Summary
Здесь мы представляем подробные протоколы для монокулярной визуализации зрения и анализа пластики глазного доминирования, которые являются важными методами для изучения нейронных механизмов визуальной пластичности в критический период и влияния специфических генов на визуальное развитие.
Abstract
Монокулярная лишение зрения является отличной экспериментальной парадигмой, чтобы вызвать первичной зрительной корковой реакции пластичности. В целом, реакция коры на контралатеральный глаз на стимул гораздо сильнее, чем реакция ипсилатерального глаза в бинокулярном сегменте первичной зрительной коры мыши (V1). В критический период млекопитающих, зашивание контралатерального глаза приведет к быстрой потере отзывчивости клеток V1 к контралатеральной стимуляции глаз. С продолжающимся развитием трансгенных технологий, все больше и больше исследований используют трансгенных мышей в качестве экспериментальных моделей для изучения влияния конкретных генов на глазное доминирование (OD) пластичность. В этом исследовании мы вводим подробные протоколы для монокулярной визуальной депривации и вычисляем изменения в пластичности OD в мыши V1. После монокулярной депривации (MD) в течение 4 дней в критический период измеряются кривые настройки ориентации каждого нейрона, а кривые настройки четырех нейронов уровня в V1 сравниваются между стимуляцией ипсилатеральных и контралатеральных глаз. Контралатеральный индекс смещения (CBI) может быть рассчитан с помощью глазной оценки OD каждой клетки, чтобы указать степень пластичности OD. Этот экспериментальный метод важен для изучения нейронных механизмов пластичности ОД в критический период и для съемки роли конкретных генов в нервном развитии. Основным ограничением является то, что острое исследование не может исследовать изменения в нервной пластичности одной и той же мыши в разное время.
Introduction
Монокулярная визуальная депривация является отличной экспериментальной парадигмой для изучения пластичности V1. Чтобы изучить важность визуального опыта в нервном развитии, Дэвид Хубэль и Торстен Визель1,2 лишили котят нормального зрения на один глаз в различные моменты времени и в течение различных периодов времени. Затем они наблюдали изменения интенсивности реакции в V1 для обездоленных и необездоеденных глаз. Их результаты показали аномально низкое число нейронов, реагирующих на глаз, который был зашивается закрыты в первые три месяца. Тем не менее, ответы от нейронов в котят остались идентичныво во всех отношениях, чтобы те из нормального взрослого кошачьего глаза, который был зашепан закрыты в течение года, и котята не восстановить. MD у взрослых кошек не может вызвать ПРО пластичности. Таким образом, влияние визуального опыта на проводку V1 сильно во время краткой, четко определенной фазы развития, до и после чего те же стимулы имеют меньшее влияние. Такая фаза повышенной восприимчивости к визуальному вхожжью известна как критический период в зрительной коре.
Хотя мышь ночная животное, отдельные нейроны в мыши V1 имеют сходные свойства с нейронами, найденными у кошек3,4,5. В последние годы, с быстрым развитием трансгенных технологий, все большее число исследований в области визуальной нейронауки использовали мышей в качестве экспериментальной модели6,7,8. В мышах визуальных исследований, нейробиологи используют мутантов и нокаут мыши линий, которые позволяют контролировать генетический состав мышей. Хотя мышам V1 не хватает OD колонны, одиночные нейроны в бинокулярной зоне V1 показывают значительные свойства OD. Например, большинство клеток более сильно реагируют на контралатеральную стимуляцию, чем на ипсилатеральную стимуляцию. Временное закрытие одного глаза в критический период вызывает значительный сдвиг в распределении индекса OD9,10,11. Таким образом, MD может быть использован для создания модели пластичности OD для исследования того, как гены, участвующие в нервных расстройств развития влияют на корковую пластичность in vivo.
