L’attuale protocollo stabilisce un metodo rigoroso e riproducibile per la quantificazione dei cambiamenti articolari morfologici che accompagnano l’osteoartrite. L’applicazione di questo protocollo può essere utile per monitorare la progressione della malattia e valutare gli interventi terapeutici nell’osteoartrite.
Uno dei disturbi articolari più diffusi negli Stati Uniti, l’osteoartrite (OA) è caratterizzata da una progressiva degenerazione della cartilagine articolare, principalmente nelle articolazioni dell’anca e del ginocchio, che si traduce in impatti significativi sulla mobilità del paziente e sulla qualità della vita. Ad oggi, non esistono terapie curative esistenti per l’OA in grado di rallentare o inibire la degenerazione della cartilagine. Attualmente, c’è una vasta serie di ricerche in corso per comprendere la patologia OA e scoprire nuovi approcci terapeutici o agenti che possono rallentare in modo efficiente, fermare o addirittura invertire OA. Pertanto, è fondamentale avere un approccio quantitativo e riproducibile per valutare con precisione i cambiamenti patologici associati all’OA nella cartilagine articolare, nel sinovio e nell’osso subcondrale. Attualmente, la gravità e la progressione dell’OA sono valutate principalmente utilizzando l’Osteoarthritis Research Society International (OARSI) o i sistemi di punteggio Mankin. Nonostante l’importanza di questi sistemi di punteggio, sono semiquantitativi e possono essere influenzati dalla soggettività dell’utente. Ancora più importante, non riescono a valutare con precisione sottili, ma importanti, cambiamenti nella cartilagine durante gli stati della malattia precoce o le fasi di trattamento precoce. Il protocollo qui descritto utilizza un sistema software istomorfometrico computerizzato e semiautomatizzato per stabilire una metodologia quantitativa standardizzata, rigorosa e riproducibile per la valutazione dei cambiamenti congiunti nell’OA. Questo protocollo presenta una potente aggiunta ai sistemi esistenti e consente un rilevamento più efficiente dei cambiamenti patologici nel giunto.
Uno dei disturbi articolari più diffusi negli Stati Uniti, OA è caratterizzato da una progressiva degenerazione della cartilagine articolare, principalmente nelle articolazioni dell’anca e del ginocchio, che si traduce in impatti significativi sulla mobilità del paziente e sulla qualità della vita1,2,3. La cartilagine articolare è il tessuto connettivo specializzato delle articolazioni diartrodiali progettato per ridurre al minimo l’attrito, facilitare il movimento e sopportare la compressione articolare4. La cartilagine articolare è composta da due componenti primari: condrociti e matrice extracellulare. I condrociti sono cellule specializzate, metabolicamente attive che svolgono un ruolo primario nello sviluppo, manutenzione, e riparazione della matrice extracellulare4. L’ipertrofia condromita (CH) è uno dei principali segni patologici dello sviluppo dell’OA. È caratterizzato da un aumento delle dimensioni del cellulare, diminuzione della produzione proteoglicana e aumento della produzione di enzimi che degradano la matrice della cartilagine che alla fine portano alla degenerazione della cartilagine5,6,7. Inoltre, i cambiamenti patologici nell’osso subcondrale e nel sinovio del giunto svolgono un ruolo importante nello sviluppo e nella progressionedell’OA 8,9,10,11,12. Ad oggi, non esistono terapie curative esistenti che inibiscono la degenerazione della cartilagine1,2,3,13,14. Così, c’è una vasta ricerca in corso che mira a capire la patologia OA e scoprire nuovi approcci terapeutici che sono in grado di rallentare o addirittura fermare OA. Di conseguenza, c’è una crescente necessità di un approccio quantitativo e riproducibile che consenta una valutazione accurata dei cambiamenti patologici associati all’OA nella cartilagine, nel sinovium e nell’osso subcondrale dell’articolazione.
Attualmente, la gravità e la progressione dell’OA vengono valutate principalmente utilizzando i sistemi di punteggio OARSI o Mankin15. Tuttavia, questi sistemi di punteggio sono solo semiquantitativi e possono essere influenzati dalla soggettività dell’utente. Ancora più importante, non riescono a valutare con precisione i cambiamenti sottili che si verificano nell’articolazione durante la malattia o in risposta alla manipolazione genetica o a un intervento terapeutico. Ci sono sporadiche relazioni nella letteratura che descrivono le analisi istomormetriche della cartilagine, del sinovio o dell’osso subcondrale16,17,18,19,2020,21. Tuttavia, manca ancora un protocollo dettagliato per l’analisi istomorfometrica rigorosa e riproducibile di tutti questi componenti articolari, creando un bisogno insoddisfatto nel campo.
