Summary
이 프로토콜은 마우스에서 심근 경색 후 modRNA를 사용하여 관심 유전자를 일시적으로 조절하는 간단하고 일관된 방법을 제시합니다.
Abstract
심근 경색 (MI)은 서방 세계에서 이환율과 사망률의 주요 원인입니다. 지난 10 년 동안, 유전자 치료는 심장 질환에 대 한 유망한 치료 옵션이 되었다, 그것의 효율성 및 뛰어난 치료 효과 때문에. 손상된 조직 포스트 MI를 복구하기 위한 노력의 일환으로, 각종 연구 결과는 DNA 기지를 둔 바이러스성 유전자 치료를 채택했습니다 그러나 전달된 유전자, 부종, 부정맥 및 심장 비대의 가난하고 통제되지 않는 발현 때문에 상당한 장애물에 직면했습니다. 합성 변형 된 mRNA (modRNA)는 게놈 통합의 위험없이 심장 조직에 높은, 일시적인, 안전, 비 면역 원성 및 제어 된 mRNA 전달을 제공하는 새로운 유전자 치료 접근법을 제시한다. 이러한 놀라운 특성으로 인해 심장에 종 모양의 약물 역학과 결합 된 modRNA는 심장 질환 치료를위한 매력적인 접근 방식이되었습니다. 그러나 생체 내에서 그 효과를 높이기 위해서는 일관되고 신뢰할 수 있는 전달 방법을 따라야 합니다. 따라서, 생체 내 용도에 대한 modRNA 사용의 modRNA 전달 효율 및 수율 일관성을 극대화하기 위해 마우스 MI 모델에서 modRNA 내심 내 주입을 제조하고 전달하는 최적화된 방법이 제시된다. 이 프로토콜은 modRNA 전달을 기본 및 번역 연구에 더 쉽게 접근할 수 있게 합니다.
Introduction
유전자 치료는 인간 질환의 치료, 치료 또는 예방을 위한 핵산의 전달을 포함하는 강력한 도구입니다. 심장질환에 대한 진단 및 치료 접근법의 진행에도 불구하고 심근경색(MI) 및 심부전(HF)에서 유전자전달에 있어 성공이 제한적이다. 유전자 치료의 과정이 간단해 보이는 것처럼, 특정 전달 차량을 사용하기 전에 최적화해야 하는 많은 요인을 고려하면 현저하게 복잡한 접근법입니다. 올바른 전달 벡터는 인체 내부에서 비 면역원성, 효율적이고 안정적이어야 합니다. 이 분야의 노력은 바이러스 성 또는 비 바이러스성 이라는 두 가지 유형의 배달 시스템을 생성했습니다. 아데노바이러스, 레트로바이러스, 렌티바이러스 또는 아데노 관련 바이러스에 의한 유전자 전달을 포함한 널리 사용되는 바이러스 시스템은 뛰어난 전달 능력을 보여주었습니다. 그러나, 클리닉에서의 그들의 사용은 강한 면역 반응 유도1,종양 발생2의위험, 또는 중화 항체3의존재로 인해 제한되며, 모두 인간 유전자 치료에서 바이러스 벡터의 광범위하고 효과적인 적용에 큰 장애물로 남아 있다. 한편, 이들의 인상적인 발현 패턴에도 불구하고, 벌거벗은 플라스미드 DNA의 전달은 낮은 형질 전달 효율을 표시하고, mRNA 전달은 RNase4에의한 저하에 높은 면역원성과 감수성을 제시한다.
mRNA 의 분야에서 광범위한 연구와 함께, modRNA는 전통적인 벡터5에비해 수많은 장점으로 인해 심장및 다양한 다른 장기에 유전자를 전달하는 매력적인 도구가되었다. 자연적으로 발생하는 의사 분비딘을 가진 uridine의 완전한 교체는 선천적인 면역 반응의 최소한의 유도와 게놈 통합6의리스크로, 더 강력하고 일시적인 단백질 발현을 초래합니다. 최근에 확립된 프로토콜은 합성 mRNA7의안정성과 전이를 증가시킴으로써 단백질 번역을 더욱 향상시키는 최적화된 양의 반대로 캡 아날로그(ARCA)를 사용한다.