Здесь мы внедряем экспериментальный метод md и предлагаем широко используемый метод (электрофизиологическая запись) для анализа изменений в пластичности ОД во время монокулярной визуальной депривации. Метод широко используется во многих лабораториях уже более 20 лет12,13,14,15,16. Есть и другие методы, используемые в измерении пластичности ОД, а также, такие как хронические визуальные вызвал потенциал (VEP) записи17, и внутреннее оптическое изображение (IOI)18. Существенным преимуществом этого острого метода является то, что его легко следовать, и результаты удивительно надежны.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
В этом протоколе, мышей C57Bl/6 мышки были получены от института животных лаборатории Академии медицинских наук Sichuan и стационара провинции Sichuan. Все процедуры по уходу за животными и экспериментальные процедуры были одобрены Институциональным комитетом по уходу и использованию животных, Университет электронных наук и технологий Китая.
1. Монокулярная депривация (MD) в послеродовой день 28 у мышей
- Положите хирургические инструменты, шовную иглу (диаметр 0,25 мм, диаметр струны 0,07 мм) и ватные тампоны в алюминиевую коробку и автоматически автоматизируй их при 120 градусах По Цельсию за 0,5 л. Стерилизовать капот с помощью 75% этанола. Высушите хирургические инструменты в сушильной печи.
- Приготовьте 2% раствор агарозы, положите его на водяную ванну при 75 градусах Цельсия, чтобы избежать затвердевания.
- Используйте изофруран, смешанный с кислородом, для обезболительной терапии мыши (2% индукции и 1,2-1,5% обслуживания). Зафиксировать мышь на стереотаксическом аппарате и использовать теплорегулирующее устройство для поддержания температуры тела мыши при температуре 37 градусов по Цельсию и предотвращения переохлаждения.
- Нанесите тонкий слой нефтяной глазной мази на оба глаза.
- Под анатомическим микроскопом с подсветкой шов веко на один глаз. Сделать иглу пройти, хотя обе стороны века 2x(Рисунок 1А) и сделать около четырех стежков.
- Узел нить 2-3x, а затем обрезать поток. Нанесите 3 злиц мгновенного сушки клея на узел, чтобы повысить его устойчивость. Затем вырежьте дополнительную нить швов.
- Обеспечить интраперитонеальную инъекцию бупренорфина (1 мг/кг) в мышь.
- Перенесите мышь на грелку, чтобы поддерживать температуру тела на уровне 37 градусов по Цельсию и предотвращать переохлаждение и контролировать ее до тех пор, пока она не придет в сознание.
- Когда мышь полностью проснулся место его в отдельной клетке проведения.
- Проверяйте веки ежедневно, чтобы убедиться, что они остаются закрытыми и неинфицированными. Исключите мышь, если обнаружено отверстие для век.
- Перед электрофизиологической записью используйте изофруран, смешанный с кислородом, для обезболности мыши (2% индукции и 1,2-1,5% обслуживания).
- Удалите стежки ножницами для глаз, чтобы разоблачить глазное яблоко. Тщательно обрезать веки.
- Промыть глаз раствором хрусталика и проверить глаза под микроскопом для ясности. Исключите мышей с непрозрачностью роговицы или признаками инфекции.
2. Craniotomy в бинокль мыши V1 области после монокулярной лишения на 4-й день
- После анестезии мыши, проверить на глубину анестезии на отсутствие реакции на щепотку ног.
- Поместите и зафиксировать мышь на стереотаксическом аппарате. Отрегулируйте высоту ушной прыги и зубного стержня, чтобы сохранить мозг плоским и стабильным.
- Используйте грелку для поддержания температуры тела.
- Нанесите на поверхность глаз на нефтяной основе глазную мазь, чтобы они не были влажными.
- Удалите волосы на голове мыши, чтобы разоблачить ее кожу. Натрите кожу чередующимися скрабы йода и 70% этанола 3x.
- Вырежьте 8 х 8 мм области кожи между ушами, чтобы разоблачить череп и удалить ткань головы. Затем удалите надлежащую соединительную ткань с перекисью водорода 30%.
