Summary
이 문서는 기니 피그 내분비 낭을 말살하고 실험적인 내분비 성 하이드로립을 유도하기 위해 미세 한 선택으로 내분비 증 덕트를 손상시키는 외의 접근 법을 보여줍니다.
Abstract
내분비성 하이드로프는 병리생리학적 메커니즘(들)이 불분명하게 남아 있지만 메니에르 병과와 가장 자주 연관되는 스칼라 미디어의 확대입니다. 저주파 난청의 기원과 같은 내분비 성 하이드로프의 특성을 적절하게 연구하려면 신뢰할 수있는 모델이 필요합니다. 기니 피그는 내분비 수압에 의해 가설적으로 영향을받는 저주파 영역에서 들리기 때문에 좋은 모델입니다. 이전 연구는 내분비증 하이드로립이 내분비 증 덕트와 낭에 드릴링을 포함하는 경내 또는 경막외 접근법을 통해 외과적으로 유도될 수 있다는 것을 보여주었습니다. 그러나, 내분비증 덕트 및 낭에 위험한 드릴링을 피하는 외의 접근법을 사용하여 내분비 성 하이드로프 모델을 만들 수 있었는지 여부는 알려지지 않았다. 이 연구의 목적은 내분비 낭을 말살하고 미세 한 선택으로 내분비 성 덕트를 손상시킴으로써 수술 후 30 일에서 실험 내분비 성 하이드로립을 유도하는 개정 된 외 경부 접근법을 입증하는 것이었습니다. 표본 크기는 7개의 기니피그로 구성되었다. 청력의 기능적 측정이 이루어졌고 시간적 뼈는 이후 역학 분석을 위해 수확되었습니다. 접근은 내분비성 hydrops달성에 있는 86%의 성공률을 가졌습니다. 뇌척수액 누출의 위험은 최소화되었습니다. 후부 반원형 운하에 대한 아니 수술 사망 이나 부상 샘플에서 발생. 제시된 방법은 30일의 비교적 빠른 시점에서 내분비성 하이드롭을 유도하는 안전하고 신뢰할 수 있는 방법을 보여준다. 임상적 의미는 제시된 방법이 내분비 성 하이드로프와 연관될 수 있는 저주파 청력 손실의 기원을 더 탐구하는 신뢰할 수 있는 모델을 제공한다는 것입니다.
Introduction
내분비압 수압은 스칼라 미디어의 확대이다. 내분비압 하이드로프의 존재는 스칼라 매체의 단면적을 사용하여 측정될 수 있다. 임상 내분비질 하이드로프는 메니에르 병에서 볼 수있는 것과 같은 저주파 감각 신경성 난청과 관련될 수 있다고 생각됩니다. 그러나 청력 손실의 기원은 불분명합니다. 내분비 수소와 관련된 저주파 청력 손실의 기원을 적절하게 연구하려면 신뢰할 수있는 모델이 필요합니다.
1965년, 키무라와 슈크네흐트는 경막내 접근법1을사용하여 기니피그에서 내분비성 하이드로프를 유도하는 방법을 설명했다. 그들의 기술은 operculum에 접근하고 subarcuate fossa를 접근하기 위하여 후방 두개골 fossa 접근을 이용하는 관련시켰습니다. 단계는 경막 절개, 링거의 용액 젖은 면 패드로 소뇌를 철회하고, 내분비 관과 내문성 낭의 중간 부분을 가로 질러 드릴링하는 것을 포함했다. 뼈 왁스는 다음 말단 내분비 낭에서 내분비 성 덕트를 분리하기 위해 오퍼컬룸에 배치되었다. 개두량 결함은 흡수성 젤라틴 분말(예를 들어, 겔폼)을 배치하고 겹친 근육을 재흡수하여 폐쇄하였다. 내분비성 하이드로프의 조직학적 증거는 수술 후 1일, 3일, 7일, 14일, 21일 및 30일에서 일관되게 발견되었으며, 이는 조직학적으로 확인된 내분비 수경 수경을 유도하는 신뢰할 수 있는 방법임을 입증하였다. 키무라와 슈크네흐트와 같은 내막 접근법을 사용하였으나, 서로 다른 시간 포인트를 가진 솔트와 데모트는 달팽이관의 두 번째 턴에서 스칼라 미디어가 4일째와2일째에크게 확대되었다는 것을 확인했습니다. 키무라와 슈크네흐트의 경막외 접근법을 사용하여 뇌척수액(CSF) 누출을 유도하는 실제 이환율은 원래 연구에서 보고되지 않았지만, CSF 누출의 존재는 뇌막염의 위험을 증가시킬 수 있습니다. CSF의 손실이 주림프의 유출로 이어질 수 있으며, 기니 피그3에서내분비체 부피가 일시적으로 일시적으로 확장될 수 있다고 제안되었습니다. 내분비성 하이드로프를 유도하는 추가 접근 방식은 더 안전한 옵션이 될 것입니다.
