Summary
الهدف من هذه المقالة هو وصف طريقة مكررة من تنبيب فأرالمختبر. هذه الطريقة غير الغازية ، وبالتالي ، مثالية للدراسات التي تتطلب الرصد التسلسلي لوظيفة الجهاز التنفسي و / أو غرس العلاجات في الرئة.
Abstract
يصف الأدب عدة طرق لتنبيب الماوس التي تتطلب إما تصور الجلاوطي من خلال تجويف الفم أو شق في الرقبة البطنية لتأكيد مباشر لوضع قنية في القصبة الهوائية. ويمكن أن تشكل الصعوبة النسبية أو صدمة الأنسجة الناجمة عن هذه الإجراءات عائقاً أمام قدرة المحقق على إجراء دراسات طولية. توضح هذه المقالة تقنية يسمح فيها التلاعب الجسدي للفأرة بعد استخدام مزيل الشعر لإزالة الشعر من الرقبة البطنية بالتصور عبر الجلد للالقصبة الهوائية لتنبيب الأوروتراكفيل بغض النظر عن درجة الجلد تصبغ. هذه الطريقة غير ضارة بالموضوع وتتحقق بسهولة مع فهم محدود لتشريح المورين. يسهل هذا النهج المكرر التنبيب المتكرر ، والذي قد يكون ضروريًا لمراقبة تطور المرض أو غرس العلاجات. قد يؤدي استخدام هذه الطريقة إلى تقليل عدد الحيوانات والمهارة التقنية اللازمة لقياس وظائف الرئة في نماذج الماوس من أمراض الجهاز التنفسي.
Introduction
فأر المختبر هو نموذج الحيوان المشترك لأمراض الجهاز التنفسي البشرية. وهكذا ، هناك العديد من الطرق المنشورة لتنبيب الماوس لغرض غرس العلاجات وقياس ميكانيكا الجهاز التنفسي. معظم الإجراءات الموصوفة تتطلب تصور الجلاوطي من خلال تجويف الفم مع معدات متخصصة مثل منظار الحنجرة أو مصدر ضوء الألياف البصرية1،2، 3،,4،5،6،7.3 ومع ذلك ، يمكن أن يكون هذا صعبًا عندما تكون هناك حاجة إلى قنية كبيرة نسبيًا ، لأنها يمكن أن تحجب وجهة نظر الباحث. وقد عالج ليمجونياوونغ وآخرون8 هذا القلق بطريقة التنبيب التي يتم فيها إجراء شق جلدي صغير على طول خط الوسط في الرقبة البطنية مما يسمح بتصور القصبة الهوائية. بعد الإجراء ، يتم إغلاق الشق بلاصق للأنسجة.
بالنسبة للدراسات التي تتطلب عمليات تنبيب متكررة ، يتطلب التقطيع والإغلاق المتتالي لهذا الموقع إزالة الهوامش الجلدية وصدمة الأنسجة إلى الرقبة البطنية. الغرض من نهج تصور التراشف التراجيدي عبر الجلد للتنبيب عن طريق الفم هو توفير تقنية مكررة وغير باضعة مناسبة خصيصًا لدراسات التنبيب المتكررة وكذلك أحداث تنبيب واحد في الفئران.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
وقد وافقت اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها (IACUC) التابعة لجامعة ولاية أوهايو على جميع الأنشطة الحيوانية الموصوفة هنا، وأجريت في مرافق معتمدة من AAALAC.
1- إعداد الإجراءات
- بناء منصة التنبيب. لتحقيق المنحدر منصة مناسبة، استخدم ثلاثة بوصة (7.6 سم) الموثق 3-حلقة. أضعاف طول 15-20 سم من الحرير 3-0 أو غيرها من المواد الخيط في النصف والالتزام نهايات الخيط إلى أعلى المنصة يميل مع الشريط لإنشاء حلقة تعليق(الشكل 1).
- حدد قنية من الحجم المناسب والطول.