- Просверлите отверстие 1 х 1 мм в черепе над мозжечкой. Прикрепите небольшой костяной винт в отверстие в качестве эталона.
- Выполните небольшую краниотомию диаметром 1 мм в бинокулярной области V1 от контралатерального полушария до лишенного глаза(рисунок 1B,A-P: лямбда -0,51-лямбда 1,67 мм; М-Л: -2,6----3,0 мм; D-V: 0-1 мм). Аккуратно удалите фрагмент черепа, не повредив мозг.
- Обложка подвергаются корковой поверхности с 75 qL 2% агарозы при 40 градусов по Цельсию, чтобы предотвратить сушки.
- Зафиксите вольфрамовый электрод на стереотаксической раме. Поместите вольфрама электрод вертикально на поверхности открытой коры, бинокль области V1, чтобы убедиться, что клетки, которые записаны реагировать на оба глаза.
- Используйте ватные тампоны, чтобы удалить гель для глаз и применить кремниевое масло к глазу каждые 2 ч.
3. Визуальная стимуляция и электрофизиологическая запись
- Замаскируйте один глаз непрозрачной пластиковой пластиной. Расположите LCD-монитор на 23 см от глаза мыши.
- Снизить анестезию до 0,5-0,8%, когда мышь полностью обезболивается.
- Предварительное продвижение микроэлектрода медленно с маслом гидравлического микроманипулятора. Остановите его, когда наблюдается высокое соотношение сигнала к шуму и электрод продвинут до слоя 4(рисунок 1C,примерно 250-450 мкм в глубину). Убедитесь, что коэффициент усиления установлен на уровне 1000, фильтр - 300-100 Гц, а частота выборки - 40 Гц.
- На светодиодном мониторе представлена полнополевой движущейся синусоидальной решетки(рисунок 1D,12 направлений, 100% контраст, 2 Гц временной частоты, 0,04 цикла на степень пространственной частоты).
- Измерьте реакцию клетки, стимулируя ипсилатеральный и контралатеральный глаз отдельно. Настоящее 3-5x всего.
- Измерьте реакцию от пяти до восьми ячеек при каждом проникновении. Выполните четыре-шесть проникновений в каждой мыши.
- После записи отрегулируйте скорость потока изофлуран до 5% или больше, продолжайте изофлуранное воздействие в течение 1 мин, а затем выполните вывих шейки матки.
ПРИМЕЧАНИЕ: Отдельные проникновения были расположены по крайней мере 200 мкм друг от друга в бинокулярной зоне V1.
4. Оффлайн сортировка спайков и анализ данных
- Обнаружить шипы, когда необработанный сигнал пересекает пороговый уровень. Выровнять захваченные шипы на первом положительном или отрицательном пике. Используйте программное обеспечение для обнаружения шипов из разных ячеек.
- Установите два курсора: один для положительного, а другой для отрицательного отклонения. Установите шаблон спайка(рисунок 2A). Установите область шаблона к тому с наиболее значительным изменением между различными типами шипов.
- Используйте анализ основных компонентов, чтобы разделить их на кластеры. Методы кластеризации могут варьироваться в зависимости от различных лабораторий.
- Классифицировать пик границы с помощью алгоритма K-средств.
- Соотнесите ориентацию с скоростью стрельбы шипа и начастоте кривые настройки ориентации для ипсилатерального и контралатерального глаза.
- Рассчитайте индекс OD для одной единицы, который представляет соотношение силы контралатерального/ипсилатерального ответа:
где Rcontra и Ripsi являются оптимальным ответом клетки для контралатерального и ипсилатерального глаза, соответственно, иR-spon является спонтанной активностью клетки. - Присвоить OD баллы 1-7 следующим образом: от 1 до 0,75 евро и 1; от 0,75 до 0,45 евро 2; от 0,45 до 0,15 евро 3; от 0,15 до 0,15 евро 4; от 0,15 до 0,45 х 5; от 0,45 до 0,75 - 6; и от 0,75 до 1 и 7.