1989년에, 앤드류스와 Bohmer는 endolymphatic 낭을 말살하기 위하여 중간 두개골 fossa 접근 또는 후방 두개골 fossa 접근을 통해 내분비 낭 및 덕트에 도달하기 위하여 2개의 외경 외과 접근을 기술했습니다4. 그(것)들은 다이아몬드 드릴로 오퍼클럼을 제거하고, 그 때 내분림 낭의 중간 부분을 드릴링하거나 내분비 낭 및 덕트를 중단하기 위하여 정밀한 선택을 사용하여 기술했습니다. 1993년, Lee, Wright 및 Meyerhoff는 내분비 낭과 덕트를 통해 드릴링을 포함하는 유사한 접근법을 설명했지만, 동시에 달팽이관 수로5를방해했다는 점에서 달랐다. 그(것)들은 내문림프 낭을 말살하고 달팽이관 수로를 방해한 후에 4 주에, 그의톨학을 통해 평가된 것과 같이 내문림프 수압의 존재를 보여주었습니다. Megerian 외. 내분비낭 및 덕트에 입력하는 내분비증 낭 및 덕트의 내측 부분에 직접 드릴링을 포함하는 내분비낭 낭 및 덕트의 외경 말살을 보여주는 비디오 기사를 게시하는 첫번째이었다6. 그(것)들은 수술 후에 28 주에 희생된 기니 돼지에 있는 내림프 수소화의 운동결과적 증거를 보여주었습니다, 뿐만 아니라 16 kHz 의 지구에 있는 청력 손실6. 조직학적으로 확인된 내비심 하이드로프 및 초저주파 난청을 초월적 접근법을 사용하여 조기에 유도할 수 있었는지여부는 알려지지 않았다.
이 보고서의 전반적인 목표는 내분비 낭을 말살하고 미세 한 선택으로 내분비 성 덕트를 손상시킴으로써 수술 후 30 일에서 실험 내분비 성 하이드로를 유도하는 외의 접근 법을 입증하는 것입니다. 이 기술의 사용 뒤에 근거는 따라서 실수로 경을 손상및 CSF 누출을 일으키는 위험을 제거, 석유 측두골을 드릴 할 필요성을 피하고, 후방 반원형 운하를 손상의 가능성을 완화하고, 시그모이드 부비동에 부상의 위험을 감소의 장점이다.
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Protocol
의정서 섹션에 바로 아래에 나열된 모든 절차는 세인트 루이스 기관 동물 관리 및 사용위원회에서 워싱턴 대학에 의해 승인 된 프로토콜에 설명 된 대로 수행되었다.
1. 마취 유도 및 활력 징후 모니터링
참고: 이 연구는 사내 사육 식민지에서 얻은 색소 NIH 균주 기니 피그를 사용했다.
- 적어도 350g의 무게, 어느 섹스의 기니 피그를 사용합니다.
- 기니 피그를 신생아 온난화 등소에 넣고 유도 마취를 위해 케타민/자일라진 혼합물을 복강 내(50 mg/kg 케타민 및 10 mg/kg 자일라진)에 줍니다. 발가락 핀치 반사를 잃을 때까지 기니 피그를 관찰하십시오.
- 발가락 꼬집반사의 손실이 발생하면, 기니피그의 후방 목과 머리를 일반적으로 사람의 용도로 광고하는 헤어 트리머로 면도하십시오.