이전 보고서는 MI 후 설치류 심근에서 modRNA에 의해 전달된 다양한 기자 또는 기능성 유전자의 발현을 보여주었다. modRNA 적용을 통해 심근세포와 비심근세포 모두를 포함한 심근증의 중요한 영역은 혈관신생9,10,심장세포 생존 11, 및,심근세포 증식(12)을12유도하기 위해 심장 후11손상(8)을 성공적으로 전염시켰다. 돌연변이된 인간 폴리스테틴에 대한 인코딩된 modRNA의 단일 투여는 마우스 성인 CM의 증식을 유도하고 심장 기능을 크게 증가시키고 흉터 크기를 감소시키고 모세혈관 밀도를 증가시키고 MI12이후 4주 후에 도포밀도를 증가시킨다. 최근 연구는 돼지 모델(10)에서VEGFA modRNA의 응용 프로그램과 MI 후 향상 된 심장 기능을보고했다.
따라서, 심장 분야에서 modRNA의 인기가 증가함에 따라, MI 이후 심장에 modRNA를 전달하기 위한 프로토콜을 개발하고 최적화하는 것이 필수적이다. 이 프로토콜 및 비디오에 도시된 방법은 왼쪽 전방 내림차순 동맥(LAD)의 영구 결찰에 의해 마우스 MI의 표준 외과 적 절차를 시연하고, modRNA의 3개의 현장 내심 주사가 뒤따릅니다. 이 논문의 목적은 모RNA 적용이 심장 유전자 치료에 널리 접근할 수 있도록 뮤린 심오카르슘에 modRNA 전달의 매우 정확하고 재현 가능한 방법을 명확하게 정의하는 것입니다.
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Protocol
여기에 설명 된 모든 동물 절차는 마운트 시나이 기관 관리 및 사용위원회에서 Icahn 의과 대학에 의해 승인되었습니다.
1. modRNA의 합성
참고 : modRNA 합성의 세부 사항은 콘드라트 외13에서찾을 수 있습니다.
- 플라스미드 템플릿(재료표)을주문하고 mRNA 템플릿으로 사용할 깨끗한 PCR 제품을 생성합니다.
- 다음과 같은 맞춤형 리보뉴클레오시드블렌드(재료표):T7 전사 키트로 시험관내 전사에 의해 modRNAs를 준비, 6 mM 항역 캡 아날로그(ARCA) 30-O-Me-m7G(50) ppp(50)G, 75m 구아노신 삼호산염, 75m 아데노신 삼호산염, 75m 시티딘 삼호산염, 75m 시티딘 삼호산염, 100mMPseuin-5-thota
- 전사 정화키트(재료 표)로1.2단계에서 만든 modRNA를 정화하고 남극 인산염으로 치료합니다. 다음으로, 전사 정리 키트로 modRNA를 재puriffy와 분광계를 사용하여 정량화한다.
- 에탄올과 암모늄 아세테이트로 modRNA를 침전시키고 10m Tris-HCl 및 1mM EDTA에서 재중단한다.
- 원심 필터에 의한 생체 내 전달을 위한 modRNA를 농축하고 자동 전기전도 플랫폼(재료표)을 사용하여 품질을측정한다.
2. 생체 내 전달을 위한 modRNA 주입 준비
- modRNA 농도에 기초하여 루시파라이(Luc)/Cre modRNA 주입의 100 μg에 필요한 부피를 계산합니다.
- 모드라의 계산된 부피를 뉴클레아제 자유수분(0.3g/mL) 및 0.1M 구산염 용액(pH =7)(각각 권장20μL)으로 제조된 자당 용액의 동일한 부분과 혼합한다.
- 식염수 용액을 추가하여 주입의 최종 부피를 60 μL로 가져옵니다.
