נזק בררני CEC. בהקשר זה, אנרגיית הדופק, כמו גם את המיקום של Nd: YAG נקודת מוקד לייזר חייב להילקח בחשבון. נזק מופרז מוצג באדום, והחלק הרצוי של הנזק מוצג בירוק. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

התוצאות של המחקר הטיס הזה עולה כי Nd: YAG לייזר ניתן להשתמש באופן סלקטיבי בתאי הקרנית בצורה סלקטיבית כאשר הפרמטרים המתאימים למינון האנרגיה ומיקום נקודת המיקוד נבחרים.

כמו הפונקציה אנדותל חשוב עבור שקיפות הקרנית ושמירה על הקרנית מתוך בצקת סטרומה, מודלים של בעיות אנדותל לשחק תפקיד חשוב בפיתוח של תרופות נגד הגנה או ניתוחים כירורגיים. יש כמה הקים במודלים חוץ גופית עבור חיקוי במצב vivo10,14,15, אבל כפי שידוע בדרך כלל, במודלים חוץ גופית לא יכול לחקות לחלוטין את ההשפעות של אנזימים ציטוקינים או את ההשפעה של תאים תא אינטראקציה. לעומת זאת, הדגם החדש שפותח לשעבר vivo ex של הפסד תא אנדותל מציע את האפשרות לפקח על מצבים שונים של המחלה ואת הקרנית מפרקת בסביבה הטבעית.

כאשר הקרנית במודל שלנו הוא מגורש עם טרפין אחרי הליך הלייזר, הפיזיולוגיה של שינויי הקרנית ודומה למצב של מבחנה, אינטראקציות אזוריות כאלה משמעותית. עם זאת, הממשק המקומי נשאר שלם ובמיוחד את התקשורת הסלולרית לתאים אחרים בתוך הקרנית נמשכת. המחקר שלנו חשף כי בנסיבות אלה הקרנית שומרת על תפקידה במשך שלושה ימים בתרבות, אשר מציעה זמן מספיק כדי להתבונן ולהעריך סוכנים טיפוליים פוטנציאליים. מצד שני, תהליכי ריפוי ותיקים לא יכולים להיחקר.

במודל שלנו, השתמשנו בעיניים חזירי כמויות גדולות יותר של אלה ניתן להשיג בקלות. יתרה מזאת, העיניים הפורשות מחקות היטב את עיני האדם. בניגוד לארנבים המשמשים באופן קבוע לניסוי, לעיניים פורצין יש קרום של באומן. עם זאת, עובי הקרנית של העין הפורצין שונה במידה ניכרת מהעין האנושית. במיוחד, משתית חזירי הוא הרבה יותר עבה ואין הבדל בין עובי מרכזי והיקפי ב חזירי קרניות כמו16. זה חייב להיחשב גם כי CEC האדם אין כל יכולת ריפוי בעוד תכונה זו משובי מדווח בכמה בעלי חיים, כגון חזירים וארנבים17,18. המחקר שלנו לא התמקד בתהליכי ריפוי הפצע, אבל יש לזכור הבדל זה בעת תרגום תוצאות. כמו ריפוי הפצע של בעלי חיים CEC לא עולה על ארבעה ימים, זה יכול להיות עדיין נצפתה ברקמות התרבותי שלנו גם אם הם האחרון רק שלושה ימים.

השוואת ההתקנה הניסיונית שלנו עם מחקרים קודמים, רמות האנרגיה שהוחלו היו דומים19. במקום להתרכז רק באנדותל, מיקומים שונים של נקודות מיקוד הוערכו. לכן, ההבדל העיקרי של ההתקנה שלנו למחקרים קודמים הוא הפוטנציאל שלה כדי לגרום נזק אנדותל ספציפי מבלי להזיק או או מסטרומה רקמת. ניטור מדויק של מינון האנרגיה ומיקום המיקוד מאפשר אבלציה בררנית CEC מבלי לגרום נזק גל הלם לחלקים אחרים של הקרנית. כמו כן, לא שמנו לב סטרומה או בצקת subepi, ישירות לאחר טיפול לייזר20.