- 수유 링거 용액 12 mL의 피하 볼러스를 동물의 뒤쪽에 주입하십시오.
- 기니 피그 스파인을 다리를 들어 올린 온난화 패드에 놓고 27.5 G 나비 바늘을 복강 내로 놓습니다. 나비 바늘이 공기만 흡입되도록 하여 복강 내 공간에서 올바른 위치에 있는지 확인합니다. 혈액 이나 액체 흡입 하는 경우, 혈관 또는 창 자 시스템에 전달에 대 한 우려가 있다. 나비 바늘은 마취의 반복 투여에 사용됩니다.
- 기니 피그를 취약한 위치로 뒤집고 머리를 입체 홀더에 고정시다.
- 발에 펄스 산소 측정기를 고정합니다. 안료 기니 피그를 사용하는 경우, 안료 발은 산소 포화도를 읽는 것을 방지 할 수 있습니다. 따라서 색소가 없는 발에 펄스 산소 측정기의 위치를 놓습니다.
- 직장 온도 프로브를 삽입하여 체온을 모니터링합니다. 직장 프로브는 38 °C에서 체온을 유지하는 온난화 담요 시스템의 일부입니다. 온난화 담요가 과열되지 않도록 직장 프로브가 제자리에 놓일 때까지 온난화 담요를 켜지 마십시오. 직장 프로브를 배치하는 데 어려움이있는 경우, 기니 피그의 몸과 함께 배치 할 수 있습니다.
- 각막 찰과상을 방지하기 위해 기니 피그의 두 눈에 윤활제를 바르세요.
- 90% 이상의 산소 포화도 수준을 유지하기 위해 코 근처에 위치한 고무 튜브를 통해 필요에 따라 보충 산소를 투여하십시오.
- 항생제 예방으로 enrofloxacin 0.5 mg/kg 피하를 제공.
- 국소 마취 및 혈관 수축 효과에 대한 예상 절개 부위에 피하 1:100,000 에피네프린으로 0.25 mg/kg 의 부피바카인을 주세요.
- 4주기 동안 20분마다 유지 보수 마취를 제공한 다음 활력 징후를 기반으로 필요에 따라만 유지 보수 마취를 제공합니다. 체온, 호흡 속도, 산소 포화도 및 심박수에 따라 마취의 깊이를 정기적으로 모니터링합니다.
- 15분마다 활력 징후(온도, 호흡속도, 심박수 및 산소 포화도)를 모니터링합니다.
2. 외과 준비
- 기니 피그의 머리가 입체 홀더에 단단히 배치되면, 뒤쪽에 마스킹 테이프 조각을 배치하여 편시 처리에 겹쳐있는 피부를 따라 적절한 장력을 제공합니다. 테이프의 끝을 입체 홀더에 고정합니다.
- 요오드 용액과 70 % 에탄올로 서양 및 후방 목에 겹쳐진 피부를 멸균 방식으로 3 번 자유롭게 준비하십시오.
- 이 때 멸균 예방 조치와 오토클레이브 기기를 사용하십시오. 기니 피그 위에 멸균 커튼을 놓습니다.
3. 외과 적 수술
- 15 개의 블레이드를 사용하여 후방 목으로 뻗어있는 후방 occiput을 따라 작은 중간 선 절개를합니다. 일단 피부 밑에, 홍채 가위를 사용하여 후두 뼈에서 오른쪽 후방 자궁 경부 근육을 분리하십시오. 근육을 절단하는 동안 출혈이 발생하면 멸균 면봉으로 압력을 가하여 제어하십시오.
-
#3 mm, #2 mm, #1 mm 다이아몬드 버를 5-0 흡입 및 멸균 관개와 함께 조합하여 외부 후두 문장, 람보이드 능선, 후두종봉합사 라인 및 포라멘 매그넘의 등쪽 여백에 의해 경계되는 개두술을 수행합니다.
- 후두뼈를 경막에서 분리하면서 식염수로 적신 면봉을 뼈 아래에 살짝 발라주세요.
- #0.5 mm 다이아몬드 버로 시그모이드 부비동을 골격화하고 뼈를 조심스럽게 제거합니다.