3. 심근 경색 수술
- 동물의 마취 및 준비
참고: 이 연구는 8-12 주 오래 된 남성과 여성 CFW 마우스를 사용 합니다.- 유도 챔버를 사용하여 2 %의 이소플루란으로 마우스를 마취하고 마취를 유지하기 위해 코와 입에 얼굴 마스크가있는 등쪽 위치에 동물을 배치합니다. 7-8mm 기도관과 필터가 장착된 호흡보호구를 사용하여 기계적 환기로 마취를 유지합니다.
- 수술 플랫폼에서 마우스를 고정하려면 수술 용 테이프로 팔다리를 고정하십시오. 목 부위와 흉곽의 왼쪽을 면도하고 70 % 에탄올과 포비도요오를 사용하여 소독하십시오. 소독 단계를 두 번 반복합니다. 반사 신경을 확인, 마취의 깊이를 평가하기 위해 꼬리와 뒷발을 꼬집는.
- 노르모더미아(37.5-38°C)에서 코어 체온을 지속적으로 모니터링하고 유지한다.
- 내외 삽관을 수행하여 개방된 기도를 유지합니다. 이렇게하려면 마우스를 복부 위치에 놓고 입이 실험자쪽으로 향하게 하고 혀를 부드럽게 꺼냅니다. 목의 각도를 조정하고 삽관 경로를 곧게 펴고 삽관 캐뉼라를 밀어 넣습니다.
- 동물이 숨을 쉴 수 없는 경우 기관 절제술을 수행할 수 있습니다. 현미경을 사용하여 기관을 설명하는 피부, 근육 및 조직을 격리하는 중간선을 따라 자궁 경부 절개를 수행하십시오. 기관체가 명확하게 볼 때, 작은 구멍을 만들고 미세 수술 집게를 사용하여 기관장의 두개골 부분을 잡고 혈전 아래 두 카트리지 반지 사이의 조직에 내트라큐어 튜브를 삽입합니다.
- 마우스의 흉부 움직임을 관찰하여 두 폐가 산소를 받고 있는지 확인합니다. 호흡속도(RR)는 분당 약 120회 호흡해야 하며, 17-18cmH2O의피증 압력이 있어야 합니다.
- 왼쪽 전방 내림차순 (LAD) 동맥 결찰
- LAD 결찰을 수행하려면 마우스를 조심스럽게 돌려 오른쪽에 누워 있습니다. 피부를 들어 올리고 3번째와 4번째 갈비뼈 사이에 왼쪽 흉부 절제술을 수행하고 조직과 근육을 조심스럽게 해부합니다. 출혈을 방지하기 위해 소작을 사용합니다.
- 흉부를 조심스럽게 열고 일단 열리면 날카로운 물체로 폐를 건드리지 않고 심장을 찾으십시오. 흉부 구멍을 열어 두고 심장의 명확한 전망을 가지고 절개에 re트랙터를 배치합니다. 이제 폐를 절개 가장자리로 이동하고 심장의 전방 표면에 액세스하기 위해 심장을 덮고있는 심근 낭의 일부를 제거합니다.
- 폐 동맥과 왼쪽 오리경 사이에 위치한 깊은 빛 빨간 혈관으로 볼 수있는 LAD를 신중하게 식별합니다. 7-0 실크 봉합사의 단일 봉합사로 LAD 근위를 리게이트합니다. 4번갈비뼈와 5번 갈비 사이에 가슴튜브(28G, 정맥 카테터)를 배치합니다.
- 층의 흉부 절개를 닫습니다. 6-0 실크 러닝 봉합사를 사용하여 갈비뼈를 조정하고 5-0 실크 러닝 봉합사를 사용하여 피부를 닫습니다. 미래의 심초음파 측정을 위한 적절한 창을 남겨두십시오.
- 2mL 주사기를 사용하여 따뜻한 동위 원소용액(물 1L에 염화나트륨 9g)으로 흉소를 조심스럽게 배출합니다. 마우스를 뒷면에 놓습니다. 기관 절제술을 수행하는 경우, 내막 튜브를 꺼내 7-0 실크 봉합사를 사용하여 하나의 스티치로 기관 카트리지 링을 적응시다. 마우스에 얼굴 마스크를 놓고 5-0 실크 러닝 봉합사를 사용하여 피부를 닫습니다.