ملاحظة: بالنسبة للفأرة التي يبلغ طولها 20-30 جم، يمكن استخدام قسطرة طويلة من 1 إلى 1.5 بوصة (2.5-3.8 سم) تصل إلى 18 جم. لهذه الدراسة، تم استخدام 18 امرأة تبلغ من العمر أسبوعًا في BALB/c وفئران C57BL/6 البالغة من العمر 10 أسابيع (n = 3 من كل سلالة). يوفر غمد القسطرة الأبيض المبهم أفضل تصور عبر الجلد. - قطع شطبة في الطرف القاصي من القسطرة وتمهيد السطح قطع مع ورقة جلخ لخلق طرف شطبة مدورة. خلق بلطف منحنى طفيف في قنية حوالي 1 سم من شطبة(الشكل 2).
ملاحظة: يجب استخدام قسطرة جديدة لكل فأرة. - إجراء حقن للفأرة باستخدام الكيتامين (5.4 ملغم/غرام من وزن الجسم) وxylazine (16 ميكروغرام/غرام من وزن الجسم) التي تدار داخل البيريتين. تطبيق مرهم ophthalimic العقيمة على العينين.
ملاحظة: ويتحقق عمق التخدير السليم من خلال عدم استجابة الماوس لقرصة إصبع القدم شركة. - قم بتعليق الماوس في وضع ية على منصة التنبيب عن طريق ربط القواطع العلوية حول خيط الحرير في الجزء العلوي من السطح الزاوية(الشكل 3). مرة واحدة يتم وضع الماوس بشكل مباشر في recumbency الظهرية، فهم بلطف قاعدة الذيل والتراجع الذيل نحو الجدول. ضع قطعة من الشريط فوق قاعدة الذيل لتأمين الماوس.
- تطبيق كريم إزالة المزيل(جدول المواد)على منطقة عنق الرحم البطنية لمدة 30-45 ق ثم إزالة جميع كريم إزالة المزيل من منطقة عنق الرحم باستخدام شاش جاف. كرر عملية التطبيق إذا لزم الأمر. شطف الجلد جيدا بالماء المالح أو المقطر لإزالة أي بقايا ثم مسح الجافة.
2- إجراء التنبيب
- استخدام مستقيم، الملقط المسطحة في اليد غير المهيمنة لسحب اللسان بلطف بطريقة تفتح بما فيه الكفاية الفم لإدخال قنية.
ملاحظة: لا ينبغي استخدام ملقط الأسنان الفئران لأن هذا سوف يضر اللسان. - مع اليد المهيمنة ، تقدم في القنية إلى الفم بحيث تكون النهاية التي هي distal إلى الانحناء الطفيف ضد سقف فم الشخص.
- الافراج عن اللسان والانزلاق على الحافة المسطحة من الملقط مغلقة caudally على طول الرقبة البطنية حتى يتم التوصل إلى manubrium. هذا الاقتراح يُشرّد الغدد اللعابية ويُسّط العضلات التي تغطي القصبة الهوائية. يظهر القصبة الهوائية عبر الجلد كخط أبيض(الشكل 3A). إذا لزم الأمر، تدوير الملقط في اتجاه الجمجمة مع الحفاظ على التوتر على الجلد في اتجاه caudal للتسبب في الغدد اللعابية المشردة في وقت لاحق إلى الذروة. هذه المناورة يخلق المزيد من التباين حول القصبة الهوائية(الشكل 3B).
ملاحظة: تجنب القوة المفرطة على الرقبة البطنية لأنها يمكن أن تنهار القصبة الهوائية وتضعف التنفس. - تقدم في حين أن القُلة في وقت واحد الصيد الطرف المنفز من التهوية عن طريق التمويع من اليد المهيمنة مع مرونة في وقت واحد من المعصم.
- ويشار إلى الموضع الصحيح للقنية من خلال تصور قنية مبهمة في القصبة الهوائية(الشكل 4B, D). إذا كانت قد تقدمت قنية الماضي مستوى أصل العضلات المدلكة وتصور قنية في القصبة الهوائية لم يتم تأكيد، تراجع عن قنية وإعادة محاولة المناورة.
- تأكيد وضع القنية المناسبة عن طريق ربط لمبة تضخم الرئة إلى قنية ومراقبة التوسع الصدري مع الاكتئاب المتزامن للجهاز.
- دون إزاحة القنية ، فك بعناية القواطع من الماوس من منصة التنبيب. نقل الماوس إلى منصة أفقية(جدول المواد)وإدراج قنية إلى محول على جهاز التنفس الصناعي. بعد التضخم العميق، تهوية الماوس لمدة 60 ق ثم قياس مقاومة الجهاز التنفسي.
3- الاسترداد
- بمجرد اكتمال الإجراء، حرك الماوس إلى منصة دافئة. توفير التحفيز المستمر عن طريق إصبع القدم الخفيف أو قرصة الذيل لتشجيع التنفس التلقائي.
- يمكن أن يحدث استئصال عندما يبدأ الماوس فقط في المضغ. فهم قنية على مستوى المحور وسحب بلطف أنبوب قحوية وبعيدا عن الماوس حتى تتم إزالة قنية تماما من فم الموضوع.
ملاحظة: فمن الأفضل لتوفير دعم مجرى الهواء مع قنية جامدة لأطول فترة ممكنة خلال عملية الانتعاش. - مرة واحدة extubated، ونقل الماوس إلى قفص الانتعاش نظيفة مع دعم الحرارة. مراقبة الماوس باستمرار حتى يكون متنقلا تماما، واكتمال الاسترداد.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
الرصد التسلسلي لوظيفة الرئة الأساسية
تم تنبيب أنثى بالب/ج البالغة من العمر ثمانية عشر أسبوعًا وفئران C57BL/6 البالغة من العمر 10 أسابيع (n = 3 من كل سلالة) باستخدام الطريقة الموصوفة في اليوم 0 و3 و10 و17. بعد التنبيب في كل يوم ، تم توصيل هذا الموضوع بجهاز التنفس الصناعي الميكانيكي المزود بالأكسجين 100٪(جدول المواد). تم قياس مقاومة الجهاز التنفسي (Rrs) باستخدام تقنية التذبذب القسري لمدة 60 ق بعد تضخم عميق إلى 25 سم H2O عقد لمدة 5 s. لا توجد أخطاء برمجية مرتبطة بهذا التحمل المستمر للتنفس مع قيم Rrs ضمن النطاق الفسيولوجي توفر دعمًا إضافيًا للوضع السليم للقنية. وكشفت البيانات عن عدم وجود اختلافات كبيرة في Rrs مقاسة لوحظ بين النقاط الزمنية داخل كل سلالة(الشكل 5). ومن المفترض أن عدم وجود زيادة في Rrs مع مرور الوقت يشير إلى عدم وجود التهاب مرتبط بالصدمة في الجهاز التنفسي على مدى أربع نقاط زمنية متتالية.
التحليل الإحصائي
تم حساب الإحصاءات الوصفية (الخطأ المتوسط والقياسي) باستخدام برنامج التحليل الإحصائي(جدول المواد). واستُخدمت طريقة كولموغوروف - سميرنوف للتحقق من توزيع البيانات الغاوسية. أجريت تحليلات إحصائية لمجموعات البيانات من قبل ANOVA غير زوجية ، مع فترة ما بعد مخصصة توكي كريمر مقارنة متعددة بعد الاختبار. يتم تقديم جميع البيانات على أنها متوسط ± P. P. 0.05 اعتبرت ذات دلالة إحصائية.