Per studiare i cambiamenti patologici nell’OA utilizzando l’analisi istomorfometrica, abbiamo usato un modello di topo chirurgico OA per indurre l’OA attraverso la destabilizzazione del menisco mediale (DMM). Tra i modelli consolidati di murine OA, DMM è stato selezionato per il nostro studio perché coinvolge un meccanismo meno traumatico di lesione22,23,24,25,26. Rispetto agli interventi chirurgici a imumento meniscale-ligamentoso (MLI) o alle lesioni da legamento crociato anteriore (ACLI), DMM promuove una progressione più graduale dell’OA, simile allo sviluppo di OA negli esseri umani22,24,25,26. I topi sono stati eutanasia dodici settimane dopo l’intervento chirurgico DMM per valutare i cambiamenti nella cartilagine articolare, nell’osso subcondrale e nel sinovium.
L’obiettivo di questo protocollo è quello di stabilire un approccio standardizzato, rigoroso e quantitativo per valutare i cambiamenti congiunti che accompagnano l’OA.
Recenti ricerche sull’osteoartrite hanno migliorato la nostra comprensione del crosstalk tra i diversi tessuti all’interno dell’articolazione e il ruolo di ogni tessuto nell’inizio o nella progressione della malattia8,9,10,3535,36. Di conseguenza, è diventato evidente che la valutazione dell’OA non dovrebbe limitarsi all’analisi della cartilagine, ma dovrebbe…
The authors have nothing to disclose.
Vorremmo riconoscere l’assistenza del personale del Dipartimento di Medicina Comparata e del nucleo molecolare e istopatologia del Penn State Milton S. Hershey Medical Center. Fonti di finanziamento: NIH NIAMS 1RO1AR071968-01A1 (F.K.), ANRF Arthritis Research Grant (F.K.).
10% Buffered Formalin Phosphate | Fisher Chemical | SF100-20 | For sample fixation following harvest |
Acetic Acid, Glacial (Certified A.C.S.) | Fisher Chemical | A38S-212 | For Decalcification Buffer preparation and acetic acid solution preparation for staining |
Cintiq 27QHD Creative Pen Display | Wacom | https://www.wacom.com/en-es/products/pen-displays/cintiq-27-qhd-touch | For histomorphometric analysis and imaging |
Cintiq Ergo stand | Wacom | https://www.wacom.com/en-es/products/pen-displays/cintiq-27-qhd-touch | For histomorphometric analysis and imaging |
Ethylenediaminetetraacetic acid, tetrasodium salt dihydrate, 99% | Acros Organics | AC446080010 | For Decalcification Buffer preparation |
Fast Green stain | SIGMA Life Sciences | F7258 | For sample staining |
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides | Fisher | 12-550-15 | For sample section collection |
HistoPrep Xylene | Fisherbrand | HC-700-1GAL | For sample deparrafinization and staining |
Histosette II Tissue Cassettes – Combination Lid and Base | Fisher | 15-182-701A | For sample processing and embedding |
HP Z440 Workstation | HP | Product number: Y5C77US#ABA | For histomorphometric analysis and imaging |
Manual Rotary Microtome | Leica | RM 2235 | For sample sectioning |
Marking pens | Leica | 3801880 | For sample labeling, cassettes and slides |
OLYMPUS BX53 Microscope | OLYMPUS | https://www.olympus-lifescience.com/en/microscopes/upright/bx53f2/ | For histomorphometric analysis and imaging |
OLYMPUS DP 73 Microscope Camera | OLYMPUS | https://www.olympus-lifescience.com/en/camera/color/dp73/ | For histomorphometric analysis and imaging (discontinued) |
ORION STAR A211 pH meter | Thermo Scientific | STARA2110 | For Decalcification Buffer preparation |
OsteoMeasure Software | OsteoMetrics | https://www.osteometrics.com/index.htm | For histomorphometric measurement and analysis |
Perfusion Two Automated Pressure Perfusion system | Leica | Model # 39471005 | For mouse knee harvest |
PRISM 7 Software | GraphPad | Institutional Access Account | Statistical Analysis |
Safranin-O stain | SIGMA Life Sciences | S8884 | For sample staining |
ThinkBoneStage – Rotating Microscope Stage | Think Bone Consulting Inc. – OsteoMetrics (supplier) | http://thinkboneconsulting.com/index_files/Slideholder.php | For histomorphometric analysis and imaging |
Wacom Pro Pen Stylus | Wacom | https://www.wacom.com/en-es/products/pen-displays/cintiq-27-qhd-touch | For histomorphometric analysis and imaging |
Weigerts Iron Hematoxylin A | Fisher | 5029713 | For hematoxylin staining |
Weigerts Iron Hematoxylin B | Fisher | 5029714 | For hematoxylin staining |