- 회복 단계의 경우, 인공호흡기에서 삽관 캐뉼라를 분리하고 자발적인 호흡을 허용한다. 동물을 의식에 도달할 때까지 열램프 아래에 놓습니다. 완전히 깨어날 때까지 수술 후 동물을 방치하지 마십시오.
- 0.1 mg/kg 체중에서 buprenophine로 통증 치료를 관리, 12 시간 간격으로 다음 3 일 동안 피하 주입.
4. modRNA의 심장 전달
- MI 다음에 인슐린 주사기(31G)를 이용하여 2.3단계에서 제조된 modRNA의 총 60μL을 전달한다.
- 개포 영역을 둘러싼 심장 근육의 세 가지 다른 부위에 modRNA의 20 μL을 주입하십시오 (결찰의 양쪽에 2 개, 정점에 하나). 가슴을 닫기 전에 LAD 직후 주사를 수행하십시오.
참고: modRNA 주입 부위의 대표적인 이미지는 도 1에서볼 수 있다.
- 개포 영역을 둘러싼 심장 근육의 세 가지 다른 부위에 modRNA의 20 μL을 주입하십시오 (결찰의 양쪽에 2 개, 정점에 하나). 가슴을 닫기 전에 LAD 직후 주사를 수행하십시오.
5. 심장 포스트 MI에서 단백질 발현 유효성 검사
- 생체 발광 이미징 시스템을 사용하여 Luciferase modRNA 발현
참고: 자당 구연산 버퍼의 60 μL에서 제조된 Luc mRNA의 총 100 μg는 MI 후 CFW 마우스의 심장에 직접 주입된다.- 에서 24 시간 포스트 MI 및 modRNA 주입, 인유도 챔버를 사용하여 2 % 이소플루란으로 마우스를 마취하고 인과 회류 루시페린 (150 mg/g 체중)를 주입하여 생체 내에서 Luc 신호를 검증합니다.
- Luc 신호가 포화상태에 도달할 때까지 매 2분마다 생물 발광 이미징 시스템을 사용하여 마우스를 이미지합니다.
- 이미징 분석 소프트웨어로 수집된 이미징 데이터를 정량화합니다. 식염수로 주입된 마우스를 Luc 발현의 기준선 판독값으로만 사용하고 식염수 주입 마우스로부터 수집된 배경 신호를 뺍니다.
참고 : Luc 신호는 p / s / cm2/ sr x 106으로표현됩니다.
- Cre 형질 검사용 면역 염색
- Cre로 의 전염을 검증하기 위해, 100 mg/kg 케타민과 10 mg/kg 자일라진의 관복 주사를 사용하여 동물을 24 시간 후사 후 희생하고 자궁 경부 탈구가 뒤따릅니다. 절개를하기 전에 70 %의 알코올 면봉을 사용하여 가슴과 복부를 소독하십시오.
- 흉골보다 1cm 낮은 횡절개를 하여 흉부 구멍을 열고 가위를 머리쪽으로 이동시켜 흉곽을 통과합니다.
- 가슴을 열고 과도한 혈액을 제거하기 위해 오른쪽 심실 챔버에 멸균 PBS 1 mL을 주입하십시오. 즉시 심장을 절제하고 남은 혈액을 씻어 멸균 PBS에 배치합니다.
- 심장을 24시간 동안 4% 파라포름알데히드(PFA)로 수정한 다음, 4°C에서 30% 자당 용액으로 하룻밤 배양을 한다. 다음 날 심장을 최적의 절삭 온도 매체에 포함시키고 극저온을 사용하여 10 μm 두께로 하트를 다실시합니다.
- 심장 트로포닌 I (cTNI)에 대한 기본 항체와 섹션을 얼룩과 형광 이차 항체로 라벨. 핵을 식별하기 위해, 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI)를 5 분 동안 얼룩. 형광 현미경을 사용하여 슬라이드를 이미지.
6. 통계 분석
- 식염수 및 Luc 주입 마우스에서 Luc 발현을 기반으로 막대 그래프를 플롯하고 값을 평균 ± SEM으로 보고합니다.
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Representative Results
8주에서 10주 된 마우스는 이소플루란으로 마취되고 삽관하였다. 동물이 마취 하에 있던 후에, 좌흉 부소 지역은 에탄올로 면도하고 살균하고, 심혼은 LAD 결찰을 위해 드러나게 했습니다. 왼쪽 관상 동맥은 동맥 아래 봉합사를 단단히 매듭시킴으로써 가려졌다(다이어그램 표현 도 1A). 성공적인 경색 후 (좌심실 자유 벽의 마비에 의해 표시), 자당 구연산 완충액에 용해 된 루크 또는 Cre modRNA의 100 μg의 직접 주사는 인슐린 주사기를 사용하여 부상 영역을 둘러싼 3 개의 다른 부위(도 1B)에서심근으로 직접 전달되었다. modRNA 주사를 가진 MI 절차는 동물 당 30-45 분 동안 지속되었습니다. 동물은 약 90%의 생존율을 보였다. 시술 후, 가슴과 피부는 층으로 단단히 봉합되었고, 동물은 정상적으로 호흡하기 시작하자마자 환기에서 제거되었습니다.
Luc modRNA 주사의 LAD 결찰 및 후속 전달을 수행한 후, 생물 발광 이미징시스템(그림 2A)을사용하여 Luc 단백질 발현 24h 후주입을 확인하여 Luc modRNA 경전을 검증했습니다. 우리는 단백질 발현이 6일째까지 볼 수 있지만, modRNA의 가장 높은 형질 효율이 24 h8에서관찰된다는 것을 이전 간행물에서 설치했습니다. 유사하게, 우리는 성공적으로 MI (3.0 x105)(도 2B)후자당 구연산 완충으로 주입 마우스에 비해 Luc modRNA 주입 (1.76 x 108)으로처리 된 심장에서 Luc 신호를 성공적으로 검출했다.
또한, 우리는 형질전환 Rosa26mTmG 마우스에서 번역 및 생체 분포를 확인하여 modRNA 발현을 검증하고자 했습니다. 이 마우스 모델 시스템은 모든 신체 세포/조직에서 세포막 국소화 tdTomato(mT) 형광 발현을 표현하고 Cre 재조합 시 세포막 국소화 EGFP(mG) 형광 발현을 변화시킵니다. 따라서, Cre modRNA의 발현을 관찰하기 위해, 100 μg Cre modRNA는 Rosa26mTmG 남성과 여성 마우스에서 심근 후 MI로 직접 주입되었고, 동물은 24h 후 수술을 희생하였다. 심근세포 마커 cTNI 및 핵 마커 DAPI(도3A)로면역염색을 위해 하트가 고정 및 처리되었다. 성공적인 Cre 발현은 녹색 색세포(도 3B)의출현으로 인해 마우스로 전달된 Cre modRNA와의 재결합의 결과였으며, 이는 cre 주입 부위(도3C)주변의 EGFP로 tdTomato 색상의 변화에 의해 표현되었다.
그림 1: MODRNA의 LAD 결찰 및 심장 전달. (A)LAD 결찰 의 영역과 modRNA 주입의 세 부위를 보여주는 회로도. (b)전체 마우스 심장포스트의 대표적인 이미지는 MI에 이어 영구 결찰(a) 및 modRNA 주입 부위에 의해 유도된 성공적인 MI를 게시한다.a 자당 구연산 버퍼의 60 μL에 용해된 modRNA의 100 μg는 경색을 둘러싼 경계 영역 영역에서, 두 개의계각(b,c)및 정점에 1개(d)를 전달하였다.d 배율 막대 = 1cm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 루크 발현 분석 모드RNA 주입 후. 루크 모드RNA의 100 μg를 함유한 자당 구연산 완충제는 열린 가슴 수술에서 CFW 마우스의 심근막으로 직접 주입되었다. 생물 발광 이미징 시스템은 주입 후 24 시간에서 Luc 단백질 발현을 계산하는 데 사용되었습니다. (A)대조마우스의 비교 생체 발광 이미지 (완충제만으로 감염) 대. Luc modRNA주입 마우스. (b)생체 발광 이미저를 사용하여 24시간 후에 측정된 대조군 마우스와 비교하여 Luc 신호의 정량화. 오류 표시줄은 p<, 0.0001의 SEM을 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 생체 내에서 Cre 표현식의 유효성 검사. Rosa26mTmG 마우스에서 Cre modRNA의 발현을 검증하는 전감염된 심장 단면(짧은 축 보기)의 대표적인 이미지24시간 사후 주입. (A)cTNI(빨간색)로 면역염색된 심근세포. (B)녹색 색세포는 Cre 전형 세포를 나타낸다. (C)두 주사 주위의 Cre 활성화 세포를 보여주는 병합 된 이미지. 블루는 핵 얼룩 DAPI입니다. 배율 막대 = 1cm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
유전자 치료는 심장 질환의 치료를 크게 발전시킬 수 있는 엄청난 잠재력을 보여주었습니다. 그러나, HF의 치료를 위한 초기 임상 시험에 채택 된 전통적인 도구는 제한된 성공을 보이고 심각한 부작용과 관련되어 있다. 변형된 RNA는 심장에서 유전자 전달 도구로 지속적으로 인기를 얻고 있는 비바이러스 유전자 전달을 제시한다. ModRNA는 번역을 위한 유전자의 핵 현지화를 요구하지 않으며, 따라서 단백질의 효율적이고 빠른 발현을 제공합니다. 또한, mRNA가 게놈 숙주에 통합되지 않기 때문에, modRNA에 의한 유전자 전달은 돌연변이 발생의 위험을 건너뜁니다. 따라서, 기존의 유전자 전달 차량에 비해 그것의 이점으로 인해, modRNA는 심장에 단 하나 유전자 또는 유전자 조합의 전달을 위한 가장 매력적인 플랫폼 의 하나가 되었습니다. 그러나 현재까지 modRNA를 심장 상해로 준비하고 전달하기 위한 표준화된 프로토콜은 없습니다. 따라서, 여기서 목표는 MODRNA의 사용을 유전자 치료 도구로서 개선하고 치료 목적에 적합하도록 설치류 심혼에서 modRNA의 심내 전달을 위한 표준 및 최적화된 프로토콜을 확립하는 것이었다.
이 프로토콜에서 modRNA는 uridine을 의사수리딘으로 교체한 다음 5'end에서 ARCA로 캡핑하여 준비됩니다. mRNA의 이차 구조의 이러한 변화는 다양한 다른 뉴클레오티드 수정에 비해 더 높은 단백질 번역을 렌더링하는 것으로 나타났다8. 더욱이, 이러한 변경된 mRNA 구조는 수신식 수용체 및 뉴클레아제6에의한 인식을 제한함으로써 마우스에 IM 주사 후 면역원성을 탈출한다. 여기서, 우리는 자당 구연산 완충을 이용한 벌거벗은 mRNA 전달이 마우스 MI 모델을 사용하여 심장에 강한 단백질 번역을 생성한다는 것을 보여주었습니다. 이전 연구에서는, 우리는 단백질8로modRNA 번역을 방해할 수 있는 생체 내 fectamine 또는 생체 내 제트PEI와 같은 나노 입자에서 modRNA의 캡슐화에 비해 심장에 자당 구연산 완충제로 전달된 modRNA의 우수성을 확립하였다. 단일 가닥 modRNA 응집을 구출하는 것 외에도 내분비증을 위해 자당에 의해 제공되는 구산염 및 여분의 에너지에 의해 RNA의 높은 보존은 자당 구연산 버퍼에서 전달된 modRNA의 번역에 현저한 증가를 위한 이유가 될 수 있다.
