Summary
Questo articolo presenta procedure sperimentali per valutare i disturbi della memoria nei topi epilettici indotti da pilocarpina. Questo protocollo può essere utilizzato per studiare i meccanismi patofisiologici del declino cognitivo associato all'epilessia, che è una delle comorbidità più comuni nell'epilessia.
Abstract
La compromissione cognitiva è una delle comorbidità più comuni nell'epilessia del lobo temporale. Per ricapitolare il declino cognitivo associato all'epilessia associata all'epilessia in un modello animale di epilessia, abbiamo generato topi epilettici cronici trattati con pilocarpina. Presentiamo un protocollo per tre diversi test comportamentali utilizzando questi mouse epilettici: nuova posizione dell'oggetto (NL), nuovi test di riconoscimento degli oggetti (NO) e di separazione dei modelli (PS) per valutare rispettivamente l'apprendimento e la memoria per luoghi, oggetti e contesti. Spieghiamo come impostare l'apparato comportamentale e fornire procedure sperimentali per i test NL, NO e PS a seguito di un test sul campo aperto che misura le attività locomotorie basali degli animali. Descriviamo anche i vantaggi tecnici dei test NL, NO e PS rispetto ad altri test comportamentali per la valutazione della funzione di memoria nei topi epilettici. Infine, discutiamo delle possibili cause e soluzioni per i topi epilettici che non riescono a fare 30 s di buon contatto con gli oggetti durante le sessioni di familiarizzazione, che è un passaggio critico per il successo dei test di memoria. Pertanto, questo protocollo fornisce informazioni dettagliate su come valutare le compromissione di memoria associate all'epilessia utilizzando i topi. I test NL, NO e PS sono semplici, saggi efficienti che sono appropriati per la valutazione di diversi tipi di memoria nei topi epilettici.
Introduction
L'epilessia è un disturbo cronico caratterizzato da convulsioni ricorrenti spontanee1,2,3. Poiché le crisi ripetitive possono causare anomalie strutturali e funzionali nel cervello1,2,3, un'attività convulsiva anomala può contribuire alla disfunzione cognitiva, che è una delle comorbidità associate all'epilessia più comuni4,5,6. Contrariamente agli eventi convulsioni cronici, che sono transitori e momentanei, i disturbi cognitivi possono persistere durante la vita dei pazienti epilettici, deteriorando la loro qualità di vita. Pertanto, è importante comprendere i meccanismi patofisiologici del declino cognitivo associato all'epilessia.
Vari modelli animali sperimentali di epilessia sono stati utilizzati per dimostrare i deficit di apprendimento e memoria associati all'epilessia cronica7,8,9,,10,11,12. Ad esempio, il labirinto d'acqua Morris, il condizionamento contestuale della paura, la posizione degli oggetti (NL) e i nuovi test di riconoscimento degli oggetti (NO) sono stati spesso utilizzati per valutare la disfunzione della memoria nell'epilessia del lobo temporale (TLE). Poiché l'ippocampo è una delle regioni primarie in cui il TLE mostra patologia, i test comportamentali che possono valutare la funzione di memoria dipendente dall'ippocampo sono spesso selezionati preferibilmente. Tuttavia, dato che le convulsioni possono indurre neurogenesi ippocampale aberrante e contribuire al declino cognitivo associato all'epilessia10, i paradigmi comportamentali per testare la funzione neuronale neonatale (cioè, la separazione del modello spaziale,PS) 8,13 possono anche fornire informazioni preziose sui meccanismi cellulari delle compromissione della memoria nell'epilessia.
In questo articolo, dimostriamo una batteria di test di memoria, NL, NO, e PS, per topi epilettici. I test sono semplici e facilmente accessibili e non richiedono un sistema sofisticato.
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Protocol
Tutte le procedure sperimentali sono state approvate dal Comitato Etico dell'Università Cattolica della Corea e sono state eseguite in conformità con i National Institutes of Health Guide for the Care and Use of Laboratory Animals (NIH Publications N. 80-23).
1. Test di posizione dell'oggetto nuovo (NL)
- Preparare i topi epilettici C57BL/6 o transgenici 4–6 settimane dopo l'iniezione di pilocarpina.
NOTA: Le crisi acutati sono state indotte dall'iniezione di pilocarpina intraperitoneale (IP), seguendo il protocollo descritto nel nostro precedente rapporto14. - Trasferire i topi epilettici dalla sala di riproduzione alla sala dei comportamenti un giorno prima dell'inizio dei test comportamentali. Lasciare che i topi si abittano per almeno 12 h durante la notte.
- Nella sala dei comportamenti, separare i singoli topi in nuove gabbie per alloggiamento singolo. Scrivere le informazioni per ogni animale sulla scheda gabbia e tenere gli animali nelle stesse gabbie durante i test comportamentali. Più gabbie possono essere trasferite simultaneamente utilizzando un carrello.
- Il giorno successivo, inizia 3 giorni di sessioni di assuefazione (H1-H3) al mattino presto. Acclimatare gli animali alla luce bassa nelle loro gabbie di casa per almeno 30 min.
- Preparare una casella di campo aperta con dimensioni esterne di 44 x 44 x 31 cm e dimensioni interne di dimensioni 43 x 43 x 30,5 cm. Il giorno 1 dell'assuefazione (H1), posizionare un illuminometro al centro della scatola di campo aperto e regolare l'illuminazione a 60 lux.
- Spruzzare il pavimento e le pareti della scatola aperta con il 70% di etanolo e pulire con un tovagliolo di carta pulito per rimuovere possibili spunti olfattivi. Quindi attendere almeno 1 min fino a quando l'alcol residuo si è asciugato completamente.
- Valutare l'attività locomotoria di ogni mouse eseguendo un test sul campo aperto.
- Per registrare e monitorare il comportamento di ogni mouse sperimentale, utilizzare il software di monitoraggio video del comportamento animale (vedere Tabella dei materiali).
- Una volta aperto il software di tracciamento video, calibrare le dimensioni della scatola del campo aperto. Quindi, impostare la zona per il rilevamento. Imposta 3 s di latenza e 15 min di tempo di acquisizione per evitare di tracciare le mani di uno sperimentatore. Inserire le informazioni su ogni topo sperimentale (gruppo, sesso, età, ecc.).
- Quindi, posizionare delicatamente un mouse sperimentale nella casella di campo aperta di fronte alla parete. Fare questo posizionandolo sul coperchio della gabbia per ridurre al minimo lo stress e l'ansia associati alla movimentazione. Quindi, rilasciare il mouse vicino al muro della casella di campo aperto che è il più lontano da dove gli oggetti saranno durante la sessione di familiarizzazione (passaggio 1.9.3.).
NOTA: Una volta che il mouse è nella casella del campo aperto, il software di monitoraggio del mouse lo rileverà automaticamente e avvierà la registrazione. Per un tracciamento ottimale dell'esplorazione, la telecamera può essere posizionata direttamente sopra la casella di campo aperta. - Dopo 15 min di registrazione, riportare l'animale nella sua gabbia di casa posizionandolo sul coperchio della gabbia. Pulire la scatola a campo aperto con 70% spray etanolo e pulire con un tovagliolo di carta pulito tra una prova e l'altra. Ripristinare la luce intensa e misurare la distanza totale dell'animale spostato utilizzando il software di monitoraggio video secondo le istruzioni del produttore.
- Aprire il software di tracciamento video e le clip video. Quindi, fare clic su Analisi per calcolare la distanza totale spostata in base alla calibrazione delle dimensioni della casella del campo aperto.
- Il giorno 2 e il giorno 3, eseguire le sessioni di assuefazione (H2, H3) ripetendo i passaggi da 1.3 a 1.7.
- Il giorno 4, eseguire la sessione di familiarizzazione (F1).
- Nella luce fioca, posizionare ogni mouse nel campo aperto vuoto per 3 min. Dopo quella breve riavversione, riporta l'animale alla sua gabbia di casa.
- Durante l'assuefazione, pulire accuratamente gli oggetti con il 70% di etanolo e pulirli con un tovagliolo di carta. Attendere almeno 1 min per l'alcol residuo per asciugare completamente.
- Posizionare due oggetti identici (bambole di gomma, oggetto A) nell'arena campo aperto 5 cm di distanza dalle pareti adiacenti. Fissare gli oggetti con nastro a doppio lato. Introdurre il mouse sperimentale nella casella di campo aperto, di fronte alla parete più lontana dagli oggetti.
- Consenti l'esplorazione gratuita per 20 min e misura manualmente il tempo trascorso esplorando entrambi gli oggetti utilizzando due cronometri. Una volta che il topo raggiunge il tempo minimo di esplorazione (30 s) per entrambi gli oggetti, fermare la sessione di F1 e trasferire l'animale alla sua gabbia di casa. Se il mouse non riesce a esplorare gli oggetti per 30 s entro 20 min, rimuovere il mouse dalla casella del campo aperto ed escluderlo da ulteriori sessioni.
- Dopo che l'animale viene rimosso dalla scatola aperta, pulire accuratamente il pavimento e le pareti della scatola con 70% spray etanolo e pulirli con un tovagliolo di carta.
NOTA: Misurare il momento in cui il mouse tocca gli oggetti con i baffi, il muso o le zampe anteriori. Non quantificare come tempo esplorativa i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio seduto sull'oggetto, passando per l'oggetto o appoggiato con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto.
- Il giorno 5, eseguire la sessione di test NL.
- Trasferire il mouse dalla sua gabbia di casa all'area aperta del campo per una riassenza di 3 min. Quindi riportare l'animale alla sua gabbia di casa.
- Durante l'assuefazione, pulire accuratamente gli oggetti con il 70% di etanolo e pulirli con un tovagliolo di carta. Attendere almeno 1 min per l'alcol residuo per asciugare completamente.
- Sposta un oggetto (bambola di gomma, oggetto A) nella posizione diagonale, a 5 cm di distanza dalle pareti adiacenti. Fissare l'oggetto con nastro a doppio lato. Trasferire il mouse sperimentale sul coperchio della gabbia nell'area aperta del campo e posizionarlo di fronte alla parete della scatola aperta.
NOTA: controbilanciare la posizione dell'oggetto spostato per ridurre qualsiasi potenziale preferenza innata per una determinata direzione. Ad esempio, modificare la posizione dell'oggetto preferito dalla sessione di familiarizzazione per metà degli animali sperimentali e, per il resto degli animali, spostare l'oggetto meno preferito dalla sessione di familiarizzazione. - Consenti 10 min di esplorazione gratuita e registra con un sistema di tracciamento video. Misurare il tempo impiegato per esplorare ogni oggetto utilizzando due cronometri e calcolare il rapporto di discriminazione come
NOTA: Misurare il momento in cui il mouse tocca gli oggetti con i baffi, il muso o le zampe anteriori. Non quantificare come tempo esplorativa i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio seduto sull'oggetto, passando per l'oggetto o appoggiato con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto. - Afferrare la coda del topo sperimentale e posizionarlo sul coperchio della gabbia per il trasferimento alla sua gabbia di casa. Per 3 giorni (giorni 6-8), lasciate riposare il mouse con accesso gratuito al cibo e all'acqua.
- Una volta che l'animale viene rimosso dalla scatola aperta, pulire accuratamente il pavimento e le pareti della scatola con 70% spray etanolo e pulire con un tovagliolo di carta.
2. Nuovo test di riconoscimento degli oggetti (NO)
- Il giorno 9, eseguire una sessione di assuefazione di 15 min ripetendo i passaggi da 1,2 a 1,7.
- Il giorno 10, eseguire la sessione di familiarizzazione (F1).
- Nella luce fioca, posizionare il mouse nel campo aperto vuoto per 3 min. Dopo aver abituato il mouse all'area aperta del campo, riportarlo temporaneamente nella sua gabbia di casa.
- Durante l'assuefazione, pulire accuratamente gli oggetti con il 70% di etanolo e pulire con un tovagliolo di carta. Attendere almeno 1 min per l'alcol residuo ad asciugare completamente.
- Collocare due oggetti identici (50 mL di tubi di plastica riempiti con 40 mL d'acqua, oggetto B) nel campo aperto a 5 cm di distanza dalle pareti adiacenti. Fissare gli oggetti con nastro a doppio lato. Introdurre il mouse sperimentale nella casella di campo aperta di fronte alla parete più lontana dagli oggetti.
- Poiché l'animale è esposto ai due oggetti diversi (tubo di plastica da 50 mL riempito con 40 mL d'acqua, oggetto B; vaso di vetro Coplin, oggetto C) nel test NO, controbilancia l'oggetto durante la sessione di F1. Ad esempio, presentare due oggetti identici (barattoli di vetro Coplin, oggetto C) per la metà degli animali del gruppo.
- Consenti l'esplorazione gratuita per 20 min e misura manualmente il tempo trascorso esplorando entrambi gli oggetti utilizzando due cronometri. Una volta che il topo raggiunge il tempo minimo di esplorazione (30 s) per entrambi gli oggetti, fermare la sessione di F1 e trasferire l'animale alla sua gabbia di casa. Se il mouse non riesce a esplorare gli oggetti per 30 s entro 20 min, rimuoverlo dalla casella del campo aperto ed escluderlo da ulteriori sessioni.
- Dopo che l'animale viene rimosso dalla scatola aperta, pulire accuratamente il pavimento e le pareti della scatola con 70% spray etanolo e pulirli con un tovagliolo di carta.
NOTA: Misurare il momento in cui il mouse tocca gli oggetti con i baffi, il muso o le zampe anteriori. Non quantificare come tempo esplorativa i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio seduto sull'oggetto, passando per l'oggetto o appoggiato con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto.
- Il giorno successivo (giorno 11), eseguire la sessione di test NO.
- Trasferire il mouse dalla sua gabbia di casa al campo aperto per una riabitoriera per 3 min, e quindi riportare l'animale alla sua gabbia di casa.
- Durante l'assuefazione, pulire accuratamente gli oggetti con il 70% di etanolo e pulire con un tovagliolo di carta. Attendere almeno 1 min per l'alcol residuo per asciugare completamente.
- Sostituire un oggetto (50 mL di plastica riempito con 40 mL di acqua, oggetto B) con un altro oggetto (vaso di vetro Coplin, oggetto C) a 5 cm di distanza dalle pareti adiacenti. Fissare gli oggetti con nastro a doppio lato. Trasferire il mouse sperimentale sul coperchio della gabbia sul campo aperto e posizionarlo di fronte alla parete. Controbilanciare gli oggetti presentati insieme durante il test NO. Ad esempio, sostituire un barattolo coplin di vetro (oggetto C) con un tubo di plastica da 50 mL riempito con 40 mL di acqua (oggetto B) per i topi esposti ai due vasi di vetro Coplin (oggetto C) durante la sessione di familiarizzazione.
NOTA: È anche possibile eseguire il controbilanciamento della posizione dell'oggetto sostituito per ridurre la potenziale preferenza innata per una determinata direzione. Ad esempio, per ogni coorte di animali esposti all'insieme di due oggetti (oggetto B o oggetto C), modificare l'oggetto preferito nella sessione di familiarizzazione per metà degli animali sperimentali e per il resto degli animali sostituire l'oggetto meno preferito nella sessione di familiarizzazione. - Consentire 10 min di esplorazione gratuita e registrarlo utilizzando un sistema di tracciamento video. Misura il tempo impiegato per esplorare ogni oggetto utilizzando due cronometri e calcola il rapporto di discriminazione.
NOTA: Misurare il momento in cui il mouse tocca gli oggetti con i baffi, il muso o le zampe anteriori. Non quantificare come tempo esplorativa i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio seduto sull'oggetto, passando per l'oggetto o appoggiato con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto. - Afferrare la coda del topo sperimentale e posizionarlo sul coperchio della gabbia per il trasferimento alla sua gabbia di casa. Per 3 giorni (giorni 12-14), lasciate riposare il mouse con accesso gratuito al cibo e all'acqua.
- Una volta che l'animale viene rimosso dalla scatola aperta, pulire accuratamente il pavimento e le pareti della scatola di campo aperto con 70% spray etanolo e pulire con un tovagliolo di carta.
3. Test di separazione dei motivi (PS)
- Il giorno 15, eseguire la prima sessione di familiarizzazione (F1) per il test PS.
- Trasferire il mouse dalla sua gabbia di casa all'area di campo aperto per la riassuetazione per 3 min, e poi restituirlo alla sua gabbia di casa.
- Durante l'assuefazione, pulire accuratamente gli oggetti e la piastra del pavimento con il 70% di etanolo e pulire con un tovagliolo di carta. Attendere almeno 1 min per l'alcol residuo per asciugare completamente.
- Posizionare la piastra del pavimento (42,5 x 42,5 x 0,5 cm) con l'ampia griglia (5,5 x 5,5 cm) nella scatola di campo aperta e posizionare due oggetti identici (t-flasks in plastica riempiti con 50 mL di acqua, oggetto D) nel campo aperto a 5 cm di distanza dalle pareti adiacenti. Fissare gli oggetti con nastro a doppio lato. Introdurre il mouse sperimentale nella casella di campo aperta di fronte alla parete più lontana dagli oggetti.
- Poiché l'animale è esposto a due oggetti diversi (t-flask in plastica riempito con 50 mL di acqua, oggetto D; bottiglia di vetro, oggetto E) nel test PS, controbilancia l'oggetto durante le sessioni F1 e F2. Ad esempio, presentare due oggetti identici (bottiglie di vetro, oggetto E) sul pavimento a griglia larga per metà degli animali del gruppo.
- Consenti l'esplorazione gratuita per 20 min e misura manualmente il tempo trascorso nell'esplorazione di entrambi gli oggetti utilizzando due cronometri. Una volta che il topo raggiunge il tempo minimo di esplorazione totale (30 s) per entrambi gli oggetti, fermare la sessione di F1 e trasferire l'animale alla sua gabbia di casa. Se il mouse non riesce a esplorare gli oggetti per 30 s entro 20 min, rimuoverlo dalla casella del campo aperto ed escluderlo da ulteriori sessioni.
NOTA: Misurare il momento in cui il mouse tocca gli oggetti con i baffi, il muso o le zampe anteriori. Non quantificare come tempo esplorativa i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio seduto sull'oggetto, passando per l'oggetto o appoggiato con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto. - Dopo il completamento della prima sessione di familiarizzazione (F1), pulire accuratamente gli oggetti e la piastra del pavimento con 70% spray etanolo e rimuoverli dalla scatola aperta campo.
- Il giorno successivo (giorno 16), eseguire la seconda sessione di familiarizzazione (F2) per il test PS.
- Trasferire il mouse dalla sua gabbia di casa all'area di campo aperto per la riassuetazione per 3 min, e quindi riportare l'animale alla sua gabbia di casa.
- Durante l'assuefazione, pulire accuratamente gli oggetti e la piastra del pavimento con la piastra del pavimento con il 70% di etanolo e pulire con un tovagliolo di carta. Attendere almeno 1 min per l'alcol residuo per asciugare completamente.
- Posizionare la piastra del pavimento (42,5 x 42,5 x 0,5 cm) con la griglia stretta (2,75 x 2,75 cm) nella scatola del campo aperto e posizionare due oggetti identici (bottiglie di vetro, oggetto E) nel campo aperto a 5 cm di distanza dalle pareti adiacenti. Fissare gli oggetti con nastro a doppio lato. Introdurre il mouse sperimentale nella casella di campo aperta di fronte alla parete più lontana dagli oggetti.
- Per controbilanciare, presentare due oggetti identici (t-flasks in plastica riempiti con 50 mL di acqua, oggetto D) sul pavimento griglia stretto.
- Consenti l'esplorazione gratuita per 20 min e misura manualmente il tempo trascorso esplorando entrambi gli oggetti utilizzando due cronometri. Una volta che il topo raggiunge il tempo minimo di esplorazione totale (30 s) per entrambi gli oggetti, fermare la sessione F2 e trasferire l'animale alla sua gabbia di casa. Se il mouse non riesce a esplorare gli oggetti per 30 s entro 20 min, rimuoverlo dalla casella del campo aperto ed escluderlo da ulteriori sessioni.
NOTA: Misurare il momento in cui il mouse tocca gli oggetti con i baffi, il muso o le zampe anteriori. Non quantificare come tempo esplorativa i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio seduto sull'oggetto, passando per l'oggetto o appoggiato con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto. - Dopo il completamento della seconda sessione di familiarizzazione (F2), pulire accuratamente gli oggetti e la piastra del pavimento con 70% spray etanolo e rimuoverli dalla scatola aperta campo.
- Il giorno successivo (giorno 17), eseguire la sessione di test PS.
- Trasferire il mouse dalla sua gabbia di casa all'area di campo aperto per la riassuetazione per 3 min, e poi restituirlo alla sua gabbia di casa.
- Durante l'assuefazione, pulire accuratamente gli oggetti e la piastra del pavimento con la piastra del pavimento con il 70% di etanolo e pulire con un tovagliolo di carta. Attendere almeno 1 min per l'alcol residuo per asciugare completamente.
- Posizionare la piastra con la griglia stretta (2,75 x 2,75 cm) nella scatola di campo aperta e posizionare due oggetti diversi (t-flask di plastica riempito con 50 mL di acqua, oggetto D; bottiglia di vetro, oggetto E) sulla piastra del pavimento a 5 cm di distanza dalle pareti adiacenti. Fissare gli oggetti con nastro a doppio lato. Trasferire il mouse sperimentale sul coperchio della gabbia nell'area aperta del campo e posizionarlo di fronte alla parete.
- Controbilanciare gli oggetti presentati insieme durante il test PS. Ad esempio, posizionare ogni oggetto (oggetto D, oggetto E) sul pavimento della griglia stretto per rendere l'oggetto E un oggetto nuovo in questo contesto. Controbilanciare la posizione dell'oggetto D o dell'oggetto E (un nuovo oggetto sul modello a pavimento stretto) può anche essere eseguito per ridurre il potenziale di una preferenza innata per una certa direzione. Ad esempio, sostituire l'oggetto preferito dalla seconda sessione di familiarizzazione per metà degli animali sperimentali e per il resto degli animali, sostituire l'oggetto meno preferito dalla seconda sessione di familiarizzazione.
- Consentire 10 min di esplorazione gratuita e registrare utilizzando un sistema di tracciamento video. Misura il tempo impiegato per esplorare ogni oggetto utilizzando due cronometri e calcola il rapporto di discriminazione.
NOTA: Misurare il momento in cui il mouse tocca gli oggetti con i baffi, il muso o le zampe anteriori. Non quantificare come tempo esplorativa i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio seduto sull'oggetto, passando per l'oggetto o appoggiato con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto. - Afferrare la coda del topo sperimentale e posizionarlo sul coperchio della gabbia per il trasferimento alla sua gabbia di casa.
4. Colorazione viola Cresyl
- Dopo aver completato tutti i test comportamentali, anestesizzare l'animale iniettando un cocktail (4:0.5) di ketamina (50 mg/mL) e xylazina (23,3 mg/mL) sciolta in salina a una dose di 110 mL/kg di peso corporeo (IP; 1 mL di siringa). Controllare la profondità dell'anestesia per la mancanza di una risposta a un pizzico di punta.
- Una volta che l'animale è profondamente anetizzato, eseguire perfusione transcardiale con 4% paraformaldeide per fissare il cervello15.
- Dopo che la perfusione transcardiale è terminata, decapitare l'animale con un paio di forbici15. Quindi, rimuovere il cranio utilizzando un paio di forbici iride per esporre il cervello. Dopo che il cervello è isolato, suffisso in 4% paraformaldeide durante la notte, seguito da crioprotezione nel 30% di saccarosio in 0,01 M di salina tampone di fosfato.
- Fare sezioni coronali (30 m) dal cervello snap-congelato utilizzando un criostato.
- Montare i tessuti cerebrali sui vetrini ed eseguire una serie di passaggi di idratazione dal 100% di etanolo all'acqua del rubinetto lavando per 3 min in sequenza nel 100%, 95%, 90%, 80%, 70% etanolo.
- Incubare i vetrini di tessuto in soluzione di callina cresila 0.1% per 15 min.
- Rimuovere la colorazione eccessiva immergendo i vetrini dei tessuti nel 95% di etanolo/0,1% di acido acetico glaciale, quindi disidratare i tessuti con soluzioni di 100% etanolo, 50% di etanolo/50% xilene e 100% xilene.
- Coverslip i vetrini del tessuto utilizzando un supporto di montaggio xilene disponibile in commercio.
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Representative Results
Nella figura 1è illustrato un programma sperimentale generale e la configurazione per la valutazione della funzione cognitiva. Sei settimane dopo l'introduzione di crisi acute indotta da pilocarpina, i topi sono stati sottoposti ai test NL, NO e PS in ordine separato da periodi di riposo di 3 giorni tra i test (Figura 1A). Per il test NL, due oggetti identici sono stati inseriti nel campo aperto durante la sessione di familiarizzazione (F1) e il giorno successivo, un oggetto è stato spostato in una nuova posizione. Nel test NO, un oggetto è stato sostituito con uno nuovo durante la sessione di test. Per il test PS, le due sessioni di familiarizzazione (F1, F2) hanno introdotto combinazioni di diversi modelli e oggetti della griglia del pavimento. Quindi, il giorno del test, un oggetto da ogni sessione di familiarizzazione è stato posizionato sullo stretto modello di pavimento della griglia, rendendo un romanzo di oggetto nel contesto del modello di pavimento a griglia stretto (Figura 1B). La scatola aperta può essere posizionata su una scrivania direttamente sotto una fotocamera del dispositivo accoppiata a carica e circondata da una tenda nera per evitare inutili segnali visivi (Figura 2A). Gli oggetti campione erano facili da pulire materiali di dimensioni simili o leggermente più grandi di un mouse (Figura 2B). Le combinazioni di oggetti dovevano essere preselezionate per confermare che non vi era alcuna preferenza significativa tra i due oggetti presentati insieme (Figura 2C). Le piastre del pavimento con modelli diversi sono state collocate nella scatola aperta per fornire ulteriori segnali sperimentali nel test PS (Figura 2B). Una volta che un mouse è stato introdotto nella casella del campo aperto, un sistema di tracciamento video ha tracciato la sua traiettoria per analizzare la sua distanza totale di locomozione (Figura 2D). Sei settimane dopo un'iniezione di pilocarpina, i topi epilettici hanno mostrato una significativa riduzione del rapporto di discriminazione nel test NL, dimostrando un compromissione della memoria spaziale (Figura 3). Inoltre, nel test NO, che è un test per la memoria di riconoscimento degli oggetti, i topi epilettici hanno mostrato una funzione di memoria compromessa rispetto ai controlli fittizi. Quando la funzione neuronale neonatale dentata è stata valutata con il test PS, i topi epilettici hanno avuto difficoltà a riconoscere il nuovo oggetto in un contesto con più segnali. Come esperimenti di controllo, attività locomotoria e latenza per raggiungere i criteri di esplorazione durante la sessione di familiarizzazione sono stati valutati (Figura 3). La misurazione dell'attività locomotoria ha mostrato un aumento significativo degli animali epilettici (Figura 3C), in linea con i rapporti precedenti16,17, mentre la motivazione per esplorare gli oggetti era paragonabile tra gli animali farsi e gli animali epilettici (Figura 3D). I nostri tassi di abbandono dei criteri di esplorazione nella sessione di familiarizzazione sono stati del 17,4%, del 18,2%, dello 0% rispettivamente per il test NL, NO e PS, suggerendo che gli animali si sono abituati agli ambienti sperimentali durante la serie di prove comportamentali. Infine, abbiamo valutato la morte delle cellule ippocampali dopo l'epilepticus dello stato indotto dalla pilocarpina usando la colorazione viola cresila per confermare danni neuronali indotti dalle vulsivule (Figura 4). Gli animali trattati con pilocarpina hanno dimostrato cellule piknotiche nell'hilus e nel sottocampo CA3 dell'ippocampo, a differenza dei controlli fittizi (Figura 4).
Figura 1: Presentazione schematica della batteria di prova comportamentale. (A) Disegno schematico dell'abaco comportamentale per la nuova posizione dell'oggetto (NL), il nuovo riconoscimento degli oggetti (NO) e i test di separazione dei modelli (PS) per i topi sham ed epilettici. (B) Immagini rappresentative delle disposizioni relative agli oggetti e alle targhe per i test NL, NO e PS. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2: Apparato comportamentale per la valutazione della funzione cognitiva. (A) Una panoramica generale dell'impostazione comportamentale. Una telecamera è stata posizionata direttamente sopra la scatola aperta, che era circondata dalla tenda per evitare segnali inutili. (B) Oggetti di esempio per la nuova posizione dell'oggetto (NL), il nuovo test di riconoscimento degli oggetti (NO) e di separazione dei motivi (PS). Per il test PS, una piastra da pavimento con modelli diversi, cioè griglie larghe e strette, è stata inserita nella scatola di campo aperto per fornire segnali aggiuntivi. (C) Grafici che mostrano il tempo di esplorazione di ogni oggetto presentato insieme durante la sessione di test NO e PS (n - 7), rispettivamente. Si noti che non vi era alcuna differenza significativa nella preferenza tra i due oggetti valutati dal test Mann-Whitney U (per nessun test) e il test t non accoppiato dello Studente (per il test PS). (D) Immagine che mostra che un sistema di tracciamento video ha rilevato il mouse sperimentale nella casella aperta del campo. Il quadrato rosso indica la zona preimpostata per tracciare la traiettoria del mouse. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3: Compromissione della memoria spaziale e separazione dei modelli nei topi epilettici. (A) Presentazione schematica della nuova posizione dell'oggetto (NL), del nuovo riconoscimento degli oggetti (NO) e dei test di separazione dei motivi (PS). Un nuovo oggetto è indicato come un cerchio rosso. (B) Grafici che mostrano il rapporto di discriminazione nei test NL, NO e PS tra i topi nHam (n ) e quelli epilettici (n - 10). Si noti che i topi epilettici hanno dimostrato compromissione significativa nei test NL, NO e PS, che testano la funzione della memoria rispettivamente per luoghi, oggetti e contesti. Test Mann-Whitney U per il test NL di .p < 0,05.
Figura 4: Morte neuronale nell'ippocampo dopo l'epilepticus dello stato indotto dalla pilocarpina (SE). Immagini rappresentative dei gruppi epilettici (A) e(B)58 giorni dopo l'iniezione di pilocarpina. Le immagini ingrandite mostrano l'hilus (a, d), il sottocampo CA1 (b, e) e il sottocampo CA3 (c, f) dell'ippocampo, indicati come quadrati bianchi nelle immagini con basso ingrandimento. Notare le cellule piknotiche nell'hilus e nel sottocampo CA3 dell'ippocampo. Barra della scala nell'immagine all'estrema sinistra di 200 m, valida anche per l'immagine inferiore; barra della scala in un, b, c , 40 m, valido anche per d, e, f, rispettivamente. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
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Discussion
Questo lavoro descrive le procedure sperimentali per valutare la funzione cognitiva nei topi con epilessia cronica. Molti diversi paradigmi di test comportamentali vengono utilizzati per valutare le funzioni di apprendimento e memoria nei topi18. Il labirinto dell'acqua Morris, il labirinto del braccio radiale, il labirinto Y, il condizionamento contestuale della paura e i test basati su oggetti sono i test comportamentali più utilizzati e forniscono risultati affidabili. Tra questi, i test NL, NO e PS sono metodi efficienti e semplici per valutare l'apprendimento e la memoria nei topi epilettici8,10. Poiché i topi epilettici possono avere convulsioni spontanee inaspettate durante le sessioni di comportamento, è meglio usare test comportamentali basati sull'inclinazione naturale degli animali per esplorare la novità senza aggiungere altri rinforzi positivi o negativi, come quelli utilizzati in compiti motivati da prevenzione come il condizionamento della paura, la mite fame o il nuoto forzato a rimanere a galla, che possono innescare convulsioni ricorrenti19,20. Inoltre, rispetto ad altri test comportamentali, i test basati sulla novità sono meno stressanti per gli animali perché non sono necessarie lunghe sessioni di formazione. Inoltre, i test comportamentali basati sulla novità possono essere facilmente modificati per valutare diversi tipi di memoria (ad esempio, memoria spaziale, memoria di riconoscimento o memoria episodica) semplicemente modificando la posizione dell'oggetto, presentando un nuovo oggetto o combinando stimoli aggiuntivi. Nel loro insieme, test basati su novità come i test NL, NO e PS hanno vantaggi versatili per la valutazione delle funzioni cognitive nei topi epilettici.
Anche se i test NL, NO e PS sono modelli sperimentali rapidi e utili per studiare l'apprendimento e la funzione di memoria nei topi epilettici, diversi fattori devono essere considerati quando li si utilizza. È risaputo che i topi epilettici cronici mostrano un'ansia intensificata dalle iniezioni di pilocarpina7, portando ad una marcata diminuzione dell'esplorazione degli oggetti durante le sessioni di familiarizzazione. Questa mancanza di esplorazione può causare un'errata interpretazione dei risultati del test. Pertanto, è importante includere sufficiente assuefazione al campo aperto per i topi per abituarsi all'ambiente prima della sessione di familiarizzazione. A seconda dei ceppi, i topi possono ancora non riuscire a esplorare gli oggetti per 30 s entro i 20 min della sessione di familiarizzazione, anche dopo 3 sessioni di assuefazione. In tal caso, l'aggiunta di un'altra sessione di assuefazione con coppie extra di oggetti nella casella di campo aperto potrebbe contribuire a ridurre l'ansia del mouse verso gli oggetti. Le tende che circondano la scatola di campo aperto possono ridurre al minimo i segnali esterni della stanza, consentendo ai topi sperimentali di concentrarsi sugli oggetti nel campo aperto. Inoltre, i criteri di esplorazione devono essere sufficientemente rigorosi da escludere i comportamenti in cui il muso dell'animale non punta verso l'oggetto, ad esempio sedersi sull'oggetto, passare accanto all'oggetto o appoggiarsi con l'estremità posteriore rivolta verso l'oggetto. Infine, anche se può essere molto raro, eventi di sequestro possono verificarsi durante le attività comportamentali. In questo caso, si raccomanda che tali animali vengano rimossi da ulteriori valutazioni in quanto questa può essere una possibile fonte di distorsione confusa per la valutazione della funzione di memoria.
Poiché i test NL, NO e PS sono esperimenti molto sensibili che si basano sulla naturale curiosità degli animali per nuovi stimoli, sottili cambiamenti possono influenzare il comportamento esplorativo dei topi, con conseguenti rapporti di discriminazione inconcludenti21,22. Ad esempio, la gestione rigida del topo, un cambiamento di biancheria da letto proprio prima dei compiti comportamentali, tempi incoerenti del test e acclimatamento insufficiente alla sala prove possono tutti elevare i livelli di stress degli animali, causando risultati equivoci dei test. Inoltre, gli ambienti di test alterati, come presentazioni incoerenti di oggetti asimmetrici ad ogni sessione, il posizionamento di gabbie domestiche vicino all'arena sperimentale o la commutazione della firma olfattiva dello sperimentatore devono essere attentamente considerati per evitare ulteriori fattori. Nella fase dell'analisi dei dati, le valutazioni effettuate da più sperimentatori possono contribuire ad aumentare le variabili nei risultati comportamentali a causa di diversi criteri di comportamenti esplorativi dei roditori o degli usi dei cronometri. Collettivamente, questi aspetti dovrebbero anche essere tenuti a mente per la corretta implementazione dei test NL, NO e PS.
L'ippocampo e la regione paraippocampale sono noti per svolgere ruoli unici nell'elaborazione della memoria23,24. È ampiamente accettato che la memoria spaziale dipenda in gran parte dalla funzione dell'ippocampo, che può essere facilmente valutata dal test NL23,24. D'altra parte, la memoria di riconoscimento degli oggetti sembra coinvolgere più regioni del cervello, tra cui la corteccia perireninale, la corteccia insulare e la corteccia prefrontale ventromata, oltre all'ippocampo25,26,27,28,29,30,31,32,33 , 34,,35,36,37,38.34 I topi epilettici trattati con pilocarpina hanno costantemente dimostrato disturbi comportamentali nei test della memoria spaziale con ingenti danni neuronali ippocampali39,40, 41,41,42, mentre i test di memoria di riconoscimento degli oggetti hanno prodotto risultati controversi, con degenerazione neuronale variabile nelle regioni cerebrali paraippocampali10,41,42,43,44.44 Questi dati implicano che il riconoscimento degli oggetti potrebbe richiedere connessioni di rete sofisticate tra più regioni del cervello, a differenza della memoria spaziale in cui l'ippocampo può svolgere un ruolo centrale. Quando i sottocampi ippocampali specifici sono attentamente valutati, le regioni del giro CA1 e CA3/dentato vengono trovate per elaborare informazioni diverse. In particolare, si ritiene che i neuroni CA1 siano attivati per esposizione a oggetti simili, mentre CA3 e il giro dentato sono coinvolti nella discriminazione di oggetti simili23,45. Coerentemente con questa ipotesi, prove emergenti suggeriscono che i neuroni neonati dentati possono contribuire alle prestazioni di separazione dei modelli45,46,47. Dato che la neurogenesi dell'ippocampo aberrante può essere indotta durante l'epilettica10, i topi epilettici possono dimostrare prestazioni compromesse in esperienze analoghe discriminanti a causa dell'integrazione interrotta dei neuroni neonatali nell'epilessia cronica.
In conclusione, descriviamo come valutare i disturbi della memoria nei topi epilettici. In particolare, forniamo protocolli sperimentali per tre test comportamentali, i test NL, NO e PS, che testano la memoria per luoghi, oggetti e contesti, rispettivamente. Tra i molti paradigmi di test cognitivi disponibili per i topi, i test NL, NO e PS sono abbastanza semplici, brevi saggi che sottolineano minimamente gli animali, il che li rende ottimali per valutare la funzione di memoria negli animali epilettici senza innescare crisi ricorrenti.
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Disclosures
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Acknowledgments
Ringraziamo il dottor Jae-Min Lee per il suo supporto tecnico. Questo lavoro è stato sostenuto dalle sovvenzioni della National Research Foundation of Korea (NRF) finanziate dal governo coreano (NRF-2019R1A2C1003958, NRF-2019K2A9A2A0000167).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1 ml syringe | Sung-shim | Use with the 26 or 30 gauge needle | |
| 70% Ethanol | Duksan | UN1170 | Spray to clean the box and objects |
| black curtain | For avoiding unnecessary visual cues | ||
| Cresyl violet | Sigma | C5042 | For Cresyl violet staining |
| cryotome | Leica | E21040041 | For tissue sectioning |
| double-sided sticky tape | For the firm placement of the objects | ||
| DPX mounting medium | Sigma | 06522 | |
| ethanol series | Duksan | UN1170 | Make 100%, 95%, 90%, 80%, 70% ethanol solutions |
| floor plate with narrow grid patterns | Leehyo-bio | Behavioral experiment equipment, plate size: 42.5 x 42.5 x 0.5 cm, grid size: 2.75 x 2.75 cm | |
| floor plate with wide grid patterns | Leehyo-bio | Behavioral experiment equipment, plate size: 42.5 x 42.5 x 0.5 cm, grid size: 5.5 x 5.5 cm | |
| illuminometer | TES Electrical Electronic Corp. | 1334A | For the measurement of the room lighting (60 Lux) |
| Intensive care unit | Thermocare | #W-1 | |
| ketamine hydrochloride | Yuhan | 7003 | Use to anesthetize the mouse for transcardial perfusion |
| LED lamp | Lungo | P13A-0422-WW-04 | Lighting for the behavioral test room |
| objects | Rubber doll, 50 ml plastic tube, glass Coplin jar, plastic T-flask, glass bottle | ||
| open field box | Leehyo-bio | Behavioral experiment equipment, size: 44 x 44 x 31 cm | |
| paper towel | Yuhan-Kimberly | 47201 | Use to dry open field box and objects |
| paraformaldehyde | Merck Millipore | 104005 | Make 4% solution |
| pilocarpine hydrochloride | Sigma | P6503 | |
| ruler | Use to locate the objects in the open field box | ||
| scopolamine methyl nitrate | Sigma | S2250 | Make 10X stock |
| Smart system 3.0 | Panlab | Video tracking system | |
| stopwatch | Junso | JS-307 | For the measurement of explorative activities of mice |
| sucrose | Sigma | S9378 | For cryoprotection of tissue sections |
| terbutaline hemisulfate salt | Sigma | T2528 | Make 10X stock |
| video camera (CCD camera) | Vision | VCE56HQ-12 | Place the camera directly overhead of the open field box |
| xylazine (Rompun) | Bayer korea | KR10381 | Use to anesthetize the mouse for transcardial perfusion |
| xylene | Duksan | UN1307 | For Cresyl violet staining |
References
- Chang, B. S., Lowenstein, D. H. Mechanisms of disease - Epilepsy. New England Journal of Medicine. 349 (13), 1257-1266 (2003).
- Scharfman, H. E. The neurobiology of epilepsy. Current Neurology and Neuroscience Report. 7 (4), 348-354 (2007).
- Rakhade, S. N., Jensen, F. E. Epileptogenesis in the immature brain: emerging mechanisms. Nature Reviews in Neurology. 5 (7), 380-391 (2009).
- Breuer, L. E., et al. Cognitive deterioration in adult epilepsy: Does accelerated cognitive ageing exist. Neuroscience and Biobehavior Reviews. 64, 1-11 (2016).
- Leeman-Markowski, B. A., Schachter, S. C. Treatment of Cognitive Deficits in Epilepsy. Neurology Clinics. 34 (1), 183-204 (2016).
- Helmstaedter, C., Elger, C. E. Chronic temporal lobe epilepsy: a neurodevelopmental or progressively dementing disease. Brain. 132, Pt 10 2822-2830 (2009).
- Groticke, I., Hoffmann, K., Loscher, W. Behavioral alterations in the pilocarpine model of temporal lobe epilepsy in mice. Experimental Neurology. 207 (2), 329-349 (2007).
- Long, Q., et al. Intranasal MSC-derived A1-exosomes ease inflammation, and prevent abnormal neurogenesis and memory dysfunction after status epilepticus. Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 114 (17), 3536-3545 (2017).
- Lima, I. V. A., et al. Postictal alterations induced by intrahippocampal injection of pilocarpine in C57BL/6 mice. Epilepsy & Behavior. 64, Pt A 83-89 (2016).
- Cho, K. O., et al. Aberrant hippocampal neurogenesis contributes to epilepsy and associated cognitive decline. Nature Communication. 6, 6606 (2015).
- Zhou, Q., et al. Adenosine A1 Receptors Play an Important Protective Role Against Cognitive Impairment and Long-Term Potentiation Inhibition in a Pentylenetetrazol Mouse Model of Epilepsy. Molecular Neurobiology. 55 (4), 3316-3327 (2018).
- Jiang, Y., et al. Ketogenic diet attenuates spatial and item memory impairment in pentylenetetrazol-kindled rats. Brain Research. 1646, 451-458 (2016).
- Zhuo, J. M., et al. Young adult born neurons enhance hippocampal dependent performance via influences on bilateral networks. Elife. 5, 22429 (2016).
- Kim, J. E., Cho, K. O. The Pilocarpine Model of Temporal Lobe Epilepsy and EEG Monitoring Using Radiotelemetry System in Mice. Journal of Visualized Experiments. (132), e56831 (2018).
- Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. (65), e3564 (2012).
- Muller, C. J., Groticke, I., Bankstahl, M., Loscher, W. Behavioral and cognitive alterations, spontaneous seizures, and neuropathology developing after a pilocarpine-induced status epilepticus in C57BL/6 mice. Experimental Neurology. 219 (1), 284-297 (2009).
- Brandt, C., Gastens, A. M., Sun, M., Hausknecht, M., Loscher, W. Treatment with valproate after status epilepticus: effect on neuronal damage, epileptogenesis, and behavioral alterations in rats. Neuropharmacology. 51 (4), 789-804 (2006).
- Wolf, A., Bauer, B., Abner, E. L., Ashkenazy-Frolinger, T., Hartz, A. M. A Comprehensive Behavioral Test Battery to Assess Learning and Memory in 129S6/Tg2576 Mice. PLoS One. 11 (1), 0147733 (2016).
- Lueptow, L. M. Novel Object Recognition Test for the Investigation of Learning and Memory in Mice. Journal of Visualized Experiments. (126), e55718 (2017).
- Antunes, M., Biala, G. The novel object recognition memory: neurobiology, test procedure, and its modifications. Cognitive Processing. 13 (2), 93-110 (2012).
- van Goethem, N. P., van Hagen, B. T. J., Prickaerts, J. Assessing spatial pattern separation in rodents using the object pattern separation task. Nature Protocols. 13 (8), 1763-1792 (2018).
- Leger, M., et al. Object recognition test in mice. Nature Protocols. 8 (12), 2531-2537 (2013).
- Moscovitch, M., Cabeza, R., Winocur, G., Nadel, L. Episodic Memory and Beyond: The Hippocampus and Neocortex in Transformation. Annual Reviews in Psychology. 67, 105-134 (2016).
- Eichenbaum, H. A cortical-hippocampal system for declarative memory. Nature Reviews Neuroscience. 1 (1), 41-50 (2000).
- Brown, M. W., Aggleton, J. P. Recognition memory: What are the roles of the perirhinal cortex and hippocampus. Nature Reviews Neuroscience. 2 (1), 51-61 (2001).
- Winters, B. D., Forwood, S. E., Cowell, R. A., Saksida, L. M., Bussey, T. J. Double dissociation between the effects of peri-postrhinal cortex and hippocampal lesions on tests of object recognition and spatial memory: Heterogeneity of function within the temporal lobe. Journal of Neuroscience. 24 (26), 5901-5908 (2004).
- Winters, B. D., Bussey, T. J. Transient inactivation of perirhinal cortex disrupts encoding, retrieval, and consolidation of object recognition memory. Journal of Neuroscience. 25 (1), 52-61 (2005).
- Bermudez-Rattoni, F., Okuda, S., Roozendaal, B., McGaugh, J. L. Insular cortex is involved in consolidation of object recognition memory. Learning & Memory. 12 (5), 447-449 (2005).
- Akirav, I., Maroun, M. Ventromedial prefrontal cortex is obligatory for consolidation and reconsolidation of object recognition memory. Cerebral Cortex. 16 (12), 1759-1765 (2006).
- Cohen, S. J., Stackman, R. W. Assessing rodent hippocampal involvement in the novel object recognition task. A review. Behavior Brain Research. 285, 105-117 (2015).
- Cohen, S. J., et al. The Rodent Hippocampus Is Essential for Nonspatial Object Memory. Current Biology. 23 (17), 1685-1690 (2013).
- Broadbent, N. J., Gaskin, S., Squire, L. R., Clark, R. E. Object recognition memory and the rodent hippocampus. Learning and Memory. 17 (1), 5-11 (2010).
- Tuscher, J. J., Taxier, L. R., Fortress, A. M., Frick, K. M. Chemogenetic inactivation of the dorsal hippocampus and medial prefrontal cortex, individually and concurrently, impairs object recognition and spatial memory consolidation in female mice. Neurobiology of Learning and Memory. 156, 103-116 (2018).
- de Lima, M. N., Luft, T., Roesler, R., Schroder, N. Temporary inactivation reveals an essential role of the dorsal hippocampus in consolidation of object recognition memory. Neuroscience Letters. 405 (1-2), 142-146 (2006).
- Hammond, R. S., Tull, L. E., Stackman, R. W. On the delay-dependent involvement of the hippocampus in object recognition memory. Neurobiology of Learning and Memory. 82 (1), 26-34 (2004).
- Clark, R. E., Zola, S. M., Squire, L. R. Impaired recognition memory in rats after damage to the hippocampus. Journal of Neuroscience. 20 (23), 8853-8860 (2000).
- Stackman, R. W., Cohen, S. J., Lora, J. C., Rios, L. M. Temporary inactivation reveals that the CA1 region of the mouse dorsal hippocampus plays an equivalent role in the retrieval of long-term object memory and spatial memory. Neurobiology of Learning and Memory. 133, 118-128 (2016).
- Mumby, D. G., Gaskin, S., Glenn, M. J., Schramek, T. E., Lehmann, H. Hippocampal damage and exploratory preferences in rats: memory for objects, places, and contexts. Learning & Memory. 9 (2), 49-57 (2002).
- Jeong, K. H., Lee, K. E., Kim, S. Y., Cho, K. O. Upregulation of Kruppel-Like Factor 6 in the Mouse Hippocampus after Pilocarpine-Induced Status Epilepticus. Neuroscience. 186, 170-178 (2011).
- Kim, J. E., Cho, K. O. The Pilocarpine Model of Temporal Lobe Epilepsy and EEG Monitoring Using Radiotelemetry System in Mice. Journal of Visualized Experiments. (132), e56831 (2018).
- Jiang, Y., et al. Abnormal hippocampal functional network and related memory impairment in pilocarpine-treated rats. Epilepsia. 59 (9), 1785-1795 (2018).
- Wang, L., Liu, Y. H., Huang, Y. G., Chen, L. W. Time-course of neuronal death in the mouse pilocarpine model of chronic epilepsy using Fluoro-Jade C staining. Brain Research. 1241, 157-167 (2008).
- Detour, J., Schroeder, H., Desor, D., Nehlig, A. A 5-month period of epilepsy impairs spatial memory, decreases anxiety, but spares object recognition in the lithium-pilocarpine model in adult rats. Epilepsia. 46 (4), 499-508 (2005).
- Benini, R., Longo, D., Biagini, G., Avoli, M. Perirhinal Cortex Hyperexcitability in Pilocarpine-Treated Epileptic Rats. Hippocampus. 21 (7), 702-713 (2011).
- Yassa, M. A., Stark, C. E. Pattern separation in the hippocampus. Trends in Neurosciences. 34 (10), 515-525 (2011).
- Goncalves, J. T., Schafer, S. T., Gage, F. H. Adult Neurogenesis in the Hippocampus: From Stem Cells to Behavior. Cell. 167 (4), 897-914 (2016).
- Sahay, A., et al. Increasing adult hippocampal neurogenesis is sufficient to improve pattern separation. Nature. 472 (7344), 466-539 (2011).