الشكل 1: منصة التنبيب. منصة التنبيب يتكون من الموثق ثلاث حلقات مع حلقة من خيط الحرير الملتزمة الجزء العلوي من الموثق لإنشاء حلقة تعليق. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2: إعداد القنينة. (أ)منظر جانبي للقنية المعدة. لاحظ الزاوية الرقيقة التي تم إنشاؤها حوالي 1 سم من شطبة مدورة في الطرف القاصي من القسطرة واتجاه زاوية قنية فيما يتعلق بشطبة. (ب)عرض دورسفينترال للقنية المعدة. لاحظ الحافة المستديرة والسلسة للشطبة. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3: تصور تراكل. (أ)يتم وضع الملقط على الرقبة البطنية ويتم سحب الجلد بلطف caudally لإزاحة الغدد اللعابية laterally وتوفير تصور القصبة الهوائية كبنية بيضاء على خط الوسط البطني (السهم الأسود). (ب)دوران الجمجمة من الملقط على الرقبة البطنية يخلق نتوء الغدد اللعابية (*). يتم تصور القصبة الهوائية كبنية خطية بيضاء على خط الوسط البطني بين الغدد اللعابية (السهم الأسود). يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4: وضع القنية المناسبة. (A)C57BL/6 الماوس المتمركزة على منصة التنبيب مع قنية أدخلت في تجويف الفم القريب. (ب)C57BL/6 الماوس مع قنية وضعت بشكل صحيح في القصبة الهوائية. لاحظ يمكن تصور القنية بسهولة كبنية بيضاء داخل القصبة الهوائية (السهم الأبيض). (C)BALB / ج الماوس المتمركزة على لوحة تنبيب مع قنية أدخلت في تجويف الفم القريب. (D)BALB / ج الماوس مع قنية وضعت بشكل صحيح في القصبة الهوائية. يمكن تصور القنية البيضاء بسهولة داخل القصبة الهوائية (السهم الأسود). يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 5: القياس التسلسلي للمقاومة. لا توجد اختلافات كبيرة من Rrs قياس لوحظ بين النقاط الزمنية داخل كل سلالة. يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
التنبيب باستخدام تقنية التصور تراكل عبر الجلد يقدم نهجا المكرر لطريقة شق الجلد القياسية. مع إيلاء اهتمام خاص لعدة خطوات رئيسية، يمكن أن يتحقق التنبيب بسهولة وبسرعة. يجب وضع الحيوان مباشرة في الردورة الظهرية على منصة التنبيب مع الماوس المضمون في تراجع لطيف. وهذا سوف تمتد الحيوان إلى محاذاة الرأسي وتحديد المواقع المناسبة للتنبيب. وبالإضافة إلى ذلك، لا ينبغي أن يبقى كريم إزالة البيلات على اتصال بجلد الحيوان لفترة أطول من 30-45 سنة، وينبغي شطفه جيداً لإزالة جميع المخلفات. تمديد اتصال الجلد مع كريم إزالة المزيل اتلاف يسبب الألم لا لزوم لها للالحيوانات وتقرحات يمكن عرقلة وجهة نظر القصبة الهوائية9. من الضروري استخدام حركة المعصم المناسبة حيث تدخل اليد المهيمنة القسطرة إلى الجلوتي. يجب أن يكون المعصم المهيمن مرنًا بينما تتحرك اليد في حركة التأنق. ومن الأهمية بمكان أيضا لمراقبة هذا الموضوع عن كثب كما يتم الضغط على الحافة المسطحة من الملقط على الرقبة البطنية لتصور القصبة الهوائية. الضغط من الملقط سوف انسداد القصبة الهوائية ويسبب نقص الأكسجة إذا حافظت لمدة طويلة. إذا ظهر المريض من سماويًا ، فسمح بتوقف قصير للأغشية المخاطية للعودة إلى اللون الوردي والتنفس لتحقيق الاستقرار قبل تكرار المحاولات.
لم تكن تجربة تنبيب الماوس واسعة النطاق ضرورية لتنفيذ هذه التقنية. وتشمل المضاعفات الأكثر شيوعا في الأفراد عديمي الخبرة الصدمة الحنجرة والتهاب مجرى الهواء العلوي بسبب محاولات تنبيب متعددة. الرصد الدقيق ضروري أثناء تعافي هؤلاء المرضى كما يمكن الإشارة إلى التدخل الطبي مع مضادات الالتهاب غير الستيرويدية. قد تؤدي محاولات التنبيب غير الناجحة المتكررة إلى صدمة في الأنسجة والتهاب تجويف الفم المنتفخ ، مما قد يؤدي إلى ضوضاء الجهاز التنفسي العلوي ، وعسر التنفس ، ونقص الصوت ، والانتعاش لفترات طويلة ، وعدم القدرة على إجراء التنبيب المتكرر أو الموت.
يوصى بعدة تعديلات في حالة عدم نجاح التنبيب. أولاً ، تأكد من أن شطبة القنية سلسة ومدورة ومقطعة إلى الطول المناسب لحجم الحيوان. قد يتم تنعيم حافة شطبة باستخدام الورق جلخ لتقليل صدمة الأنسجة وتسهيل تنبيب7. بالإضافة إلى ذلك، تحقق من أن القنية تظهر منحنى طفيف من حوالي 15 درجة على مسافة الثلث بعيدا عن شطبة وغيض من قنية هو مشطوب في زاوية 45 درجة كما هو موضح في براون وآخرون6. تحقق دائمًا من أن القسطرة في الاتجاه الصحيح قبل وأثناء تنفيذ هذا الإجراء.
لهذه الدراسة، تم تنبيب الفئران لاختبارات وظائف الرئة المتكررة باستخدام نظام التهوية الميكانيكية لتسجيل قياسات وظيفة الرئة. تم استخدام قنية كبيرة 18 G لإنشاء ختم ضيق. لإجراء دراسات وظائف الرئة المتكررة على الفئران ذات قطر القصبة الهوائية الأصغر بسبب العمر أو الإجهاد ، قد يكون من الصعب وضع قنية أكبر. إذا تم انتخاب قنية أصغر للاستخدام ، فتأكد من أنه لا يزال من الممكن تحقيق ختم مناسب ، وأن مقاومة القنية ليست أعلى من مقاومة مجرى الهواء10في الشخص الخاضع للاختبار. إن وجود اضطراب تضخم عميق ناجح هو تأكيد كاف لختم مناسب. لاحظ أن مثل هذا الختم غير ضروري إذا كان تركيب العلاجات فقط في الرئة هو المطلوب.
على الرغم من أن الطريقة الموصوفة قد أدخلت تعديلات تمنع تلف الأنسجة الخارجية ، إلا أن الحد الأعلى لتواتر التنبيب لا يزال دالة على الصدمة التراكمية للجلوطيوات والتراخى بسبب الإدخال المفرط للقنية. يوصى بالمراقبة المتزامنة لمجموعة التحكم للزيادات الكبيرة في مقاومة مجرى الهواء أثناء الدراسة نظرًا لأن صدمة الأنسجة يصاحبها التهاب سيؤدي إلى انخفاض قطر القصبة الهوائية. لم تلاحظ في الدراسة الحالية زيادات كبيرة في مقاومة مجرى الهواء على مدار إجراءات التنبيب المتكررة. ظلت الفئران طبيعية سريريا لمدة الدراسة وكان التشريح الإجمالي لهياكل مجرى الهواء العلوي غير ملحوظ في استنتاج الدراسة في جميع الحيوانات.
وباختصار، فإن تقنية التنبيب الموصوفة تقدم طريقة غير باضعة لوضع المناظير الإنأوسترالية مع الحد الأدنى من المعدات بما في ذلك السطح المائل، وملقط، وقنية البولي بروبلين، ولوازم إزالة البيلة. تتيح هذه الطريقة المكررة أحداث التنبيب المتكررة دون صدمة الأنسجة المتكررة والألم المرتبط بموقع شق جلدي على الرقبة البطنية أو إجراء القصبة الهوائية. بالإضافة إلى ذلك ، تقلل هذه الطريقة من عدد الفئران المطلوبة حيث قد يتم تنبيب الفئران الفردية بشكل متكرر طوال فترة الدراسة. كما أنه يلغي الحاجة إلى أجهزة ضبط التنبيب المصممة خصيصًا أو نطاقات هاوية أو معدات مضيئة لتصور مجرى الهواء. وقد استخدمت سلالات BALB/c و C57BL/6 في هذه الدراسة لإظهار نجاح التقنية في كل من السلالات الخفيفة والداكنة المصطبغة والحيوانات ذات العمر الصغير نسبياً والصغيرة الحجم (الفئران التي يبلغ عمرها 10-20 أسبوعاً). هذه التقنية المكررة مناسبة لغرس داخل التراكفيل واحد أو متكرر من المركبات، والحمم القصبية، والتصوير أو اختبار وظيفة الرئة. يمكن تنفيذ هذه الطريقة المتعددة الاستخدامات ذات الحد الأدنى من التدخل الجراحي لأي إجراء يتطلب الوصول إلى الجهاز التنفسي السفلي.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
وليس لدى أصحاب البلاغ ما يكشفون عنه.
Acknowledgments
يشكر المؤلفون لوسيا روساس ولورين دوليتل وليزا جوزيف وليندسي فيرغسون على مساعدتهم التقنية ومختبر الجامعة للموارد الحيوانية لدعمهم لرعاية الحيوانات. يتم تمويل هذا العمل من قبل المعاهد القومية للصحة T35OD010977 وR01-HL102469.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 18 G x 1 1/4" intravenous catheter, Safelet | Fisher Scientific | #14-841-14 | Cannula for intubation |
| 70% ethanol, 10 L | Fisher Scientific | 25467025 | Cleaning cannula |
| Abrasive paper (sandpaper) | Porter-Cable | 74001201 | Cannula preparation |
| AnaSed (xylazine sterile solution) injection (100 mg/mL) | Akorn Animal Health | NDC# 59399-111-50 | Anesthesia |
| Blue labeling tape (0.5 in x 14 yds) | Fisher Scientific | 15966 | Restraint on intubation platform |
| Braided silk suture without needle, nonsterile, (3-0) | Henry Schein | Item #1007842 | Intubation platform |
| Deltaphase Isothermal Pad | Braintree Scientific | 39DP | Mouse thermoregulation and recovery |
| Deltaphase Operating Board | Braintree Scientific | 39OP | Mouse recovery (prior to extubation) |
| Distilled water | ThermoFisher | 15230253 | Cleaning mouse following depilation |
| Eye Scissors, angled, sharp/sharp | Harvard Apparatus | 72-8437 | Cannula preparation |
| FlexiVent (FX Module 2) | Scireq | N/A | Record lung function data (not required to perform procedure, used in this study to validate procedure) |
| Gauze sponges | Fisher scientific | 13-761-52 | Hair removal |
| Heavy-Duty 3" 3-Ring View Binders | Staples | 24690CT | Intubation platform |
| Instat Software | Graphpad | N/A | Statistical analysis software |
| Insulin syringe (0.5 cc, U100) | Fisher Scientific | 329461 | Anesthesia administration |
| Ketamine HCl Injection, USP (100 mg/mL) | Llyod Laoratories | List No. 4871 | Anesthesia |
| Lung inflation bulb | Harvard Apparatus | 72-9083 | Confirm cannula placement |
| Micro Forceps, Curved, Smooth | Harvard Apparatus | 72-0445 | Retract tongue and create tension on neck for cannula visualization |
| Nair (hair removal lotion), 9 oz bottle | Church & Dwight | 42010440 | Hair removal |
| Sterile saline (0.9%), 10 mL | Fisher Scientific | NC9054335 | Anesthesia, cleaning skin following hair removal |
References
- Spoelstra, E. N., et al. A novel and simple method for endotracheal intubation of mice. Laboratory Animals. 41 (1), 128-135 (2007).
- Rivera, B., Miller, S. R., Brown, E. M., Price, R. E. A Novel Method for Endotracheal Intubation of Mice and Rats Used in Imaging Studies. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (2), 52-55 (2005).
- Sparrowe, J., Jimenez, M., Rullas, J., Martinez, A. E., Ferrer, S. Refined Intratracheal Intubation Technique in the Mouse, Complete Protocol Description for Lower Airway Models. Global Journal of Animal Scientific Research. 3 (2), 363-369 (2015).
- Deyo, D. J., Wei, J. A Novel Method of Intubation and Ventilation in Mice. Anesthesia & Analgesia. 88 (2), 179 (1999).
- Vergari, A., et al. A new method of orotracheal intubation in mice. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 8 (3), 103-106 (2004).
- Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice. Journal of Applied Physiology. 87 (6), 2362-2365 (1999).
- Das, S., MacDonald, K., Chang, H. S., Mitzner, W. A Simple Method of Mouse Lung Intubation. Journal of Visualized Experiments. (73), e50318 (2013).
- Limjunyawong, N., Mock, J., Mitzner, W. Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research. Journal of Visualized Experiments. (102), e52964 (2015).
- Qin, W., Baran, U., Wang, W. Lymphatic response to depilation-induced inflammation assessed with label-free optical lymphangiography. Lasers in Surgery and Medicine. 47 (8), 669-676 (2015).
- McGovern, T. K., Robichaud, A., Fereydoonzad, L., Schuessler, T. F., Martin, J. G. Evaluation of Respiratory System Mechanics in Mice using the Forced Oscillation Technique. Journal of Visualized Experiments. (75), e50107 (2013).