- 시그모이드 부비동이 노출되면 면봉을 사용하여 시그모이드 부비동을 부드럽게 후퇴시키고 3-0 흡입을 사용하여 전환합니다.
- 오퍼클럼을 석유 측두골 내에 있는 구조와 같은 슬릿으로 식별합니다. subarcuate fossa 는 우수하게 위치될 것이고, 시그노이드 부비동은 그것에 내성이 될 것입니다. 내분비 낭의 엑스트라 골지 부분은 다음 지혈대 부비동을 오버라이징 하는 dura에 부착 된 오퍼컬럼을 입력 하는 명확한 낭으로 시각화. 오퍼클럼은 타원형으로, 약 3~4mm, 1.5~2mm이다. 그러나, 외과 보기에서 볼 수 있듯이, operculum 는 대략 1 mm 슬릿으로 나타납니다. 수술 보기에서 낭의 가시 부분은 작지 않은 경우, operculum의 가시 부분과 거의 같은 크기입니다.
-
내분비낭의 엑스트라 골지 부분을 명확하게 시각화하고 내분비낭의 골후 및 내골 내 부분 사이의 긴장을 증가시키기 위해 시그모이드 부비동에 부드럽게 후퇴를 적용한다.
- 미세한 각진 픽을 사용하여 내분비 낭의 중간 부분을 부드럽게 제거할 수 있습니다. 삭제 프로세스는 듀라와 오퍼클룸 사이에 눈에 띄는 연결을 남기지 않는 것이 중요합니다. 그런 다음 오퍼클룸 내부에 미세 한 선택을 배치하여 뼈 의 안쪽을 따라 광범위하게 긁어 내어 다치게하십시오.
- 내분비 성 덕트의 방향으로 미세 선택을 켜고 맹목적으로 안감을 방해. 이 시점에서 일부 출혈은 피퍼럼 내의 혈관에서 발생할 수 있습니다. 그것은 면의 작은 조각으로 제어 할 수 있습니다.
- 작은 면으로 빈 오퍼클룸을 말립니다. 면이 건조하게 유지하려면 필요에 따라 3-0 흡입을 사용하십시오.
- 작은 컬렛을 사용하여 측두골의 스쿼모살 부분을 따라 긁어 내어 뼈 먼지를 얻습니다. 뼈 먼지로 오퍼클럼을 넉넉하게 포장합니다. 면공과 흡입구를 사용하여 뼈 먼지로 포장하는 동안 이 부위를 건조하게 유지하십시오.
- 뼈 왁스를 오퍼클럼에 적용하여 밀봉합니다. 두개골에 여분의 뼈 왁스가 빠지지 않았는지 확인하십시오.
- 뼈 왁스를 사용하여 두개골 결함을 덮습니다.
- 4-0 편조, 흡수 성 봉합사로 후방 자궁 경부 근육을 방해 한 방식으로 근사화하십시오.
- 4-0 편조, 흡수성 봉합사를 사용하여 하부 폐쇄를 수행합니다.
4. 시술 후 진료
- 사용자 정의 입체 홀더에서 기니 피그를 제거하고 온난화 등전선트로 전송합니다.
- 2 mg/kg의 아티파메졸과 수유링거 용액 24 mL을 주세요(절개에서 피하). 자일라진의 이뇨 효과로 인해 수유 링거용액을 주세요. 투여 0.2 mg/kg 멜 록시캄 피하 수술 후 진통 범위에 대한.
- 기니 피그가 마취에서 완전히 나올 때까지 15 분마다 활력 징후를 얻으실 수 있습니다.
- 추가 제공 12 mL 수 유 링거의 용액의 추가 2 복구 기간 동안 수술의 끝에서 시간.
- 기니 피그가 경보를 발령하고, 외래하고, 무효화하고, 배변을 하면 기니피그를 동물 시설로 되돌려 보입니다. 기니 피그가 마취에서 완전히 나오기 위해서는 약 2~4시간이 필요합니다.
- 기니피그를 수술 후 첫 3일 동안 매일 두 번 모니터링합니다. 불편의 징후가 관찰되는 경우, 필요에 따라 24시간마다 0.2 mg/kg의 멜록시캄을 피하로 투여하십시오. 양자 택일로, buprenorphine (0.05 mg/kg) 증상이 멜 록시캄에 의해 충분히 관리되지 않는 경우 피하 투여 될 수있다.