modRNA의 사용은 전임상 및 임상 연구에서 에스컬레이션되었지만10,,14 지난 10 년 동안, 특정 지역은 클리닉에서 modRNA의 향상 된 성공을 위해 조사 될 필요가있다. 첫째, 치료 조사에 필요한 다량으로 modRNA를 합성하는 것은 비용이 많이 들 수 있다. 따라서, 인간에서 임상 RNA 치료 단계로 필드를 이동 하는 임상 등급 및 비용 효율적인 modRNA를 개발 하는 것이 필수적이다. 둘째, modRNA를 위한 임상적으로 적용가능한 납품 방법을 확인해야 합니다. 심장 IM 주사로 인한 손상을 고려하여, 덜 침습적인 카테터 기반 전달 방법은 큰 심혼을 transfect에 필요한 다량의 modRNA를 전송하는 데 더 타당할 수 있습니다.
결론적으로, 이 연구는 마우스 심장 포스트 MI에 있는 의사 유리딘 수정을 포함하는 RNA의 성공적인 납품을 입증했습니다. 자당 구연산 완충제에서 modRNA의 전달은 주입 후 24 시간 강한 단백질 발현을 산출했다. 이 프로토콜은 연구원이 심장 포스트 상해에 있는 표준화된 납품 및 단백질 평가를 따르고 그러므로 그들의 연구를 위한 modRNA의 준비 그리고 납품에 있는 더 많은 접근성을 제공하는 가능하게 합니다.
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Disclosures
저자는 공개 할 것이 없습니다.
Acknowledgments
저자들은 앤 아누 쿠리안이 이 원고에 도움을 주었습니다. 이 작품은 잔기 연구소에 수여 심장 창업 보조금에 의해 지원되었다 또한 NIH 보조금 R01 HL142768-01에 의해
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Adenosine triphosphate | Invitrogen | AMB13345 | Included in Megascript kit |
| Antarctic Phosphatase | New England Biolabs | M0289L | |
| Anti-reverse cap analog, 30-O-Mem7G(50) ppp(50)G | TriLink Biotechnologies | N-7003 | |
| Bioluminescense imaging system | Perkin Elmer | 124262 | IVIS100 charge-coupled device imaging system |
| Blunt retractors | FST | 18200-09 | |
| Cardiac tropnin I | Abcam | 47003 | |
| Cytidine triphosphate | Invitrogen | AMB13345 | Included in Megascript kit |
| Dual Anesthesia System | Harvard Apparatus | 75-2001 | |
| Forceps- Adson | FST | 91106-12 | |
| Forceps- Dumont #7 | FST | 91197-00 | |
| Guanosine triphosphate | Invitrogen | AMB13345 | Included in Megascript kit |
| In vitro transcription kit | Invitrogen | AMB13345 | 5X MEGAscript T7 Kit |
| Intubation cannula | Harvard Apparatus | ||
| Megaclear kit | Life Technologies | ||
| Mouse ventilator | Harvard Apparatus | 73-4279 | |
| N1-methylpseudouridine-5-triphosphate | TriLink Biotechnologies | N-1081 | |
| NanoDrop Spectrometer | Thermo Scientific | ||
| Olsen hegar needle holder with suture scissors | FST | 12002-12 | |
| Plasmid templates | GeneArt, Thermo Fisher Scientific | ||
| Sharp-Pointed Dissecting Scissors | FST | 14200-12 | |
| Stereomicroscope | Zeiss | ||
| Sutures | Ethicon | Y433H | 5.00 |
| Sutures | Ethicon | Y432H | 6.00 |
| Sutures | Ethicon | 7733G | 7.00 |
| T7 DNase enzyme | Invitrogen | AMB13345 | Included in Megascript kit |
| Tape station | Aligent | 4200 | |
| Transcription clean up kit | Invitrogen | AM1908 | Megaclear |
| Ultra-4 centrifugal filters 10k | Amicon | UFC801096 |
References
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