מחקר קודם הראה כי טמפרטורות של ~ 40 ° c יכול להוביל הנזק CEC21. לא למדוד את הטמפרטורה המושרה, אבל זה יכול להיות עניין של מחקרים נוספים. יתר על כן, ההשפעה של סוגים שונים של מערכות לייזר יש להעריך. מחקרים מוקדמים יותר הראו הבדל בין לייזר המושרה הנגרמת לנזק cec ופציעות אחרות CEC19,22. זה עשוי גם להגביל את יכולת המשווה לרקמות האדם ומחלות, משום שנזק שנגרם לייזר נראה לאחר מכן על ידי תהליכי פיתוח מחלות שונות. מעניין, הפצע ריפוי לאחר יישום לייזר נעצר מיט שרפו במחקרים קודמים19. מקור הפציעה עשוי להיות פחות חשוב אם ה-DM נותרת ללא שינוי.

רמות אנרגיה גבוהות יותר יכולות להוות סיכון גבוה יותר לפגיעה מורחבת22. התוצאות שלנו מראים כי באמצעות רמות אנרגיה גבוהה יותר (< 2.9 mJ) עבור נזק CEC סלקטיבי דורש טווח מיקוד הדוק יותר. בעוד הנזק CEC היה מיושם מכנית במחקרים קודמים17, לייזר המושרה נזק המשמש כאן יש מינון מדויק יותר של הנגע ניתן להשתמש בקלות ב vivo לימודים.

יצוין, כי רק מספר קטן של עיניים טופלו ונבדק על פי פרוטוקול זה. כפי שהוזכר לעיל, יכול להיות הבדלים בין-אישיים בתגובה לטיפול בלייזר, כמו גם הבדלים בין הקרניות של מין בעלי חיים שונים. מאז הנזק CEC יכול להיות מיוצר במיקומים מוקד שונים, ספי מסוימים אין לחרוג כדי למנוע נזק מורחב.

לבסוף, הנגעים שנוצרו במחקר זה הוצבו בחלק המרכזי. מחקר מוקדם יותר של העיניים חזירי הראה ריפוי פצע מואץ בפריפריה הקרנית, אשר עשוי להיות בשל קרבתו לימבו בתאי גזע17 כמו עובי הקרנית בעיניים פורצין לא שונה בין אזורים. זה צריך להיות מוערך במחקרים עתידיים אם יש לכוונן את פרמטרי הלייזר בעת המעבר ממרכז הקרנית לפריפריה.

לסיכום, המחקר שלנו מציג מודל פולשני עבור חקירות נוספות על התפקוד CEC. מגבלות של vivo ex או במחקרים vivo במונחים של שימוש בבעלי חיים במקום רקמת האדם להישאר יש לשקול כאשר לפרש את התוצאות.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

. למחברים אין מה לגלות

Acknowledgments

אנו מודים לכריסטין וררן וליאן א. סוצ'יורק על עזרתם בשיטות נסיוניות.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
BARRON VACUUM TREPHINE Katena K20-2058
Cryostat Leica CM 3050S
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium - high glucose PAA E-15009
Eye holder Self N/A
Inverted Microscope Leica DMI 6000 B
KH2PO4 Merck 529568
Na2HPO4 Merck 1065860500
Nd:YAG laser Zeiss Meditec visuLAS YAG II plus
OCT Tissue Tek Sakura Finetechnical 4583
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333
Phosphate Buffered Saline (PBS) Gibco 10010056
Porcine serum Sigma-Aldrich 12736C
Spectral-domain optical coherence tomograph Heidelberg Engineering Spectralis
Tissue culture plate 12-well Sarstedt 833921
Two-Photon Microscope JenLab DermaInspect
Viscoelastic OmniVision Methocel