- Рассчитайте контрлатеральный индекс смещения (CBI):
где N является номером ячейки, и nx равняется номеру ячейки с od оценки равны х.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Экспериментальные результаты, описанные здесь, позволяют успешно измерять пластичность MD и OD из обездоленной и нелишенной мыши в критический период (P19-P32). На рисунке 1 показано, как выполнять записи одного блока в слое 4 из V1 бинокль зоны для сравнения ответов в ipsilateral и контралатерального глаза 4 дней после MD. На рисунке 2 показаны измерения сортировки шипов и настройки ориентации для стимуляции ипсилатеральных и контралатеральных глаз. Для сортировки шипов шаблон спайка был установлен путем кластеризации основных весов компонентов шипов. В качестве примера в(Рисунок 2A,B), ячейка 01 и ячейка 02 были классифицированы по сортировке шипов. Кривые настройки ориентации отдельных единиц измерялись стимуляцией ипсилатеральных и контралатеральных глаз. На рисунке 2C, D показаны кривые настройки ориентации четырех образцов ячеек, в которых два из мыши, которые прошли MD и другие из мыши, которые этого не сделали. Наши результаты показывают, что скорость стрельбы была относительно близко, стимулируя контралатеральный и исилатеральный глаз в мыши через 4 дня после MD была выполнена(Рисунок 2C). Тем не менее, скорость стрельбы, полученная путем стимулирования контралатерального глаза была гораздо сильнее, чем полученные путем стимулирования ипсилатерального глаза в нелишенной мыши (Рисунок 2D). Рисунок 3А показывает распределение оценок OD для всех единиц и индекса CBI для мыши, которая прошла MD (P28, 4 дня после MD). На рисунке 3B показаны оценки OD для всех единиц и индекс CBI от нелишенной мыши C57/BL6 (P26, no MD). Индекс CBI составляет 0,38 для МЫШИ MD и 0,67 для другой без MD.
Результаты показывают, что реакция нейронов V1 на контралатеральный глаз на стимул была гораздо сильнее, чем реакция ипсилатерального глаза в бинокулярном сегменте нелишенной мыши. Однако, через 4 дня после MD в критический период, реакция большинства нейронов на стимуляцию контралатерального глаза была относительно близкой или слабой, чем реакция на ипсилатеральный глаз. Таким образом, V1 нейронов в критические периоды имеют значительную пластичность ОД. MD изменяет относительную силу реакции клетки, стимулируя контралатеральный и ипсилатеральный глаз.
Рисунок 1: Схема эксперимента по визуальной депривации. (A) Схема для зашивания века. Игла проходит через век 2x, а затем 2-3 узлов сделаны. Изображения 1-4 показывают положение, где игла проходит через веко. (B) Запись схематичный в анестезируется, голова фиксированной мыши. Увеличенный вид V1 отображается в сером круге, а бинокль зона обозначена темно-серым цветом. Места записи в бинокулярной зоне отображаются небольшими кругами. (C) Корональная плоскость мозга мыши и записи сайтов показаны в слое 4 V1. (D) Иллюстрации визуального стимула различных ориентаций. В каждом измерении были полностью использованы 12 различных ориентаций. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 2: Иллюстрации процедуры анализа данных. (A) Спайки были отсортированы с помощью коммерческого программного обеспечения (см. Таблица материалов). Волновая форма в зеленом цвете показывает отфильтрованный сигнал (0,3-10 кГц). Две ячейки были отсортированы по отфильтрованным данным. (B) Пример разделения пики деятельности на одном микроэлектроде путем сортировки шипов. Метод сортировки шипов является основным компонентом анализа. (C)Ориентация настройки из двух клеток, чтобы ответить на контралатеральные (красная твердая линия) и ipsilateral (красная пунктирная линия) стимулы в монокулярной лишенной мыши (ячейка 01 и ячейка 02). (D) Ориентация настройки из двух клеток, чтобы ответить на контралатеральные (голубая твердая линия) и ipsilateral (голубая пунктирная линия) стимулы для глаз в нелишенной мыши (ячейка 03 и ячейка 04). Панель ошибок указывает на стандартную погрешность среднего значения (SEM) в каждом измерении. Черная линия указывает на спонтанную активность. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 3: Сдвиг в индексе OD MD. Мы зафиксировали реакцию клетки из бинокулярной зоны в контралатеральном мозге, стимулируя ипцилатеральные и контралатеральные глаза индивидуально. Мы вычислили и добавили индекс OD для отдельных единиц. (A) Распределение od баллов для 38 нейронов, записанных с c57/BL6 мыши, которые прошли MD от P28-P32. (B) Распределение od счетов для 38 нейронов от нелишенной мыши C57/BL6. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Мы представляем подробный протокол для MD и измерения пластичности OD с помощью записи одного блока. Этот протокол широко используется в зрительной нейронауке. Хотя протокол MD не является сложным, Есть некоторые критические хирургические процедуры, которые должны соблюдаться тщательно. Во-первых, есть две важные детали, обеспечивающие качество сшивания. Шов достаточно стабилен, если стежки сосредоточены в медиальной части века. Кроме того, 3 л клея наносится на головку узла, чтобы повысить стабильность узла, чтобы предотвратить повторное открытие глаза. Во-вторых, некоторые ключевые шаги должны быть приняты для улучшения заживления ран и уменьшить дискомфорт. Метод шва очень важен для протокола. Предыдущие исследования доказали, что простой непрерывный шаблон швов имеет преимущества лучшего заживления ран и короче время зашивания19,20. Нить должна быть тонкой и стабильной, чтобы избежать причинения большой раны и уменьшить дискомфорт. Шовная игла диаметром около 0,25 мм подходит для зашивания и требуется от двух до трех узлов.
Есть также некоторые ключевые моменты, которые необходимо обратить внимание на в записи. Контроль концентрации анестезии является важным фактором в электрофизиологических записях. У обезжиренных животных эксперимент очень прост в управлении, а результаты очень стабильны и надежны. Многие предыдущие исследования использовали уретан в качестве анестезии. Однако, трудно использовать уретан для того чтобы контролировать глубину анестезии в мышах. На более низких уровнях, мышей не полностью анестезируется, и на более высоких уровнях, мышей склонны к смерти. Изофлуран более подходит в качестве анестезии в исследовании мыши. Хотя это почти невозможно получить хорошую нейронную активность в неокортекс мышей, которые получают более 1% изофурана21, большинство нейронов V1 имеют хорошую зрительную вызываемую активность на более низких уровнях изофруран. Таким образом, начните с более высокой концентрации изолюран (1%) обезболовать мышь, а затем уменьшить изолюран (0,5-0,8%) когда мышей полностью под анестетом. Кроме того, чередование измерений от лишенного глаза и необездоеденного глаза может обеспечить точность экспериментальных результатов. Нецелесообразно много раз измерять реакцию одного глаза, а затем измерять другой глаз, потому что электрод может двигаться, а интенсивность реакции клетки может меняться во время длительных записей. Кроме того, этот протокол нацелен на нейроны в слое 4, который является основным слоем таламо-реципиента в V1. Но у пожилых мышей, которые действительно проявляют пластичность ОД, в первую очередь опосредованную потенцированием открытых глаз, лучше записывать в слоях 2 или 3, которые сохраняют пластичность после критического периода. Поэтому важно определить корковый ламинар при записи.