- 기니 피그가 수술 전 체중에 도달할 때까지 최대 3일 동안 하루에 두 번 수유된 링거 용액의 12 mL 유체 볼러스를 제공합니다. 기니 피그가 수술 후 세 번째 날 이전에 수술 전 체중에 도달하면 유체 볼러스를 중지하십시오. 기니 피그 처음 3 일 후 무게를 잃고 계속 하는 경우, 일반적으로 분쇄 된 기니 피그 식품 펠 릿과 혼합 인간의 소비에 대 한 광고 보충 영양 쉐이크를 사용 하 여.
- 기니 피그를 매주 종료 지점까지 모니터링합니다.
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Representative Results
제시된 방법은 내분비 낭을 말살하고 2명의 수컷과 5명의 암컷으로 구성된 7개의 기니 피그에 있는 정밀한 선택으로 내분비증 덕트를 손상시키기 위하여 외적인 접근을 이용했습니다. 수술의 평균 기간은 절개에서 폐쇄까지 2 시간이었다. 총 드릴 시간은 5-10분입니다. 기니피그가 마취에서 완전히 출현하려면 최대 4시간이 필요했습니다. 견본에 있는 아무 수술 내 또는 수술 후 죽음이 없었습니다. 기니 피그 중 후방 반원형 운하 또는 두라에 부상은 없었다. 시그모이드 부비동에 대한 상해는 하나의 기니 피그에서 발생했습니다(데이터 분석에서 제외).
기니피그는 희생당일(수술 후 30일)에 청각 신경 중첩 파형(ANOW) 및 달팽이관 화합물 작용 전위(CAP)를 포함하는 청각 기능 측정을 위해 두 번째 절차를 거쳤습니다. ANOW 및 CAP 측정이 이루어졌으며, 이전에 설명된7,8,,79방법을 사용하여 분석이 수행되었다. ANOW는 정점 달팽이관 절반7,,8,,9의신경 흥분에서 유래 하는 순전히 신경 측정. 청각 기능 테스트 후, 귀는 즉시 수확하고 앞서설명한 방법 10을사용하여 역학 분석을 위해 준비되었습니다. 성공적인 조직학적 준비는 여섯 귀에서 완료되었지만, 한쪽 귀는 Reisner의 막에서 눈물을 보였습니다. 눈물이 나는 귀는 조직학적 분석에서 제거되었지만 생리학적 분석에 보관되었습니다. 스칼라 미디어의 단면적은 ImageJ11을사용하여 측정되었습니다. 측두골의 역학 분석은 왼쪽 달팽이관에 비해 오른쪽 달팽이관에 걸쳐 7 개의 기니 피그 중 6 에서 내림프 하이드로프를 밝혀냈다(그림 1). 도 1에서,동작된 스칼라 미디어 단면적, 오른쪽 귀(빨강)는 반대측, 왼쪽 귀(파란색)에 비해 확대되고, 오른쪽 귀에서 내분비성 하이드로프를 시술한다. 각 턴에 걸쳐 스칼라 매체의 단면적도 정량화되고 기니피그 대조군과 비교하였다(도2). Reisner의 막이 찢어지는 조직학적 준비 문제 때문에 한쪽 귀에서 측정한 값은 그림 2에 포함되지 않았습니다. 제어 기니 피그는 가짜 수술을 받은 (내분비 낭이 확인되었지만 방해받지 않음) 또는 청각 기능 측정을 하는 데 필요한 것 이외의 수술을 받지 않았습니다. 대조군과 비교하여, 단면적은 내분비낭의 말살 후 30일 생존하는 귀에서 일반적으로 더컸다(도 2). ANOW 임계값(≤1 kHz)은 제어 기니 피그에 비해 내분비 성 하이드로립을 입증한 7마리의 기니 피그 중 6개에서 증가하여 저주파 청력 손실의 존재를 입증했습니다(그림3). 청각 뇌간 반응의 웨이브 1, 또는 달팽이관 화합물 작용 전위(CAP) 임계값은 7개의 기니피그 중 6개에서 8 kHz 이상의 주파수에서 정상 범위 내에있었다(그림 3).