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. DelMonte, D. W., Kim, T. Anatomy and physiology of the cornea. Journal of Cataract and Refractive Surgery. 37 (3), 588-598 (2011).
  2. Edelhauser, H. F. The balance between corneal transparency and edema: the Proctor Lecture. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (5), 1754-1767 (2006).
  3. Tuft, S. J., Coster, D. J. The corneal endothelium. Eye. 4, London, England. Pt 3 389-424 (1990).
  4. Bourne, W. M. Biology of the corneal endothelium in health and disease. Eye. 17, 912-918 (2003).
  5. He, Z., et al. 3D map of the human corneal endothelial cell. Scientific Reports. 6, 29047 (2016).
  6. Gain, P., et al. Global Survey of Corneal Transplantation and Eye Banking. JAMA Ophthalmology. 134 (2), 167-173 (2016).
  7. Schwartzkopff, J., Bredow, L., Mahlenbrey, S., Boehringer, D., Reinhard, T. Regeneration of corneal endothelium following complete endothelial cell loss in rat keratoplasty. Molecular Vision. 16, 2368-2375 (2010).
  8. Bredow, L., Schwartzkopff, J., Reinhard, T. Regeneration of corneal endothelial cells following keratoplasty in rats with bullous keratopathy. Molecular Vision. 20, 683-690 (2014).
  9. Bartakova, A., Kunzevitzky, N. J., Goldberg, J. L. Regenerative Cell Therapy for Corneal Endothelium. Current Ophthalmology Reports. 2 (3), 81-90 (2014).
  10. Zhao, B., et al. Development of a three-dimensional organ culture model for corneal wound healing and corneal transplantation. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (7), 2840-2846 (2006).
  11. Aron-Rosa, D., Aron, J. J., Griesemann, M., Thyzel, R. Use of the neodymium-YAG laser to open the posterior capsule after lens implant surgery: a preliminary report. Journal - American Intra-Ocular Implant Society. 6 (4), 352-354 (1980).
  12. Vogel, A., Hentschel, W., Holzfuss, J., Lauterborn, W. Cavitation bubble dynamics and acoustic transient generation in ocular surgery with pulsed neodymium: YAG lasers. Ophthalmology. 93 (10), 1259-1269 (1986).
  13. Vogel, A., Schweiger, P., Frieser, A., Asiyo, M. N., Birngruber, R. Intraocular Nd:YAG laser surgery: laser-tissue interaction, damage range, and reduction of collateral effects. IEEE Journal of Quantum Electronics. 26 (12), 2240-2260 (1990).
  14. Zhu, Q., Zhu, Y., Tighe, S., Liu, Y., Hu, M. Engineering of Human Corneal Endothelial Cells In Vitro. International Journal of Medical Sciences. 16 (4), 507-512 (2019).
  15. Li, Z., et al. Nicotinamide inhibits corneal endothelial mesenchymal transition and accelerates wound healing. Experimental Eye Research. 184, 227-233 (2019).
  16. Pescina, S., et al. Development of a convenient ex vivo model for the study of the transcorneal permeation of drugs: histological and permeability evaluation. Journal of Pharmaceutical Sciences. 104 (1), 63-71 (2015).
  17. Smeringaiova, I., et al. Endothelial Wound Repair of the Organ-Cultured Porcine Corneas. Current Eye Research. 43 (7), 856-865 (2018).
  18. Yamashita, K., et al. A Rabbit Corneal Endothelial Dysfunction Model Using Endothelial-Mesenchymal Transformed Cells. Scientific Reports. 8 (1), 16868 (2018).
  19. Schubert, H. D., Trokel, S. Endothelial repair following Nd:YAG laser injury. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 25 (8), 971-976 (1984).
  20. Zhang, W., et al. Rabbit Model of Corneal Endothelial Injury Established Using the Nd: YAG Laser. Cornea. 36 (10), 1274-1281 (2017).
  21. McCally, R. L., Bonney-Ray, J., de la Cruz, Z., Green, W. R. Corneal endothelial injury thresholds for exposures to 1.54 micro m radiation. Health Physics. 92 (3), 205-211 (2007).
  22. Nash, J. P., Wickham, M. G., Binder, P. S. Corneal damage following focal laser intervention. Experimental Eye Research. 26 (6), 641-650 (1978).

Tags

רפואה סוגיה 158 Nd: YAG לייזר קרנית תאים אנדותל של הקרנית keratopathy בולוס בועה קוויטציה דגם מחלה
פיתוח של מודל פולשני, בסיוע לייזר של הקרנית הפסד של תא אנדותל
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Holzhey, A., Sonntag, S.,More

Holzhey, A., Sonntag, S., Rendenbach, J., Ernesti, J. S., Kakkassery, V., Grisanti, S., Reinholz, F., Freidank, S., Vogel, A., Ranjbar, M. Development of a Noninvasive, Laser-Assisted Experimental Model of Corneal Endothelial Cell Loss. J. Vis. Exp. (158), e60542, doi:10.3791/60542 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter