Summary
Le protocole actuel vise à créer expérimentalement l’hyperplasie intimale veineuse en soumettant les veines à la tension artérielle pour développer des stratégies pour atténuer l’hyperplasie intimale veineuse après la chirurgie de revascularisation utilisant des greffes de veine.
Abstract
Bien que les greffes veineuses aient été couramment utilisées comme greffes autologues dans les chirurgies de revascularisation pour des maladies ischémiques, la patency à long terme reste pauvre en raison de l’accélération de l’hyperplasie intimale due à l’exposition à la tension artérielle. Le protocole actuel est conçu pour l’établissement d’hyperplasie veineuse expérimentale en interposant les veines jugulaires de lapin aux artères carotides carotides ipsilateral. Le protocole ne nécessite pas de procédures chirurgicales profondément dans le tronc du corps et l’étendue de l’incision est limitée, ce qui est moins invasif pour les animaux, permettant l’observation à long terme après l’implantation. Cette procédure simple permet aux chercheurs d’étudier des stratégies pour atténuer la progression de l’hyperplasie intimale des greffes de veine implantées. En utilisant ce protocole, nous avons rapporté la transduction d’effets du microARN-145 (miR-145), qui est connu pour commander le phénotype des cellules vasculaires lisses de muscle (VSMC) de la prolifération à l’état contractile, dans les greffes de veine récoltées. Nous avons confirmé l’atténuation de l’hyperplasie intimale des greffes de veine en transduisant le miR-145 avant chirurgie d’implantation par le changement de phénotype des VSMC. Ici, nous rapportons une plate-forme expérimentale moins invasive pour étudier les stratégies qui peuvent être employées pour atténuer l’hyperplasie intimale des greffes de veine dans les chirurgies de revascularisation.
Introduction
Le nombre de patients souffrant de maladies ischémiques dues à l’athérosclérose augmente dans le monde entier1. Malgré les progrès actuels dans les thérapies médicales et chirurgicales pour les maladies cardiovasculaires, les maladies cardiaques ischémiques, telles que l’infarctus du myocarde, restent une cause majeure de morbidité et de mortalité2. En outre, les maladies artérielles périphériques caractérisées par une réduction du flux sanguin vers les membres induit l’ischémie des membres critiques, dans lequel environ 40% des patients perdent leurs jambes dans les 6 mois suivant le diagnostic, et le taux de mortalité est jusqu’à 20%3.
Les chirurgies de revascularisation, telles que la greffe de pontage d’artère coronaire (CABG) et la chirurgie de pontage pour les artères périphériques, sont des options thérapeutiques principales pour des maladies ischémiques. Le but de ces chirurgies est de fournir une nouvelle voie de sang pour fournir le flux sanguin suffisant vers le site distal des lésions sténotiques ou occluded des artères athérosclérotiques. Bien que les greffes artérielles in situ, telles que les artères thoraciques internes pour CABG, soient préférées comme greffons de pontage en raison de la patency plus longue prévue, les greffes de veine, telles que les veines sapheneuses autologues, sont couramment utilisées en raison de l’accessibilité et de la disponibilité plus élevées4. Le point faible des greffes de veine est le taux pauvre de patency comparé à celui des greffes d’artère5 en raison de l’hyperplasie intimale accélérée une fois soumise à la pression artérielle, qui mène à la maladie de greffe de veine6.
La maladie de greffe de veine se développe par les trois étapes suivantes : 1) la thrombose ; 2) hyperplasie intimale ; et 3) athérosclérose7. Afin de traiter la maladie de greffe de veine, beaucoup de recherche fondamentale a été menée8. Jusqu’à présent, aucune stratégie pharmacologique autre que l’antiplaquettaire et les thérapies de lipide-abaissement sont recommandées pour la prévention secondaire après des chirurgies coronaires ou périphériques de revascularisation dans les lignes directrices récentes9,10,11,12. Ainsi, pour surmonter la maladie de greffe de veine, particulièrement l’hyperplasie intimale, l’établissement d’une plate-forme expérimentale pertinente pour d’autres études est exigé.
L’hyperplasie intimale est un phénomène adaptatif qui se produit en réponse au changement dans l’environnement, où les cellules vasculaires lisses de muscle (VSMC) prolifèrent, s’accumulent, et génèrent la matrice extracellulaire dans l’intima. Par conséquent, il présente une base pour l’atherome de greffe7. Dans l’intima hyperplastique, les VSMC supportent la prolifération, et la production plutôt que la contraction, appelée « changement phénotypique »8. Il s’agit d’une cible de recherche clé pour contrôler le phénotype des VSMCs des greffes veineuses pour prévenir la maladie de greffe de veine, et de nombreuses études de base ont été menées sur ce sujet8. Cependant, une étude clinique contrôlée randomisée qui visait à réaliser le contrôle pharmacologique du phénotype de VSMC a montré des résultats limités13. En outre, il n’existe pas de thérapies normalisées pour prévenir l’hyperplasie intimale. Des recherches plus fondamentales, y compris des études sur les modèles animaux, sont nécessaires.
Pour promouvoir la recherche dans ce domaine, il est crucial d’établir un modèle animal qui récapitule les greffes de veine sous la pression artérielle artérielle, permettant une observation postopératoire à long terme. Carrel et coll. ont établi un modèle canin d’implantation de la veine jugulaire externe dans l’artère carotide14. Thérafter, une variété de greffes de veine ont été employées pour étudier les effets physiologiques et pathologiques des altérations dans la tension artérielle, y compris le cava de vena inférieur engrafted dans l’aorte thoracique ou abdominale, ou la veine saphenous gravée dans l’artère fémorale15,16,17. Ces modèles ont été construits chez de plus grands animaux, tels que des porcs ou des chiens, qui sont appropriés pour imiter une maladie de greffe de veine dans un cas clinique. Cependant, l’établissement d’un modèle animal qui peut être préparé sans techniques chirurgicales spéciales et à moindre coût serait idéal pour les chercheurs qui tentent de développer une nouvelle stratégie thérapeutique pour atténuer l’hyperplasie intimale par le contrôle du phénotype VSMC in vivo. Initialement, l’interposition de la veine jugulaire dans l’artère carotide dans un lapin a été introduit dans le domaine de la neurochirurgie18,19. Par la suite, il a été appliqué à la recherche sur l’hyperplasie intimale20,21. Le modèle initial se compose d’interposition veineuse seule, ce qui permet de gagner du temps. En outre, une étude ultérieure a démontré que la préparation d’une greffe de veine a également affecté l’hyperplasie intimale22. Davies et coll. ont évalué l’effet des dommages de cathéter de ballon sur l’hyperplasie intimale dans un modèle d’interposition veineux de lapin23,24. Bien que les dommages de cathéter de ballon en plus de l’interposition de veine aient été plus pertinents pour un arrangement clinique, un modèle plus reproductible était également désiré. Ainsi, Jiang et coll. ont examiné l’impact des environnements de flux différentiels sur l’hyperplasie intimale et ont établi une procédure de ligature de branche distale comme modèlereproductible 25. Cependant, ils ont employé une technique de manchette au moment de l’interposition de greffe de veine qui semble différente de l’anastomose cousue à la main dans le cadre clinique. Dans le protocole actuel, nous rapportons une procédure reproductible, médicalement pertinente, et largement disponible pour la préparation d’un modèle d’interposition veineuse de lapin pour évaluer l’hyperplasie intimale sous la tension artérielle.
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Protocol
REMARQUE : Toutes les interventions chirurgicales effectuées sur des animaux doivent être effectuées conformément au Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (www.nap.edu/catalog/5140.html) ou d’autres lignes directrices éthiques appropriées. Les protocoles devraient être approuvés par le comité de protection des animaux de l’établissement approprié avant d’aller de l’avant.
1. Préparation des animaux
- Achetez des lapins blancs japonais mâles (ou lapins de taille corporelle équivalente) pesant de 2,7 à 3,0 kg.
- Acclimatez les lapins pendant 1 semaine dans un cycle de 12 heures lumière-obscurité et nourrir un régime régulier de chow lapin avant la procédure.
2. Anesthésie et cadre animal
REMARQUE : Toutes les procédures ultérieures doivent être effectuées dans des conditions aseptiques. Le champ chirurgical et les dispositifs doivent être désinfectés avec 10% de solution povidone-iode, 70% d’alcool, ou un composé quaternaire d’ammonium avant utilisation.
- Anesthésiez un lapin avec l’administration intraveineuse de sodium pentobarbital (25 mg/kg) par l’intermédiaire de la veine auriculaire.
- Après s’être assuré que le lapin a perdu de sa force, transférez-le sur une table d’opération et mettez-le en position de supine. Couvrir le nez et la bouche d’un masque anesthésique. Commencez l’administration de l’anesthésie générale avec l’inhalation de 0,7 à 1,0% de mélange isoflurane-oxygène.
REMARQUE : Si le lapin commence à se déplacer, une poussée temporelle d’isoflurane jusqu’à 2 % sera efficace. - Couper la fourrure sur le cou et l’épaule à l’aide d’une tondeuse à cheveux électrique. Après avoir désinfecté la surface en pulvérisant 70% d’éthanol ou une autre solution antiseptique, rasez le reste des cheveux dans la région cervicale avec un rasoir. Désinfecter le champ chirurgical avec 10% de povidone-iode et administrer l’hydrochlorure de lidocaïne (3 mg/kg) sous-cutanée comme anesthésie locale.
REMARQUE : Examinez le mouvement répétitif de la trachée. Observez la pulsation de la veine jugulaire et de l’artère carotide. Lorsque les taux respiratoires et pulsatiles diminuent, envisagez une réduction temporaire de l’administration de l’anesthésie. La surveillance de la saturation percutanée de l’oxygène et du pouls est également utile.
REMARQUE : Le protocole peut être mis en pause ici.
3. Récolte de la veine jugulaire
REMARQUE : Des anesthésiques locaux (comme la lidocaïne) doivent être utilisés avant de faire l’incision de la peau.
- Avant l’incision de peau, administrer l’enrofloxacine prophylactique (5 mg/kg) sous-cutanée. Pour l’analgésie, administrer 0,05 mg/kg de buprénorphine sous-cutanée deux fois par jour pendant 3 jours.
REMARQUE : Pour éviter une baisse de la température corporelle, un gommage chirurgical du site d’incision peut être utilisé au lieu de pulvériser le corps de l’animal avec 70% d’éthanol. - Incise 50-60 mm de la région cervicale avec le scalpel chirurgical longitudinally. Disséquez émoussé les tissus sous-cutanés et le fascia pour exposer un segment de 20 à 30 mm de la veine jugulaire. Ligate toutes les branches de la veine exposée avec 4-0 sutures de soie.
- Placez une suture de soie 2-0 autour des veines jugulaires internes et externes pour effectuer la ligature immédiatement après l’incision de la veine jugulaire à l’étape suivante.
- Incisez la paroi veineuse (environ 1 mm) du côté distal de la veine. Insérez un cathéter ballon à 2 Français de la coupe vers le côté proximale de la veine. Ligate la suture de soie 2-0 aux sites distal des veines jugulaires.
- Gonflez le ballon avec 0,2 ml d’air. Denude l’intima de la veine en utilisant trois passages du cathéter pour l’exfoliation endothéliale.
REMARQUE : Ce procédé est considéré équivalent à la distension d’une greffe de veine saphenous dans les chirurgies humaines de revascularisation, qui cause l’exfoliation endothéliale. - Ligate l’extrémité proximale de la veine. Couper la veine pour récolter.
REMARQUE : Distinguez soigneusement l’extrémité distale et proximale de la veine récoltée, parce que l’anastomose à l’artère doit être exécutée d’une manière inversée (c.-à-d., l’extrémité distale de la veine devrait être anastomosed à l’extrémité proximale de l’artère). Par exemple, l’insertion d’un cathéter intraveineux d’un certain côté fonctionnerait comme marqueur. - Pour les manipulations thérapeutiques de la veine jugulaire récoltée, traitez la veine récoltée avec des méthodes conçues pour chaque question de recherche (p. ex., électroporation26 ou immersion directe avec des solutions27 pour transduire les microARN dans les veines).
REMARQUE : Pour ce protocole, les greffes de veine ont été trempées dans le salin, le microARN de commande de phosphate-tamponed, et le microARN-145. Le protocole peut être mis en pause ici.
4. Interposer l’artère carotide par la veine jugulaire récoltée
- Exposez un segment de 20 à 30 mm de l’artère carotide ipsilateral. Séparez soigneusement l’artère de la veine et du nerf à proximité. Ligate toutes les branches de la veine exposée avec 4-0 suture de soie.
- Administrer l’héparine de sodium par voie intraveineuse (200 UI/kg). Attendez 3 à 4 min.
- Serrez les extrémités proximales et lugubres de l’artère avec des pinces chirurgicales. Couper l’artère au milieu, entre les pinces. Injecter saline normale dans l’artère carotide incisée proximally et distally pour distend l’artère.
REMARQUE : Une artère carotide de lapin tend à rétrécir. Choisissez un site bien distendu comme site d’anastomose. - Anastomose la veine récoltée à l’artère d’une manière inversée de bout en bout.
- Insérez un cathéter intraveineux de 20 G dans la veine récoltée de la direction distale à la direction proximal pour garder les lumen veineux ouverts pendant l’anastomose distale.
- Anastomose l’extrémité proximale de la veine à l’extrémité distale de l’artère utilisant 8-0 sutures interrompues en polypropylène. Placez deux stiches d’ancrage sur le site et le site opposé. Ajouter les stiches le côté supérieur de la ligne d’anastomose entre les stiches d’ancrage.
- Retournez l’artère et la greffe de veine à l’envers. Ajouter les stiches sur la partie restante de la ligne d’anastomose.
- Retirez le cathéter intraveineux de la veine. Serrez la greffe de veine proximally et déclampez l’artère carotide distally. Assurez-vous que la greffe de veine se développe progressivement.
- Anastomose l’extrémité distale de la veine à l’extrémité proximale de l’artère utilisant 8-0 sutures interrompues en polypropylène. Déclampez l’artère pour vérifier le saignement des emplacements d’anastomose. Ajouter les sutures pour l’hémostase, si nécessaire.
REMARQUE : Une compression douce du site de saignement avec la gaze et l’attente peut être assez pour l’hémostase. Vérifiez l’expansion immédiate et la forte pulsation de la greffe de veine après le dégrimpage proximal. Si cela n’est pas observé, envisagez de répéter les étapes 4.4.2-4.4.3
- Ligater l’artère carotide interne avec une suture de soie 4-0 pour simuler une mauvaise condition de ruissellement et pour faciliter l’hyperplasie intimale.
- Nettoyez la plaie avec du salin. Fermer la plaie à l’aide de 3-0 polyglactine 910, couche par couche.
5. Procédures postopératoires
- Terminez l’anesthésie et retirez le masque d’anesthésie après vérification de la respiration spontanée de l’animal. Vérifiez fréquemment les conditions de l’animal jusqu’à ce qu’il se rétablisse de l’anesthésie.
- Gardez l’animal séparé des autres animaux jusqu’à ce que la fonction respiratoire soit entièrement restaurée. Soutenir la respiration manuellement, si nécessaire. Ne retournez pas l’animal dans un groupe plus grand jusqu’à ce qu’il soit complètement rétabli.
- Vérifiez la prise de nourriture et d’eau après la récupération de l’anesthésie et fournissez un soutien nutritionnel approprié. Administrer des analgésiques (p. ex., buprénorphine 0,05 à 0,2 mg/kg sous-cutanée 2x par jour pendant 3 jours) et vérifier les signes d’inconfort ou de douleur.
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Representative Results
La figure 1A montre une image représentative de l’hyperplasie intimale réussie à 2 semaines après chirurgie veineuse d’interposition (panneau supérieur). Le panneau inférieur montre les effets thérapeutiques des nanoparticules polyparticales poly(acide co-glycolique) chargées par microARN-145 qui atténuaient l’hyperplasie intimale (panneau inférieur). La figure 1B montre la comparaison de l’hyperplasie intimale entre le groupe témoin utilisant le contrôle salin tamponné de phosphate (PBS), le microARN de commande (Cont-miR) et les groupes de microARN-145 (miR-145). Les microARN ont été chargés de nanoparticules poly (acide co-glycolique lactique). Traitement avec microRNA-145 a atténué significativement l’hyperplasie intimale. La figure 2 montre l’immunostaining pour Ki-67, un marqueur de prolifération cellulaire. Moins de cellules Ki-67-positives sont observées dans le groupe miR-145, indiquant un changement de phénotype dans les VSMCs de l’état de prolifération immature à l’état contractuel mûr.
Figure 1 : Hyperplasie intimale réussie des veines. (A) Représentant Elastica Van Gieson colorant pour les échantillons traités avec PBS (panneau supérieur) et avec microRNA-145-chargé poly (acide lactique-co-glycolique) nanoparticules (panneau inférieur). Barres d’échelle de 500 m (B) Zone intimale dans le groupe témoin PBS, groupe de microARN de contrôle (Cont-miR) et microARN-145 (miR-145) groupes. Les microARN sont chargés de nanoparticules poly (acide co-glycolique lactique). Des analyses statistiques ont été effectuées à l’aide d’une analyse à sens unique de la variance. S’il vous plaît cliquez ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 2 : Prolifération cellulaire. Taché De Ki-67 (brun). Barres d’échelle à 100 m. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 3 : Schéma procédural. L’ADN et l’acide désoxyducléique; PLGA - poly (acide co-glycolique lactique); ARN et acide ribonucléique. S’il vous plaît cliquez ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
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Discussion
Le protocole actuel est conçu pour fournir une plate-forme expérimentale pour tester diverses interventions moléculaires ou génétiques pour vsMCs pour contrôler le phénotype de la prolifération à l’état contractile et par la suite atténuer la progression de l’hyperplasie intimale veineuse in vivo. En utilisant ce modèle, nous avons réussi à préparer l’hyperplasie intimale à 2 semaines après la chirurgie (figure 1A) et avons indiqué le potentiel thérapeutique du microARN-145 pour contrôler le phénotype VSMC26,27, validant le protocole actuel comme un modèle pour étudier davantage l’atténuation de l’hyperplasie veineuse intimale.
Notre modèle d’hyperplasie intimale de lapin se compose des trois étapes principales suivantes : 1) la blessure de cathéter ; 2) interposition jugulaire de veine ; et 3) la ligature des branches distales(figure 3). Les greffes de veine blessées avec un passage de cathéter de ballon ont été montrées pour être déendothelialized, et l’intima s’est avérée être hyperplastic23,28. Dans ce protocole, nous considérons les greffes de veine cathéter-blessées comme des greffes de veine saphenous qui sont souvent sous pression manuelle et dilatées dans des arrangements cliniques pour des procédures telles que les greffes coronaires ou périphériques de contournement d’artère. En outre, la ligature de branche distale favorisée hyperplasie intimale due au débit réduit25. Dans le modèle de faible débit rapporté, où l’artère carotide interne et toutes les artères carotides externes, à l’exception de la branche la plus inférieure, ont été ligated, le néointima a été plus amélioré par rapport à celui dans le modèle à débit élevé sans ligature de branche distale. En revanche, la ligature de branche distale dans ce protocole n’a pas inclus la ligature externe d’artère carotide pour simplifier et minimiser les procédures, et la ligature externe supplémentaire d’artère carotide dans le protocole présent peut avoir comme conséquence une plus grande progression néointimale.
Des modèles existants d’hyperplasie intimale de lapin ont été développés pour poursuivre la reproductibilité ou la validité clinique. Le modèle initial ne comprenait que l’interposition jugulaire de veine21. Ensuite, quelques modifications ont été apportées, y compris une blessure au cathéter ou une ligature de branche distale, pour augmenter l’étendue de l’hyperplasie intimale23,25. En revanche, nous avons cherché à établir un modèle reproductible ressemblant à un cas clinique, où les patients présentant le diabète sucré ou la maladie périphérique d’artère présentent souvent la perfusion distale pauvre sur la circulation coronaire ou inférieure d’extrémité. En outre, les greffes de veine saphenous sont souvent distendues manuellement par la pression hydrostatique qui cause l’exfoliation endothéliale29. Considérant ces facteurs multiples induisant l’hyperplasie intimale, nous avons adopté le modèle d’interposition veineux mélangé combiné avec les deux procédures additionnelles, imitant une chirurgie de revascularisation.
Ce procédé exige des dissections chirurgicales sur des couches relativement superficielles du corps, et l’incision chirurgicale est limitée à la région cervicale, la rendant moins invasive pour des animaux, ayant pour résultat un taux de survie plus élevé, et facilitant l’observation à long terme. Les anastomoses chirurgicales sont exécutées au niveau de surface du corps. Cela permet à différents chercheurs, et pas seulement aux chirurgiens, d’effectuer la procédure. La seule étape critique serait la procédure d’anastomose mentionnée dans l’étape 4.4. Les stiches inexacts peuvent entraîner une sténose ou une occlusion au site d’anastomose. Quand 8-0 des sutures de polypropylène sont créées, l’utilisation de télescopes chirurgicaux avec un grossissement d’au moins 2.5x sont recommandés. Comme décrit dans un autre rapport qui a abordé le modèle intimal d’hyperplasie de lapin26, 10-0 sutures avec l’aide des microscopes de puissance de 10x serait également utile. Après avoir perfectionné notre modèle, notre taux de patency de la greffe de veine implantée à 2 semaines postopératoirement était 90.9%. Un autre avantage de notre modèle est le coût de procédure relativement inférieur par rapport à celui des grandes expériences animales. Cela permet aux chercheurs d’augmenter le volume expérimental pour effectuer un plus grand nombre d’interventions.
Ce modèle d’interposition veineuse est plus cliniquement pertinent, facile à manipuler et peu coûteux. Il peut être appliqué à de plus grands modèles animaux et utilisé pour des études cliniques. Bien que les modèles cabG porcins et canins aient été développés30,31,32, ils sont techniquement exigeants. Un modèle interpose de veine jugulaire porcine qui se compose de l’interposition jugulaire de veine seule a été établie33. Ainsi, il est possible que les deux procédures de blessure de cathéter et de ligature de branche distale soient en outre exécutées comme étant plus valables.
Une autre possibilité est d’appliquer notre modèle à un modèle d’interposition veineuse de souris. Un modèle d’interposition veineux de souris rapporté a adopté une technique technique de manchette techniquement exigeante pour contourner l’anastomose directe34. Dans le domaine de la maladie de greffe de veine, les modèles expérimentaux de souris aussi bien que les modèles animaux plus grands ont été couramment employés35. Ceux-ci incluent des modèles d’hyperplasie intimal et des modèles d’atherome de greffe de veine36. Techniques impliquées dans la préparation pour les modèles d’hyperplasie intimale chez la souris comprennent la ligature de l’artère carotide37, la blessure de fil38, l’interposition de veine, et la blessure de collier39. Dans les modèles d’athermie de greffe de veine, les souris génétiquement modifiées sont typiquement employées dans des modèles expérimentaux de souris, contrairement aux modèles animaux plus grands. Un modèle d’interposition veineux mélangé avec la ligature carotide d’artère dans des souris génétiquement modifiées serait plus médicalement pertinent.
Une limitation de la procédure actuelle est que le modèle de flux à l’emplacement de la veine interposée n’est pas le même que ceux des greffes veineuses dans les chirurgies humaines. En particulier, le flux sanguin des greffes veineuses sur CABG est fourni dans la phase diastolique, dans laquelle le modèle de flux est différent de celui dans la phase systolique. Une autre limitation est que l’établissement de modèles animaux récapitulant l’étiologie de l’ischémie médiée par l’athérosclérose chez l’homme est difficile. L’utilisation d’animaux génétiquement modifiés avec un métabolisme lipidique altéré ou sur un régime riche en graisses peut aider à surmonter cette limitation à l’avenir.
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Disclosures
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Acknowledgments
Ce travail a été soutenu par des subventions de recherche du Ministère de l’éducation, de la culture, des sports, des sciences et de la technologie, Japon (25462136).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10% Povidone-iodine solution | Nakakita | 872612 | Surgical expendables |
| 2-0 VICRYL Plus | Johnson and Johnson | VCP316H | Surgical expendables |
| 4-0 Silk suture | Alfresa pharma | GA04SB | Surgical expendables |
| 8-0 polypropylene suture | Ethicon | 8741H | Surgical expendables |
| Cefazorin sodium | Nichi-Iko Pharmaceutical | 6132401D3196 | Antibiotics |
| Fogarty Catheter (2Fr) | Edwards Lifesciences LLC | E-060-2F | Surgical expendables |
| Heparin | Nipro | 873334 | Anticoagulant |
| Intravenous catheter (20G) | Terumo | SR-OT2051C | Surgical expendables |
| Isoflurane | Fujifilm | 095-06573 | Anesthesia |
| Lidocaine hydrochloride | MP Biomedicals | 193917 | Anesthesia |
| Pentobarbital sodium | Tokyo Chemical Industry | P0776 | Anesthesia |
References
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