Есть еще некоторые ограничения в методах. Расчет относительно точного индекса CBI требует 4-6 проникновений и более 30 единиц, потому что запись слишком мало образцов приведет к неточным результатам. Но получить более 30 высококачественных агрегатов из одной мыши непросто. Лучшим методом является использование многоузловой записи, которая может обеспечить достаточное количество единиц в одном измерении. Кроме того, запись VEP и IOI также могут быть использованы для измерения пластичности ОД17,18. Запись одного блока включает в себя активность отдельных нейронов, в то время как VEP включает в себя запись активности суммы нейронов вблизи электрода. Но данные записи одного блока не дают никакой информации о синхронизации между нейронами, в то время как амплитуды VEP зависят от временной синхронизации среди нейронов22. Реверсивная решетка часто используется для измерения VEP. Наиболее часто используемая частота разворота составляет 3-4 Гц. Однако точное значение определяется скоростью обновления компьютера при представлении решетки. Пластичность ОД измеряется путем сравнения среднего значения амплитуд VEP, вызванных обездоленным и нелишенным глазом. Метод IOI может эффективно обнаруживать сигнал, зависящий от уровня кислорода в крови, вызванный контралатеральной и ипсилатеральной стимуляцией. Это может показать OD пластичность большой площади в V1.
Таким образом, одноединая запись и IOI подходят для экспериментов по острой анестезии. В будущем измерения пластичности MD и OD в сочетании будут широко использоваться при изучении нервной пластичности в качестве экспериментального метода.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.
Acknowledgments
Это исследование было поддержано Национальным фондом естественных наук Китая (81571770, 81771925, 81861128001).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 502 glue | M&G Chenguang Stationery Co., Ltd. | AWG97028 | |
| Acquizition card | National Instument | PCI-6250 | |
| Agarose | Biowest | G-10 | |
| Amplifier | A-M system | Model 1800 | |
| Atropine | Aladdin Bio-Chem Technology Co., Ltd | A135946-5 | |
| Brain Stereotaxic Apparatus | RWD Life Science Co.,Ltd | 68001 | |
| Cohan-Vannas spring scissors | Fine Science Tools | 15000-02 | |
| Contact Lenses Solutions | Beijing Dr. Lun Eye Care Products Co., Ltd. | GM17064 | |
| Cotton swabs | Henan Guangderun Medical Instruments Co.,Ltd | ||
| Fine needle holder | SuZhou Stronger Medical Instruments Co.,Ltd | CZQ1370 | |
| Forcep | 66 Vision Tech Co., Ltd. | 53320A | |
| Forcep | 66 Vision Tech Co., Ltd. | 53072 | |
| Forcep | 66 Vision Tech Co., Ltd. | #5 | |
| Heating pad | Stryker | TP 700 T | |
| Illuminator | Motic China Group Co., Ltd. | MLC-150C | |
| Isoflurane | RWD Life Science Co.,Ltd | R510-22 | |
| LCD monitor | Philips (China) Investment Co., Ltd. | 39PHF3251/T3 | |
| Microscope | SOPTOP | SZMT1 | |
| Noninvasive Vital Signs Monitor | Mouseox | ||
| Oil hydraulic micromanipulator | NARISHIGE International Ltd. | PC-5N06022 | |
| Petrolatum Eye Gel | Dezhou Yile Disinfection Technology Co., Ltd. | 17C801 | |
| Spike2 | Cambridge Electronic Design, Cambridge, UK | Spike2 Version 9 | |
| Surgical scissors | 66 Vision Tech Co., Ltd. | 54010 | |
| Surgical scissors | 66 Vision Tech Co., Ltd. | 54002 | |
| Suture Needle | Ningbo Medical Co.,Ltd | 3/8 arc 2.5*8 | |
| Tungsten Electrode | FHC, Inc | L504-01B | |
| Xylocaine | Huaqing |
References
- Hubel, D. H., Wiesel, T. N. Effects of monocular deprivation in kittens. Naunyn-Schmiedebergs Archiv für experimentelle Pathologie und Pharmakologie. 248 (6), 492-497 (1964).
- Daw, N. W., Fox, K., Sato, H., Czepita, D. Critical period for monocular deprivation in the cat visual cortex. Journal of Neurophysiology. 67 (1), 197-202 (1992).
- Guire, E. S., Lickey, M. E., Gordon, B. Critical period for the monocular deprivation effect in rats: assessment with sweep visually evoked potentials. Journal of Neurophysiology. 81 (1), 121-128 (1999).
- Wang, L., Sarnaik, R., Rangarajan, K. V., Liu, X., Cang, J. Visual receptive field properties of neurons in the superficial superior colliculus of the mouse. Journal of Neuroscience. 30 (49), 16573-16584 (2010).
- Niell, C. M. Cell Types, circuits, and receptive fields in the mouse visual cortex. Annual Review of Neuroscience. 38 (1), 413-431 (2015).
- Lee, S. H., et al. Activation of specific interneurons improves V1 feature selectivity and visual perception. Nature. 488 (8), 379-383 (2012).
- Cossell, L., et al. Functional organization of excitatory synaptic strength in primary visual cortex. Nature. 518 (2), 399-403 (2015).
- Lacaruso, M. F., Gasler, L. T., Hofer, S. B. Synaptic organization of visual space in primary visual cortex. Nature. 547 (7), 449-452 (2017).
- Metin, C., Godement, P., Imbert, M. The primary visual cortex in the mouse: Receptive field properties and functional organization. Experimental Brain Research. 69 (3), 594-612 (1988).
- Marshel, J. H., Garrett, M. E., Nauhaus, I., Callaway, E. M. Functional specialization of seven mouse visual cortical areas. Neuron. 72 (6), 1040-1054 (2011).
- Gordon, J. A., Stryker, M. P. Experience-dependent plasticity of binocular responses in the primary visual cortex of the mouse. The Journal of Neuroscience. 16 (10), 3274-3286 (1996).
- McGee, A. W., Yang, Y., Fischer, Q. S., Daw, N. W., Strittmatter, S. M. Experience-driven plasticity of visual cortex limited by myelin and Nogo receptor. Science. 309 (5744), 2222-2226 (2005).
- Sawtell, N. B., et al. NMDA receptor-dependent ocular dominance plasticity in adult visual cortex. Neuron. 38 (6), 977-985 (2003).
- Hofer, S. B., Mrsic-Flogel, T. D., Bonhoeffer, T., Hubener, M. Prior experience enhances plasticity in adult visual cortex. Nature Neuroscience. 9 (12), 127-132 (2006).
- Crozier, R. A., Wang, Y., Liu, C., Bear, M. F. Deprivation-induced synaptic depression by distinct mechanisms in different layers of mouse visual cortex. Proceedings of the National Academy of Sciences. 104 (4), 1383-1388 (2007).
- Tagawa, Y., Kanold, P. O., Majdan, M., Shatz, C. J. Multiple periods of functional ocular dominance plasticity in mouse visual cortex. Nature Neuroscience. 8 (3), 380-388 (2005).
- Lickey, M. E., Pham, T. A., Gordon, B. Swept contrast visual evoked potentials and their plasticity following monocular deprivation in mice. Vision Research. 44, 3381-3387 (2004).
- Cang, J., Kalatsky, V. A., Lowel, S., Stryker, M. P. Optical imaging of the intrinsic signal as a measure of cortical plasticity in the mouse. Vision Neuroscience. 22 (5), 685-691 (2005).
- Khan, I. U., et al. Evaluation of different suturing techniques for cystotomy closure in canines. Journal of Animal & Plant Sciences. 23 (4), 981-985 (2013).
- Weisman, D. L., Smeak, D. D., Birchard, S. J., Zweigart, S. L. Comparison of a continuous suture pattern with a simple interrupted pattern for enteric closure in dogs and cats: 83 cases (1991-1997). Journal of the American Veterinary Medical Association. 214 (10), 1507-1510 (1999).
- Heneghan, C. P. H., Thornton, C., Navaratnarajah, M., Jones, J. G. Effect of isoflurane on the auditory evoked response in man. BJA: British Journal of Anaesthesia. 59 (3), 277-282 (1987).
- Mitzdorf, U. Current source-density method and application in cat cerebral cortex: investigation of evoked potentials and EEG phenomenal. Physiological Reviews. 65 (1), 37-100 (1985).