그림 1: 기니 피그 달팽이관의 중간 modiolar 컷의 역학 이미지. 이 기니 피그는 외의 접근법을 사용하여 내분비 낭을 말살 한 후 30 일 동안 생존했습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 달팽이관 길이의 함수로서 스칼라 매체의 단면적. 7개의 개별 귀 중 6개에서 측정은 빨간색으로 되어 있습니다. 회색 파선은 컨트롤 귀에서 측정값의 ±1 표준 편차를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 수술 후 30일째에 측정된 청각 기능 측정(ANOW 및 CAP). ANOW 측정값은 ≤1 kHz이고 CAP 측정은 >1 kHz로 이루어졌습니다. 개별 귀에서 측정은 빨간색입니다. 회색 파선은 제어 기니 피그에 대한 임계값의 ±1 표준 편차를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
제시된 초경방법 의 성공률은 조직학적으로 확인된 내심성 하이드로프및 저주파 난청을 달성하는 데 86%의 성공률을 보였습니다. 이 방법은 수술 후 30일까지 내분비성 하이드롭의 조직학적 증거를 안정적으로 달성했으며, 경막내 접근법을 사용한 이전 연구와일치한다 2. 기존 방법에 대하여 방법의 중요성은 CSF 누출이 필요하지 않다는 것입니다, 따라서 내문양부3의보상, 일시적인 확장을 초래하기 위하여 제안된 잠재적인 혼동 변수를 제거한다. 전반적으로, 이 방법은 실험적인 내분비성 하이드로프를 유도하는 빠르고 안전하며 신뢰할 수 있는 방법을 보여줍니다.
제시된 방법은 이전 연구와 비교하여 몇 가지 강점을 가지고 있다. 첫째, 이 접근법은 CSF 누출의 잠재적이환원과 혼란스러운 영향을 최소화하는 과외적인 접근 방식이었습니다. 둘째, 자궁 내분비 낭을 박경하고 내분비성 덕트를 손상시키는 드릴 대신 미세 한 선택을 사용하여, 방법은 후방 반원형 운하에 대한 잠재적 인 부상을 방지합니다. 중요한 단계는 듀라와 오퍼럼 사이에 눈에 띄는 연결이 없도록 하는 것입니다. 셋째, 드릴 대신 측두골에 미세한 픽을 사용하여, 이 방법은 석유 측두골에 드릴링하여 발생하는 음향 외상의 가능성을 최소화하였다. 마지막으로, 이 방법은 기니피그의 신속한 회복과 성공적인 수술 후 과정을 보장하기 위해 최적화된 peri-operative 동물 프로토콜을 제공한다. 이 방법의 한계는 케타민/자일라진의 사용이며, 이는 이소플루란 전달을 허용하는 입체적 장치를 사용하여 극복될 수 있다.
결과의 과학적 의미는 30 일의 상대적으로 빠른 시점에서 내분비성 하이드로프를 유도하는 안전하고 신뢰할 수있는 방법의 개발이다. 임상적 의미는 관련 저주파 청력 손실의 기원을 더 탐구하기 위해 이 방법이 내분비 하이드로프의 신뢰할 수 있는 모델을 제공한다는 것입니다. 이 방법의 향후 응용은 내분비 질 수압과 관련된 저주파 청력 손실의 기원을 추가로 연구하는 데 사용됩니다. 결론적으로, 제시된 방법은 기니피그에서 수술 후 30일 동안 실험적인 내분비성 수경을 유도하기 위해 미세한 선택으로 내분비낭을 말살하고 내분비성 덕트를 손상시키는 변형된 후두골, 외경 접근법이다.
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Disclosures
저자는 공개 할 것이 없다.
Acknowledgments
섀넌 엠 레플러에게 인물과 재료 표에 대한 도움을 주셔서 감사합니다. 이 간행물에 보고된 연구는 국립 보건원 내의 청각 장애 및 기타 통신 장애에 의해 지원되었다, 통해 "학술 ENT에서 임상 / 연구원의 개발" 교육 교부금, 수상 번호 T32DC000022 (C.V.V.) 및 R01 DC014997 (J.T.L). 이 내용은 전적으로 저자의 책임이며 반드시 국립 보건원의 공식 견해를 나타내는 것은 아닙니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 12 mL syringe | Henke-Sass Wolf | 5100-X00V0 | |
| 1 mL and 3 mL syringe | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-87 15859152 | |
| 27.5 butterfly gauge needle | Terumo Surflo Winged Infusion Set, Terumo Corporation, Japan) (Ordered from McKesson) | 448407 | |
| 4-0 suture | McKesson | 1034507 | |
| 4 x 4 gauze sponges | Dukal (Ordered form McKesson) | 374454 | |
| 60 mL syringe | Fisher Sci | 22-031-375 | |
| Anspach otologic drill | Anspach | SC2100 | |
| atipamezole | Zoetis | 107204-6 | |
| autoclave | Fisher sci | 15-103-0508 | |
| autoclave bags | McKesson | 524881 | |
| bayonet separator | Olympus | AL 130564 | |
| bupivicaine | auro Medics Pharma | 555150-169-10 | |
| clear sterile drape | 3M | 1020 | |
| cotton balls | Fisherbrand (ordered from Fisher Sci) | 22-456-885 | |
| cotton swabs | McKesson | 508716 | |
| diamond burrs #3, #2, #1, and #0.5 mm | Anspach | QD8-3SD; QD8-2SD; QD8-1SD; QD8-05SD | |
| diaper pad | McKesson | 945330 | |
| disposable 15 blade | Swann-Morton | 0305 | |
| enrofloxacin | Hospira | 0409-4888-01 | |
| epinephrine | McKesson | 63739-0456 | |
| eye ointment | Dechra Vet Products | 17033-211-38 | |
| Freer elevator | Grace Medical | 215100FX | |
| gelfoam | Pfizer (Ordered from McKesson) | 82830 | |
| hair trimmers | Oster Power Pro Cordless (ordered from Amazon) | 078400-020-000 | |
| iodine scrub | Purdue Pharma (ordered from mcKesson) | 521243 | |
| iris scissors | Olympus | CL-542114 | |
| ketamine | Henry Schein Animal Health | 55853 | |
| lactated ringers | B. Braun Medical (ordered from McKesson) | 186662 | |
| lancet knife by Rosen | Grace Medical | 151100FX | referred to as curette in the text |
| lubricant | Milex (ordered from Cooper Surgical) | MX5030 | |
| masking tape | 3M (ordered from fisher sci | 19047259 | |
| metal rectangle basin | Amazon | B07NQDBC6T | |
| needle holder | Olympus | CR 213015-ENT | |
| needles: 27 gage, 18 gauge | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-48 14-826-5D | |
| neonatal warming isollete | Air Borne Life Support Systems | 731-1800 | |
| operating microscope | Carl Zeiss | OPMI pico | |
| oxygen tank | AirGas | OX USP200 | |
| pulse ox | CapnoTrue (Ordered from Medacx) | M-3090112001 | |
| rectal probe with heating blanket | Harvard Apparatus | probe: PY2 50-7217 Heating Blanket: PY2 50-7214 | |
| red body holder | Lichtenhan Lab | N/A | In-house product |
| right angle | Olympus | BV-230337 | |
| rosen needle | Olympus | AM-130566 | customized, it is the instrument I use to tear the sac |
| rubber tubing for O2 administration | Fisher Sci | 14-171-104 | |
| saran wrap | Fisher Sci | NC9617977 | |
| stereotactic head holder | WUSTL Instrument Machine Shop | N/A | In-house product |
| sterile drapes | Cardinal Health | 7553 | |
| suction tube by Baron | Grace Medical | 034903FX 034905FX | #3 and #5 Suction |
| tissue forceps adson brown | Grace Medical | 325112FX | |
| Weitlander retractor | Olympus Grace Medical | BL200011 100313FX | |
| xylazine | Akorn | 59399-110-20 |
References
- Kimura, R. S., Schuknecht, H. F. Membranous Hydrops in the Inner Ear of the Guinea Pig after Obliteration of the Endolymphatic Sac. Pract oto-rhino-laryng. 27, 343-354 (1965).
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